The authors acknowledge financial support from the Victorian Government&#8217;s Operational Infrastructure Support Program.

HINWEIS: Plazenten sollte von Singleton gesunde Schwangerschaft gesammelt werden, mit einer Vorliebe für tigen Kaiserschnitt Abschnitte. Geschrieben sollte informierte Zustimmung zur Sammlung ihrer Plazenta gegeben werden. Ihre einschlägigen Menschen Forschung Ethik-Kommission sollte die Genehmigung alle Sammlung und Verwendung von menschlichen Geweben. 1. Isolierung von Amnion Epithelzellen <ol style="margin-left: 40px;"><li> Legen Sie die Plazenta auf eine sterile Oberfläche innerhalb einer Klasse II Sicherheitswerkbank. </li><li> Verwendung steriler Hanks ausgewogener Salzlösung (HBSS), wasche die so viel Blut wie möglich aus der Plazenta Oberfläche und Membranen. </li><li> Mit der Plazenta mit der Nabelschnur nach oben eingelegt, mechanisch trennen den äußeren Rand der Amnion und Chorion Membranen. </li><li> Einmal getrennt, manuell die Amnionmembran Streifen aus dem Chorion Membran der Plazenta, die rund um die Kante der Membran in Richtung der Nabelschnur. HINWEIS: Tö Beul, alle Stücke von verunreinigenden Chorion Membran aus dem Amnion zu entfernen. </li><li> Mit Hilfe einer sterilen Schere, schneiden Sie die Amnionmembran ca. 2 cm von der Basis der Nabelschnur und in einen 500-ml verschlossenen Behälter mit 250 ml HBSS. </li><li> Gründlich durch Schütteln des verschlossenen Flasche, die die Amnionmembran waschen. </li><li> Entfernen Sie die Amnionmembran aus dem Auffangbehälter mit einer sterilen Pinzette und Ort in eine 15 cm Petrischale. </li><li> Schneiden Sie die Amnionmembran in ca. 5 cm lang (bei vertikal mit einer Pinzette gehalten) Stücke, Verwerfen blutiger oder Papierreste. </li><li> Platz in einem 500 ml verschlossenen Behälter und wäscht mit 250 ml HBSS etwa 3-5 mal, oder bis die Amnionmembran durchscheinend ohne gefährdend Blut. HINWEIS: Jede Blut kann die Effizienz der enzymatischen reduzieren Abbaulösung. </li><li> Übertragen Sie alle Stücke von Amnionmembran in einen Behälter mit 50 ml der enzymatischen Abbaulösung, wobei darauf zuminimieren Trag von HBSS. </li><li> Inkubieren Sie die Amnion Stücke in enzymatischen Abbaulösung im Wasserbad oder warmen Raum bei 37 ° C für 15 min unter leichtem Schütteln, um alle verbleibenden Blut zu entfernen. </li><li> Entfernen Sie die Amnionmembran Stücke aus der enzymatischen Abbaulösung und in einen neuen sterilen Behälter. </li><li> 100 ml frischer Enzymanalysenlösung in den Amnionmembran und bei 37 ° C für 60 min in einem Wasserbad oder warmen Raum unter leichtem Schütteln (erste Verdauung). </li><li> Entfernen Sie die Amnionmembran Stücke aufnehmen und in neue Container kümmert, damit die enzymatischen Abbaulösung von jedem Membranstück abtropfen lassen. ANMERKUNG: Diese kann durch Ziehen Amnion Stücke entlang der Innenrand des Behälters erreicht werden. </li><li> 100 ml frischer Enzymanalysenlösung in der Amnionmembran Stücke und Inkubation 60 min in einem Wasserbad oder warmen Raum bei 37 ° C unter leichtem Schütteln (zweite Verdauung). </li><li> Übergeben Sie die Zellschutzsperreauf aus Schritt 1.14 durch einen 70 um-Filter und Zentrifuge bei 1.000 × g für 10 min. </li><li> Entfernen Sie den Überstand und Zellpellet in 4 ml HBSS, enthaltend 1 mg / ml Sojabohnenbasis-Enzym-Inhibitor. Sanft wiederholt Pipette mit einer 1 ml Pipette in eine Einzelzellsuspension zu erhalten. HINWEIS: In diesem Stadium Zellen auf Eis gelassen werden, bis die Zellen von der zweiten Digest sind im gleichen Stadium der Verarbeitung. </li><li> Entfernen Sie die Amnionmembran Stücke aufnehmen und in neue Container kümmert, damit die enzymatischen Abbaulösung von jedem Membranstück abtropfen lassen. ANMERKUNG: Diese kann durch Ziehen Amnion Stücke entlang der Innenrand des Behälters erreicht werden. </li><li> Übergeben Sie die Zellsuspension aus Schritt 1.18 durch einen 70 um-Filter und Zentrifuge bei 1.000 × g für 10 min. </li><li> Entfernen Sie den Überstand und Zellpellet in 4 ml HBSS, enthaltend 1 mg / ml Sojabohnenbasis-Enzym-Inhibitor. Gently wiederholt pipettieren mit einer 1 ml pipette um eine Einzelzellsuspension zu erhalten. </li><li> Pool-Zellen aus den beiden verdaut, oder alternativ halten Zelle verdaut, getrennt, bis nach der Zellzahl. HINWEIS: Dies verhindert, dass das Mischen von potenziell geringen Lebensfähigkeit Zellen mit hoher Tragfähigkeit Zellen. </li><li> Hinzufügen HBSS auf ein Endvolumen von 10-20 ml und führen Zellzahlen unter Verwendung von Trypanblau zur Rentabilität zu messen. </li><li> Bestätigen Sie den epithelialen Zell-Phänotyp mittels Durchflusszytometrie. Make up geeigneten Antikörper-Cocktails mit anti-EpCAM-PE (1: 2 Verdünnung) anti-CD90-PeCy5 (1: 250) und anti-CD105-APC (1: 100) in HBSS. </li><li> Resuspendieren eine Untergruppe von Zellen von einer oder beiden Digests in der Antikörpermischung in einer Konzentration von 25 x 10 6 Zellen / ml. </li><li> Für die Durchflusszytometrie Fleck 1 x 10 6 Zellen mit Antikörper-Cocktails, die Isotypkontrollen (z. IgG1 Isotyp-Kontroll-PE + Anti-CD90-PeCy5 + anti-CD105-APC). Halten ~ 1 x 10 6 Zellen ungefärbt für Durchflusszytometer Set-up. </li><li> Zellen in Antikörper-InkubationCocktails bei 4 ° C für 60 min. </li><li> Wasche die Zellen 3x in HBSS resuspendieren bei 5 bis 10 Millionen Zellen pro ml für die Durchflusszytometrie. </li><li> Führen Durchflusszytometrie und Anmerkungs Ergebnisse. Die Reinheit des Zell Isolat (der Prozentsatz der EpCAM-positive und CD90 / CD105-negativen Zellen) wird erwartet, dass 90 bis 95% und &lt;1% betragen. </li><li> Beiseite eine geeignete Anzahl von Zellen für den Test geeignete Qualitätskontrolle oder Freigabekriterien wie Endanwendung bestimmt. Hinweis: das kann Krankheit / Virus Screening oder andere Sicherheit oder biologischen Kriterien umfassen. </li><li> Für die übrigen Zellen, folgen Sie der Kryokonservierungsprotokolls oder alternativ direkt in die Kultur (direkt an Kultur Schritt 3.6). </li></ol> 2. Kryokonservierung von hAECs <ol style="margin-left: 40px;"><li> Bestimmen Sie die Zellzahl und Lebensfähigkeit mit Durchflusszytometrie Daten oder manuelle Zählung mit Trypanblau-Ausschluss. </li><li> Zentrifuge bei 700 × g für 5 min. </li><li> Resuspendieren Zells von 1-10 Millionen Zellen pro ml in Tierproduktfreien Kryokonservierung Medien. </li><li> Pipettieren ein geeignetes Volumen der Zellen in die O-Ring-Kryokonservierung Fläschchen aufnehmen und in einer kontrollierten Rate Gefriervorrichtung, wo die Abkühlung tritt bei etwa 1 ° C / min bis -80 ° C erreicht wird. </li><li> Übertragen Fläschchen in flüssigem Stickstoff zur Langzeitlagerung. </li></ol> 3. Auftauen und Kultur Cyropreserved hAECs <ol style="margin-left: 40px;"><li> Entfernen Kryokonservierung Fläschchen aus flüssigem Stickstoff und legen auf Eis. HINWEIS: Für die Übertragung nur - schnell weiter zum nächsten Schritt. </li><li> Auftauen Kryokonservierung Ampullen schnell bei 37 ° C, bis nur noch ein kleines Stück (~ 5 mm x 5 mm) des Eises verbleibt. Hinweis: Es ist wichtig, dass die Zelllösung nicht erwärmt, um die toxischen Wirkungen von DMSO bei der Kryokonservierung Medien reduzieren. </li><li> Verdünne Kryokonservierung Medium 10-fach mit kaltem (ca. 4 ° C) serumfreien Medien, tropfenweise in einer geeigneten Größed Rohr oder Behälter. </li><li> Zentrifuge bei 700 × g für 5 min bei RT. </li><li> Ein Resuspendieren in serumfreien Medium, um eine ungefähre Konzentration von 1 Million Zellen pro ml. Bestimmen Sie die Zellzahl und Lebensfähigkeit mit automatisierten oder manuellen Zählung mit Trypanblau-Ausschluss. Erwartete Lebensfähigkeit nach dem Auftauen werden 5-10% weniger als vor der Kryokonservierung Lebensfähigkeit. </li><li> Plattenzellen auf Standard-Zellkultur behandelten Kunststoffwaren, oder alternativ Typ-I-Kollagen zu beschichten Kulturoberflächen. </li><li> Für Typ-I-Collagen-Beschichtung folgen das Protokoll unter <ol><li> Bereiten säurelöslichem Kollagen Typ I aus der menschlichen Plazenta (15 mg Kollagen mit 25 ml entionisiertem Wasser und 50 ul Eisessig). </li><li> Bedeckung Becherglas mit Parafilm und rühren mäßig bei 37 ° C bis Kollagenstränge gelöst sind. </li><li> Sterile Filtercollagenlösung unter Verwendung einer 0,22 um-Filter. </li><li> Verdünnen Sie die gefilterten Kollagen Lager 01.10 mit VE-Wasser. Diese verdünnte Lager ist die Arbeits concentration Lösung für die Beschichtung von Kunststoff-und Membranoberflächen. </li><li> Kollagen-Kunststoff, Glas und Membranoberflächen für 2 h bei RT bei 37 ° C oder O / N bei 2-8 ° C. </li><li> Entfernen überschüssiger Flüssigkeit von der beschichteten Oberfläche, und lassen Sie sie O / N trocknen. </li><li> Spülen Sie mit sterilen Gewebekultur-Wasser oder HBSS vor der Einführung von Zellen und Medium. </li></ol></li><li> Platte hAECs in einer Dichte von 25.000 Zellen / cm 2 in einem serumfreien Medium und ermöglichen die Befestigung an für 72-96 h auf. </li><li> Nach Anlegen Verändern Medien durch vorsichtiges Ansaugen und Ersetzen mit einem geeigneten Volumen an Serum-freies Medium alle 2-3 Tage. </li><li> Passage-Zellen mit dem untenstehenden Protokoll <ol><li> Absaugen von Zellkulturmedien und wäscht mit 1x Volumen an sterilem HBSS </li><li> Hinzufügen 1x Volumen von enzymatischen Abbaulösung und Inkubation für 5-15 Minuten oder bis Zellen beobachtet Ablösen von der Zellkulturoberfläche. </li><li> Sammeln enzymatische Verdauung Lösung, die Zellen, die Gewährleistung cells werden aus der Zellkulturoberfläche durch wiederholtes Pipettieren des enzymatischen Aufschlußlösung vor der Zellkulturoberfläche abgelöst </li><li> Zentrifuge bei 700 × g für 5 min. </li><li> Zellpellet in einem geeigneten Volumen an HBSS mit 1 mg / ml Sojabohnenbasis Enzyminhibitor. Sanft wiederholt Pipette mit einer 1 ml Pipette in eine Einzelzellsuspension zu erhalten. </li><li> Serumfreies Medium hinzuzufügen einer ungefähren Konzentration von 1 Million Zellen / ml. Bestimmen Sie die Zellzahl und Lebensfähigkeit mit automatisierten oder manuellen Zählung mit Trypanblau-Ausschluss. </li><li> Platte hAECs in einer Dichte von 25.000 Zellen / cm 2 in einem serumfreien Medium und mit Standardkultivierungsverfahren fortzusetzen. </li></ol></li></ol>

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The authors have nothing to disclose.

Es gibt mehrere kritische Parameter, die erhebliche Auswirkungen auf den Erfolg dieser Methode haben können. Speicherung der Plazenta oder Amnion für 3 h vor der Isolierung hAECs kann logistischer oder Planungszwecke wünschenswert sein, es wird jedoch empfohlen, dass das Gewebe so schnell wie möglich verarbeitet werden. Wenn Gewebe gelagert werden soll, ist es empfehlenswert, dass der Lagerung nach der Präparation und Waschen der Amnionmembran geführt werden. Amnion in sterile HBSS mit Antibiotika bei 4 ° C gelag...

Zellen von perinatalen Quellen, wie Plazenta, Plazentamembranen, Nabelschnur und Fruchtwasser abgeleitet haben die Aufmerksamkeit von Forschern und Klinikern als potentielle Quelle von Zellen für die regenerative Medizin 1,2 angezogen. Der Grund für dieses Interesse ist, dass diese Zelltypen besitzen alle ein gewisses Maß an Plastizität und immunmodulatorische Fähigkeit 3, Eigenschaften, die von grundlegender Bedeutung für ihre mögliche therapeutische Anwendungen geeignet sind. hAECs sind eine heterogene Population Epithelzellen, die aus Laufzeit oder vorzeitigen Amnionmembran 4 abgeleitet werden kann, wodurch ein reichliches potentielle Quelle für regenerative Zellmaterial. Die Eigenschaften, die hAECs ansprechend als Zelltherapie machen gehören ihrer Multi, geringe Immunogenität und entzündungshemmende Eigenschaften. hAECs gefunden wurden hochmulti sowohl in vitro als auch in vivo, zur Differenzierung zu mesodermalen Abstammungslinien zu sein (cardiomyocytes, Muskelzellen, Knochenzellen, Fettzellen), endodermalen Linien (Bauchspeicheldrüsenzellen, Leberzellen, Lungenzellen) und ektodermalen Linien (Haare, Haut, Nervenzellen und Astrozyten) 5-10. Beruhigend, trotz ihrer Multipotenz hAECs Sie nicht, entweder Form Tumoren erscheinen oder zu fördern Tumorentwicklung in vivo. Darüber hinaus sind auch hAECs Immun privilegierten, zum Ausdruck geringe Klasse II Human-Leukozyten-Antigene (HLA) 8. Diese Eigenschaft wahrscheinlich zugrunde ihre Fähigkeit, Immunabstoßung nach allogener und xenogener Transplantation zu entgehen, wie in Studien mit immunkompetenten Affen, Kaninchen, Meerschweinchen, Ratten und Schweine von 11 bis 13 gezeigt. hAECs anzuzeigen potente immunmodulatorische und immunsuppressive Eigenschaften und bieten somit erhebliche praktische Vorteile für potentielle klinische Anwendungen bei Autoimmunerkrankungen Therapie. hAECs sind vermutlich immunmodulatorische Funktionen sowohl auf der angeborenen und adaptiven Immunsystem auszuüben. Aufe der Mechanismen vorgeschlagen, ist durch die Sekretion von immunmodulatorische Faktoren 14. Aktuelle Anwendungen der hAECs in vorklinischen Tierkrankheitsmodellen gehören die Behandlung von Schlaganfall, Multiple Sklerose, Lebererkrankungen, Diabetes und chronischen und akuten Lungenerkrankungen. Forscher haben Interesse an der Nutzung hAECs um nach Schlaganfall Gehirn Entzündung aufgrund ihrer einzigartigen Eigenschaften gezeigt. Es gibt Hinweise darauf, dass hAECs die Blut-Hirn-Schranke, wo sie engraft überqueren können, überleben für bis zu 60 Tage, zu differenzieren zu Neuronen, verringern Entzündungen und fördern Regeneration geschädigter Gewebe des zentralen Nervensystems in Tiermodellen für neurologische Erkrankungen 15. hAECs bieten die Möglichkeit, gezielt und Rückwärts mehrere pathologische Wege, die zu der Entwicklung und Progression von Multipler Sklerose bei. Beispielsweise ergibt sich aus der präklinischen Tierstudien legen nahe, dass hAECs stark immunsuppressive undpotenziell induzieren peripheren Immuntoleranz und Reverse laufenden Entzündungsreaktionen. hAECs haben auch gezeigt, dass die Fähigkeit, in vivo in neurale Zellen zu differenzieren und zu verbessern endogenen Neuroregeneration durch die Sekretion einer Vielzahl von neurotrophen Faktoren 16 haben. Mensch und Nager Amnion Epithelzellen haben bereits ihre therapeutische Wirksamkeit nachgewiesen für die Behandlung von Lebererkrankungen in Tiermodellen. In einem Tetrachlorkohlenstoff Schäden Induktions Modell einer Lebererkrankung, HAEC Transplantation führen zur Verpflanzung von lebensfähigen hAECs in der Leber, in Begleitung mit reduzierter Hepatozyten Apoptose und Verminderung der Leberentzündung und Fibrose 17. hAECs kann ausgedrückt Pankreas Faktoren, einschließlich Insulin und Glucose-Transporter stimuliert werden. Mehrere Studien haben das Potenzial für hAECs den Blutglucosespiegel in diabetischen Mäusen 18 wiederherzustellen sucht. In Mäusen, diehAECs verringerte beide Tierkörpergewicht und den Blutzuckerspiegel auf ein normales Niveau nach der Injektion von Zellen. Diese Studien stellen ein starkes Argument für den Einsatz von hAECs zur Behandlung von Diabetes mellitus. hAECs haben eine nachgewiesene Rolle bei der Prävention und Reparatur von experimentellen akuten und chronischen Lungenschädigung in Erwachsenen und Neugeborenen-Modelle 19. Diese Studien zeigten, dass hAECs Differenzierung in vitro in funktionaler Lungenepithelzellen exprimieren multiple Lungen-assoziierten Proteine, einschließlich Cystic Fibrosis Transmembrane Conductance Regulator (CFTR), des Ionenkanals, die bei Patienten mit zystischer Fibrose 20 mutiert ist. Außerdem, wenn hAECs an den verletzten Erwachsenen und Neugeborenen Lunge zugeführt, die reparative Wirkungen auszuüben sie über die Modulation der Immunzellen, wodurch Lungen Leukozytenrekrutierung, einschließlich Neutrophilen, Makrophagen und Lymphozyten 21-23. Angesichts ihrer Hülle und Fülle,Sicherheitsbilanz und bewährte klinische Anwendungen für mehrere Krankheiten, klinische Studien mit hAECs ist unvermeidlich. Mit dem Ziel, beschleunigte Umsetzung HAEC Therapien in klinischen Studien-entwickelten wir Methoden, um in einer für die klinischen Studien Weise zu isolieren, Kryokonservierung und Kultur hAECs mit Tierproduktfreien Reagenzien gemäß den aktuellen guten Herstellungspraxis (cGMP) Leitlinien . Wir basieren diesem Protokoll eine zuvor veröffentlichte Protokoll, das wir erfolgreich verwendet haben, um hAECs Verwendung von Tieren stammenden Reagenzien 6 zu isolieren. Wir veränderten das ursprüngliche Protokoll an Tieren stammenden Produkte mit tierischen Erzeugnissen freien Reagenzien zu ersetzen, und die anschließende Optimierung durchgeführt, um die Zellausbeute, Lebensfähigkeit und Reinheit zu optimieren. Unser Ziel war es, ein Protokoll, das mit regulatorischen Standards für Zellfertigung für den menschlichen klinischen Studien erfüllen zu entwickeln.

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	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:220px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:119px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:184px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:220px;">Collection Kit</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:220px;">Stripping tray</td>
			<td style="width:119px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">13-361B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="34">
			<td height="34" style="height:34px;width:220px;">Liberty Dressing Forcep, pointed 13cm</td>
			<td style="width:119px;">Fisher Scientific</td>
			<td>S17329&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:220px;">Scissors - Sharp/Blunt Straight</td>
			<td style="width:119px;">Fisher Scientific</td>
			<td>NC0562592&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile latex gloves&#160;</td>
			<td style="width:119px;">Fisher Scientific</td>
			<td>19-014-643&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:220px;">Protective Apparel (Gown)</td>
			<td style="width:119px;">U-line</td>
			<td style="width:119px;">S-15374-M</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Protective Apparel</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Isolation gowns</td>
			<td style="width:119px;">U-line</td>
			<td style="width:119px;">S-15374-M</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile latex gloves&#160;</td>
			<td style="width:119px;">Fisher Scientific</td>
			<td>19-014-643&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">General purpose face mask</td>
			<td style="width:119px;">Cardinal Health</td>
			<td style="width:119px;">AT7511</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Bonnets</td>
			<td style="width:119px;">Medline</td>
			<td style="width:119px;">CRI1001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Shoe covers</td>
			<td style="width:119px;">U-line</td>
			<td style="width:119px;">S-7873W</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:220px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Media and Reagents</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="33">
			<td height="33" style="height:33px;">Hanks&#8217; Balanced Salt Solution (HBSS)</td>
			<td style="width:119px;">Life Technologies</td>
			<td align="right" style="width:119px;">14175095</td>
			<td>without calcium or magnesium</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">TrypZean(animal product&#8211;free recombinant trypsin)</td>
			<td style="width:119px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:119px;">T3449</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Soybean Trypsin Inhibitor&#160; 1g/50mL</td>
			<td style="width:119px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:119px;">T6522</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Cryostor CS5</td>
			<td style="width:119px;">BioLife Solutions</td>
			<td align="right" style="width:119px;">205102</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="23">
			<td height="23" style="height:23px;">Trypan blue reagent</td>
			<td style="width:119px;">Life Technologies</td>
			<td style="width:119px;">15250-061</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">anti-EpCam-PE</td>
			<td style="width:119px;">Miltenyi Biotec</td>
			<td style="width:119px;">130 - 091-253</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">PE-isotype control</td>
			<td style="width:119px;">Miltenyi Biotec</td>
			<td style="width:119px;">130-098-845</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">anti-CD90-PeCy5</td>
			<td style="width:119px;">BD Pharmingen</td>
			<td align="right" style="width:119px;">555597</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">PeCy5-isotype control</td>
			<td style="width:119px;">BD Pharmingen</td>
			<td align="right" style="width:119px;">557224</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">anti-CD105-APC</td>
			<td style="width:119px;">BD Pharmingen</td>
			<td align="right" style="width:119px;">562408</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">APC-isotype control</td>
			<td style="width:119px;">BD Pharmingen</td>
			<td align="right" style="width:119px;">340754</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Collagen Type VI</td>
			<td style="width:119px;">Sigma Aldrich</td>
			<td>C7521</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Consumables</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">50mL graduated pipette</td>
			<td style="width:119px;">BD/Falcon</td>
			<td>356550</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">10mL graduated pipette</td>
			<td style="width:119px;">BD/Falcon</td>
			<td>356551</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">5mL graduated pipette</td>
			<td style="width:119px;">BD/Falcon</td>
			<td>356543</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">50mL falcon tubes</td>
			<td style="width:119px;">BD/Falcon</td>
			<td>352070</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">15mL falcon tubes</td>
			<td style="width:119px;">BD/Falcon</td>
			<td>352096</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">15-cm petri dishes</td>
			<td style="width:119px;">Corning</td>
			<td align="right" style="width:119px;">351058</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">70-&#956;m filters</td>
			<td style="width:119px;">BD/Falcon</td>
			<td>352350</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">0.22-&#956;m filters</td>
			<td style="width:119px;">Millipore</td>
			<td>SLGV033RS</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:220px;">1ml Pipette tips</td>
			<td style="width:119px;">Fisherbrand</td>
			<td style="width:119px;">02-707-401</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:220px;">200ul Pipette tips</td>
			<td style="width:119px;">Fisherbrand</td>
			<td style="width:119px;">02-707-409</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:220px;">20ml Syringe</td>
			<td style="width:119px;">BD/Medical</td>
			<td align="right" style="width:119px;">309661</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:220px;">Plastic spatula</td>
			<td style="width:119px;">Fisher Scientific</td>
			<td>14-245-97&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:220px;">Plastic weighing boat</td>
			<td style="width:119px;">Fisher Scientific</td>
			<td>02-202-102&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:220px;">Cryo vials</td>
			<td>Nunc</td>
			<td>377267</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:220px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:220px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:220px;">Equipment</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:220px;">Mr Frosty</td>
			<td style="width:119px;">Fisher Scientific</td>
			<td>A451-4&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:220px;">Biohazard Cabinet</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

isolation, cryopreservation and culture of human amnion epithelial cells for clinical applications

Human amnion epithelial cells (hAECs) derived from term or pre-term amnion membranes have attracted attention from researchers and clinicians as a potential source of cells for regenerative medicine. The reason for this interest is evidence that these cells have highly multipotent differentiation ability, low immunogenicity, and anti-inflammatory functions. These properties have prompted researchers to investigate the potential of hAECs to be used to treat a variety of diseases and disorders in pre-clinical animal studies with much success.
hAECs have found widespread application for the treatment of a range of diseases and disorders. Potential clinical applications of hAECs include the treatment of stroke, multiple sclerosis, liver disease, diabetes and chronic and acute lung diseases. Progressing from pre-clinical animal studies into clinical trials requires a higher standard of quality control and safety for cell therapy products. For safety and quality control considerations, it is preferred that cell isolation protocols use animal product-free reagents. 
We have developed protocols to allow researchers to isolate, cryopreserve and culture hAECs using animal product-free reagents. The advantage of this method is that these cells can be isolated, characterized, cryopreserved and cultured without the risk of delivering potentially harmful animal pathogens to humans, while maintaining suitable cell yields, viabilities and growth potential. For researchers moving from pre-clinical animal studies to clinical trials, these methodologies will greatly accelerate regulatory approval, decrease risks and improve the quality of their therapeutic cell population.

Wenn dieses Verfahren korrekt befolgt, sollte ein Durchschnittsertrag von 120 Millionen hAECs rechnen, wobei ein typischer Bereich von 80-160 Millionen Zellen. Aus diesen Erträgen kann eine durchschnittliche Überlebensfähigkeit von 83 ± 4% zu erwarten. Der erhöhte mittlere Ausbeute und einer etwas niedrigeren Lebensfähigkeit im klinischen Verfahren kann aufgrund der höheren Trypsin-Aktivität als die von Tieren stammenden Produkt aufgrund des Fehlens von Serumproteinen ist, und vielleicht auch. Isolierte hAECs ei...

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Isolation, Cryopreservation and Culture of Human Amnion Epithelial Cells for Clinical Applications

We describe a protocol to isolate and culture human amnion epithelial cells (hAECs) using animal product-free reagents in accordance with current good manufacturing practices (cGMP) guidelines.

Isolation, Kryokonservierung und Kultur der Menschen Amnion Epithelzellen für Klinische Anwendungen

Human amnion epithelial cells (hAECs) derived from term or pre-term amnion membranes have attracted attention from researchers and clinicians as a ...

isolation-cryopreservation-culture-human-amnion-epithelial-cells-for

Research

JoVE Journal

Medicine

13.8K Aufrufe.  Wake Forest University Health Sciences. We describe a protocol to isolate and culture human amnion epithelial cells (hAECs) using animal product-free reagents in accordance with current good manufacturing practices (cGMP) guidelines. 

Serie: Isolation, Cryopreservation and Culture of Human Amnion Epithelial Cells for Clinical Applications

Isolation, Characterization and Comparative Differentiation of Human Dental Pulp Stem Cells Derived from Permanent Teeth by Using Two Different Methods

Developing wisdom teeth are easy-accessible source of stem cells during the adulthood which could be obtained by routine orthodontic treatments. Human pulp-derived stem cells (hDPSCs) possess high proliferation potential with multi-lineage differentiation capacity compare to the ordinary source of adult stem cells1-8; therefore, hDPSCs could be the good candidates for autologous transplantation in tissue engineering and regenerative medicine. Along with these benefits, possessing the mesenchymal stem cells (MSC) features, such as immunolodulatory effect, make hDPSCs more valuable, even in the case of allograft transplantation6,9,10. Therefore, the primary step for using this source of stem cells is to select the best protocol for isolating hDPSCs from pulp tissue. In order to achieve this goal, it is crucial to investigate the effect of various isolation conditions on different cellular behaviors, such as their common surface markers &amp; also their differentiation capacity.
Thus, here we separate human pulp tissue from impacted third molar teeth, and then used both existing protocols based on literature, for isolating hDPSCs,11-13 i.e. enzymatic dissociation of pulp tissue (DPSC-ED) or outgrowth from tissue explants (DPSC-OG). In this regards, we tried to facilitate the isolation methods by using dental diamond disk. Then, these cells characterized in terms of stromal-associated Markers (CD73, CD90, CD105 &amp; CD44), hematopoietic/endothelial Markers (CD34, CD45 &amp; CD11b), perivascular marker, like CD146 and also STRO-1. Afterwards, these two protocols were compared based on the differentiation potency into odontoblasts by both quantitative polymerase chain reaction (QPCR) &amp; Alizarin Red Staining. QPCR were used for the assessment of the expression of the mineralization-related genes (alkaline phosphatase; ALP, matrix extracellular phosphoglycoprotein; MEPE &amp; dentin sialophosphoprotein; DSPP).14

The method described isolation and characterization of human Dental Pulp Stem Cells (hDPSCs) by using either enzymatic dissociation of pulp (DPSC-ED) or direct outgrowth of stem cells from pulp tissue explants (DPSC-OG). Then followed by in vitro comparative differentiation of both types of hDPSCs into odontoblasts.

Isolation, Charakterisierung und vergleichende Differenzierung humaner Dental Pulp Stammzellen aus bleibenden Zähne mit zwei verschiedenen Methoden abgeleitet

Developing wisdom teeth are easy-accessible source of stem cells during the adulthood which could be obtained by routine orthodontic treatments. Human ...

Forschung

Medizin

Isolation, Culture, and Imaging of Human Fetal Pancreatic Cell Clusters

For almost 30 years, scientists have demonstrated that human fetal ICCs transplanted under the kidney capsule of nude mice matured into functioning endocrine cells, as evidenced by a significant increase in circulating human C-peptide following glucose stimulation1-9. However in vitro, genesis of insulin producing cells from human fetal ICCs is low10; results reminiscent of recent experiments performed with human embryonic stem cells (hESC), a renewable source of cells that hold great promise as a potential therapeutic treatment for type 1 diabetes. Like ICCs, transplantation of partially differentiated hESC generate glucose responsive, insulin producing cells, but in vitro genesis of insulin producing cells from hESC is much less robust11-17. A complete understanding of the factors that influence the growth and differentiation of endocrine precursor cells will likely require data generated from both ICCs and hESC. While a number of protocols exist to generate insulin producing cells from hESC in vitro11-22, far fewer exist for ICCs10,23,24. Part of that discrepancy likely comes from the difficulty of working with human fetal pancreas. Towards that end, we have continued to build upon existing methods to isolate fetal islets from human pancreases with gestational ages ranging from 12 to 23 weeks, grow the cells as a monolayer or in suspension, and image for cell proliferation, pancreatic markers and human hormones including glucagon and C-peptide. ICCs generated by the protocol described below result in C-peptide release after transplantation under the kidney capsule of nude mice that are similar to C-peptide levels obtained by transplantation of fresh tissue6. Although the examples presented here focus upon the pancreatic endoderm proliferation and &#946;&#160;cell genesis, the protocol can be employed to study other aspects of pancreatic development, including exocrine, ductal, and other hormone producing cells.

A protocol to isolate, culture, and image islet cell clusters (ICCs) derived from human fetal pancreatic cells is described.&#160; The method details the steps necessary to generate ICCs from tissue, culture as monolayers or in suspension as aggregates, and image for markers of proliferation and pancreatic cell fate decisions.

Isolierung, Kultur und Imaging von humanen fötalen Pankreas-Zellhaufen

For almost 30 years, scientists have demonstrated that human fetal ICCs transplanted under the kidney capsule of nude mice matured into functioning ...

Adaptation of Semiautomated Circulating Tumor Cell (CTC) Assays for Clinical and Preclinical Research Applications

The majority of cancer-related deaths occur subsequent to the development of metastatic disease. This highly lethal disease stage is associated with the presence of circulating tumor cells (CTCs). These rare cells have been demonstrated to be of clinical significance in metastatic breast, prostate, and colorectal cancers. The current gold standard in clinical CTC detection and enumeration is the FDA-cleared CellSearch system (CSS). This manuscript outlines the standard protocol utilized by this platform as well as two&#160;additional adapted protocols that describe the detailed process of user-defined marker optimization for protein characterization of patient CTCs and a comparable protocol for CTC capture in very low volumes of blood, using standard CSS reagents, for studying in vivo preclinical mouse models of metastasis. In addition, differences in CTC quality between healthy donor blood spiked with cells from tissue culture versus patient blood samples are highlighted. Finally, several commonly discrepant items that can lead to CTC misclassification errors are outlined. Taken together, these protocols will provide a useful resource for users of this platform interested in preclinical and clinical research pertaining to metastasis and CTCs.

Adaptation of Semiautomated Circulating Tumor Cell CTC Assays for Clinical and Preclinical Research Applications

Circulating tumor cells (CTCs) are prognostic in several metastatic cancers. This manuscript describes the gold standard CellSearch system (CSS) CTC enumeration platform and highlights common misclassification errors. In addition, two&#160;adapted protocols are described for user-defined marker characterization of CTCs and CTC enumeration in preclinical mouse models of metastasis using this technology.

Halbautomatische Anpassung der Umlauftumorzellen (CTC)-Assays für die klinische und vorklinische Forschungsanwendungen

The majority of cancer-related deaths occur subsequent to the development of metastatic disease. This highly lethal disease stage is associated with the ...

Isolation and Culture Expansion of Tumor-specific Endothelial Cells

Freshly isolated tumor-specific endothelial cells (TEC) can be used to explore molecular mechanisms of tumor angiogenesis and serve as an in vitro model for developing new angiogenesis inhibitors for cancer. However, long-term in vitro expansion of murine endothelial cells (EC) is challenging due to phenotypic drift in culture (endothelial-to-mesenchymal transition) and contamination with non-EC. This is especially true for TEC which are readily outcompeted by co-purified fibroblasts or tumor cells in culture. Here, a high fidelity isolation method that takes advantage of immunomagnetic enrichment coupled with colony selection and in vitro expansion is described. This approach generates pure EC fractions that are entirely free of contaminating stromal or tumor cells. It is also shown that lineage-traced Cdh5cre:ZsGreenl/s/l reporter mice, used with the protocol described herein, are a valuable tool to verify cell purity as the isolated EC colonies from these mice show durable and brilliant ZsGreen fluorescence in culture.

We report a reliable method to isolate and culture primary tumor-specific endothelial cells from genetically engineered mouse models.

Isolierung und Kultur Expansion von tumorspezifischen Endothelzellen

Freshly isolated tumor-specific endothelial cells (TEC) can be used to explore molecular mechanisms of tumor angiogenesis and serve as an in vitro model ...

Three-dimensional Alginate-bead Culture of Human Pituitary Adenoma Cells

A three-dimensional culture method is described in which primary pituitary adenoma cells are grown in alginate beads. Alginate is a polymer derived from brown sea algae. Briefly, the tumor tissue is cut into small pieces and submitted to an enzymatic digestion with collagenase and trypsin. Next, a cell suspension is obtained. The tumor cell suspension is mixed with 1.2% sodium alginate and dropped into a CaCl2 solution, and the alginate/cell suspension is gelled on contact with the CaCl2 to form spherical beads. The cells embedded in the alginate beads are supplied with nutrients provided by the culture media enriched with 20% FBS. Three-dimensional culture in alginate beads maintains the viability of adenoma cells for long periods of time, up to four months. Moreover, the cells can be liberated from the alginate by washing the beads with sodium citrate and seeded on glass coverslips for further immunocytochemical analyses. The use of a cell culture model allows for the fixation and visualization of the actin cytoskeleton with minimal disorganization. In summary, alginate beads provide a reliable culture system for the maintenance of pituitary adenoma cells.

Three-dimensional culture in alginate beads, due to its simplicity and reproducibility, was chosen to maintain the pituitary adenoma cells. The procedures included an initial enzymatic digestion and mechanical dissociation of the tumor tissue, and the subsequent cell suspension was encapsulated in alginate beads.

Dreidimensionale Alginat-Perle Kultur der Menschen Hypophysenadenom Cells

A three-dimensional culture method is described in which primary pituitary adenoma cells are grown in alginate beads. Alginate is a polymer derived from ...

Isolation and Culture of Primary Endothelial Cells from Canine Arteries and Veins

Cardiovascular disease is studied in both human and veterinary medicine. Endothelial cells have been used extensively as an in vitro model to study vasculogenesis, (tumor) angiogenesis, and atherosclerosis. The current standard for in vitro research on human endothelial cells (ECs) is the use of Human Umbilical Vein Endothelial Cells (HUVECs) and Human Umbilical Artery Endothelial Cells (HUAECs). For canine endothelial research, only one cell line (CnAOEC) is available, which is derived from canine aortic endothelium. Although currently not completely understood, there is a difference between ECs originating from either arteries or veins. For a more direct approach to in vitro functionality studies on ECs, we describe a new method for isolating Canine Primary Endothelial Cells (CaPECs) from a variety of vessels. This technique reduces the chance of contamination with fast-growing cells such as fibroblasts and smooth muscle cells, a problem that is common in standard isolation methods such as flushing the vessel with enzymatic solutions or mincing the vessel prior to digestion of the tissue containing all cells. The technique we describe was optimized for the canine model, but can easily be utilized in other species such as human.

Novel isolation methods of primary endothelial cells from blood vessels are needed. This protocol describes a new technique that completely inverts blood vessels of interest, exposing only the endothelial side to enzymatic digestion. The resulting pure endothelial cell culture can be used to study cardiovascular diseases, disease modelling, and angiogenesis.

Isolierung und Kultur von primären Endothelzellen von Canine Arterien und der

Cardiovascular disease is studied in both human and veterinary medicine. Endothelial cells have been used extensively as an in vitro model to study ...

A Novel Clinical Grade Isolation Method for Human Kidney Perivascular Stromal Cells

Mesenchymal Stromal Cells (MSCs) are tissue homeostatic and immune modulatory cells that have shown beneficial effects in kidney diseases and transplantation. Perivascular Stromal Cells (PSCs) share characteristics with bone marrow MSCs (bmMSCs). However, they also possess, most likely due to local imprinting, tissue-specific properties and play a role in local tissue homeostasis. This tissue specificity may result in tissue specific repair, also within the human kidney. We previously showed that human kidney PSCs (kPSCs) have enhanced kidney epithelial wound healing whereas bmMSCs did not have this potential. Moreover, kPSCs can ameliorate kidney injury in vivo. Therefore, kPSCs constitute an interesting source for cell therapy, particularly for kidney diseases and renal transplantation. Here we show the detailed isolation and culture method for kPSCs from transplant-grade human kidneys based on whole-organ perfusion of digestive enzymes via the renal artery and enrichment for the perivascular marker NG2. In this way, large cell quantities can be obtained that are suitable for cellular therapy.

Here we present a novel clinical grade isolation and culture method for kidney Perivascular Stromal Cells (kPSCs) based on whole organ perfusion with digestive enzymes and NG2-cell enrichment. With this method, it is possible to acquire sufficient cell numbers for cellular therapy.

Eine neue klinische Grade Isolationsmethode für menschliche Niere perivaskuläre Stromazellen Zellen

Mesenchymal Stromal Cells (MSCs) are tissue homeostatic and immune modulatory cells that have shown beneficial effects in kidney diseases and ...

Culture and Imaging of Human Nasal Epithelial Organoids

Individualized therapy for cystic fibrosis (CF) patients can be achieved with an in vitro disease model to understand baseline Cystic Fibrosis Transmembrane conductance Regulator (CFTR) activity and restoration from small molecule compounds. Our group recently focused on establishing a well-differentiated organoid model directly derived from primary human nasal epithelial cells (HNE). Histology of sectioned organoids, whole-mount immunofluorescent staining, and imaging (using confocal microscopy, immunofluorescent microscopy, and bright field) are essential to characterize organoids and confirm epithelial differentiation in preparation for functional assays. Furthermore, HNE organoids produce lumens of varying sizes that correlate with CFTR activity, distinguishing between CF and non-CF organoids. In this manuscript, the methodology for culturing HNE organoids are described in detail, focusing on the assessment of differentiation using the imaging modalities, including the measurement of baseline lumen area (a method of CFTR activity measurement in organoids that any laboratory with a microscope can employ) as well as the developed automated approach to a functional assay (which requires more specialized equipment).

A detailed protocol is presented here to describe an in vitro organoid model from human nasal epithelial cells. The protocol has options for measurements requiring standard laboratory equipment, with additional possibilities for specialized equipment and software.

Kultur und Bildgebung von humanen nasalen Epithelorganoiden

Individualized therapy for cystic fibrosis (CF) patients can be achieved with an in vitro disease model to understand baseline Cystic Fibrosis ...

Isolation and Culture of Human Adipose-Derived Stem Cells With an Innovative Xenogeneic-Free Method for Human Therapy

Considering the increasing impact of stem cell therapy, biosafety concerns have been raised regarding potential contamination or infection transmission due to the introduction of animal-derived products during in vitro manipulation. The xenogeneic components, such as collagenase or fetal bovine serum, commonly used during the cell isolation and expansion steps could be associated with the potential risks of immune reactivity or viral, bacterial, and prion infection in the receiving patients. Following good manufacturing practice guidelines, chemical tissue dissociation should be avoided, while fetal bovine serum (FBS) can be substituted with xenogeneic-free supplements. Moreover, to ensure the safety of cell products, the definition of more reliable and reproducible methods is important. We have developed an innovative, completely xenogeneic-free method for the isolation and in vitro expansion of human adipose-derived stem cells without altering their properties compared to collagenase FBS-cultured standard protocols. Here, human adipose-derived stem cells (hASCs) were isolated from abdominal adipose tissue. The sample was mechanically minced with scissors/a scalpel, micro-dissected and mechanically dispersed in a 10 cm Petri dish, and prepared with scalpel incisions to facilitate the attachment of the tissue fragments and the migration of hASCs. Following the washing steps, hASCs were selected due to their plastic adherence without enzymatic digestion. The isolated hASCs were cultured with medium supplemented with 5% heparin-free human platelet lysate and detached with an animal-free trypsin substitute. Following good manufacturing practice (GMP) directions on the production of cell products intended for human therapy, no antibiotics were used in any culture media.

Xenogeneic (chemical or animal-derived) products introduced in the cell therapy preparation/manipulation steps are associated with an increased risk of immune reactivity and pathogenic transmission in host patients. Here, a complete xenogeneic-free method for the isolation and in vitro expansion of human adipose-derived stem cells is described.

Isolierung und Kultivierung von humanen Fettstammzellen mit einer innovativen xenogenfreien Methode für die Humantherapie

Considering the increasing impact of stem cell therapy, biosafety concerns have been raised regarding potential contamination or infection transmission ...

Weiterentwicklung der Kryolagerung von aus menschlichen Stammzellen gewonnenen retinalen Pigment-Epithelzellen

Cryopreservation of Human Embryonic Stem Cell-Derived Retinal Pigment Epithelial Cells at the Optimal Stage

Retinal pigment epithelial&#160;(RPE) cells derived from human embryonic stem cells (hESCs) are superior cell sources for cell replacement therapy in individuals with retinal degenerative diseases; however, studies on the stable and secure banking of these therapeutic cells are scarce. Highly variable cell viability and functional recovery of&#160;RPE cells after cryopreservation are the most commonly encountered issues. In the present protocol, we aimed to achieve the best cell recovery rate after thawing by selecting the optimal cell phase for freezing based on the original experimental conditions. Cells were frozen in the exponential phase determined by using the 5-ethynyl-2&#8242;-deoxyuridine labeling assay, which improved cell viability and recovery rate after thawing. Stable and functional cells were obtained shortly after thawing, independent of a long differentiation process. The methods described here allow the simple, efficient, and inexpensive preservation and thawing of hESC-derived RPE cells. Although this protocol focuses on RPE cells, this freezing strategy may be applied to many other types of differentiated cells.

Autoren-Spotlight: Entwicklung einer effizienten und praktikablen Methode zum Einfrieren von retinalen Pigment-Epithelzellen

This study provides a detailed protocol for the efficient cryopreservation of human stem cell-derived retinal pigment epithelial cells.

Kryokonservierung von aus humanen embryonalen Stammzellen gewonnenen retinalen Pigmentepithelzellen im optimalen Stadium

Retinal pigment epithelial&#160;(RPE) cells derived from human embryonic stem cells (hESCs) are superior cell sources for cell replacement therapy in ...