The authors acknowledge financial support from the Victorian Government&#8217;s Operational Infrastructure Support Program.

참고 : 태반이 용어 선택 과목 제왕 섹션의 설정에, 싱글 건강한 임신에서 수집해야합니다. 작성된 동의서들은 태반의 수집을 위해 주어져야한다. 귀하의 관련 인간의 연구 윤리위원회는 승인 모든 수집 및 인체 조직의 사용을해야한다. 양막 상피 세포의 1. 분리 <ol style="margin-left: 40px;"><li> 클래스 II 생물 안전 캐비닛 내에서 멸균 표면에 태반을 놓습니다. </li><li> 멸균에게 행크스 평형 염 용액 (HBSS)을 사용하여 태반 표면 및 막으로부터 가능한 한 많은 혈액을 세척한다. </li><li> 탯줄이 위를 향하도록 배치 태반으로, 기계적으로 양막과 융모막 세포막의 바깥 쪽 가장자리를 구분합니다. </li><li> 분리되면, 수동으로 탯줄, 멤브레인의 에지 주변에서 작업, 태반의 융모막 막에서 양막 멤브레인 스트립. 참고 : caref 될UL은 양막에서 융모막 막 오염의 조각을 제거합니다. </li><li> 멸균 가위를 사용하여, 250 ml의 HBSS를 포함하는 용기를 밀봉 한 500㎖의 탯줄과 장소의 기지에서 약 2cm를 양막 막 잘라. </li><li> 양막 멤브레인을 포함하는 밀봉 된 병을 흔들어 깨끗이 씻으십시오. </li><li> 15cm 페트리 접시에 수집 멸균 집게를 사용하여 컨테이너, 장소에서 양막 막을 제거합니다. </li><li> 피 묻은거나 찢어 조각을 폐기, (집게 수직으로 개최 할 때) 약 5cm 긴 조각으로 양막 멤브레인을 잘라. </li><li> 500 ml의에있는 장소는 용기를 밀봉하고 250 ml의 HBSS로 약 3 ~ 5 번 씻거나 양막 막 더 오염 혈액 반투명 될 때까지. 참고 : 모든 혈액에 존재하는 솔루션을 소화 효소의 효율을 감소시킬 수있다. </li><li> 주의하면서 소화 용액을 50 ml의 효소를 함유하는 용기에 양막 막 조각을 모두 전송HBSS의 이월을 최소화 할 수 있습니다. </li><li> 남아있는 혈액을 제거하기 위해 교반과 함께 15 분 동안 37 ° C에서 물 목욕이나 따뜻한 방에서 솔루션을 소화 효소에 양막 조각을 품어. </li><li> 새로운 멸균 용기에 솔루션과 장소를 소화 효소의 양막 조각을 제거합니다. </li><li> 신선한 효소 100ml를 양막 멤브레인 용액​​을 소화하고 수욕 또는 부드러운 진탕 (제 1 분해) 따뜻한 방에서 60 분 동안 37 ℃에서 추가 배양한다. </li><li> 양막 막 조각을 제거하고 효소가 세포막의 각 부분에서 배출 솔루션을 소화 할 수 있도록 새로운 컨테이너 돌보는에 배치합니다. 주 : 이것은 용기 내부 림을 따라 양막 조각을 드래그함으로써 달성 될 수있다. </li><li> 신선한 효소의 100 ml의 양막 막 조각에 솔루션을 소화하고 부드러운 흔들림 (초 소화) 37 ° C에서 물 목욕이나 따뜻한 방에서 60 분을 품어 추가. </li><li> 셀 suspensi 전달10 분 동안 1,000 XG에 70 μm의 필터와 원심 분리기를 통해 단계 1.14에서에. </li><li> 제거하고 상층 액을 제거하고, 1 ㎎ / ㎖ 대두 계 효소 저해제를 함유하는 4 ml의 HBSS에서 세포 펠렛을 재현 탁. 부드럽게 단일 세포 현탁액을 수득 1ml를 피펫으로 반복해서 피펫. 주 : 제 다이제스트로부터 세포가 동일한 처리 단계가 될 때까지이 단계에서 세포를 얼음에 남아있을 수있다. </li><li> 양막 막 조각을 제거하고 효소가 세포막의 각 부분에서 배출 솔루션을 소화 할 수 있도록 새로운 컨테이너 돌보는에 배치합니다. 주 : 이것은 용기 내부 림을 따라 양막 조각을 드래그함으로써 달성 될 수있다. </li><li> 10 분 동안 1,000 XG에 70 μm의 필터와 원심 분리기를 통해 단계 1.18에서 세포 현탁액을 전달합니다. </li><li> 제거하고 상층 액을 제거하고, 1 ㎎ / ㎖ 대두 계 효소 저해제를 함유하는 4 ml의 HBSS에서 세포 펠렛을 재현 탁. 부드럽게 1 ML의 페이지 반복적으로 피펫단일 세포 현탁액을 수득 ipette. </li><li> 두 다이제스트 또는 대안에서 풀 세포는 세포 수 때까지 분리 된 세포 다이제스트을 유지합니다. 참고 :이 높은 생존 세포에 잠재적으로 낮은 생존 세포의 혼합을 방지 할 수 있습니다. </li><li> 10 ~ 20 ml의 최종 부피에 HBSS를 추가하고 생존 능력을 측정하기 위해 트리 판 블루를 사용하여 세포 수를 수행합니다. </li><li> 유동 세포 계측법에 의한 상피 세포 표현형을 확인합니다. 안티는 EpCAM-PE 사용하여 적절한 항체 칵테일을 확인 (1 : 2 희석) 항 CD90-PeCy5 (1 : 250) 및 안티 CD105-APC (1 : 100) HBSS에. </li><li> 25 × 106 세포 / ml의 농도로 하나의 세포 또는 항체 칵테일의 두 다이제스트의 서브 세트를 재현 탁. </li><li> 유동 세포 계측법, 얼룩 이소 컨트롤을 포함하는 항체 칵테일 1 × 10 6 세포의 경우 (예. IgG의 1 이소 제어-PE + 안티 CD90-PeCy5 + 안티 CD105-APC). 설정 사이토 흐름에 대한 흠 ~ 1 × 10 6 세포를 보관하십시오. </li><li> 항체 세포를 품어60 분 동안 4 ° C에서 칵테일. </li><li> 워시 세포는 유동 세포 계측법 1 ㎖ 당 5-10000000 세포에서 HBSS 및 재현 탁에 3 배. </li><li> 유동 세포 계측법 및 참고 결과를 수행합니다. 셀 분리 (는 EpCAM 양성 및 CD90 / CD105 음성 세포의 백분율)의 순도 및 각각 90-95% &lt;1 %가 될 것으로 예상된다. </li><li> 최종 응용 프로그램에 의해 결정되는 적절한 품질 관리 또는 방출 기준에 대한 테스트를 위해 따로 세포의 적절한 수를 설정합니다. 참고 :이 질환 / 바이러스 차단, 또는 다른 안전 또는 생물학적 기준을 포함​​ 할 수 있습니다. </li><li> 나머지 세포의 경우, 냉동 보존 프로토콜에 따라, 또는 대안 (문화 단계 3.6 직접) 문화에 직접 배치합니다. </li></ol> hAECs 2. 냉동 보존 <ol style="margin-left: 40px;"><li> 데이터 또는 트리 판 블루 배제와 수동 계산 유동 세포 계측법을 사용하여 세포 수와 생존을 결정합니다. </li><li> 5 분 동안 700 XG에 원심 분리기. </li><li> 재현 탁 셀동물 제품 무료 냉​​동 보존 매체에 1 ㎖ 당 1-10000000 세포 사이의. </li><li> O 고리 동결 튜브에 세포의 적절한 볼륨을 피펫 및 냉각이 약 발생하는 위치 제어 속도 냉동 장치에 배치 1 ° C / 분까지 -80 C이 달성 °. </li><li> 장기간 저장을 위해 액체 질소로 전송 튜브. </li></ol> Cyropreserved hAECs 3. 해동 문화 <ol style="margin-left: 40px;"><li> 액체 질소에서 냉동 보존 튜브를 제거하고 얼음에 배치합니다. 참고 : 전송의 경우 - 다음 단계로 빠르게 진행합니다. </li><li> 얼음이 남아의 작은 조각 (~ 5mm X 5mm) 때까지 37 ℃에서 급속 냉동 보관 유리 병을 녹여. 주 : 세포 용액은 동결 배지에서 DMSO의 독성을 감소시키는 가온하지 않는 것이 중요하다. </li><li> 감기 (~ 4 ° C) 혈청이없는 매체와 냉동 보존 매체 10 배 희석 점적 적당한 크기에 추가D 튜브 또는 용기. </li><li> RT에서 5 분 700 XG에 원심 분리기. </li><li> 1 mL 당 1 백만 세포의 농도로 근사, 무 혈청 배지에 재현 탁. 트리 판 블루 배제로 자동 또는 수동 계산을 사용하여 세포 수와 생존을 결정합니다. 예상 생존 후 해동 미리 냉동 보존 생존보다 5 ~ 10 % 적습니다. </li><li> 플레이트 표준 세포 배양 처리 된 플라스틱 제품에 세포, 또는 선택적으로 사용 유형 I 코트 문화 표면에 콜라겐. </li><li> I 형 콜라겐 코팅는 아래의 프로토콜을 따라 <ol><li> 인간의 태반 (25 ml의 탈 이온수 50 μL 빙초산 15 mg의 콜라겐)에서 산 가용성 I 형 콜라겐을 준비합니다. </li><li> 파라 필름으로 비이커를 커버하고 콜라겐 가닥이 용해 될 때까지 37 ° C에서 적당히 저어. </li><li> 0.22 μm의 필터를 사용하여 멸균 여과 콜라겐 용액. </li><li> 탈 이온수로 필터링 된 콜라겐 스톡 1:10 희석. 이 희석 주식은 작업 conce입니다코팅 플라스틱 및 막 표면에 대한 ntration 솔루션입니다. </li><li> 콜라겐 코트 플라스틱, 37 ° C의 실온에서 2 시간 동안 유리와 막 표면, 또는 O / N 2-8 ° C에서. </li><li> 코팅 된 표면에서 초과 액체를 제거하고 O / N을 건조 할 수 있습니다. </li><li> 세포와 매체를 도입하기 전에 무균 조직 배양 등급의 물 또는 HBSS로 씻어. </li></ol></li><li> 플레이트 혈청 배지에서 25,000 세포 / ㎠의 밀도로 hAECs, 그리고 첨부 72-96 시간 동안 발생할 수있다. </li><li> 첨부 파일에 따라주의 깊게 흡입 및 무 혈청 배지의 적절한 볼륨 2-3 일마다로 대체하여 미디어를 변경합니다. </li><li> 아래의 프로토콜을 이용하여 세포 통로 <ol><li> 기음 세포 배양 미디어 및 무균 HBSS의 1 배 부피로 세척 </li><li> 세포는 세포 배양 물 표면으로부터 분리 될 때까지 관찰되는 효소의 양을 추가 1X 용액을 소화하고 5-15 분 동안 인큐베이션하거나. </li><li> 용액은 세포를 포함하는 소화 효소 CE 보장 모아서LLS 반복 세포 배양면에 용액을 소화 효소를 피펫 팅하여 세포 배양 물 표면으로부터 분리되고 </li><li> 5 분 동안 700 XG에 원심 분리기. </li><li> 1 ㎎ / ㎖ 대두 계 효소 저해제를 함유하는 HBSS의 적당한 부피에서 세포 펠렛을 재현 탁. 부드럽게 단일 세포 현탁액을 수득하여 1ml 피펫으로 반복해서 피펫. </li><li> 1 백만 세포 / ml의 대략적인 농도 무 혈청 배지를 추가합니다. 트리 판 블루 배제로 자동 또는 수동 계산을 사용하여 세포 수와 생존을 결정합니다. </li><li> 플레이트 혈청 배지에서 25,000 세포 / ㎠의 밀도로 hAECs하고 표준 방법으로 배양을 계속. </li></ol></li></ol>

<ol>
	<li>Murphy, S. V., Wallace, E. M., Jenkin, G., Appasani, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Stem Cells and Regenerative Medicine. 1, 243-264 (2011).</li><li>Murphy, S. V., Atala, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Amniotic+fluid+and+placental+membranes:+unexpected+sources+of+highly+multipotent+cells.">Amniotic fluid and placental membranes: unexpected sources of highly multipotent cells.</a> Semin. Reprod. Med. 31 (1), 62-68 (2013).</li><li>Parolini, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Concise+review:+isolation+and+characterization+of+cells+from+human+term+placenta:+outcome+of+the+first+international+Workshop+on+Placenta+Derived+Stem+Cells.">Concise review: isolation and characterization of cells from human term placenta: outcome of the first international Workshop on Placenta Derived Stem Cells.</a> Stem Cells. 26 (2), 300-311 (2008).</li><li>Lim, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preterm+human+amnion+epithelial+cells+have+limited+reparative+potential.">Preterm human amnion epithelial cells have limited reparative potential.</a> Placenta. 34 (6), 486-492 (2013).</li><li>Tamagawa, T., Ishiwata, I., Saito, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Establishment+and+characterization+of+a+pluripotent+stem+cell+line+derived+from+human+amniotic+membranes+and+initiation+of+germ+layers+in+vitro.">Establishment and characterization of a pluripotent stem cell line derived from human amniotic membranes and initiation of germ layers in vitro.</a> Hum Cell. 17 (3), 125-130 (2004).</li><li>Miki, T., Marongiu, F., Ellis, E., Strom, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+of+amniotic+epithelial+stem+cells.">Isolation of amniotic epithelial stem cells.</a> Curr Protoc Stem Cell Biol. 1, Unit 1E.3 (2007).</li><li>Murphy, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Amnion+epithelial+cell+isolation+and+characterization+for+clinical+use.">Amnion epithelial cell isolation and characterization for clinical use.</a> Curr Protoc Stem Cell Biol. 1, Unit 1E.6 (2010).</li><li>Ilancheran, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stem+cells+derived+from+human+fetal+membranes+display+multilineage+differentiation+potential.">Stem cells derived from human fetal membranes display multilineage differentiation potential.</a> Biol Reprod. 77 (3), 577-588 (2007).</li><li>Fliniaux, I., Viallet, J. P., Dhouailly, D., Jahoda, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transformation+of+amnion+epithelium+into+skin+and+hair+follicles.">Transformation of amnion epithelium into skin and hair follicles.</a> Differentiation. 72 (9-10), 558-565 (2004).</li><li>Miki, T., Lehmann, T., Cai, H., Stolz, D. B., Strom, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stem+cell+characteristics+of+amniotic+epithelial+cells.">Stem cell characteristics of amniotic epithelial cells.</a> Stem Cells. 23 (10), 1549-1559 (2005).</li><li>Avila, M., Espana, M., Moreno, C., Pena, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reconstruction+of+ocular+surface+with+heterologous+limbal+epithelium+and+amniotic+membrane+in+a+rabbit+model.">Reconstruction of ocular surface with heterologous limbal epithelium and amniotic membrane in a rabbit model.</a> Cornea. 20 (4), 414-420 (2001).</li><li>Sankar, V., Muthusamy, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+human+amniotic+epithelial+cell+transplantation+in+spinal+cord+injury+repair+research.">Role of human amniotic epithelial cell transplantation in spinal cord injury repair research.</a> Neuroscience. 118 (1), 11-17 (2003).</li><li>Yuge, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transplanted+human+amniotic+epithelial+cells+express+connexin+26+and+Na-K-adenosine+triphosphatase+in+the+inner+ear.">Transplanted human amniotic epithelial cells express connexin 26 and Na-K-adenosine triphosphatase in the inner ear.</a> Transplantation. 77 (9), 1452-1454 (2004).</li><li>Li, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunosuppressive+factors+secreted+by+human+amniotic+epithelial+cells.">Immunosuppressive factors secreted by human amniotic epithelial cells.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 46 (3), 900-907 (2005).</li><li>Liu, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+amniotic+epithelial+cells+ameliorate+behavioral+dysfunction+and+reduce+infarct+size+in+the+rat+middle+cerebral+artery+occlusion+model.">Human amniotic epithelial cells ameliorate behavioral dysfunction and reduce infarct size in the rat middle cerebral artery occlusion model.</a> Shock. 29 (5), 603-611 (2008).</li><li>Venkatachalam, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Novel+neurotrophic+factor+secreted+by+amniotic+epithelial+cells.">Novel neurotrophic factor secreted by amniotic epithelial cells.</a> Biocell. 33 (2), 81-89 (2009).</li><li>Manuelpillai, U., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+amniotic+epithelial+cell+transplantation+induces+markers+of+alternative+macrophage+activation+and+reduces+established+hepatic+fibrosis.">Human amniotic epithelial cell transplantation induces markers of alternative macrophage activation and reduces established hepatic fibrosis.</a> PLoS One. 7 (6), e38631 (2012).</li><li>Wei, J. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+amnion-isolated+cells+normalize+blood+glucose+in+streptozotocin-induced+diabetic+mice.">Human amnion-isolated cells normalize blood glucose in streptozotocin-induced diabetic mice.</a> Cell Transplant. 12 (5), 545-552 (2003).</li><li>Murphy, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+amnion+epithelial+cells+prevent+bleomycin-induced+lung+injury+and+preserve+lung+function.">Human amnion epithelial cells prevent bleomycin-induced lung injury and preserve lung function.</a> Cell Transplant. 20 (6), 909-923 (2011).</li><li>Murphy, S. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+amnion+epithelial+cells+induced+to+express+functional+cystic+fibrosis+transmembrane+conductance+regulator.">Human amnion epithelial cells induced to express functional cystic fibrosis transmembrane conductance regulator.</a> PLoS One. 7 (9), e46533 (2012).</li><li>Murphy, S. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+amnion+epithelial+cells+do+not+abrogate+pulmonary+fibrosis+in+mice+with+impaired+macrophage+function.">Human amnion epithelial cells do not abrogate pulmonary fibrosis in mice with impaired macrophage function.</a> Cell Transplant. 21 (7), 1477-1492 (2012).</li><li>Hodges, R. J., Lim, R., Jenkin, G., Wallace, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Amnion+epithelial+cells+as+a+candidate+therapy+for+acute+and+chronic+lung+injury.">Amnion epithelial cells as a candidate therapy for acute and chronic lung injury.</a> Stem cells Int. 2012, 709763 (2012).</li><li>Tan, J. L., Chan, S. T., Wallace, E. M., Lim, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+amnion+epithelial+cells+mediate+lung+repair+by+directly+modulating+macrophage+recruitment+and+polarization.">Human amnion epithelial cells mediate lung repair by directly modulating macrophage recruitment and polarization.</a> , (2013).</li><li>Litvinov, S. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Epithelial+cell+adhesion+molecule+(Ep-CAM)+modulates+cell-cell+interactions+mediated+by+classic+cadherins.">Epithelial cell adhesion molecule (Ep-CAM) modulates cell-cell interactions mediated by classic cadherins.</a> J Cell Biol. 139 (5), 1337-1348 (1997).</li><li>Winter, M. J., Nagtegaal, I. D., van Krieken, J. H., Litvinov, S. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+epithelial+cell+adhesion+molecule+(Ep-CAM)+as+a+morphoregulatory+molecule+is+a+tool+in+surgical+pathology.">The epithelial cell adhesion molecule (Ep-CAM) as a morphoregulatory molecule is a tool in surgical pathology.</a> The American journal of pathology. 163 (6), 2139-2148 (2003).</li><li>Musina, R. A., Bekchanova, E. S., Sukhikh, G. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+mesenchymal+stem+cells+obtained+from+different+human+tissues.">Comparison of mesenchymal stem cells obtained from different human tissues.</a> Bull Exp Biol Med. 139 (4), 504-509 (2005).</li><li>Park, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Newborn Stem Cells: Identity, Function, and Clinical Potential. , 119-137 (2013).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

이 방법의 성공에 중요한 영향을 미칠 수있는 몇 가지 중요한 매개 변수가 있습니다. hAECs의 분리하기 전에 최대 3 시간 동안 태반이나 양막의 저장 그러나 그것은 조직은 가능한 한 빨리 처리하는 것이 좋습니다, 물류 또는 스케줄링을 위해 바람직 할 수있다. 티슈가 저장 될 경우에는 저장 양막 막의 박리 및 세정 다음 수행하는 것이 권장된다. 양막은 39 ° C에서 멸균 항생제를 함유하는 HBSS에 저?...

이러한 태반과 같은 주 산기 소스, 태반 막, 탯줄과 양수에서 파생 된 세포는 재생 의학 1,2 세포의 잠재적 인 소스로 연구자와 임상의의 주목을 받고있다. 이 관심의 이유는이 세포 유형 모두 소성 및 면역 기능 3, 그들의 잠재적 인 치료 응용 프로그램에 대한 기본적인 특성을 어느 정도 가지고 있다는 것입니다. hAECs 회생 세포 물질의 풍부한 전위 소스를 제공, 용어 또는 용어 사전 양막 멤브레인 (4)로부터 유도 될 수 상피 이종 집단이다. 세포 치료 매력적 hAECs을 속성은 자신의 다 능성, 낮은 면역 원성 및 항 염증 기능을 포함한다. hAECs은 (높은 시험 관내 및 생체 내 둘 다 능성 중배엽 계통으로 분화 할 수 cardiom를 밝혀졌다yocytes, 근육 세포, 골 세포, 지방 세포), 내배엽 계통 (췌장 세포, 간 세포, 폐 세포)와 외배엽 계통 (헤어, 피부, 신경 세포와 성상 세포) 5-10. 안심, 자신의 다 능성의 hAECs 어느 형태의 종양에 표시 또는 생체 내에서 종양 발생을 촉진하지 않습니다에도 불구하고. 또한, hAECs 또한 클래스 II 인간 백혈구 항원 (HLAs) 8의 낮은 수준을 표현, 특권 면역 있습니다. 이 속성은 가능성이 면역 능력 원숭이, 토끼, 기니피그, 쥐, 돼지 11 ~ 13을 사용하여 연구에서 입증 된 바와 같이, 동종 및 이종 이식 후 면역 거부를 회피 할 수있는 능력의 기초가. hAECs는 강력한 면역 조절 및 면역 속성을 표시함으로써자가 면역 질환 치료에 잠재적 인 임상 응용 프로그램에 대한 중요한 실용적인 장점을 제공한다. hAECs는 모두 선천성 및 후천성 면역 시스템에서 면역 기능을 발휘하는 것으로 추정된다. 에면역의 분비가 (14) 요인을 통해 제안 된 메커니즘의 전자입니다. 전임상 동물 질병 모델에서 hAECs 현재 애플리케이션은 뇌졸중, 다발성 경화증, 간 질환, 당뇨병 및 만성 폐 질환의 치료를 포함한다. 연구자들은 그들의 고유 한 속성에 뇌졸중 후 뇌 염증을 치료하는 hAECs를 사용에 관심을 보여 주었다. hAECs, 그들은 생착 할 수있는 혈액 뇌 장벽을 통과 최대 60 일 동안 생존, 뉴런으로 분화, 염증을 감소시키고 신경 질환 (15)의 동물 모델에서 손상된 중추 신경계 조직의 재생을 촉진 할 수 있다는 증거가있다. hAECs 타겟팅 및 다발성 경화증의 발생 및 진행에 기여하는 여러 병리학 적 경로를 취소하는 기능을 제공한다. 예를 들면, 전임상 동물 실험의 결과 hAECs 강하게 면역 것을 제안하고잠재적으로 말초 면역 관용을 유도하고 지속적인 염증 반응을 취소 할 수 있습니다. hAECs는 또한 생체 내에서 신경 세포로 분화 및 신경성의 방대한 16 인자 분비를 통해 내인성 신경 재생을 향상시키는 능력을 갖는 것을 나타내고있다. 설치류 및 인간 양막 상피 세포는 이미 동물 모델에서 간 질환의 치료를위한 그들의 치료 효능을 증명하고있다. 감소 된 간세포 자멸사 수반 간 질환, 간에서의 생착 가능한 hAECs HAEC에 이식 리드의 사염화탄소 유도 손상 모델에서 간 염증 및 섬유증 및 17의 감소. hAECs는 인슐린과 포도당 수송을 포함하여 표현 췌장 요인으로 자극 할 수있다. 몇몇 연구는 당뇨병 마우스 (18)에서 혈당 수준을 복원 hAECs 가능성을 조사 하였다. 마우스에서 수신hAECs는 모두 동물 체중 및 혈당 수준은 감염 후 세포의 정상 수준으로 감소 하였다. 이들 연구는 당뇨병의 치료를위한 hAECs의 사용을위한 강력한 바이다. hAECs는 성인과 신생아 모델 19 두의 예방 및 실험 급성 및 만성 폐 손상의 수리 검증 역할을한다. 이러한 연구는 hAECs은 낭포 성 섬유증 막 횡단 전도력 레귤레이터 (CFTR), 낭포 성 섬유증 (20) 환자에서 돌연변이 이온 채널 등 다양한 폐 관련 단백질을 발현하는 기능 폐 상피 세포로 체외에서 분화 것을 발견했다. hAECs가 부상당한 성인과 신생아 폐에 전달 될 ​​때 또한, 그들은 호중구, 대 식세포와 림프구 21-23을 포함한 폐 백혈구 모집을 감소, 호스트 면역 세포의 변조를 통해 자신의 수복 효과를 발휘한다. 자신의 풍요 로움을 감안할 때,안전 기록, 여러 질병에 대한 입증 된 임상 적용, hAECs를 사용하여 임상 시험은 불가피하다. 임상 시험에 HAEC 치료의 번역을 촉진 목표로, 우리는 현재 좋은 제조 기준 (cGMP의) 지침에 따라 동물 제품 무료 시약을 사용하여, 임상 시험에 적합한 방식으로 문화 hAECs을 분리 cryopreserve과하는 방법을 개발 . 우리는이 프로토콜에게 우리가 동물 유래 시약 6을 사용 hAECs을 분리 성공적으로 사용하고 이전에 출판 된 프로토콜을 기반으로. 우리는 동물 제품 무료 시약 동물 유래 제품을 대체 할 수있는 원래의 프로토콜을 변경, 이후의 최적화는 세포 수율, 생존 및 순도를 최적화하기 위해 실시 하였다. 우리의 목표는 인간의 임상 시험에 대한 전지 제조에 대한 규제 기준을 준수 할 프로토콜을 개발하는 것이 었습니다.

<table><tbody><tr><td>Collection Kit</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stripping tray</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-361B</td><td></td></tr><tr><td>Liberty Dressing Forcep, pointed 13 cm</td><td>Fisher Scientific</td><td>S17329&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Scissors - Sharp/Blunt Straight</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC0562592&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Sterile latex gloves&amp;nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>19-014-643&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Protective Apparel</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Protective Apparel (Gown)</td><td>U-line</td><td>S-15374-M</td><td></td></tr><tr><td>Isolation gowns</td><td>U-line</td><td>S-15374-M</td><td></td></tr><tr><td>Sterile latex gloves&amp;nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>19-014-643&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>General purpose face mask</td><td>Cardinal Health</td><td>AT7511</td><td></td></tr><tr><td>Bonnets</td><td>Medline</td><td>CRI1001</td><td></td></tr><tr><td>Shoe covers</td><td>U-line</td><td>S-7873W</td><td></td></tr><tr><td>Media and Reagents</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hanks&amp;rsquo; Balanced Salt Solution (HBSS)</td><td>Life Technologies</td><td>14175095</td><td>without calcium or magnesium</td></tr><tr><td>TrypZean (animal product&amp;ndash;free recombinant trypsin)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>T3449</td><td></td></tr><tr><td>Soybean Trypsin Inhibitor&amp;nbsp; 1g/50mL</td><td>Sigma Aldrich</td><td>T6522</td><td></td></tr><tr><td>Cryostor CS5</td><td>BioLife Solutions</td><td>205102</td><td></td></tr><tr><td>Trypan blue reagent</td><td>Life Technologies</td><td>15250-061</td><td></td></tr><tr><td>Anti-EpCam-PE</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130 - 091-253</td><td></td></tr><tr><td>PE-isotype control</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-098-845</td><td></td></tr><tr><td>Anti-CD90-PeCy5</td><td>BD Pharmingen</td><td>555597</td><td></td></tr><tr><td>PeCy5-isotype control</td><td>BD Pharmingen</td><td>557224</td><td></td></tr><tr><td>Anti-CD105-APC</td><td>BD Pharmingen</td><td>562408</td><td></td></tr><tr><td>APC-isotype control</td><td>BD Pharmingen</td><td>340754</td><td></td></tr><tr><td>Collagen Type VI</td><td>Sigma Aldrich</td><td>C7521</td><td></td></tr><tr><td>Consumables</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>50 ml graduated pipette</td><td>BD/Falcon</td><td>356550</td><td></td></tr><tr><td>10 ml graduated pipette</td><td>BD/Falcon</td><td>356551</td><td></td></tr><tr><td>5 ml graduated pipette</td><td>BD/Falcon</td><td>356543</td><td></td></tr><tr><td>50 ml falcon tubes</td><td>BD/Falcon</td><td>352070</td><td></td></tr><tr><td>15 ml falcon tubes</td><td>BD/Falcon</td><td>352096</td><td></td></tr><tr><td>15 cm Petri dishes</td><td>Corning</td><td>351058</td><td></td></tr><tr><td>70 &amp;mu;m filters</td><td>BD/Falcon</td><td>352350</td><td></td></tr><tr><td>0.22 &amp;mu;m filters</td><td>Millipore</td><td>SLGV033RS</td><td></td></tr><tr><td>1 ml Pipette tips</td><td>Fisherbrand</td><td>02-707-401</td><td></td></tr><tr><td>200 &amp;mu;l Pipette tips</td><td>Fisherbrand</td><td>02-707-409</td><td></td></tr><tr><td>20 ml Syringe</td><td>BD/Medical</td><td>309661</td><td></td></tr><tr><td>Plastic spatula</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-245-97&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Plastic weighing boat</td><td>Fisher Scientific</td><td>02-202-102&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Cryo vials</td><td>Nunc</td><td>377267</td><td></td></tr><tr><td>Equipment</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mr Frosty</td><td>Fisher Scientific</td><td>A451-4&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Biohazard Cabinet</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

isolation, cryopreservation and culture of human amnion epithelial cells for clinical applications

Human amnion epithelial cells (hAECs) derived from term or pre-term amnion membranes have attracted attention from researchers and clinicians as a potential source of cells for regenerative medicine. The reason for this interest is evidence that these cells have highly multipotent differentiation ability, low immunogenicity, and anti-inflammatory functions. These properties have prompted researchers to investigate the potential of hAECs to be used to treat a variety of diseases and disorders in pre-clinical animal studies with much success.
hAECs have found widespread application for the treatment of a range of diseases and disorders. Potential clinical applications of hAECs include the treatment of stroke, multiple sclerosis, liver disease, diabetes and chronic and acute lung diseases. Progressing from pre-clinical animal studies into clinical trials requires a higher standard of quality control and safety for cell therapy products. For safety and quality control considerations, it is preferred that cell isolation protocols use animal product-free reagents. 
We have developed protocols to allow researchers to isolate, cryopreserve and culture hAECs using animal product-free reagents. The advantage of this method is that these cells can be isolated, characterized, cryopreserved and cultured without the risk of delivering potentially harmful animal pathogens to humans, while maintaining suitable cell yields, viabilities and growth potential. For researchers moving from pre-clinical animal studies to clinical trials, these methodologies will greatly accelerate regulatory approval, decrease risks and improve the quality of their therapeutic cell population.

이 절차가 제대로 따라하면, 1 억 2 천만 hAECs의 평균 수익률은 80-160000000 세포의 전형적인 범위, 예상해야한다. 이러한 수율에서 83 ± 4 %의 평균 생존 능력을 기대할 수있다. 임상 방법에 증가 된 평균 수익률과 약간 낮은 가능성으로 인해 혈청 단백질의 부족으로 아마 또한 동물성 제품보다 더 높은 트립신의 활동으로 인해, 그리고 수 있습니다. 격리 hAECs은 &lt;1 % CD90, CD105 간충직 마커 양성 세포와 ...

Watch this Scientific Journal Video about Isolation, Cryopreservation and Culture of Human Amnion Epithelial Cells for Clinical Applications at JoVE.com

Isolation, Cryopreservation and Culture of Human Amnion Epithelial Cells for Clinical Applications

We describe a protocol to isolate and culture human amnion epithelial cells (hAECs) using animal product-free reagents in accordance with current good manufacturing practices (cGMP) guidelines.

분리, 냉동 보존 및 문화 임상 응용 프로그램에 대한 인간 양막 상피 세포

Human amnion epithelial cells (hAECs) derived from term or pre-term amnion membranes have attracted attention from researchers and clinicians as a ...

isolation-cryopreservation-culture-human-amnion-epithelial-cells-for

Research

JoVE Journal

Medicine

13.8K 조회수.  Wake Forest University Health Sciences. We describe a protocol to isolate and culture human amnion epithelial cells (hAECs) using animal product-free reagents in accordance with current good manufacturing practices (cGMP) guidelines. 

비디오: Isolation, Cryopreservation and Culture of Human Amnion Epithelial Cells for Clinical Applications

Isolation of Human Mesenchymal Stem Cells and their Cultivation on the Porous Bone Matrix

Mesenchymal stem cells (MSCs) have a differentiation potential towards osteoblastic lineage when they are stimulated with soluble factors or specific biomaterials. This work presents a novel option for the delivery of MSCs from human amniotic membrane (AM-hMSCs) that employs bovine bone matrix Nukbone (NKB) as a scaffold. Thus, the application of MSCs in repair and tissue regeneration processes depends principally on the efficient implementation of the techniques for placing these cells in a host tissue. For this reason, the design of biomaterials and cellular scaffolds has gained importance in recent years because the topographical characteristics of the selected scaffold must ensure adhesion, proliferation and differentiation into the desired cell lineage in the microenvironment of the injured tissue. This option for the delivery of MSCs from human amniotic membrane (AM-hMSCs) employs bovine bone matrix as a cellular scaffold and is an efficient culture technique because the cells respond to the topographic characteristics of the bovine bone matrix Nukbone (NKB), i.e., spreading on the surface, macroporous covering and colonizing the depth of the biomaterial, after the cell isolation process. We present the procedure for isolating and culturing MSCs on a bovine matrix.

Mesenchymal stem cells (MSCs) have a differentiation potential towards osteoblastic lineage when they are stimulated with soluble factors or specific biomaterials. This work presents a novel option for the delivery of MSCs from human amniotic membrane (AM-hMSCs) that employs the bovine bone matrix Nukbone (NKB) as a scaffold.

인간 중간 엽 줄기 세포의 분리 및 다공성 뼈 매트릭스에 자신의 재배

Mesenchymal stem cells (MSCs) have a differentiation potential towards osteoblastic lineage when they are stimulated with soluble factors or specific ...

연구

발생학

A Novel Culture Model for Human Pluripotent Stem Cell Propagation on Gelatin in Placenta-conditioned Media

The propagation of human pluripotent stem cells (hPSCs) in conditioned medium derived from human cells in feeder-free culture conditions has been of interest. Nevertheless, an ideal humanized ex vivo feeder-free propagation method for hPSCs has not been developed; currently, additional exogenous substrates including basic fibroblast growth factor (bFGF), a master hPSC-sustaining factor, is added to all of culture media and synthetic substrata such as Matrigel or laminin are used in all feeder-free cultures. Recently, our group developed a simple and efficient protocol for the propagation of hPSCs using only conditioned media derived from the human placenta on a gelatin-coated dish without additional exogenous supplementation or synthetic substrata specific to hPSCs. This protocol has not been reported previously and might enable researchers to propagate hPSCs efficiently in humanized culture conditions. Additionally, this model obviates hPSC contamination risks by animal products such as viruses or unknown proteins. Furthermore, this system facilitates easy mass production of hPSCs using the gelatin coating, which is simple to handle, dramatically decreases the overall costs of ex vivo hPSC maintenance.

This protocol provides a simple and efficient way to propagate human pluripotent stem cells (hPSCs) using only conditioned media derived from the human placenta in a gelatin-coated dish without additional exogenous supplementation or hPSC-specific synthetic substrata.

소설 문화 모델은 인간 다 능성에 대한 태반 에어컨 미디어에서 젤라틴에 세포 전파 줄기

The propagation of human pluripotent stem cells (hPSCs) in conditioned medium derived from human cells in feeder-free culture conditions has been of ...

Reprogramming Primary Amniotic Fluid and Membrane Cells to Pluripotency in Xeno-free Conditions

Autologous cell-based therapies got a step closer to reality with the introduction of induced pluripotent stem cells. Fetal stem cells, such as amniotic fluid and membrane mesenchymal stem cells, represent a unique type of undifferentiated cells with promise in tissue engineering and for reprogramming into iPSC for future pediatric interventions and stem cell banking. The protocol presented here describes an optimized procedure for extracting and culturing primary amniotic fluid and membrane mesenchymal stem cells and generating episomal induced pluripotent stem cells from these cells in fully chemically defined culture conditions utilizing human recombinant vitronectin and the E8 medium. Characterization of the new lines by applying stringent methods &#8211; flow cytometry, confocal imaging, teratoma formation and transcriptional profiling &#8211; is also described. The newly generated lines express markers of embryonic stem cells &#8211; Oct3/4A, Nanog, Sox2, TRA-1-60, TRA-1-81, SSEA-4 &#8211; while being negative for the SSEA-1 marker. The stem cell lines form teratomas in scid-beige mice in 6-8 weeks and the teratomas contain tissues representative of all three germ layers. Transcriptional profiling of the lines by submitting global expression microarray data to a bioinformatic pluripotency assessment algorithm deemed all lines pluripotent and therefore, this approach is an attractive alternative to animal testing. The new iPSC lines can readily be used in downstream experiments involving the optimization of differentiation and tissue engineering.

This protocol describes the reprogramming of primary amniotic fluid and membrane mesenchymal stem cells into induced pluripotent stem cells using a non-integrating episomal approach in fully chemically defined conditions. Procedures of extraction, culture, reprogramming, and characterization of the resulting induced pluripotent stem cells by stringent methods are detailed.

기본 양수 및 Pluripotency 이종 무료 조건에서 막 셀 프로그래밍

Autologous cell-based therapies got a step closer to reality with the introduction of induced pluripotent stem cells. Fetal stem cells, such as amniotic ...

Isolation of Human Endometrial Stromal Cells for In Vitro Decidualization

The differentiation of human endometrial stromal cells (HESC) from fibroblast-like appearance into secretory decidua is a transformation required for embryo implantation into the uterine lining of the maternal womb. Improper decidualization has been established as a root cause for implantation failure and subsequent early embryo miscarriage. Therefore, understanding the molecular mechanisms underlying decidualization is advantageous to improving the rate of successful births. In vivo based studies of artificial decidualization are often limiting due to ethical dilemmas associated with human research, as well as translational complications within animal models. As a result, in vitro assays through primary cell culture are often utilized to explore the modulation of decidualization via hormones. This study provides a detailed protocol for the isolation of HESC and subsequent artificial decidualization via the supplementation of hormones to the culturing medium. Further, this study provides a well-designed method to knockdown any gene of interest by utilizing lipid-based siRNA transfections. This protocol permits the optimization of culture purity as well as product yield, thereby maximizing the ability to utilize this model as a reliable method to understand the molecular mechanisms underlying decidualization, and the subsequent quantification of secreted agents by decidualized endometrial stromal cells.

Isolation of Human Endometrial Stromal Cells for In Vitro Decidualization

This study presents a validated and optimized procedure for the isolation and culture of human endometrial stromal cells to conduct in vitro decidualization assay. Further, this study provides a detailed method to efficiently knockdown a specific gene using siRNAs in human endometrial stromal cells.

생체 외에서 Decidualization에 대 한 인간의 자궁내 막 기질 세포의 고립

The differentiation of human endometrial stromal cells (HESC) from fibroblast-like appearance into secretory decidua is a transformation required for ...

Freezing and Thawing Human Embryonic Stem Cells

Since James Thomson et al developed a technique in 1998 to isolate and grow hES in culture, freezing cells for later use and thawing and expanding cells from a frozen stock have become important procedures performed in routine hES cell culture. Since hES cells are very sensitive to the stresses of freezing and thawing, special care must taken. Here we demonstrate the proper technique for rapidly thawing hES cells from liquid nitrogen stocks, plating them on mouse embryonic feeder cells, and slowly freezing them for long-term storage.

Since James Thomson et al developed a technique in 1998 to isolate and grow hES in culture, freezing cells for later use and thawing and expanding cells from a frozen stock have become important procedures performed in routine hES cell culture. Since hES cells are very sensitive to the stresses of freezing and thawing, special care must taken. Here we demonstrate the proper technique for rapidly thawing hES cells from liquid nitrogen stocks, plating them on mouse embryonic feeder cells, and slowly freezing them for long-term storage.

인간 배아 줄기 세포를 동결 융해

Since James Thomson et al developed a technique in 1998 to isolate and grow hES in culture, freezing cells for later use and thawing and expanding cells ...

생물학

In Vitro Culture of Epithelial Cells from Different Anatomical Regions of the Human Amniotic Membrane

Several protocols have been reported in the literature for the isolation and culture of human amniotic epithelial cells (HAEC). However, these assume that the amniotic epithelium is a homogeneous layer. The human amnion can be divided into three anatomical regions: reflected, placental, and umbilical. Each region has different physiological roles, such as in pathological conditions. Here, we describe a protocol to dissect human amnion tissue in three sections and maintain it in vitro. In culture, cells derived from the reflected amnion displayed a cuboidal morphology, while cells from both placental and umbilical regions were squamous. Nonetheless, all the cells obtained have an epithelial phenotype, demonstrated by the immunodetection of E-cadherin. Thus, because the placental and reflected regions in situ differ in cellular components and molecular functions, it may be necessary for in vitro studies to consider these differences, because they could have physiological implications for the use of HAEC in biomedical research and the promising application of these cells in regenerative medicine.

This protocol describes the isolation of epithelial cells from different anatomical regions of the human amniotic membrane to determine their heterogeneity and functional properties for possible application in clinical and physiopathological models.

인간 양막의 다른 해부학 적 영역에서 상피 세포의 시험관 내 배양

Several protocols have been reported in the literature for the isolation and culture of human amniotic epithelial cells (HAEC). However, these assume that ...

Human Pluripotent Stem Cell Culture on Polyvinyl Alcohol-Co-Itaconic Acid Hydrogels with Varying Stiffness Under Xeno-Free Conditions

The effect of physical cues, such as the stiffness of biomaterials on the proliferation and differentiation of stem cells, has been investigated by several researchers. However, most of these investigators have used polyacrylamide hydrogels for stem cell culture in their studies. Therefore, their results are controversial because those results might originate from the specific characteristics of the polyacrylamide and not from the physical cue (stiffness) of the biomaterials. Here, we describe a protocol for preparing hydrogels, which are not based on polyacrylamide, where various stem, cells including human embryonic stem (ES) cells and human induced pluripotent stem (iPS) cells, can be cultured. Hydrogels with varying stiffness were prepared from bioinert polyvinyl alcohol-co-itaconic acid (P-IA), with stiffness controlled by crosslinking degree by changing crosslinking time. The P-IA hydrogels grafted with and without oligopeptides derived from extracellular matrix were investigated as a future platform for stem cell culture and differentiation. The culture and passage of amniotic fluid stem cells, adipose-derived stem cells, human ES cells, and human iPS cells is described in detail here. The oligopeptide P-IA hydrogels showed superior performances, which were induced by their stiffness properties. This protocol reports the synthesis of the biomaterial, their surface manipulation, along with controlling the stiffness properties and finally, their impact on stem cell fate using xeno-free culture conditions. Based on recent studies, such modified substrates can act as future platforms to support and direct the fate of various stem cells line to different linkages; and further, regenerate and restore the functions of the lost organ or tissue.

A protocol is presented to prepare polyvinyl alcohol-co-itaconic acid hydrogels with varying stiffness, which were grafted with and without oligopeptides, to investigate the effect of the stiffness of biomaterials on the differentiation and proliferation of stem cells. The stiffness of the hydrogels was controlled by the crosslinking time.

폴 리 비닐 알코올-Co-Itaconic 산 Hydrogels 이종 없는 조건 하에서 다양 한 강성에 인간의 Pluripotent 줄기 세포 문화

The effect of physical cues, such as the stiffness of biomaterials on the proliferation and differentiation of stem cells, has been investigated by ...

생체공학

인간 줄기세포 유래 망막 색소 상피 세포의 냉동 보관 발전

Cryopreservation of Human Embryonic Stem Cell-Derived Retinal Pigment Epithelial Cells at the Optimal Stage

Retinal pigment epithelial&#160;(RPE) cells derived from human embryonic stem cells (hESCs) are superior cell sources for cell replacement therapy in individuals with retinal degenerative diseases; however, studies on the stable and secure banking of these therapeutic cells are scarce. Highly variable cell viability and functional recovery of&#160;RPE cells after cryopreservation are the most commonly encountered issues. In the present protocol, we aimed to achieve the best cell recovery rate after thawing by selecting the optimal cell phase for freezing based on the original experimental conditions. Cells were frozen in the exponential phase determined by using the 5-ethynyl-2&#8242;-deoxyuridine labeling assay, which improved cell viability and recovery rate after thawing. Stable and functional cells were obtained shortly after thawing, independent of a long differentiation process. The methods described here allow the simple, efficient, and inexpensive preservation and thawing of hESC-derived RPE cells. Although this protocol focuses on RPE cells, this freezing strategy may be applied to many other types of differentiated cells.

저자 스포트라이트: 효율적이고 실현 가능한 망막 색소 상피 세포 동결 방법 개발

This study provides a detailed protocol for the efficient cryopreservation of human stem cell-derived retinal pigment epithelial cells.

인간 배아 줄기 세포 유래 망막 색소 상피 세포의 최적 단계에서 동결 보존

Retinal pigment epithelial&#160;(RPE) cells derived from human embryonic stem cells (hESCs) are superior cell sources for cell replacement therapy in ...

분리, 냉동 보존 및 문화 임상 응용 프로그램에 대한 인간 양막 상피 세포

요약

더 많은 비디오 탐색

이 비디오의 챕터

인간 중간 엽 줄기 세포의 분리 및 다공성 뼈 매트릭스에 자신의 재배

소설 문화 모델은 인간 다 능성에 대한 태반 에어컨 미디어에서 젤라틴에 세포 전파 줄기

기본 양수 및 Pluripotency 이종 무료 조건에서 막 셀 프로그래밍

생체 외에서 Decidualization에 대 한 인간의 자궁내 막 기질 세포의 고립

인간 배아 줄기 세포를 동결 융해

인간 양막의 다른 해부학 적 영역에서 상피 세포의 시험관 내 배양

폴 리 비닐 알코올-Co-Itaconic 산 Hydrogels 이종 없는 조건 하에서 다양 한 강성에 인간의 Pluripotent 줄기 세포 문화

인간 배아 줄기 세포 유래 망막 색소 상피 세포의 최적 단계에서 동결 보존

인간 배아 줄기 세포 유래 망막 색소 상피 세포의 최적 단계에서 동결 보존

인간 배아 줄기 세포 유래 망막 색소 상피 세포의 최적 단계에서 동결 보존