Diese Studie wurde vom National Institutes of Health (Grants 1UM1HL112856) unterstützt.

Alle Verfahren und Protokolle wurden von der Institutional Animal Care und Verwenden Committee der University of Illinois in Chicago genehmigt. Hier beschriebenen Experimente sind akute nicht-Überlebensversuchen, und es gab keine Verwendung von Augensalbe. Aufrechterhaltung steriler Bedingungen nur auftritt, wenn chirurgische Instrumente mit 70% Ethanol in DiH 2 O gewaschen Opferung Ratten am Ende des Experiments erfolgte durch Überdosierung von IV Ketamin / Xylazin. 1. Vorbereitung der Instrumente und Chemikalien <ol><li> Bereiten Stammlösung von 0,05 M 5-HT-HCl in PBS. Dann verdünnt Lager mit PBS zu einer endgültigen 5-HT-Konzentration von 0,203 mM. </li><li> Verdünne Dronabinol in Sesamöl in einer Konzentration von 20 ug / ul. </li><li> Schneiden 20 cm Länge aus Polyethylen (PE) -50-Schlauch (0,58 mm ID, OD 0,965 mm). An einem Ende des Schlauches, schneiden eine Schräge Spitze mit einer Schere, und am anderen Ende Platz, legen Sie eine 23 g Nadel. Verbinden Sie diese 23 g Nadel in einen 1 mlSpritze und füllen Sie es mit 0,3 ml von 50 U / ml Heparin. </li><li> Schneiden Sie vier Stücke von 4-0 geflochtenen Seidenfaden und zur Seite gesetzt. </li><li> Sterilisieren chirurgischer Scheren, 2 gekrümmt Graefe Pinzette und 3 Mikroschellen mit 70% Ethanol in DIH 2 O. </li></ol> 2. Katheterisierung der Oberschenkelvene Protokoll zur Katheterisierung von Jespersen et al modifiziert. 21 <ol><li> Anesthetize eine Sprague-Dawley-Ratte mit intraperitoneale (IP) Ketamin / Xylazin (100 mg / kg: 10 mg / kg). Drücken Sie den Fuß von der Ratte und beobachten jede Bewegung, um ein angemessenes Niveau der Anästhesie zu bestätigen. Rasieren Sie die ventralen Seite des linken Oberschenkels und der ventralen Seite des Halses. Wenn von der lokalen Institutional Animal Care und Verwenden Ausschuss Bedarf wenden Sie Augensalbe zur Trockenheit zu verhindern. </li><li> Sichere Ratte in Rückenlage auf einer chirurgischen Bord. Verwenden chirurgische Schere in die linke Hinterschenkel wegschneiden Haut. </li><li> Mit einer Pinzette, Verhalten stumpfen DISSECTIOn der oberflächlichen Muskeln, um die Vena femoralis freizulegen. Verwenden Sie die Pinzette, um die Vene aus der Oberschenkelarterie auf der Vena femoralis zu trennen, und legen Sie zwei Threads. </li><li> Verwenden Sie die Pinzette gebogen Graefe Pull-up die Vene um den Blutfluss zu stoppen. Mit einem 22 G Injektionsnadel, Punktion der Vena femoralis und legen Sie die abgeschrägte Ende des PE-50-Schlauch in die Vene. </li><li> Prüfen, ob das PE-Schlauch 50 vollständig durch Zurückziehen des Kolbens der Spritze eingesetzt wurde. Blut sollte gesehen in die PE-50-Schlauch werden. Binden Sie 2 Knoten um die Vene und PE-50-Schlauch mit den zwei Themen. </li></ol> 3. 5-HT-induzierte Apnoe durch IV-Infusion <ol><li> Legen Sie eine piezoelektrische Dehnungsmessstreifen auf der Ratte, um die Atmung zu messen. </li><li> Ändern der Einstellungen für Verstärkung Ebene der elektronischen Verstärker über den Verstärker-Software auf dem Computer: zu verstärken (100x) und Bandpassfilter (1-10 Hz) die Atemsignale von der DMS erhalten, setzen Sie &quot;Hochpassfilter&quot; auf &amp; #8220; AC @ 1 HZ &quot;und&quot; Tiefpassfilter &quot;auf&quot; 10 Hz &quot;, und stellen Sie die Verstärkung durch die Eingabe von&quot; 10 &quot;für die&quot; Initial Gain &quot;und&quot; 100 &quot;für&quot; Total Gain &quot;.. </li><li> Ändern Sie die Einstellungen für die Abtastrate durch Öffnen &quot;Analog Input&quot; über-Recording-Software auf dem Computer. Zu digitalisieren (500 Hz Abtastrate) mit einem Analog-Digital-Wandler, &quot;Probe&quot; auf &quot;1000 Hz&quot; und &quot;Überspringen&quot; jeden zweiten Aufnahmepunkt von &quot;1&quot; (effektive Abtastrate 500 Hz), und nehmen Sie dann das Signal mit Recording-Software. </li><li> Entfernen Sie die 1-ml-Spritze aus dem Katheter und legen Sie eine 500 ul Präzisionsglasspritze mit 0,203 mM 5-HT gefüllt in den Katheter. </li><li> Legen Sie die 500 ul Präzisionsglasspritze in einer Infusionspumpe. Infundieren 12,5 ug / kg pro 350 ul / kg 5-HT-Lösung mit einer Rate von 63 ml / Std. Führen Sie mehrere Infusionen und beobachten Apnoe bei Ratte, was gesehen wird einsa in Atmung (≥ 2,5 s) in den aufgezeichneten Atemsignale auf dem Computermonitor anzuhalten. </li><li> Bevor mit Hals-Chirurgie fortfahren, überwachen die Atmung Muster und überprüfen Sie die Schmerzreflex von der Zehe Prise bei der Ratte. Bei unregelmäßiger Atmung oder, wenn es eine Schmerzreflex von der Zehe Prise, zu verwalten IP Ketamin / Xylazin (100 mg / kg: 5 mg / kg) und dann erneut bestätigen eine angemessene Gabe von Betäubungsmitteln. </li></ol> 4. Hals-Chirurgie zu nodose Ganglia Expose <ol><li> Sichere Ratte in Rückenlage auf einer chirurgischen Bord. Machen Sie eine Mittellinie Längsschnitt mit chirurgische Schere am Hals. </li><li> Mit stumpf auf dem Platysma (mit 2 Mikroklemmen, diese Muskel klar von der Operationsstelle zu halten), setzen die sternohyoideus und omohyoideus Muskeln. Trennen Sie die Muskeln um die innere Halsschlagader und einer ihrer Geschäftsstellen, die pterygopalatina Arterie freizulegen. </li><li> Beachten Sie den Vagusnerv, wie es läuft entlang der A. carotis interna und dann entlang th<html> e pterygopalatina Arterie. Beobachten Sie, wie die Vagusnerv und pterygopalatina Arterie, zusammen mit dem N. glossopharyngeus (Hirnnerven IX) und der N. accessorius (Hirnnerv XI), geben Sie die hintere zerrissen Foramen an der Basis des Schädels. </li><li> Beachten Sie, dass das Ganglion nodosum als Schwellung der Vagusnerv rechts, bevor es die Hinter zerrissen Foramen tritt angezeigt. Beachten Sie auch, dass die Rachen- und Kehlkopfnervenäste kommen von den vorderen und hinteren Aspekte bzw. des Ganglion nodosum. 5 </li><li> Mit den Graefe Pinzette, trennen Sie den Vagusnerv von den Arterien, und legen Sie ein Stück Faden um den Vagusnerv. Legen Sie eine Klemme auf dem Thread, um leichte Spannung auf den Vagusnerv gelten, und reinigen Sie die Ganglion nodosum aller Bindegewebe auf weniger Widerstand bieten, wenn die Injektion. </li><li> Wiederholen Sie die 5-HT-induzierte Apnoe, wie in Abschnitt 3 angegeben, um zu bestätigen, dass kein Schaden an den Ganglien nodosum getan. </li></ol>itel &quot;&gt; 5. Intranodose Ganglia Injektion von Dronabinol <ol><li> Füllen Sie eine 10 &amp; mgr; gasPräzisionsGlasSpritze mit einem maßgeschneiderten 28 g Halbzoll-Spritzennadel mit einer 35 ° abgeschrägten Spitze mit 5 ul von Dronabinol in Sesamöl versehen. </li><li> Legen Sie eine Mikroklemme am Faden leichter Spannung auf den Vagusnerv anwenden und durchbohren die Ganglion nodosum dabei nicht zu durchbohren. Drücken Sie den Spritzen langsam (≥ 60 sec), um den gesamten Inhalt der Spritze zu injizieren. Beachten Sie, dass einige der Spritzeninhalt wird aus dem Ganglion austreten. </li><li> Wiederholen Sie die 5-HT-induzierte Apnoe, wie in Kapitel 3 angegeben. </li></ol>

<ol>
	<li>Zhuo, H., Ichikawa, H., Helke, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neurochemistry+of+the+nodose+ganglion.">Neurochemistry of the nodose ganglion.</a> Prog. Neurobiol. 52 (2), 79-107 (1997).</li><li>Carley, D. W., Radulovacki, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pharmacology+of+vagal+afferent+influences+on+disordered+breathing+during+sleep.">Pharmacology of vagal afferent influences on disordered breathing during sleep.</a> Respir. Physiol. Neurobiol. 164 (1-2), 197-203 (2008).</li><li>Kuo, P., Holloway, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Beyond+acid+suppression:+new+pharmacologic+approaches+for+treatment+of+GERD.">Beyond acid suppression: new pharmacologic approaches for treatment of GERD.</a> Curr. Gastroenterol. Rep. 12 (3), 175-180 (2010).</li><li>Maher, S. A., Dubuis, E. D., Belvisi, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=G-protein+coupled+receptors+regulating+cough.">G-protein coupled receptors regulating cough.</a> Curr. Opin. Pharmacol. 11 (3), 248-253 (2011).</li><li>Greene, E. 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L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vagal+afferent+innervation+of+the+lower+esophageal+sphincter.">Vagal afferent innervation of the lower esophageal sphincter.</a> Auton. Neurosci. 177 (2), 129-142 (2013).</li><li>Neuhuber, W. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sensory+vagal+innervation+of+the+rat+esophagus+and+cardia:+a+light+and+electron+microscopic+anterograde+tracing+study.">Sensory vagal innervation of the rat esophagus and cardia: a light and electron microscopic anterograde tracing study.</a> J. Auton. Nerv. Syst. 20, 243-255 (1987).</li><li>Rogers, R. C., Nasse, J. S., Hermann, G. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Live-cell+imaging+methods+for+the+study+of+vagal+afferents+within+the+nucleus+of+the+solitary+tract.">Live-cell imaging methods for the study of vagal afferents within the nucleus of the solitary tract.</a> J. Neurosci. Methods. 150 (1), 47-58 (2006).</li><li>Wan, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Presynaptic+melanocortin-4+receptors+on+vagal+afferent+fibers+modulate+the+excitability+of+rat+nucleus+tractus+solitarius+neurons.">Presynaptic melanocortin-4 receptors on vagal afferent fibers modulate the excitability of rat nucleus tractus solitarius neurons.</a> J. Neurosci. 28 (19), 4957-4966 (2008).</li><li>Verberne, A. J., Lewis, S. J., Jarrott, B., Louis, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bezold-Jarisch+reflex+is+inhibited+by+excitotoxin-induced+destruction+of+vagal+primary+afferent+neurons.">Bezold-Jarisch reflex is inhibited by excitotoxin-induced destruction of vagal primary afferent neurons.</a> Eur. J. Pharmacol. 139 (3), 365-367 (1987).</li><li>Lewis, S. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Excitotoxin-induced+degeneration+of+rat+vagal+afferent+neurons.">Excitotoxin-induced degeneration of rat vagal afferent neurons.</a> Neuroscience. 34 (2), 331-339 (1990).</li><li>Wallick, D. W., Dunlap, M. E., Stuesse, S. S., Thames, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Denervation+of+vagal+cardiopulmonary+receptors+by+injection+of+kainic+acid+into+the+nodose+ganglia+in+dogs.">Denervation of vagal cardiopulmonary receptors by injection of kainic acid into the nodose ganglia in dogs.</a> Auton. Neurosci. 102 (1-2), 85-89 (2002).</li><li>Muroi, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Selective+inhibition+of+vagal+afferent+nerve+pathways+regulating+cough+using+Nav+1.7+shRNA+silencing+in+guinea+pig+nodose+ganglia.">Selective inhibition of vagal afferent nerve pathways regulating cough using Nav 1.7 shRNA silencing in guinea pig nodose ganglia.</a> Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 304 (11), 1017-1023 (2011).</li><li>Kollarik, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transgene+expression+and+effective+gene+silencing+in+vagal+afferent+neurons+in+vivo+using+recombinant+adeno-associated+virus+vectors.">Transgene expression and effective gene silencing in vagal afferent neurons in vivo using recombinant adeno-associated virus vectors.</a> J. Physiol. 588 (21), 4303-4315 (2010).</li><li>Zhang, Z., Zhang, C., Zhou, M., Xu, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Activation+of+opioid+mu-receptors,+but+not+delta-+or+kappa-receptors,+switches+pulmonary+C-fiber-mediated+rapid+shallow+breathing+into+an+apnea+in+anesthetized+rats).">Activation of opioid mu-receptors, but not delta- or kappa-receptors, switches pulmonary C-fiber-mediated rapid shallow breathing into an apnea in anesthetized rats).</a> Respir. Physiol. Neurobiol. 183 (3), 211-217 (2012).</li><li>Calik, M. W., Radulovacki, M., Carley, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intranodose+ganglion+injections+of+dronabinol+attenuate+serotonin-induced+apnea+in+Sprague-Dawley+rat.">Intranodose ganglion injections of dronabinol attenuate serotonin-induced apnea in Sprague-Dawley rat.</a> Respir. Physiol. Neurobiol. 190, 20-24 (2014).</li><li>Yoshioka, M., Goda, Y., Togashi, H., Matsumoto, M., Saito, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pharmacological+characterization+of+5-hydroxytryptamine-induced+apnea+in+the+rat.">Pharmacological characterization of 5-hydroxytryptamine-induced apnea in the rat.</a> J. Pharmacol. Exp. Ther. 260 (2), 917-924 (1992).</li><li>Kopczynska, B., Szereda-Przestaszewska, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=5HT2+and+5HT3+receptors'+contribution+to+modeling+of+post-serotonin+respiratory+pattern+in+cats.">5HT2 and 5HT3 receptors' contribution to modeling of post-serotonin respiratory pattern in cats.</a> Life Sci. 75 (19), 2281-2290 (2004).</li><li>Fan, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cannabinoid+agonists+inhibit+the+activation+of+5-HT3+receptors+in+rat+nodose+ganglion+neurons.">Cannabinoid agonists inhibit the activation of 5-HT3 receptors in rat nodose ganglion neurons.</a> J. Neurophysiol. 73 (2), 907-910 (1995).</li><li>Jespersen, B., Knupp, L., Northcott, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Femoral+arterial+and+venous+catheterization+for+blood+sampling,+drug+administration+and+conscious+blood+pressure+and+heart+rate+measurements.">Femoral arterial and venous catheterization for blood sampling, drug administration and conscious blood pressure and heart rate measurements.</a> J. Vis. Exp. (59), (2012).</li><li>Barann, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Direct+inhibition+by+cannabinoids+of+human+5-HT3A+receptors:+probable+involvement+of+an+allosteric+modulatory+site.">Direct inhibition by cannabinoids of human 5-HT3A receptors: probable involvement of an allosteric modulatory site.</a> Br. J. Pharmacol. 137 (5), 589-596 (2002).</li><li>Bonaz, B., Picq, C., Sinniger, V., Mayol, J. F., Clarencon, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vagus+nerve+stimulation:+from+epilepsy+to+the+cholinergic+anti-inflammatory+pathway.">Vagus nerve stimulation: from epilepsy to the cholinergic anti-inflammatory pathway.</a> Neurogastroenterol. Motil. 25 (3), 208-221 (2013).</li></ol>

The authors declare that they have no competing financial interests.

Die entscheidenden Schritte für eine erfolgreiche Injektion von Neurochemikalien in den Ganglien nodosum sind: 1) die Identifizierung und Reinigung des Bindegewebes an der Ganglien nodosum; 2) Bestätigung der Integrität der nodose Ganglien vor Injektion; 3) und unter Verwendung einer kleinen Nadel, um fein zu injizieren, aber nicht vollständig durch Punktierung nodosum ganglia. Der Vagusnerv innerviert viele Organe in den Hals und Bauch, und gibt wichtige Informationen wie Herzfrequenz, ...

Afferent signaling via the vagus nerve (cranial nerve X) transmits important general visceral information to the central nervous system (CNS) from baro-, chemo-, hepatic osmo-, cardiac, pulmonary, and gastric receptors located in the organs of the abdomen and thorax. The vagus nerve communicates information from stimuli such as heart rate, blood pressure, bronchopulmonary irritation, and gastrointestinal distension to the nucleus of solitary tract (NTS) of the medulla. The cell bodies of the pseudounipolar neurons of the vagus nerve are located in the nodose and petrosal ganglia, of which the majority is found in the former. Nodose ganglion cells contain a wealth of receptors for amino acids, monoamines, neuropeptides, and other neurochemicals that when activated, can modify afferent vagus nerve activity.1 Numerous innervations of the afferent vagus nerves coupled with the diversity of receptors located on the nodose ganglia illustrate the biological importance of this cranial nerve, and systemic drugs that do not cross into the CNS targeted at receptors on nodose ganglia can be used to treat various diseases, such as sleep apnea, gastroesophageal reflux disease, or chronic cough.2-4
The ease of access to the nodose ganglia lends itself to experimental manipulation by midline longitudinal incision made at the neck. The vagus nerve emerges from the posterior lacerated foramen at the base of the skull, and immediately displays a swelling of the nerve that is the nodose ganglion. The nodose ganglion is easily recognizable due to two nerve branches that arise from it: anteriorly the pharyngeal branch; and posteriorly superior laryngeal branch.5 Previous experimental manipulations of the nodose ganglia involved electrophysiological recordings,6 injections of immunohistochemical or immunofluorescent compounds for nerve tracings,7-10 superfusion or injections of neuroexcitotoxins,11-13 injections of adeno-associated virus to knockdown receptors,14,15 and injections of receptor-specific neurochemicals to change the activity of the vagus nerve.16,17
Systemic injections of neurochemicals are problematic in that systemic treatment affects both peripheral and central nervous systems. Thus, systemic treatment does not isolate the effect of neurochemicals on afferent vagal nerve activity. This protocol describes a method using readily available equipment of intranodose injections in the Sprague-Dawley rat that modulates vagus nerve activity without affecting the central nervous system. Stimulation of serotonin type 3 (5-HT3) receptors on nodose ganglia by intravenous (IV) infusion of serotonin (5-HT) induces the Bezold-Jarisch reflex, a vagal response trifecta of bradycardia, hypotension, and apnea, which can be abolished by supranodose vagatomy.11,17-19 Apnea is easily measured by placing a respiratory transducer around the abdomen of the rat.17,18 Cannabinoids decrease 5-HT-induced current in nodose ganglia cells,20 and intranodose ganglia injections of dronabinol attenuate 5-HT-induced apnea.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="660">
	<tbody>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:155px;">Company</td>
			<td style="width:141px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:175px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">5-HT HCl</td>
			<td style="width:155px;">MP Biomedicals</td>
			<td style="width:141px;">215376591</td>
			<td style="width:175px;">12.5 &#181;g/kg per 350 &#181;l/kg</td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Dronabinol (Marinol) 10 mg Capsules (80 &#181;g/&#181;l)</td>
			<td style="width:155px;">AbbVie</td>
			<td style="width:141px;">NDC 0051-0023-21</td>
			<td style="width:175px;">Dilute with sesame oil to 20 &#181;g/&#181;l</td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Sesame Oil</td>
			<td style="width:155px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:141px;">S3547</td>
			<td style="width:175px;"></td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Intramedic Polyethylene-50</td>
			<td style="width:155px;">BD</td>
			<td style="width:141px;">427411</td>
			<td style="width:175px;">Ordered from VWR (Cat. # 63019-047)</td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Graefe Forceps</td>
			<td style="width:155px;">Roboz</td>
			<td style="width:141px;">RS-5138</td>
			<td style="width:175px;">Two are needed</td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Johns Hopkins Bulldog Clamp</td>
			<td style="width:155px;">Roboz</td>
			<td style="width:141px;">RS-7441</td>
			<td style="width:175px;">Three are needed</td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Piezoelectric Strain Gauge</td>
			<td style="width:155px;">Ambu</td>
			<td style="width:141px;">813255-100</td>
			<td style="width:175px;"></td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Data Acquisition USB Subsystems</td>
			<td rowspan="2" style="width:155px;">DataWave Technologies</td>
			<td style="width:141px;">NA</td>
			<td style="width:175px;"></td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Sciworks Experimenter Software</td>
			<td style="width:141px;">NA</td>
			<td style="width:175px;"></td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">CyberAmp</td>
			<td style="width:155px;">Axon Instruments</td>
			<td style="width:141px;">NA</td>
			<td style="width:175px;"></td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Syringe, 500 &#181;L, Model 1750 TLL</td>
			<td rowspan="3" style="width:155px;">Hamilton Company</td>
			<td style="width:141px;">81220</td>
			<td style="width:175px;"></td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Syringe, 10 &#181;L, Model 1801 RN</td>
			<td style="width:141px;">7659-01</td>
			<td style="width:175px;"></td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Needle, 28 gauge, Small Hub RN</td>
			<td style="width:141px;">7803-02</td>
			<td style="width:175px;">Point Style 4, Angle 35, Length 0.5 in</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a method of nodose ganglia injection in sprague-dawley rat

Afferent signaling via the vagus nerve transmits important general visceral information to the central nervous system from many diverse receptors located in the organs of the abdomen and thorax. The vagus nerve communicates information from stimuli such as heart rate, blood pressure, bronchopulmonary irritation, and gastrointestinal distension to the nucleus of solitary tract of the medulla. The cell bodies of the vagus nerve are located in the nodose and petrosal ganglia, of which the majority are located in the former. The nodose ganglia contain a wealth of receptors for amino acids, monoamines, neuropeptides, and other neurochemicals that can modify afferent vagus nerve activity. Modifying vagal afferents through systemic peripheral drug treatments targeted at the receptors on nodose ganglia has the potential of treating diseases such as sleep apnea, gastroesophageal reflux disease, or chronic cough. The protocol here describes a method of injection neurochemicals directly into the nodose ganglion. Injecting neurochemicals directly into the nodose ganglia allows study of effects solely on cell bodies that modulate afferent nerve activity, and prevents the complication of involving the central nervous system as seen in systemic neurochemical treatment. Using readily available and inexpensive equipment, intranodose ganglia injections are easily done in anesthetized Sprague-Dawley rats.

1 stellt Probenatmungsaufzeichnungs in Ratten, die Infusion von 5-HT-Apnoe vor und nach intranodose ganglia Injektionen von Dronabinol induziert hatte. 5-HT aktiviert 5-HT 3 -Rezeptoren auf der Knoten-Ganglien, die mit dem Bezold-Jarisch-Reflex Bradykardie, Hypotonie und Apnoe beitragen. 11,17-19 Intranodose ganglia Injektionen von Dronabinol aktivieren inhibitorische CB Rezeptoren oder allosterisch moduliert 5-HT 3 Rezeptoren, die die 5-HT-induzierte Anregung der Vagusn...

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A Method of Nodose Ganglia Injection in Sprague-Dawley Rat

Afferent vagal signaling transmits important information to central nervous system from receptors located in organs of the abdomen and thorax. The nodose ganglia of vagus nerves contain many types of receptors that modulate vagal activity. This protocol describes a method of local injections of neurochemicals into the nodose ganglia.

Eine Methode der Ganglien nodosum Injection in Sprague-Dawley-Ratte

Afferent signaling via the vagus nerve transmits important general visceral information to the central nervous system from many diverse receptors located ...

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Neuroscience

18.4K Aufrufe.  University of Illinois at Chicago. Afferent vagal signaling transmits important information to central nervous system from receptors located in organs of the abdomen and thorax. The nodose ganglia of vagus nerves contain many types of receptors that modulate vagal activity. This protocol describes a method of local injections of neurochemicals into the nodose ganglia.