Cette étude a été soutenue par les Instituts nationaux de la santé (Grant 1UM1HL112856).

Toutes les procédures et protocoles ont été approuvés par le soin et l&#39;utilisation des animaux Commission institutionnelle de l&#39;Université de l&#39;Illinois à Chicago. Les expériences décrites ici sont des expériences non-survie aigus, et il n&#39;y avait pas d&#39;utilisation de pommade oculaire. Le maintien de conditions stériles se produit uniquement lorsque les instruments chirurgicaux sont lavées avec 70% d&#39;éthanol dans Dih 2 O. Sacrifice de rats à la fin de l&#39;expérience a eu lieu par l&#39;intermédiaire de surdose de kétamine IV / xylazine. 1. Préparation des instruments et des produits chimiques <ol><li> Préparer la solution d&#39;achat d&#39;actions de 0,05 M de 5-HT HCl dans du PBS. Ensuite diluer stocks avec du PBS à une concentration finale de 5-HT de 0,203 mM. </li><li> Diluer dronabinol dans l&#39;huile de sésame à une concentration de 20 ug / ul. </li><li> Couper 20 cm de longueur de polyéthylène (PE) -50 tube (0,58 mm ID, OD 0,965 mm). À une extrémité du tube, couper une pointe conique avec des ciseaux, et à l&#39;autre extrémité carrée, insérer une aiguille de 23 g. Connectez cette aiguille 23 g pour un 1 mlseringue, et le remplir avec 0,3 ml de 50 u / ml d&#39;héparine. </li><li> Coupez quatre morceaux de fil de soie 4-0 tressé et mettre sur le côté. </li><li> Stériliser ciseaux chirurgicaux, deux forceps Graefe courbes, et trois micro pinces avec 70% d&#39;éthanol dans diH 2 O. </li></ol> 2. cathétérisme de la veine fémorale Protocole pour le cathétérisme est modifié à partir Jespersen et al. 21 <ol><li> Anesthésier un rat Sprague-Dawley avec intraperitoneale (IP) de la kétamine / xylazine (100 mg / kg: 10 mg / kg). Pincez le bout du rat et d&#39;observer tout mouvement de confirmer un niveau approprié de l&#39;anesthésie. Raser la face ventrale de la cuisse gauche, et la face ventrale du cou. Si nécessaire par le Comité soin et l&#39;utilisation des animaux institutionnel local, appliquer une pommade oculaire pour prévenir la sécheresse. </li><li> Rat sécurisé en position couchée sur une planche chirurgicale. Utilisez des ciseaux chirurgicaux pour couper la peau de la cuisse arrière gauche. </li><li> En utilisant des pinces, conduite dissectio émousséen du muscle superficiel pour exposer la veine fémorale. Utiliser la pince pour séparer la veine de l&#39;artère fémorale, et placer deux fils autour de la veine fémorale. </li><li> Utilisez la pince Graefe courbes de pull-up de la veine pour arrêter l&#39;écoulement du sang. En utilisant une aiguille 22 G de la seringue, de percer la veine fémorale, puis insérez l&#39;extrémité biseautée du tube PE-50 dans la veine. </li><li> Vérifiez si le tuyau PE-50 a été inséré correctement en rétractant le piston de la seringue. Le sang doit être vu entrer dans le tube PE-50. Attachez deux noeuds autour de la veine et PE-50 tube en utilisant les deux fils. </li></ol> 3. 5-HT induite par l&#39;apnée par perfusion IV <ol><li> Placer une jauge de contrainte piézo-électrique autour du rat pour mesurer la respiration. </li><li> Modifier les paramètres pour le niveau de l&#39;amplificateur électronique via logiciel de l&#39;amplificateur sur l&#39;ordinateur d&#39;amplification: pour amplifier (100x) et le filtre passe-bande (1-10 Hz) les signaux respiratoires obtenus à partir de la jauge de contrainte, réglez &quot;filtre highpas&quot; au &amp; #8220; AC @ 1 Hz &quot;et&quot; Filtre passe-bas &quot;à&quot; 10 Hz, &quot;et régler l&#39;amplification en entrant&quot; 10 &quot;pour le&quot; Initial Gain &quot;et&quot; 100 &quot;pour&quot; Gain total &quot;.. </li><li> Modifier les paramètres de taux d&#39;échantillonnage en ouvrant &quot;Entrée analogique&quot; via le logiciel d&#39;enregistrement sur l&#39;ordinateur. Pour numériser (500 fréquence d&#39;échantillonnage Hz) en utilisant un convertisseur analogique-numérique, &quot;échantillon&quot; à &quot;1000 Hz&quot; et &quot;sauter&quot; tous les autres points de &quot;1&quot; (vitesse d&#39;échantillonnage effective 500 Hz) d&#39;enregistrement, puis enregistrer le signal en utilisant le logiciel d&#39;enregistrement. </li><li> Retirer la seringue de 1 ml à partir du cathéter et insérer une seringue en verre de précision 500 pi rempli de 0,203 mM de 5-HT dans le cathéter. </li><li> Placer la seringue 500 ul de verre de précision dans une pompe à perfusion. Infuser 12,5 ug / kg par 350 pl / kg de solution de 5-HT à un débit de 63 ml / h. Effectuez plusieurs perfusions et d&#39;observer l&#39;apnée chez le rat, qui est vu d&#39;unSA pause respiratoire (≥ 2,5 sec) dans les signaux respiratoires enregistrées sur l&#39;écran d&#39;ordinateur. </li><li> Avant de procéder à la chirurgie du cou, surveiller rythme respiratoire et vérifier réflexe de douleur de pincement de l&#39;orteil chez le rat. Si la respiration est irrégulière, ou se il est un réflexe de la douleur de pincement de l&#39;orteil, administrer IP kétamine / xylazine (100 mg / kg: 5 mg / kg) et puis re-confirmer un niveau approprié de l&#39;anesthésie. </li></ol> 4. chirurgie cervico-faciale pour exposer noueux Ganglia <ol><li> Rat sécurisé en position couchée sur une planche chirurgicale. Faire une coupe longitudinale médiane à l&#39;aide des ciseaux chirurgicaux au niveau du cou. </li><li> Utilisation de dissection sur le muscle platysma (en utilisant deux pinces micro de garder ce muscle claire du site chirurgical), exposer les sternohyoideus et omohyoideus muscles. Séparer ces muscles pour exposer l&#39;artère carotide interne et une de ses branches, l&#39;artère ptérygopalatine. </li><li> Observez le nerf vague car il longe l&#39;artère carotide interne et puis le long de e<html> e ptérygopalatine artère. Observez comment le nerf vague et l&#39;artère ptérygopalatine, avec le nerf glossopharyngien (nerf crânien IX) et le nerf spinal accessoire (nerf crânien XI), entrent dans le foramen lacérées postérieures à la base du crâne. </li><li> Notez que le ganglion noueux se affiche comme un gonflement du nerf vague droit avant qu&#39;il ne pénètre dans les postérieures lacéré foramen. Notez également que les pharynx et du larynx nerveuses branches se détachent les aspects antérieures et postérieures, respectivement, du ganglion noueux. 5 </li><li> En utilisant les forceps Graefe, séparer le nerf vague dans les artères, et placez un morceau de fil autour du nerf vague. Placez une pince sur le fil d&#39;appliquer une légère tension sur le nerf vague, et nettoyer le ganglion noueux de tout tissu conjonctif de fournir moins de résistance lors de l&#39;injection. </li><li> Répétez l&#39;apnée 5-HT induite comme indiqué à la section 3 pour confirmer qu&#39;aucun dommage a été fait pour les ganglions noueux. </li></ol>itre &quot;&gt; 5. Intranodose Ganglia injection de dronabinol <ol><li> Remplir une précision étanche seringue en verre de 10 pi apposé avec un 28 g aiguille de seringue demi-pouce sur mesure avec 35 ° biseautées pointe avec 5 pi du dronabinol à l&#39;huile de sésame. </li><li> Placez un micro pince sur le fil d&#39;appliquer une légère tension sur le nerf vague, et percer le noueux en prenant garde à ne pas percer ganglion à travers elle. Appuyer sur la seringue lentement (≥ 60 sec) pour injecter tout le contenu de la seringue. Notez que certains de contenu de la seringue se échappe du ganglion. </li><li> Répétez l&#39;apnée 5-HT induit comme indiqué dans l&#39;article 3. </li></ol>

<ol>
	<li>Zhuo, H., Ichikawa, H., Helke, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neurochemistry+of+the+nodose+ganglion.">Neurochemistry of the nodose ganglion.</a> Prog. Neurobiol. 52 (2), 79-107 (1997).</li><li>Carley, D. W., Radulovacki, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pharmacology+of+vagal+afferent+influences+on+disordered+breathing+during+sleep.">Pharmacology of vagal afferent influences on disordered breathing during sleep.</a> Respir. Physiol. Neurobiol. 164 (1-2), 197-203 (2008).</li><li>Kuo, P., Holloway, R. 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E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Live-cell+imaging+methods+for+the+study+of+vagal+afferents+within+the+nucleus+of+the+solitary+tract.">Live-cell imaging methods for the study of vagal afferents within the nucleus of the solitary tract.</a> J. Neurosci. Methods. 150 (1), 47-58 (2006).</li><li>Wan, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Presynaptic+melanocortin-4+receptors+on+vagal+afferent+fibers+modulate+the+excitability+of+rat+nucleus+tractus+solitarius+neurons.">Presynaptic melanocortin-4 receptors on vagal afferent fibers modulate the excitability of rat nucleus tractus solitarius neurons.</a> J. Neurosci. 28 (19), 4957-4966 (2008).</li><li>Verberne, A. J., Lewis, S. J., Jarrott, B., Louis, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bezold-Jarisch+reflex+is+inhibited+by+excitotoxin-induced+destruction+of+vagal+primary+afferent+neurons.">Bezold-Jarisch reflex is inhibited by excitotoxin-induced destruction of vagal primary afferent neurons.</a> Eur. J. Pharmacol. 139 (3), 365-367 (1987).</li><li>Lewis, S. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Excitotoxin-induced+degeneration+of+rat+vagal+afferent+neurons.">Excitotoxin-induced degeneration of rat vagal afferent neurons.</a> Neuroscience. 34 (2), 331-339 (1990).</li><li>Wallick, D. W., Dunlap, M. E., Stuesse, S. S., Thames, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Denervation+of+vagal+cardiopulmonary+receptors+by+injection+of+kainic+acid+into+the+nodose+ganglia+in+dogs.">Denervation of vagal cardiopulmonary receptors by injection of kainic acid into the nodose ganglia in dogs.</a> Auton. Neurosci. 102 (1-2), 85-89 (2002).</li><li>Muroi, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Selective+inhibition+of+vagal+afferent+nerve+pathways+regulating+cough+using+Nav+1.7+shRNA+silencing+in+guinea+pig+nodose+ganglia.">Selective inhibition of vagal afferent nerve pathways regulating cough using Nav 1.7 shRNA silencing in guinea pig nodose ganglia.</a> Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 304 (11), 1017-1023 (2011).</li><li>Kollarik, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transgene+expression+and+effective+gene+silencing+in+vagal+afferent+neurons+in+vivo+using+recombinant+adeno-associated+virus+vectors.">Transgene expression and effective gene silencing in vagal afferent neurons in vivo using recombinant adeno-associated virus vectors.</a> J. Physiol. 588 (21), 4303-4315 (2010).</li><li>Zhang, Z., Zhang, C., Zhou, M., Xu, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Activation+of+opioid+mu-receptors,+but+not+delta-+or+kappa-receptors,+switches+pulmonary+C-fiber-mediated+rapid+shallow+breathing+into+an+apnea+in+anesthetized+rats).">Activation of opioid mu-receptors, but not delta- or kappa-receptors, switches pulmonary C-fiber-mediated rapid shallow breathing into an apnea in anesthetized rats).</a> Respir. Physiol. Neurobiol. 183 (3), 211-217 (2012).</li><li>Calik, M. W., Radulovacki, M., Carley, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intranodose+ganglion+injections+of+dronabinol+attenuate+serotonin-induced+apnea+in+Sprague-Dawley+rat.">Intranodose ganglion injections of dronabinol attenuate serotonin-induced apnea in Sprague-Dawley rat.</a> Respir. Physiol. Neurobiol. 190, 20-24 (2014).</li><li>Yoshioka, M., Goda, Y., Togashi, H., Matsumoto, M., Saito, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pharmacological+characterization+of+5-hydroxytryptamine-induced+apnea+in+the+rat.">Pharmacological characterization of 5-hydroxytryptamine-induced apnea in the rat.</a> J. Pharmacol. Exp. Ther. 260 (2), 917-924 (1992).</li><li>Kopczynska, B., Szereda-Przestaszewska, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=5HT2+and+5HT3+receptors'+contribution+to+modeling+of+post-serotonin+respiratory+pattern+in+cats.">5HT2 and 5HT3 receptors' contribution to modeling of post-serotonin respiratory pattern in cats.</a> Life Sci. 75 (19), 2281-2290 (2004).</li><li>Fan, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cannabinoid+agonists+inhibit+the+activation+of+5-HT3+receptors+in+rat+nodose+ganglion+neurons.">Cannabinoid agonists inhibit the activation of 5-HT3 receptors in rat nodose ganglion neurons.</a> J. Neurophysiol. 73 (2), 907-910 (1995).</li><li>Jespersen, B., Knupp, L., Northcott, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Femoral+arterial+and+venous+catheterization+for+blood+sampling,+drug+administration+and+conscious+blood+pressure+and+heart+rate+measurements.">Femoral arterial and venous catheterization for blood sampling, drug administration and conscious blood pressure and heart rate measurements.</a> J. Vis. Exp. (59), (2012).</li><li>Barann, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Direct+inhibition+by+cannabinoids+of+human+5-HT3A+receptors:+probable+involvement+of+an+allosteric+modulatory+site.">Direct inhibition by cannabinoids of human 5-HT3A receptors: probable involvement of an allosteric modulatory site.</a> Br. J. Pharmacol. 137 (5), 589-596 (2002).</li><li>Bonaz, B., Picq, C., Sinniger, V., Mayol, J. F., Clarencon, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vagus+nerve+stimulation:+from+epilepsy+to+the+cholinergic+anti-inflammatory+pathway.">Vagus nerve stimulation: from epilepsy to the cholinergic anti-inflammatory pathway.</a> Neurogastroenterol. Motil. 25 (3), 208-221 (2013).</li></ol>

The authors declare that they have no competing financial interests.

Les étapes essentielles pour l&#39;injection de substances neurochimiques succès dans les ganglions noueux sont les suivants: 1) l&#39;identification et le nettoyage du tissu conjonctif de la ganglions noueux; 2) confirmer l&#39;intégrité des ganglions noueux avant injection; 3) et en utilisant une aiguille de calibre petite pour injecter délicatement dans, mais pas complètement piquant à travers, les ganglions noueux. Le nerf vague innerve nombreux organes dans le cou et l&#39;abdome...

Afferent signaling via the vagus nerve (cranial nerve X) transmits important general visceral information to the central nervous system (CNS) from baro-, chemo-, hepatic osmo-, cardiac, pulmonary, and gastric receptors located in the organs of the abdomen and thorax. The vagus nerve communicates information from stimuli such as heart rate, blood pressure, bronchopulmonary irritation, and gastrointestinal distension to the nucleus of solitary tract (NTS) of the medulla. The cell bodies of the pseudounipolar neurons of the vagus nerve are located in the nodose and petrosal ganglia, of which the majority is found in the former. Nodose ganglion cells contain a wealth of receptors for amino acids, monoamines, neuropeptides, and other neurochemicals that when activated, can modify afferent vagus nerve activity.1 Numerous innervations of the afferent vagus nerves coupled with the diversity of receptors located on the nodose ganglia illustrate the biological importance of this cranial nerve, and systemic drugs that do not cross into the CNS targeted at receptors on nodose ganglia can be used to treat various diseases, such as sleep apnea, gastroesophageal reflux disease, or chronic cough.2-4
The ease of access to the nodose ganglia lends itself to experimental manipulation by midline longitudinal incision made at the neck. The vagus nerve emerges from the posterior lacerated foramen at the base of the skull, and immediately displays a swelling of the nerve that is the nodose ganglion. The nodose ganglion is easily recognizable due to two nerve branches that arise from it: anteriorly the pharyngeal branch; and posteriorly superior laryngeal branch.5 Previous experimental manipulations of the nodose ganglia involved electrophysiological recordings,6 injections of immunohistochemical or immunofluorescent compounds for nerve tracings,7-10 superfusion or injections of neuroexcitotoxins,11-13 injections of adeno-associated virus to knockdown receptors,14,15 and injections of receptor-specific neurochemicals to change the activity of the vagus nerve.16,17
Systemic injections of neurochemicals are problematic in that systemic treatment affects both peripheral and central nervous systems. Thus, systemic treatment does not isolate the effect of neurochemicals on afferent vagal nerve activity. This protocol describes a method using readily available equipment of intranodose injections in the Sprague-Dawley rat that modulates vagus nerve activity without affecting the central nervous system. Stimulation of serotonin type 3 (5-HT3) receptors on nodose ganglia by intravenous (IV) infusion of serotonin (5-HT) induces the Bezold-Jarisch reflex, a vagal response trifecta of bradycardia, hypotension, and apnea, which can be abolished by supranodose vagatomy.11,17-19 Apnea is easily measured by placing a respiratory transducer around the abdomen of the rat.17,18 Cannabinoids decrease 5-HT-induced current in nodose ganglia cells,20 and intranodose ganglia injections of dronabinol attenuate 5-HT-induced apnea.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="660">
	<tbody>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:155px;">Company</td>
			<td style="width:141px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:175px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">5-HT HCl</td>
			<td style="width:155px;">MP Biomedicals</td>
			<td style="width:141px;">215376591</td>
			<td style="width:175px;">12.5 &#181;g/kg per 350 &#181;l/kg</td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Dronabinol (Marinol) 10 mg Capsules (80 &#181;g/&#181;l)</td>
			<td style="width:155px;">AbbVie</td>
			<td style="width:141px;">NDC 0051-0023-21</td>
			<td style="width:175px;">Dilute with sesame oil to 20 &#181;g/&#181;l</td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Sesame Oil</td>
			<td style="width:155px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:141px;">S3547</td>
			<td style="width:175px;"></td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Intramedic Polyethylene-50</td>
			<td style="width:155px;">BD</td>
			<td style="width:141px;">427411</td>
			<td style="width:175px;">Ordered from VWR (Cat. # 63019-047)</td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Graefe Forceps</td>
			<td style="width:155px;">Roboz</td>
			<td style="width:141px;">RS-5138</td>
			<td style="width:175px;">Two are needed</td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Johns Hopkins Bulldog Clamp</td>
			<td style="width:155px;">Roboz</td>
			<td style="width:141px;">RS-7441</td>
			<td style="width:175px;">Three are needed</td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Piezoelectric Strain Gauge</td>
			<td style="width:155px;">Ambu</td>
			<td style="width:141px;">813255-100</td>
			<td style="width:175px;"></td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Data Acquisition USB Subsystems</td>
			<td rowspan="2" style="width:155px;">DataWave Technologies</td>
			<td style="width:141px;">NA</td>
			<td style="width:175px;"></td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Sciworks Experimenter Software</td>
			<td style="width:141px;">NA</td>
			<td style="width:175px;"></td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">CyberAmp</td>
			<td style="width:155px;">Axon Instruments</td>
			<td style="width:141px;">NA</td>
			<td style="width:175px;"></td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Syringe, 500 &#181;L, Model 1750 TLL</td>
			<td rowspan="3" style="width:155px;">Hamilton Company</td>
			<td style="width:141px;">81220</td>
			<td style="width:175px;"></td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Syringe, 10 &#181;L, Model 1801 RN</td>
			<td style="width:141px;">7659-01</td>
			<td style="width:175px;"></td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:191px;">Needle, 28 gauge, Small Hub RN</td>
			<td style="width:141px;">7803-02</td>
			<td style="width:175px;">Point Style 4, Angle 35, Length 0.5 in</td>
		</tr>
	</tbody>
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a method of nodose ganglia injection in sprague-dawley rat

Afferent signaling via the vagus nerve transmits important general visceral information to the central nervous system from many diverse receptors located in the organs of the abdomen and thorax. The vagus nerve communicates information from stimuli such as heart rate, blood pressure, bronchopulmonary irritation, and gastrointestinal distension to the nucleus of solitary tract of the medulla. The cell bodies of the vagus nerve are located in the nodose and petrosal ganglia, of which the majority are located in the former. The nodose ganglia contain a wealth of receptors for amino acids, monoamines, neuropeptides, and other neurochemicals that can modify afferent vagus nerve activity. Modifying vagal afferents through systemic peripheral drug treatments targeted at the receptors on nodose ganglia has the potential of treating diseases such as sleep apnea, gastroesophageal reflux disease, or chronic cough. The protocol here describes a method of injection neurochemicals directly into the nodose ganglion. Injecting neurochemicals directly into the nodose ganglia allows study of effects solely on cell bodies that modulate afferent nerve activity, and prevents the complication of involving the central nervous system as seen in systemic neurochemical treatment. Using readily available and inexpensive equipment, intranodose ganglia injections are easily done in anesthetized Sprague-Dawley rats.

La figure 1 représente un exemple d&#39;enregistrement de la respiration chez les rats qui avaient perfusion de 5-HT pour induire une apnée avant et après les injections de ganglions intranodose de dronabinol. 5-HT active 5-HT3 sur les ganglions noueux qui contribuent à l&#39;réflexe de Bezold-Jarisch de la bradycardie, l&#39;hypotension et l&#39;apnée. 11,17-19 injections de ganglions Intranodose de dronabinol activent les récepteurs CB inhibiteurs, ou module de manière al...

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A Method of Nodose Ganglia Injection in Sprague-Dawley Rat

Afferent vagal signaling transmits important information to central nervous system from receptors located in organs of the abdomen and thorax. The nodose ganglia of vagus nerves contain many types of receptors that modulate vagal activity. This protocol describes a method of local injections of neurochemicals into the nodose ganglia.

Une méthode d&#39;injection dans les ganglions noueux rat Sprague-Dawley

Afferent signaling via the vagus nerve transmits important general visceral information to the central nervous system from many diverse receptors located ...

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

18.4K vues.  University of Illinois at Chicago. Afferent vagal signaling transmits important information to central nervous system from receptors located in organs of the abdomen and thorax. The nodose ganglia of vagus nerves contain many types of receptors that modulate vagal activity. This protocol describes a method of local injections of neurochemicals into the nodose ganglia.