Diese Forschung wurde unterstützt durch Zuschüsse aus dem National Institute of General Medical Sciences (GM099883 und GM074675) EAK Die Geldgeber hatten keine Rolle in Studiendesign, Datenerhebung und -analyse, Entscheidung zur Veröffentlichung oder Erstellung des Manuskripts unterstützt. Wir danken den Menschen aus unserer Maschinenhalle an der Harvard Medical School für den Entwurf des Verhaltensgerät (Kontakt: <a href="http://mikesmachine.com">http://mikesmachine.com).</a> Autor Beiträge: ST, entworfen BC den Verhaltensgerät. ST ausgelegt und optimiert Das experimentelle Protokoll. ST und BC durchgeführt und die Versuche analysiert. ST, EAK und BC schrieb die Zeitung.

Hinweis: Nachfolgend finden Sie eine Schritt-für-Schritt-Beschreibung der Versuchsprotokoll wir verwenden, um zwischen Paaren von männlichen Fruchtfliegen ermöglichen zuverlässige Auslösung der Aggression (D. melanogaster). Dieses Verfahren führt zur Bildung eines &quot;loser&quot; -Effekt. Über dieses Protokoll, um eine kurzfristige &quot;Gewinner&quot; Effekt wurde auch vor kurzem berichtet, 5,6. Abbildung 1 zeigt die Zeitleiste der Verhaltensexperimente. <img alt="Abbildung 1" src="/files/ftp_upload/53395/53395fig1.jpg" /> Abbildung 1. Zeitleiste der Aggression Experiment. Am Tag 1 werden im Spätstadium männlichen Puppen (bei Flügeln werden schwarz) in frisch hergestellten Isolationsdurchstechflaschen isoliert. Am Tag 5 nach dem Austritt als Erwachsene, werden 4 Tage alten männlichen Fliegen mit CO 2 anästhesiert und mit verschiedenen Farben zur Identifikation lackiert. Am Tag 7, Lebensmittel Tassen und Kampfkammernbereit, die Verhaltensexperimente einzurichten. Zwei 6-7 Tage alten Männchen werden in die Kammern eingelegt und in der Lage sind, zu interagieren. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53395/53395fig1large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> 1. Tag 1: Soziale Isolation der Puppen <ol><li> Raise und Pflege Fliegen Aktien in einer umwelt kontrollierten 12 Stunden Licht / 12 h Dunkel-Zyklus Brutschrank bei 25 ° C und 50% relativer Luftfeuchtigkeit. </li><li> Bereiten Isolationsdurchstechflaschen: Erhitzen Sie frische fliegen Essen, bis sie geschmolzen. Verwendung einer Pasteur-Pipette etwa 1,5 ml geschmolzene Fliege Nahrung in Einzel leer Probiergläser (1,6 x 10 cm). Lassen Sie die Speisen zu verfestigen. </li><li> Isolieren, Puppen: Mit einem feinen Pinsel, entfernen Sie vorsichtig eine Late-Stage-männliche Puppe (bei Flügeln werden schwarz) aus dem Vorratsröhrchen und legen Sie sie auf der Seite eines frisch hergestellten Lebensmittel, die Reagenzglas. Schließen Isolationsdurchstechflaschen mit Baumwolle (Abbildung 2). </li><li&gt; Platz Isolationsdurchstechflaschen mit Puppen in den 12 Stunden Licht / 12 Stunden Dunkelheit Brutschrank bei 25 ° C und 50% relativer Luftfeuchtigkeit. </li></ol><img alt="Figur 2" src="/files/ftp_upload/53395/53395fig2.jpg" /> Abbildung 2. Soziale Isolation. Eine Spätstadium männliche Puppe ist auf der Seite an einer frisch hergestellten Isolations Fläschchen gegeben. Isolation Fläschchen Puppe enthalten, sind in den 12 Stunden Licht / 12 Stunden Dunkelheit Brutschrank bei 25 ° C und 50% relativer Luftfeuchtigkeit aufgestellt. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53395/53395fig2large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> 2. Tag 5: Malerei die Fliegen für individuelle Identifikationszwecken <ol><li> Führen Sie diesen Schritt am Tag 5 4 Tage alten männlichen Fliegen und zwei Tage vor der Verhaltensexperimente, um die negativen Auswirkungen der CO 2 Anästhesie zu minimieren. </li><li> Anesthetize Fliege mit CO 2. </li&gt; <li> Mit einem feinen Zahnstocher, legen Sie einen kleinen Punkt von Acrylfarbe auf den Brustkorb. Vermeiden Sie es, Farbe auf dem Kopf, Flügel, Bauch oder Beine (Abbildung 3). </li><li> Lassen Sie Farbe trocken für etwa 10 sec, und sanft übertragen Fliegen zurück zu ihrer ursprünglichen Isolationsdurchstechflaschen. </li><li> Return Isolationsdurchstechflaschen mit dem 12 Stunden Licht / 12 Stunden Dunkelheit Brutschrank bei 25 ° C und 50% relativer Luftfeuchtigkeit. </li></ol><img alt="Figur 3" src="/files/ftp_upload/53395/53395fig3.jpg" /> Figur 3. Individuelle Identifizierung. Nach Betäubung eines Fliege mit CO 2, einem kleinen Tropfen Acrylfarbe auf dem Thorax angelegt wird. Für individuelle Identifikations Zweck werden verschiedene Farben verwendet (weiß und hier blau). Siehe nachstehende Diskussion über die Verwendung von CO 2 bei diesem Schritt. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53395/53395fig3large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieses figu ansehen</a>Re. 3. Tag 7: Vorbereitung der Vorrichtung <ol><li> Bereiten Sie Lebensmittel Cups: <ol><li> Erhitzen Sie frische fliegen Essen, bis es schmilzt. </li><li> Verwendung einer Pasteur-Pipette, etwa 0,8 ml Lebensmittel an den Deckel eines Schraubdeckelfläschchen (1,5 cm Durchmesser, 1 cm Höhe) und abkühlen lassen. Vermeiden Sie Luftblasen. </li><li> Machen Sie frische Hefe Paste durch Mischen von Trockenhefe mit ein paar Tropfen Wasser. Wenn dicke, wenden Sie einen kleinen Tropfen von Hefe-Paste auf der Mitte des Nahrungsmittelbecher Oberfläche mit einem Zahnstocher (Abbildung 4). </li></ol></li></ol><img alt="Figur 4" src="/files/ftp_upload/53395/53395fig4.jpg" /> Abbildung 4. Vorbereiten der Nahrung Tasse. Ein Nahrungsmittelbecher mit frischen Fliege Essen zubereitet. Nach den Lebensmittel verfestigt wird ein Punkt von Hefe-Paste in der Mitte des Nahrungsmittelbecher Oberfläche platziert. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53395/53395fig4large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um die v</a>IEW eine größere Version dieser Figur. <ol start="2"><li> Bereiten Individuelle Kämpfen Chambers: <ol><li> Mit Wasser gründlich waschen der Vorrichtung und individuellen Kampfkammern vor Gebrauch jedes Mal. Dry mit Papiertuch vor dem Gebrauch. </li><li> Legen Sie ein Lebensmitteltasse in der Mitte jeder kämpft Kammer und fixieren mit einem Rückgang von Kitt. </li><li> Bedeckung Löschkammern mit dem Vorrichtungsdeckel (Abbildung 5). </li><li> Platzieren der Vorrichtung in einer Umgebung mit hoher Feuchtigkeit (60%) bei 25 ° C. </li><li> Legen Sie eine Lichtquelle über dem Gerät, um die Kämpfe Kammern zu beleuchten und stellen Sie eine Videokamera für die Aufnahme von oben. </li></ol></li></ol><img alt="Figur 5" src="/files/ftp_upload/53395/53395fig5.jpg" /> Abbildung 5. Vorbereitung der einzelnen Kampfraum. Das frisch zubereitete Speisen Tasse mit einem Punkt von Hefe-Paste auf der Oberfläche in gewaschen einzelnen fi FestKämpfe Kammern. Kammern mit der zweiteilige Deck das Einführen eines undurchsichtigen Kunststoffteiler in einzelne Kampfkammern geschlossen. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53395/53395fig5large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> 4. Tag 7: Verhalten Experiment <ol><li> Führen Sie die Verhaltensexperimente mit 6-7 Tage alten männlichen Fliegen. </li><li> Legen Kunststoffteiler in jeden Kampf gegen Kammer. </li><li> Entfernen Sie die Watte aus der Isolationsröhre und positionieren Sie den Schlauch unter einem offenen Loch auf der Seite des Geräts. </li><li> Lassen Sie die Fliege in den Kampfraum gelangen durch negative Geotaxis, in der Regel innerhalb von wenigen Sekunden. </li><li> Schließen Sie den Schiebewand nach der Fliege hat das Rohr nach links und die Kammer eingetragen. </li><li> Wiederholen Sie den Vorgang, um die zweite Fliege in den Kampf Kammer auf der anderen Seite des Gerätes einführen. </li><li> Legen Sie das Gerät wieder in den beleuchteten videotaping Position. </li><li> Beginnen Sie Videoaufzeichnung und entfernen Sie die Plastikteiler, damit Fliegen zu interagieren. <ol><li> Für Aggression Experimente: <ol><li> In diesen Experimenten kämpft Rekord für mindestens 20 Minuten, um die Bildung von starken Dominanzverhältnisse zu gewährleisten. </li><li> Nach der gewünschten Zeit, zu stoppen Videoaufzeichnung. </li><li> Fliegen aus den Kämpfen Kammern entfernen durch die Umkehrung der oben beschriebenen Vorgehensweise. </li><li> Gründlich Verhaltensgerät mit einem milden Reinigungsmittel und Wasser nach jedem Gebrauch spülen und waschen. </li></ol></li><li> Für &quot;Loser&quot; Effect Experimente: Hinweis: In diesen Experimenten werden zunächst Kämpfe als der Konditionierungsphase und zweiten Kämpfe als der Testphase berücksichtigt. Die Zeit der Ruhe zwischen den Kämpfen kann unterscheiden, aber 10 Minuten ermöglicht die Bildung einer starken &quot;Verlierer&quot; Wirkung. <ol><li> Folgen Sie dem oben beschriebenen, einen ersten Kampf durchführen Vorgehensweise. </li><li> Entscheidender Schritt: Um die Bildung einer &quot;Verlierer&quot; Mentalität, e induzierenNsure, die ersten Kämpfe sind mindestens 20 min lang, um starke Dominanz Beziehungen aufzubauen. Nach 20 min Setzen Sie die Kunststoffteiler in Kampfkammern, um die Fliegen zu trennen. </li><li> Nach 10 min Ruhezeit, entfernen Sie vorsichtig die Kunststoffteiler, damit Fliegen zum zweiten Kämpfe zu interagieren. </li><li> Am Ende der zweiten 20 Minuten Kampf, stoppen Sie die Videoaufzeichnung. </li><li> Fliegen aus Verhaltens Kammern wie oben entfernen. </li><li> Wieder einmal gründlich den Verhaltensgerät reinigen. </li></ol></li></ol></li></ol> 5. Behavioral Analysis <ol><li> Übertragen Filme <ol><li> Verbinden Kameras an den Computer. </li><li> Konvertieren Fliegen .MTS um Fliegen .mov und kommen Filme Clips zusammen, mit Hilfe von Video-Konvertierungssoftware und die Option &quot;beizutreten ausgewählten Clips&quot;. </li><li> Beobachten Sie und jeden Film mit Video-Reader-Software zu analysieren. </li></ol></li><li> Scoring-Verhalten Hinweis: Dies kann manuell durchgeführt werden oder mit unsing Verhaltensanalyse-Software-Programm, sofern verfügbar. Die folgende Abbildung beschreibt eine mögliche manuelle Analyse für einen &quot;Verlierer&quot; Wirkung. <ol><li> Note die Zeit der ersten Begegnung zwischen den Fliegen an der Nahrungsmittelbecher (Begegnungen sind Wechselwirkungen zwischen Paaren von Fliegen, die mindestens 2 Sek halten) und dem Zeitpunkt des Auftretens der ersten Ausfallschritt (ein Verhaltensmuster, in dem eine Fliege erhebt sich hoch auf seiner Hinterbeine und schnappt nach unten auf und versucht, den Gegner zu greifen). Dann punkten die Latenz zu stürzen (das Intervall zwischen der ersten Begegnung und der ersten Ausfallschritt). </li><li> Zählen Sie die Anzahl der Begegnungen und Ausfallschritte während eines Kampfes. Hinweis: Falls gewünscht, kann man auch andere Verhaltensmuster punkten, wie Flügel Bedrohung, Boxen, Fechten, Rückzug oder die Zahl der Begegnungen, bevor die erste Ausfallschritt, zum Beispiel. </li><li> Note die Zeit der Gründung der Dominanz (Zeit zwischen der ersten Begegnung, und die Zeit, wenn man fliegen Exerzitien für drei Mal in Folge von der Food Tasse Achterer empfängt Ausfallschritte). Hinweis, die fliegen, ist der Gewinner und dem der Verlierer des Kampfes. </li></ol></li><li> Berechnung eines &quot;Loser&quot; Effect <ol><li> Teilen Sie die Anzahl der Kämpfe, in denen vorherige Verlierer verlieren 2. Kämpfe (Losers, die zu verlieren: LL) durch die Gesamtzahl der Kämpfe, und multiplizieren Sie mit 100. Das erhaltene Prozentsatz stellt die &quot;Verlierer&quot; Wirkung: [(# Fliegt LL) / (# Gesamt Kampf)] x 100 </li><li> Verwenden Sie einen Chi-Quadrat-Test, um zu vergleichen, ob die &quot;Verlierer&quot; Effekt ist statistisch von dem Erwartungswert von 50%. </li></ol></li></ol>

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The authors have nothing to disclose.

Das moderne Zeitalter der Verwendung von Drosophila mit seinen leistungsfähigen genetischer Methoden als Modellorganismus für das Studium der Aggression vor einem Dutzend Jahren begann etwa mit der Einführung der neuen experimentellen Arenen, in denen zuverlässige Kampfverhalten konnte mit einzelnen Paaren von Fliegen 1,7 erhalten werden kann, 8,17,19. Diese Arenen enthalten gewünschten Ressourcen (ein Nahrungsmittelbecher, potenziellen Partnern) und ein Raum für die Verlierer fliegt...

Aggression in der Tieranlagen ist stark mit dem Erwerb und der Besitz von Ressourcen wie Nahrung, Territorium und Kollegen verbunden. Angesichts der wichtigen Rolle dieses spielt in der Fitness von Individuen, ist es nicht verwunderlich, dass Aggression in der Tierwelt entwickelt. Als ein adaptives Merkmal, das direkt zugute Individuen wird eine starke Lernen und Gedächtnis-Komponente mit Aggression verbunden. Im Wettbewerb um die sozialen Rang, beeinflusst das Ergebnis der späteren Wettbewerben früheren Kampferfahrung. In der Regel vor Verlierer Erfahrung zu und gewinnen Erfahrung ab, die Wahrscheinlichkeit zu verlieren späteren Wettbewerben (so genannte &quot;Verlierer&quot; und &quot;Gewinner&quot; Effekte). &quot;Loser&quot; Effekte wurden in einer Vielzahl von Arten beobachtet worden, und einige Berichte deuten darauf hin, dass diese mehrere Tage dauern, während &quot;Gewinner&quot; Wirkungen sind in der Regel von kürzerer Dauer 2,10,11. Der erste Bericht über aggressives Verhaltenin Fruchtfliegen (D. ampelophila) wurde durch Sturtevant 1915 in einer mit Sex Anerkennung und Geschlechtsselektion 12 betroffenen Papier. Ein halbes Jahrhundert später, vollständigere Untersuchung der männlichen Fruchtfliege Aggression wurden, dass die meisten der während der Fruchtfliege Kämpfe beobachtete Verhaltensmuster beschrieben. Diese Versuche waren meist in kleinen Gruppen von mehr als 13 bis 15 Stunden beobachtet, männliche und weibliche Fliegen durchgeführt. In jüngster Zeit mit der Zugabe von leistungsfähigen genetischen Werkzeuge, dyadische gleichgeschlechtlichen Kampf Setups und kürzere Zeiten der Beobachtung, D. melanogaster hat sich als wichtiges Modellsystem für das Studium der Biologie der Aggression 1,16 entstanden. Die Analyse der Kämpfe zwischen gleichgeschlechtlichen Paaren von männlichen und weiblichen Fliegen zeigten, dass Aggression beinhaltet stereotype Verhaltensmuster, die Übergang von einem zum anderen zu einer statistisch zuverlässige Weise 1,17. Einige der beobachteten Verhaltensmuster sind geschlechtsspezifisch, während andere im Kampf beobachtets bei beiden Geschlechtern. Männlich Kämpfe gehen zu höheren Intensitätsstufen als weibliche Kämpfe und führen zur Bildung von Dominanzverhältnisse mit klaren &quot;Gewinner&quot; und &quot;Verlierer&quot;. Derzeit haben viele Labors begann die Untersuchung der biochemischen 18, neuronale 7,19-21 und genetische 22 Grundlagen der Aggression. Leider eine Meta-Analyse von Studien, um Einblick in Kampf Dynamik und die Bildung und Aufrechterhaltung der Dominanzbeziehungen ist problematisch aufgrund der Verwendung einer Vielzahl von experimentellen Verfahren in verschiedenen Labors erhalten. Im wesentlichen alle der in der Literatur beschriebenen Techniken beinhalten Handhabung und Manipulationen der Fliegen, um sie in Arenen 19,23,24 und während des Verhaltensexperiment 3,4 einzuführen Fliegen aus Arenen übertragen. Sanfte Aspiration ist der häufigste Weg, um Fliegen zu manipulieren 3,4,23-25, aber kalt oder CO 2 Anästhesie werden auch verwendet, 9,26, auch wenn previous Studien haben bereits berichtet, dass diese Verfahren haben schädliche Auswirkungen auf Flugverhalten 27,28. Ein Zeitraum von mindestens 24 h nach der Verwendung von Anästhetika empfohlen, ihre Auswirkungen auf das Verhalten 29,30 minimieren. Fliegen lernen aus früheren Kampferfahrung und ihre Verhaltensmuster zu verändern Nutzung in neuen Situationen, was darauf hindeutet, dass Lernen und Gedächtnis zu begleiten und Folgen der agonistischen Begegnungen. In diesem Sinne, Fliegen Kämpfe ähneln operante Konditionierung Lernsituationen, in dem Fliegen zu lernen, dass eine Strategie hat funktioniert und es dann immer öfter bei der späteren Begegnungen. Fliegen ändern ihre Kampfstrategien nach dem Dominanzverhältnisse wurden während der Kämpfe etabliert, mit Gewinnern Longieren mehr und mehr und Verlierer immer weniger. Nach einer Zeit der Trennung vorherigen Verlierer zeigen viel mehr unterwürfige Verhalten und mit hoher Wahrscheinlichkeit 2. wenn gepaart mit naiven fl kämpft verlierenies oder vorherigen Gewinnern 3,4. Jedoch hat das Fehlen eines experimentellen Verfahrens gesetzt wird, das Handling von Fliegen detaillierte Studien &quot;loser&quot; Effekte erschwert. In einer aktuellen Studie verglichen wir zwei experimentellen Verfahren routinemäßig in Laboratorien (Aspiration und Kälte-Anästhesie) verwendet werden, um Fliegen in Verhaltenskammern an das neue Verfahren, das Handling eliminiert einzuführen. Die Ergebnisse zeigten, dass Kalt Anästhesie hatten viel größere negative Auswirkungen auf Aggression als Aspiration, sondern sogar Aspiration reduziert das Niveau der Aggressivität von Fliegen. Aspiration war jedoch zu hoch signifikante Auswirkungen auf das Lernen und Gedächtnis, die Aggression zu begleiten. Nach identischen Protokoll mit zwei experimentellen Verfahren (Aspiration und keine Behandlung), eine robuste &quot;Verlierer&quot; Effekt wurde nur beobachtet, wenn die Handhabung von Fliegen wurde von der Versuchsdurchführung 5,6 eliminiert. Idealerweise Studium der Drosophila Aggression in labotorien sollten Umweltsituationen, die normalerweise in der Wildnis begegnen fliegt (Wettbewerb um Ressourcen, Territorium zu verteidigen und Raum zu entkommen) enthalten. Darüber hinaus sollten Versuchsbedingungen optimiert werden, um zuverlässig zu induzieren, zu beobachten und das Verhalten zu untersuch interpretiert werden (versuchen, die Behandlung der Tiere zu minimieren, die Verwendung von CO 2 als Narkosemittel zu begrenzen, und Standardisierung der experimentellen Verfahren). Bei dem Versuch, die meisten oder alle diese Probleme anzugehen, haben wir einen neuen Verhaltensgerät, das Handling von Fliegen beseitigt, bevor, während und nach den verhaltens Arenen ihre Einführung. Mit diesen Vorrichtungen verwenden Fliegen ihre angeborene negativen Geotaxis zu bewegt und in die und aus den Kampf Kammern übertragen werden. Durch den Wegfall der Handhabung von Fliegen, zielt darauf ab, das Protokoll an: (a) verringern die Verhaltens Variabilität zwischen Individuen; (b) verringern Sie die notwendige Zeit für Fliegen zu interagieren und erzeugen klare Dominanzverhältnisse (Männer); und (c) sicher zu induzieren stark genug behavioral Änderungen Bildung &quot;Verlierer&quot; Effekte erlauben. Dieses Protokoll beschreibt eine neue experimentelle Vorrichtung und ein schrittweises Vorgehen, um Aggressionen zu analysieren und die Bildung einer starken &quot;Verlierer&quot; Effekt in D. ermöglichen melanogaster. Wir erwarten, dass dieser Verhaltensvorrichtung leicht für die Untersuchung von anderen sozialen Verhaltensweisen, die von Fruchtfliegen zeigte angepasst werden.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="665">
	<tbody>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Drosophila melanogaster pupa</td>
			<td style="width:163px;">Bloomington Stock Center</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Standard fly food</td>
			<td style="width:163px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">Fabricated in-house.&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="84">
			<td height="84" style="height:84px;width:216px;">Behavioral chambers</td>
			<td style="width:163px;">Mike machine</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">Fabricated in-house. Directly&#160; contact the compagny for more informations.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Borosilicate glass vials</td>
			<td style="width:163px;">VWR International&#160;</td>
			<td style="width:119px;">47729-576</td>
			<td style="width:167px;">16 x 10 mm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Cotton</td>
			<td style="width:163px;">Fisherbrand</td>
			<td style="width:119px;">22-456-881</td>
			<td style="width:167px;">Any brand can be used</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Pasteur pipettes</td>
			<td style="width:163px;">VWR International&#160;</td>
			<td style="width:119px;">53300-567</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Paintbrush&#160;</td>
			<td style="width:163px;">Blick Art Material</td>
			<td style="width:119px;">06157-7030</td>
			<td style="width:167px;">Round , Size 3/0</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Toothpick</td>
			<td style="width:163px;">N/A</td>
			<td style="width:119px;">N/A</td>
			<td style="width:167px;">Any brand can be used</td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:216px;">Acrylic paint (blue/white)</td>
			<td style="width:163px;">Blick Art Material</td>
			<td style="width:119px;">01637-5172/01637-1022</td>
			<td style="width:167px;">Any brand can be used</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Dry active yeast</td>
			<td style="width:163px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">YSC2-500G</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Srew cap tube</td>
			<td style="width:163px;">VWR International&#160;</td>
			<td style="width:119px;">10011-394&#160;</td>
			<td style="width:167px;">15 mm diameter, 10 mm height</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Eppendorf</td>
			<td style="width:163px;">VWR International&#160;</td>
			<td style="width:119px;">22363212</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Tape</td>
			<td style="width:163px;">N/A</td>
			<td style="width:119px;">N/A</td>
			<td style="width:167px;">Any brand can be used</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Plastic slices</td>
			<td style="width:163px;">Electron Microscopy Sciences</td>
			<td style="width:119px;">70329-40</td>
			<td style="width:167px;">22 x 40 x 0.25 mm Thickness</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Light source (bulb)</td>
			<td style="width:163px;">VWR International&#160;</td>
			<td style="width:119px;">500003-418</td>
			<td style="width:167px;">Any brand can be used</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Timer</td>
			<td style="width:163px;">VWR International&#160;</td>
			<td style="width:119px;">62344-641</td>
			<td style="width:167px;">Any brand can be used</td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:216px;">Incubator</td>
			<td style="width:163px;">Percival</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">Directly contact the constructor for more informations.</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Carbon Dioxide Dry (CO2)</td>
			<td style="width:163px;">Medical-Technical Gases, Inc</td>
			<td style="width:119px;">14H31</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Binocular</td>
			<td style="width:163px;">Nikon</td>
			<td style="width:119px;">SMZ-745</td>
			<td style="width:167px;">Any brand can be used</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Camera (SONY Handycam&#160; HDR-CX330)</td>
			<td style="width:163px;">B&#38;H</td>
			<td style="width:119px;">SOHDRCX330B</td>
			<td style="width:167px;">Any brand can be used</td>
		</tr>
		<tr height="84">
			<td height="84" style="height:84px;width:216px;">Computer</td>
			<td style="width:163px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">With a minimum of 1.4 Ghz Processor, running Microsoft Windows or Machintosh HD</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">ClipWrap</td>
			<td style="width:163px;">Download online</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">Any importing software can be used</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">QuickTime Player</td>
			<td style="width:163px;">Download online</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">Any reading software can be used</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">GraphPad Software</td>
			<td style="width:163px;">Online</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">Any statistical software can be used</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a new approach that eliminates handling for studying aggression and the "loser" effect in drosophila melanogaster

Aggressives Verhalten in Drosophila melanogaster wird der sequentielle Expression der stereotype Verhaltensmuster zusammengesetzt (zur Analyse siehe 1). Dieses komplexe Verhalten durch genetische, hormonelle und Umweltfaktoren beeinflusst. Wie in vielen Organismen beeinflusst früheren Kampferfahrung die Kampfstrategie von Fliegen und das Ergebnis der späteren Wettbewerben: einem verlorenen Kampf erhöht die Wahrscheinlichkeit des Verlierens später Wettbewerbe und enthüllt &quot;Verlierer&quot; Auswirkungen, die wahrscheinlich beinhalten Lernen und Gedächtnis 2-4. Das Lernen und Gedächtnis, die die Expression von komplexen sozialen Verhaltensweisen wie Aggression begleitet, ist vor Test Umgang mit den Tieren 5,6 empfindlich. Vielen experimentellen Verfahren werden in verschiedenen Laboratorien verwendet, um Aggression 7-9 jedoch nicht routinemßig verwendete Protokoll das schließt Handhabung entfernt ist derzeit studieren. Hier berichten wir über eine neue Verhaltens Vorrichtung, die beseitigt Handhabung von Fliegen, mit instead ihre angeborene negativen geotactic Reaktionen auf Tiere in oder aus der Kampfkammern zu bewegen. In diesem Protokoll kleinen kreisförmigen Kampfarenen enthaltend ein Futternapf werden in zwei gleiche Hälften durch einen abnehmbaren Kunststoffschieber vor der Einführung der Fliegen unterteilt. Fliegen geben Kammern aus ihrer Heimat Isolierung Vials über Schleifkammertüren und Geotaxis. Nach dem Entfernen des Kunststoffgleitern, sind Fliegen frei zu interagieren. Nach bestimmten Zeitperioden werden entfernt wieder von Schiebereglern für die nachfolgenden Experimente getrennt. All dies wird leicht ohne Handhabung einzelner entfernt wurde. Dieses Gerät bietet einen neuartigen Ansatz zur Aggression und die damit verbundene Lernen und Gedächtnis, einschließlich der Bildung von &quot;Verlierer&quot; Effekte in fly Kämpfe zu studieren. Darüber hinaus kann dieses neue Mehrzweck-Verhaltens-Gerät verwendet, um andere soziale Verhaltensweisen von Fliegen lernen werden und sollte in der Regel sein, von Interesse für die Untersuchung von Erfahrungen im Zusammenhang mit Veränderungen in der grundlegenden Verhaltensprozesse.

Dieser Abschnitt stellt das Design des Verhaltenskammer und die Analyse eines typischen Satz von Verhaltensexperimenten im Anschluss an die oben genannten Mess Aggression und die Bildung einer &quot;Verlierer&quot; Effekt beschriebenen Protokoll. Ebenfalls dargestellt sind Proben von anderen Verhaltensweisen, die unter Verwendung dieser Vorrichtung gemessen werden kann. Figur 6 zeigt eine schematische Darstellung der neuen Vorrichtung. Das Gerät besteht aus drei zylindrisch...

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A New Approach that Eliminates Handling for Studying Aggression and the &quot;Loser&quot; Effect in Drosophila melanogaster

Während Fruchtfliege Kämpfe, die Verhaltensmuster beobachtet, kämpfen Dynamik, und die damit verbundenen Lern- und Gedächtnis werden von experimentellen Bedingungen beeinflusst. Die hier vorgestellte Protokoll beschreibt ein neues Verfahren, das vollständig eliminiert Handhabung von Fliegen während der Experimente. Dies verbessert Kampf Dynamik und ermöglicht die Bildung von starken &quot;Verlierer&quot; Effekte.

Ein neuer Ansatz, die Handhabung für ein Studium Aggression Eliminiert und die &quot;Loser&quot; Effect in<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Aggressive behavior in Drosophila melanogaster is composed of the sequential expression of stereotypical behavioral patterns (for analysis see 1). This ...

a-new-approach-that-eliminates-handling-for-studying-aggression-loser

Research

JoVE Journal

Neuroscience

A New Approach that Eliminates Handling for Studying Aggression and the "Loser" Effect in Drosophila melanogaster

9.5K Aufrufe.  Harvard Medical School.  Während Fruchtfliege Kämpfe, die Verhaltensmuster beobachtet, kämpfen Dynamik, und die damit verbundenen Lern- und Gedächtnis werden von experimentellen Bedingungen beeinflusst. Die hier vorgestellte Protokoll beschreibt ein neues Verfahren, das vollständig eliminiert Handhabung von Fliegen während der Experimente. Dies verbessert Kampf Dynamik und ermöglicht die Bildung von starken "Verlierer" Effekte. 

Serie: A New Approach that Eliminates Handling for Studying Aggression and the "Loser" Effect in Drosophila melanogaster

Single Sensillum Recordings in the Insects Drosophila melanogaster and Anopheles gambiae

The sense of smell is essential for insects to find foods, mates, predators, and oviposition sites3. Insect olfactory sensory neurons (OSNs) are enclosed in sensory hairs called sensilla, which cover the surface of olfactory organs. The surface of each sensillum is covered with tiny pores, through which odorants pass and dissolve in a fluid called sensillum lymph, which bathes the sensory dendrites of the OSNs housed in a given sensillum. The OSN dendrites express odorant receptor (OR) proteins, which in insects function as odor-gated ion channels4, 5. The interaction of odorants with ORs either increases or decreases the basal firing rate of the OSN. This neuronal activity in the form of action potentials embodies the first representation of the quality, intensity, and temporal characteristics of the odorant6, 7.
Given the easy access to these sensory hairs, it is possible to perform extracellular recordings from single OSNs by introducing a recording electrode into the sensillum lymph, while the reference electrode is placed in the lymph of the eye or body of the insect. In Drosophila, sensilla house between one and four OSNs, but each OSN typically displays a characteristic spike amplitude. Spike sorting techniques make it possible to assign spiking responses to individual OSNs. This single sensillum recording (SSR) technique monitors the difference in potential between the sensillum lymph and the reference electrode as electrical spikes that are generated by the receptor activity on OSNs1, 2, 8. Changes in the number of spikes in response to the odorant represent the cellular basis of odor coding in insects. Here, we describe the preparation method currently used in our lab to perform SSR on Drosophila melanogaster and Anopheles gambiae, and show representative traces induced by the odorants in a sensillum-specific manner.

Single Sensillum Recordings in the Insects Drosophila melanogaster and Anopheles gambiae

Electrophysiological responses of olfactory sensory neurons to odorants can be measured in insects using single sensillum recordings. In this video article we will demonstrate how to perform single sensillum recordings in the antennae of the vinegar fly (Drosophila melanogaster) and the maxillary palps of the malaria mosquito (Anopheles gambiae).

Einzel Sensillum Recordings in der Insekten Drosophila melanogaster Und Anopheles gambiae</em

The sense of smell is essential for insects to find foods, mates, predators, and oviposition sites3. Insect olfactory sensory neurons (OSNs) are enclosed ...

Forschung

Neurowissenschaften

Paired Nanoinjection and Electrophysiology Assay to Screen for Bioactivity of Compounds using the Drosophila melanogaster Giant Fiber System

Screening compounds for in vivo activity can be used as a first step to identify candidates that may be developed into pharmacological agents1,2. We developed a novel nanoinjection/electrophysiology assay that allows the detection of bioactive modulatory effects of compounds on the function of a neuronal circuit that mediates the escape response in Drosophila melanogaster3,4. Our in vivo assay, which uses the Drosophila Giant Fiber System (GFS, Figure 1) allows screening of different types of compounds, such as small molecules or peptides, and requires only minimal quantities to elicit an effect. In addition, the Drosophila GFS offers a large variety of potential molecular targets on neurons or muscles. The Giant Fibers (GFs) synapse electrically (Gap Junctions) as well as chemically (cholinergic) onto a Peripheral Synapsing Interneuron (PSI) and the Tergo Trochanteral Muscle neuron (TTMn)5. The PSI to DLMn (Dorsal Longitudinal Muscle neuron) connection is dependent on D&alpha;7 nicotinic acetylcholine receptors (nAChRs)6. Finally, the neuromuscular junctions (NMJ) of the TTMn and the DLMn with the jump (TTM) and flight muscles (DLM) are glutamatergic7-12. Here, we demonstrate how to inject nanoliter quantities of a compound, while obtaining electrophysiological intracellular recordings from the Giant Fiber System13 and how to monitor the effects of the compound on the function of this circuit. We show specificity of the assay with methyllycaconitine citrate (MLA), a nAChR antagonist, which disrupts the PSI to DLMn connection but not the GF to TTMn connection or the function of the NMJ at the jump or flight muscles.
Before beginning this video it is critical that you carefully watch and become familiar with the JoVE video titled "Electrophysiological Recordings from the Giant Fiber Pathway of D. melanogaster " from Augustin et al7, as the video presented here is intended as an expansion to this existing technique. Here we use the electrophysiological recordings method and focus in detail only on the addition of the paired nanoinjections and monitoring technique.

Paired Nanoinjection and Electrophysiology Assay to Screen for Bioactivity of Compounds using the Drosophila melanogaster Giant Fiber System

A rapid in vivo assay to test for neuromodulatory compounds using the Giant Fiber System (GFS) of Drosophila melanogaster is described. Nanoinjections in the head of the animal along with electrophysiological recordings of the GFS can reveal bioactivity of compounds on neurons or muscles.

Gepaart Nanoinjection und Elektrophysiologie-Test zum Screening auf Bioaktivität der Verbindungen unter Verwendung des Drosophila melanogaster Riesen-Fiber System

Screening compounds for in vivo activity can be used as a first step to identify candidates that may be developed into pharmacological agents1,2. We ...

Visualization of Proprioceptors in Drosophila Larvae and Pupae

Proprioception is the ability to sense the motion, or position, of body parts by responding to stimuli arising within the body. In fruitflies and other insects proprioception is provided by specialized sensory organs termed chordotonal organs (ChOs) 2. Like many other organs in Drosophila, ChOs develop twice during the life cycle of the fly. First, the larval ChOs develop during embryogenesis. Then, the adult ChOs start to develop in the larval imaginal discs and continue to differentiate during metamorphosis.
The development of larval ChOs during embryogenesis has been studied extensively 10,11,13,15,16. The centerpiece of each ChO is a sensory unit composed of a neuron and a scolopale cell. The sensory unit is stretched between two types of accessory cells that attach to the cuticle via specialized epidermal attachment cells 1,9,14. When a fly larva moves, the relative displacement of the epidermal attachment cells leads to stretching of the sensory unit and consequent opening of specific transient receptor potential vanilloid (TRPV) channels at the outer segment of the dendrite 8,12. The elicited signal is then transferred to the locomotor central pattern generator circuit in the central nervous system.
Multiple ChOs have been described in the adult fly 7. These are located near the joints of the adult fly appendages (legs, wings and halters) and in the thorax and abdomen. In addition, several hundreds of ChOs collectively form the Johnston's organ in the adult antenna that transduce acoustic to mechanical energy 3,5,17,4.
In contrast to the extensive knowledge about the development of ChOs in embryonic stages, very little is known about the morphology of these organs during larval stages. Moreover, with the exception of femoral ChOs 18 and Johnston's organ, our knowledge about the development and structure of ChOs in the adult fly is very fragmentary.
Here we describe a method for staining and visualizing ChOs in third instar larvae and pupae. This method can be applied together with genetic tools to better characterize the morphology and understand the development of the various ChOs in the fly.

Visualization of Proprioceptors in Drosophila Larvae and Pupae

A method to immunostain and visualize chordotonal organs in larvae and pupae of Drosophila melanogaster is described.

Visualisierung von Propriozeptoren in<em&gt; Drosophila</em&gt; Larven und Puppen

Proprioception is the ability to sense the motion, or position, of body parts by responding to stimuli arising within the body. In fruitflies and other ...

Determination of the Spontaneous Locomotor Activity in Drosophila melanogaster

Drosophila melanogaster has been used as an excellent model organism to study environmental and genetic manipulations that affect behavior. One such behavior is spontaneous locomotor activity. Here we describe our protocol that utilizes Drosophila population monitors and a tracking system that allows continuous monitoring of the spontaneous locomotor activity of flies for several days at a time. This method is simple, reliable, and objective and can be used to examine the effects of aging, sex, changes in caloric content of food, addition of drugs, or genetic manipulations that mimic human diseases.

Determination of the Spontaneous Locomotor Activity in Drosophila melanogaster

Drosophila melanogaster are useful in studying genetic or environmental manipulations that affect behaviors such as spontaneous locomotor activity.&#160; Here we describe a protocol that utilizes monitors with infrared beams and data analysis software to quantify spontaneous locomotor activity.&#160;

Bestimmung der spontanen lokomotorischen Aktivität in<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Drosophila melanogaster has been used as an excellent model organism to study environmental and genetic manipulations that affect behavior. One such ...

Straightforward Assay for Quantification of Social Avoidance in Drosophila melanogaster

Drosophila melanogaster is an emerging model to study different aspects of social interactions. For example, flies avoid areas previously occupied by stressed conspecifics due to an odorant released during stress known as the Drosophila stress odorant (dSO). Through the use of the T-maze apparatus, one can quantify the avoidance of the dSO by responder flies in a very affordable and robust assay. Conditions necessary to obtain a strong performance are presented here. A stressful experience is necessary for the flies to emit dSO, as well as enough emitter flies to cause a robust avoidance response to the presence of dSO. Genetic background, but not their group size, strongly altered the avoidance of the dSO by the responder flies. Canton-S and Elwood display a higher performance in avoiding the dSO than Oregon and Samarkand strains. This behavioral assay will allow identification of mechanisms underlying this social behavior, and the assessment of the influence of genes and environmental conditions on both emission and avoidance of the dSO. Such an assay can be included in batteries of simple diagnostic tests used to identify social deficiencies of mutants or environmental conditions of interest.

Straightforward Assay for Quantification of Social Avoidance in Drosophila melanogaster

Here, we present a protocol to quantify the avoidance of stressed individuals. This paradigm is powerful yet user-friendly and can be used to assess the influence of genes and environment on one kind of social interaction in Drosophila melanogaster.

Einfache Assay zur Quantifizierung von Sozialvermeidung in<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Drosophila melanogaster is an emerging model to study different aspects of social interactions. For example, flies avoid areas previously occupied by ...

Conditions Affecting Social Space in Drosophila melanogaster

The social space assay described here can be used to quantify social interactions of Drosophila melanogaster &#8212; or other small insects &#8212; in a straightforward manner. As we previously demonstrated 1, in a two-dimensional chamber, we first force the flies to form a tight group, subsequently allowing them to take their preferred distance from each other. After the flies have settled, we measure the distance to the closest neighbor (or social space), processing a static picture with free online software (ImageJ). The analysis of the distance to the closest neighbor allows researchers to determine the effects of genetic and environmental factors on social interaction, while controlling for potential confounding factors. Diverse factors such as climbing ability, time of day, sex, and number of flies, can modify social spacing of flies. We thus propose a series of experimental controls to mitigate these confounding effects. This assay can be used for at least two purposes. First, researchers can determine how their favorite environmental shift (such as isolation, temperature, stress or toxins) will impact social spacing 1,2. Second, researchers can dissect the genetic and neural underpinnings of this basic form of social behavior 1,3. Specifically, we used it as a diagnostic tool to study the role of orthologous genes thought to be involved in social behavior in other organisms, such as candidate genes for autism in humans 4.

Conditions Affecting Social Space in Drosophila melanogaster

The effect of genes and environment on social space of Drosophila melanogaster can be quantified through a powerful but straightforward analytical paradigm. We show here different factors that can affect this social space, and thus need to be taken into consideration when designing experiments in this paradigm.

Bedingungen, die sozialen Raum, in<em&gt; Drosophila melanogaster</em

The social space assay described here can be used to quantify social interactions of Drosophila melanogaster &#8212; or other small insects &#8212; in a ...

High-resolution Quantification of Odor-guided Behavior in Drosophila melanogaster Using the Flywalk Paradigm

In their natural environment, insects such as the vinegar fly Drosophila melanogaster are bombarded with a huge amount of chemically distinct odorants. To complicate matters even further, the odors detected by the insect nervous system usually are not single compounds but mixtures whose composition and concentration ratios vary. This leads to an almost infinite amount of different olfactory stimuli which have to be evaluated by the nervous system.
To understand which aspects of an odor stimulus determine its evaluation by the fly, it is therefore desirable to efficiently examine odor-guided behavior towards many odorants and odor mixtures. To directly correlate behavior to neuronal activity, behavior should be quantified in a comparable time frame and under identical stimulus conditions as in neurophysiological experiments. However, many currently used olfactory bioassays in Drosophila neuroethology are rather specialized either towards efficiency or towards resolution.
Flywalk, an automated odor delivery and tracking system, bridges the gap between efficiency and resolution. It allows the determination of exactly when an odor packet stimulated a freely walking fly, and to determine the animal&#180;s dynamic behavioral reaction.

High-resolution Quantification of Odor-guided Behavior in Drosophila melanogaster Using the Flywalk Paradigm

The automated tracking system Flywalk is used for high-resolution quantification of odor-guided behavior in Drosophila melanogaster.

Hochaufgelöste Quantifizierung der Geruchsgelenkten Verhalten in<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt; Verwenden der<em&gt; Flywalk</em&gt; Paradigm

In their natural environment, insects such as the vinegar fly Drosophila melanogaster are bombarded with a huge amount of chemically distinct odorants. To ...

A Behavioral Assay for Mechanosensation of MARCM-based Clones in Drosophila melanogaster

Because of the structural and functional homology to the hair cells of the mammalian inner ear, the neurons that innervate the Drosophila external sense organs provide an excellent model system for the study of mechanosensation. This protocol describes a simple touch behavior in fruit flies which can be used to identify mutations that interfere with mechanosensation. The tactile stimulation of a macrochaete bristle on the thorax of flies elicits a grooming reflex from either the first or third leg. Mutations that interfere with mechanotransduction (such as NOMPC), or with other aspects of the reflex arc, can inhibit the grooming response. A traditional screen of adult behaviors would have missed mutants that have essential roles during development. Instead, this protocol combines the touch screen with mosaic analysis with a repressible cell marker (MARCM) to allow for only limited regions of homozygous mutant cells to be generated and marked by the expression of green fluorescent protein (GFP). By testing MARCM clones for abnormal behavioral responses, it is possible to screen a collection of lethal p-element mutations to search for new genes involved in mechanosensation that would have been missed by more traditional methods.

A Behavioral Assay for Mechanosensation of MARCM-based Clones in Drosophila melanogaster

In order to identify novel mutations affecting mechanosensation, we designed an assay that measures the behavioral response to tactile stimulation of fly bristles in mutant clones generated by the MARCM method. The combination of techniques allows for the identification of mechanosensitive mutations that would otherwise be lethal.

Ein Verhaltenstest für Mechanosensation der MARCM-basierte Klonen in<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Because of the structural and functional homology to the hair cells of the mammalian inner ear, the neurons that innervate the Drosophila external sense ...

Foraging Path-length Protocol for Drosophila melanogaster Larvae

The Drosophila melanogaster larval path-length phenotype is an established measure used to study the genetic and environmental contributions to behavioral variation. The larval path-length assay was developed to measure individual differences in foraging behavior that were later linked to the foraging gene. Larval path-length is an easily scored trait that facilitates the collection of large sample sizes, at minimal cost, for genetic screens. Here we provide a detailed description of the current protocol for the larval path-length assay first used by Sokolowski. The protocol details how to reproducibly handle test animals, perform the behavioral assay and analyze the data. An example of how the assay can be used to measure behavioral plasticity in response to environmental change, by manipulating feeding environment prior to performing the assay, is also provided. Finally, appropriate test design as well as environmental factors that can modify larval path-length such as food quality, developmental age and day effects are discussed.

Foraging Path-length Protocol for Drosophila melanogaster Larvae

We provide a detailed protocol for a Drosophila melanogaster foraging path-length assay. We discuss the preparation and handling of test animals, how to perform the assay and analyze the data.

Futter suchen Pfad-Länge-Protokoll für<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt; Larvae

The Drosophila melanogaster larval path-length phenotype is an established measure used to study the genetic and environmental contributions to behavioral ...

A Simple Way to Measure Alterations in Reward-seeking Behavior Using Drosophila melanogaster

We describe a protocol for measuring ethanol self-administration in fruit flies (Drosophila melanogaster) as a proxy for changes in reward states. We demonstrate a simple way to tap into the fly reward system, modify experiences related to natural reward, and use voluntary ethanol consumption as a measure for changes in reward states. The approach serves as a relevant tool to study the neurons and genes that play a role in experience-mediated changes of internal state. The protocol is composed of two discrete parts: exposing the flies to rewarding and nonrewarding experiences, and assaying voluntary ethanol consumption as a measure of the motivation to obtain a drug reward. The two parts can be used independently to induce the modulation of experience as an initial step for further downstream assays or as an independent two-choice feeding assay, respectively. The protocol does not require a complicated setup and can therefore be applied in any laboratory with basic fly culture tools.

A Simple Way to Measure Alterations in Reward-seeking Behavior Using Drosophila melanogaster

We describe a protocol for inducing rewarding and nonrewarding experiences in fruit flies (Drosophila melanogaster) using voluntary ethanol consumption as a measure for changes in reward states.

Ein einfacher Weg zu messen Veränderungen in Reward-seeking Verhalten verwenden<em&gt; Drosophila melanogaster</em

We describe a protocol for measuring ethanol self-administration in fruit flies (Drosophila melanogaster) as a proxy for changes in reward states. We ...