I thank Dr Adamantios Mamais for extracting &#945;-synuclein from human tissue and running of blots. This work was supported in part by a MRC Grant (MR/L010933/1) and in part by the Wellcome Trust/MRC Joint Call in Neurodegeneration award (WT089698) to the UK Parkinson's Disease Consortium (UKPDC) whose members are from the UCL Institute of Neurology, the University of Sheffield and the MRC Protein Phosphorylation Unit at the University of Dundee. RB received funding from MJFox foundation for this work and is also funded by the Reta Lila Weston Trust.

Post-mortem-Gehirngewebe wurde für neurologische Erkrankungen zu Queen Square Hirnbank gespendet, University College London, Institut für Neurologie mit ethisch anerkannten Protokolle und für die Forschung unter einer Lizenz von der menschlichen Gewebe Behörde gespeichert (HTA) UK (Nr. 12198). Siehe Liste der Fälle, für dieses Protokoll (Tabelle 1) verwendet. 1. Herstellung der Puffer <ol><li> Bereiten 1X TBS (Tris-gepufferte Kochsalzlösung) Puffer: <ol><li> Vorbereitung 10X TBS als Stammlösung mit 500 mM Tris-HCl pH 7,4 und 1500 mM NaCl. <ol><li> Man wiegt 60,5 g Tris-Cl pH 7,6 und 87,6 g NaCl in 800 ml hochreinem Wasser. Der pH-Wert mit 1 M HCl und die endgültige Aktienvolumen um 1 L. </li></ol></li><li> Bereiten Sie die Endkonzentration von 1X TBS durch Verdünnen der Stamm 10-mal in destilliertem Wasser. </li><li> Add-Protease-Inhibitoren (PI), (1 Tablette pro 50 ml Puffer) und Phos-stop Phosphataseinhibitor Tabletten (1 Tablette pro 10 ml Puffer), umhebt die Auswirkungen der nicht-spezifischen enzymatischen Wirkungen von Proteasen und Phosphatasen. Anmerkung: Hier haben wir den Enzyminhibitor Tabletten aus Roche aber ebenso andere kommerziell verfügbare Inhibitoren können gemäß den Anweisungen des Herstellers verwendet werden, eingesetzt. </li></ol></li><li> Vorbereitung TBS-SDS-Puffer durch Zugabe von 5% w / v Natriumdodecylsulfat (SDS) auf 1X TBS (pH 7,4) Puffer. Die Lösung auf 60 ° C unter ständigem Rühren mit einem Magnetrührer wurden einer SDS löslich. </li><li> Vorbereitung TBS-SDS-Harnstoff-Puffer durch Zugabe von Harnstoff bis zu einer Endkonzentration von 8 M w / v bis 1X TBS-SDS-Puffer (pH 7,4). Die Lösung auf 60 ° C unter ständigem Rühren auf einem Magnetrührer zu Harnstoff aufzulösen. </li></ol> 2. Proben Homogenisierung und Differential Ultrazentrifugation Hinweis: Der folgende Teil der Arbeit beinhaltet Umgang mit menschlichem Gehirngewebe nach den Regeln des HTA UK. Lokale Standardarbeitsanweisungen sind an allen ti gefolgtmes. Gehirnproben werden aus gefrorenen Gehirn blockiert und Gewebematerial in einem microcabinet bei Unterdruck gehalten homogenisiert seziert. Einwegkittel Handschuhe, Gesichtsmasken, Überschuh-Protektoren und Schutzbrille sind während des gesamten Verfahrens tragen. Menschliches Gewebe Abfall wird nach dem Autoklavieren bei 121 ° C für 20 min für eine sichere Entsorgung verworfen. Sharps (Skalpellklingen) werden in einem geeigneten Behälter für scharfe Gegenstände für Rückhaltung und sichere Entsorgung angeordnet ist. <ol><li> Nehmen Sie ein Stück gefrorenes menschliches Gewebe (ca. 0,5 g Gewicht aus der Basalganglien-Region) und schnell in kleine Fragmente (ca. 1 mm 2) auf Eis mit einem kleinen Petrischale und ein steriles Skalpell Blatt vor den Mund. Verwenden Sie eine separate Petrischale und Skalpellklinge für jede Probe. Sammeln Sie das zerkleinerte Gewebe in einem 15-ml-Röhrchen und fügen Sie 10 Volumen eiskaltem 1xTBS Puffer in das Röhrchen. </li><li> Homogenisierung der Proben unter Verwendung eines mechanischen Homogenisators bei 20.000 Upm für 10 sec. Abkühlen auf Eis für 2 min. Wiederholen Sie diesen Schritt drei Zeits. Anmerkung: Dies ist so, dass die Proben nicht unter Homogenisieren erhitzt. </li><li> Klärung durch Zentrifugation bei 1.000 xg für 5 Minuten bei 4 ° C. Entsorgen Pellets von nicht-homogenisierte Material. </li><li> Nehmen Stand (Rohhomogenat), in den Zentrifugenröhrchen (Größe des Rohres hängt von Rotorgröße) Polycarbonat und Waage vorsichtig. Zentrifuge bei 100.000 × g für 1 h bei 4 ° C. </li><li> Behalten Stand als dies der TBS-löslichen Fraktion. </li><li> Waschen Sie das Pellet zweimal in fünf Volumen 1X TBS Puffer und Zentrifuge jedesmal bei 100.000 xg für 15 min bei 4 ° C. Die Überstände verwerfen. <ol><li> Resuspendieren endgültige Pellet durch Beschallung des Pellets für 10 Sekunden bei 20 kHz in etwa 5 Volumen 1X TBS-SDS bei RT. Anmerkung: Vor der Zugabe des SDS enthaltenden Puffer Proben bei 10 ° C gebracht werden, um eine Ausfällung zu vermeiden SDS. </li><li> Ultrazentrifuge bei 100,000 × g für 30 min bei 25 ° C. </li></ol></li><li> Bewahren Überstand, wie das ist the SDB-löslichen Fraktion. <ol><li> Waschen Sie das Pellet zweimal in 5 Volumina 1X TBS-SDS-Puffer bei RT. Zentrifuge jedesmal bei 100.000 xg für 15 min bei 25 ° C. </li><li> Solubilisierung des letzte Pellet in 50 ul 1X TBS-SDS-Harnstoff-Puffer unter Verwendung eines Ultraschallgeräts in 20 KHz für 10 Sekunden eingestellt, um eine vollständige Auflösung zu erreichen; dies wird den Harnstoff lösliche Fraktion bezeichnet. </li></ol></li><li> Assay jede Fraktion auf den Gesamtproteingehalt unter Verwendung eines kommerziellen Protein-Assay-Kit nach Herstellerprotokoll. Verdünnter TBS-SDS-Harnstoff-Proben 1: 1 mit 1X TBS-Puffer, um die Kompatibilität mit der Protein-Assay-Reagenzien zu ermöglichen. Freeze-Proben in kleinen Aliquots (20 ul) bei -80 ° C, um Einfrieren und Auftauen zu reduzieren. Anmerkung: Zusatz von 10% Glycerin, um Proben für die langfristige Lagerung empfohlen bei -80 ° C. </li></ol> 3. Immunoblotting von Proben und analysieren Ergebnisse <ol><li> Führen Sie Proben von TBS, TBS-SDS und TBS-SDS-Urea-Extrakte auf 10-Well-4-12% Bis-Tris-Polyacrylamidgelmit MOPS als Laufpuffer Verwendung von Standardtechniken. Siehe Gallagher und Chakravarti (2008) 29 für eine detaillierte Western-Blot-Protokoll. </li><li> Last 10 ug Protein aus jeder Probe auf jeder Spur zusammen mit einem Molekulargewichtsmarker für TBS und SDS und Harnstoff-Fraktionen. </li><li> Laufen Gel bei 200 V für 1 Stunde oder bis die blaue Farbe von Ladepuffer den Boden des Gels erreicht hat. </li><li> Transferproteine ​​aus Gelen elektrophoretisch auf Nylonmembranen 28, zuerst in 100% Methanol und dann vorbenetzt in Transferpuffer, der 20% Methanol. Geben Sie ein Kennzeichen auf dem Blot, um das Protein Seite und die Orientierung der Molekulare Größenmarker zu bestimmen. <ol><li> Sandwich des Gels mit der Membran neben feuchtem Filterpapier. Korrekte Platzierung der Membran entscheidend ist mit der Membran zwischen dem Gel und der Anode. Führen Sie den Transfer für 2 h bei 40 V. </li><li> Make up 1X PBS-Tween (1X PBS-T) Puffer: Man löst 1 Tablette PBS in 200 mlWasser unter Bildung von 0,01 M Phosphatpuffer, 0,0027 M Kaliumchlorid und 0,137 M Natriumchlorid, pH 7,4. </li><li> Blockieren die Membran in 5% BSA-Lösung in 1X PBS-T für 30 min mit 70 UpM schüttelnd. Dies verhindert, dass nicht-spezifische Bindung des primären Antikörpers an die Membran. </li></ol></li><li> Sonde, die das Protein-Blot mit 6 ml α-syn Primärantikörper Syn-1 (BD Biosciences, monoklonaler Maus-Antikörper) bei 1: 750 Verdünnung (O / N bei 4 ° C), gefolgt durch eine Reihe von Waschungen mit 1X PBS-T ( 3 x je 5 min) 28. </li><li> Inkubieren des Blots mit dem geeigneten HRP konjugierten sekundären Antikörper bei einer 1: 2.000-Verdünnung für 30 min. Durchführen einer Reihe von Waschvorgängen (3 x je 5 min) mit 1 × PBS-T. <ol><li> Tauchen Blots in verstärkten Chemilumineszenz-Lösung für 15 Sekunden in einem dunklen Raum. Abdeckung Blots mit einer Klarsichtfolie und Ort Autoradiographie-Filme gegen den Blot mit Proteinseite nach oben in einer lichtdichten Kassette die entsprechenden Signale (angemessene Größe Bänder) zu erfassen. </li><li> Entwickeln Autoradiographie Filme in einem automatischen Entwickler. Hinweis: Flecken kann auch manuell unter Verwendung der Entwickler und Fixierer aus einer kommerziellen Quelle, falls ein automatisiertes Entwicklersystem nicht verfügbar ist entwickelt werden. </li></ol></li><li> Inkubieren Sie die Western-Blot mit 6 ml Western-Blot-Stripping-Puffer für 10 Minuten unter konstantem Schütteln, um die Blot von α-syn-Antikörper Signalstreifen. Führen Sie die Schritte durch, um 3.43 3.6.2 Verwendung von beta-Actin primären Antikörpers (monoklonaler Maus) bei 1: 8.000-Verdünnung. </li><li> Scannen und konvertieren Sie das endgültige Bild in ein TIFF-Bild und messen Dichten mit NIH ImageJ zur Quantifizierung Zwecke (eine kostenlose Software zum Download). Hinweis: Die Software ermöglicht das Lesen der Dichten der relativen Fläche von Interesse (die entsprechende Größe Bänder) und die Daten können ausgedrückt werden entweder als ein Verhältnis der α-syn Dichte / β-Actin (a house-keeping Gen) als willkürliche Einheiten oder eine eigene, wenn ein Housekeeping-Gen nicht gültig ist (wie im Falle von Harnstoff-lösliche Proben). </li&gt; </ol>

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J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+method+for+quantitative+immunoblotting+of+endogenous+&#945;-synuclein.">A new method for quantitative immunoblotting of endogenous &#945;-synuclein.</a> PLoS ONE. 8 (11), e81314 (2013).</li></ol>

Der Autor hat nichts zu offenbaren.

Dieser Artikel beschreibt eine biochemische Protokoll für die Extraktion und Untersuchung der unterschiedlichen Löslichkeit Eigenschaften der monomeren, oligomeren und aggregiert α-syn von erkrankten Gehirnen mit Denaturierungsgel Laufbedingungen. Dies ist eine gut etablierte Technik zum Studium aggregierten α-syn 17, 18, ​​20, 21 ein Protein, das normalerweise in seiner nativen Form löslich ist, jedoch gewinnen amyloidogenen oder erhöhte Aggregationseigenschaften mit Fortschreiten der Erkrankung oder mit genetischen Mutationen. Dennoch haben einige Gruppen leichte Variationen in SDS-Konzentrationen in ihrem Puffer verwendet (8% oder 10% statt 5%) 21,22, 30. Der SDS ist ein anionisches Detergens und solubilisiert α-syn-Oligomere, die Membran-gebundene Formen umfassen kann α-syn, während Harnstoff denaturiert ein chaotropes Reagenz der unlöslichen aggregiert und fibrillären oder amyloidogenen Formen von α-syn 20. In diesem Zusammenhang eine systematische Untersuchung von Paleologou et al 31 untersucht die Stabilitätvon α-syn-Oligomeren und Fibrillen mit unterschiedlichen Konzentrationen an Harnstoff (6,5-8 M) oder SDS (0,25-2%) und berichtet, daß Oligomere in SDS-Konzentrationen stabil, aber nicht mit hohen Konzentrationen an Harnstoff. Ihre Fila-1-Antikörper, der spezifisch für α-syn-Oligomeren und Fibrillen detektiert höheren Konzentrationen von Fibrillen mit 6,5 M Harnstoffkonzentrationen unter nicht-denaturierenden Bedingungen. Die Pufferkonzentrationen in diesem Protokoll verwendet genau widerspiegelt, was in Culvenor et al. (1999) 32. Die anatomischen Hirnregionen für biochemische Extraktion der unlöslichen α-syn sollten sorgfältig ausgewählt werden und dies sollte α-syn LB und LN Belastung widerspiegeln, je nach Fortschreiten der Krankheit 33,34. Die hier verwendeten Fälle sind Basalganglien Proben aus den Neokortex und limbischen Subtypen von PD spät und Zwischenstufen der PD Progression nach McKeith reflektierenden ctriteria 34. Am Queen Square Hirnbank, die eine Hälfte des Gehirnsroutinemßig in Formalin für die histochemische Analyse fixiert und die andere Hälfte wird vorsichtig in verschiedenen anatomischen Bereichen seziert und schockgefroren und bei -80 o C Gefrierschränke für weitere biochemische und DNA / RNA-Analyse Untersuchungen gelagert. Nach Formalinfixierung der Gehirne und Dissektion von Neuropathologen, wird Immunhistochemie unter Verwendung α-syn-Antikörper und Ergebnisse archiviert. Auch als Routineverfahren wird der pH-Wert der Hirngewebe bei der Ankunft als Maß agonal Stand der Hirngewebe gemessen. Dies bildet eine solide Grundlage für die Qualität der Gewebekonservierung für die biochemische Analyse. Unsere Daten zeigen, dass hier gibt es mehr SDS lösliche α-syn-Monomer in PD Fällen im Vergleich zu Kontrollen; insbesondere die neokortikalen PD Fällen hat im Vergleich zum limbischen PD Vielzahl höheren α-syn Last. Die neokortikalen Fälle stellen größere Progression von PD α-syn Pathologie in den Neokortex Regionen wie den frontalen und parietalen corTices 33,34. Das limbische PD Fällen haben höhere LB Ticker im basalen Vorderhirn / limbischen Regionen Bereichen wie der Amygdala, transentorhinal und cinguli Regionen. Für aussagekräftige Daten und statistische Analysen, muss man mindestens 4 Fällen von jeder Kohorte laufen. Ebenso haben wir eine statistische Analyse der Blot hier vorgestellten Daten nicht versucht. Es muss auch darauf hingewiesen, dass verschiedene Antikörper können verschiedene Formen / Zusammensetzung der höheren Ordnung α-syn Oligomere erkennen und jedes kann seine eigene relative Sensitivität und Präferenz haben werden. Dies ist aus den Ergebnissen von 29 Tong et al., Wo sie zeigen, dass die 4 verschiedenen α-syn-Antikörpern (Syn-1, SS, Onco und LB509) erhalten veränd Ergebnisse zumindest für α-syn-Oligomere / Aggregate. Die α-syn-Monomere wurden in ähnlichem Ausmaß von allen 4 Antikörpern erkannt obwohl diese Abweichung abhängig davon, ob die α-syn Antikörperepitop befindet sich entweder in der N-terminalen oder C haben-terminalen 29. Ähnlich spezifische Antikörper für phospho-alpha-Synuclein bestimmen verschiedene hochmolekulare α-Synuclein Spezies 20,21. In dem hier beschriebenen Protokoll, das hoch gekennzeichnet Antikörper Syn-1 verwendet wurde, 19-21. Jedoch ist es wichtig zu berücksichtigen, die Validierung jedes neue Antikörper auf Western-Blots durch Antikörper Präabsorption Versuchen sowie Überexpression und Zuschlags des Proteins in den Zellen. Es ist wichtig, andere Variationen, die von den Forschern angewendet wurden betrachten, um kleinere Fragmente α-syn und tetrameren oder instabilen α-syn Formen zu bestimmen. Dies könnte mild-Fixierung von Membranen mit 0,4% PFA in PBS auf verkürzte Formen von α-syn 35 oder Behandlung von Proben Homogenate mit Vernetzer behalten zu stabilisieren Tetramere 36 gehören. Genaue biochemischen Auswertung von Proteinen unter Verwendung von Post-mortem-tiUSGABE erfordert die Minimierung der enzymatischen Proteinabbau und Veränderung. Es ist daher ratsam, um Gewebe mit den kürzesten post-mortem Verzögerungen innerhalb der Fallkohorten zu verwenden und / oder wählen Sie abgestimmte Proben. Immunhistochemie unter Verwendung von Standardantikörper für α-syn Immunhistochemie sollte vor Beginn der Isolierungsprotokoll durchgeführt werden. Das Ausmaß der α-syn-Pathologie ist sehr variabel und können entsprechend ausgewählten Regionen variieren. Es ist ratsam, Regionen mit reichlich Pathologie als eine positive Kontrolle für eine optimale Ausbeute bei jedem Durchlauf auszuwählen. Die Verwendung von Protease-Inhibitoren und ggf. Phosphataseinhibitoren unerwünschten enzymatischen Abbau zu verhindern, nach der Freigabe von intrazellulären Proteasen oder Phosphatasen während Zelllyse vorkommende und Aufrechterhalten der Proben bei 4 &amp; deg; C ist entscheidend. Wichtig ist, daß alle Proben innerhalb der Charge von Experimenten sind gleichmäßig und einheitlich behandelt werden, um intra-Benutzer Variationen zu vermeiden; Mehrfach freEZE-Auftau-Zyklen zu vermeiden, da diese potenziell posttranslationale Modifikationen wie Phosphorylierung zurückzuziehen. Ein kritischer Punkt zu bedenken, bei der Prüfung einer großen Anzahl von Proben ist, dass die Daten von Immunoblots sollten normalisiert werden, um eine Probe, die parallel zu allen anderen Proben auf den Gelen, und alle zu dieser Probe referenzierten Daten ausgeführt werden soll. Dies geschieht, um eine Normalisierung der Immunoblot Daten zwischen mehreren Blots gewährleisten. Dies ist die in unserer aktuellen Studie 22 angewandte Methode. Es sei darauf hingewiesen, dass, um die Hintergrund ECL gering zu halten, werden die Blots nicht zu jeder Zeit während der Western-Blot-Protokoll austrocknen werden. Darüber hinaus sollte sehr lange Belichtungszeiten (&gt; 10 min) auf Autoradiographie Filmen vermieden werden, da dies zu einer Sättigung des ECL-Signals führen und zu ungenauen Quantifizierung führen. Das obige Protokoll ist eine relativ einfache Technik mit gemeinsamen Laborreagenzien und inInstrumente und können ein wertvolles Werkzeug für die Untersuchung der Pathophysiologie der α-syn-Protein in PD Forschung sein. Diese Methode kann nicht nur mit entsprechenden Änderungen in der Untersuchung der α-syn Biologie in α-syn transgenen Tieren, sondern auch für andere neurodegenerative Erkrankungen mit abnormalen Ablagerungen von aggregierten Proteinen, wie AD, MSA, DLB, HD und frontotemporaldementias verlängert. Jedoch sind die hier beschriebenen Western-Blot-Daten könnten auch unter Verwendung von Enzym-Immuntests unter Verwendung von Antikörpern für spezifische Formen von α-syn-31 geprüft.

Eine der wichtigsten pathologischen gemeinsam unter mehreren neurodegenerativen Erkrankungen Merkmale ist die Bildung von abnormen Proteinaggregaten, die in einem Protein / krankheitsspezifische Weise 1 auftritt. Somit gibt es die charakteristischen extran Amyloid-beta-Plaques und aggregierte hyperphosphoryliertem tau Ablagerungen in Neuronen bei Alzheimer-Krankheit (AD); die aggregierten α-syn Ablagerungen in Lewy-Körperchen (innen), die intraneuronalen Einschlüsse sind, und auch innerhalb dystrophischen neuronale Prozesse namens Lewy Neuriten (LK) in PD, PD Demenz und Demenz mit Lewy-Körperchen (DLBS) 2-4. Abnormal α-syn Kautionen werden auch im Markenzeichen Läsionen der Glia-zytoplasmatische Einschlüsse in MSA 5 zu sehen. Huntington-Krankheit, gibt es die charakteristischen Poly-Q Ablagerungen und abnorme Tar DNA-Bindungsprotein-43 und in Sarkom Proteine ​​(FUS) fusioniert sind in frontotemporalen Demenzen abgeschieden. Wichtig für PD haben α-syn-Gen-Mutationen zu cau gefundense autosomal dominant PD 6-11. Zusätzlich α-syn-Gen Verdreifachung 12 und Vervielfältigung 13 verursacht auch familiären PD was eine Verknüpfung erhöhte α-syn-Expression auf die Pathomechanismen der PD. Bemerkenswert ist, bergen sowohl sporadischen und familiären PD Fällen anomale Vorkommen von α-syn Pathologie 14. Aktuell verfügbare Behandlungen für PD sind nur palliative und haben keine Auswirkungen auf die Eindämmung oder Verzögerung des unaufhaltsamen Fortschreiten der Krankheit. α-syn ist reichlich im Gehirn exprimiert und macht etwa 1% des Gesamthirnprotein. Es ist gegenwärtig insbesondere in den Neuronen, kann aber, wenn auch in geringeren Mengen in Gliazellen existieren. Ein strittiger Punkt ist die native Struktur des α-syn, die als Zufalls Monomers 15 oder als gefaltete Tetramer 16 existieren kann. Bei Erkrankung, Änderung α-syn seine Konformation, die es fehlgefaltetem erhalten können, und dieses Verfahren wird angenommen, dass die Ursache der Krankheit sein pathogeNesis. Trotz mehrjähriger Untersuchungen der pathophysiologische Aspekte der α-syn und Krankheit sind die genauen Ursachen der Krankheitsmechanismen schwer fassbaren 14 geblieben. Studien unter Verwendung von Post-mortem-Analyse der Parkinson-Gehirn bisher vorgesehen wichtige Hinweise in Bezug auf normale und abnormale Biologie der α-syn sowohl bei sporadischen PD und PD Mutationen im LRRK2-Gen 17-22 verbunden. Hier wird eine biochemische Extraktionsprotokoll (siehe Schema in Abbildung 1 dargestellt) für die immer unlösliche α-syn Ablagerungen aus menschlichem post-mortem Gehirngewebe PD, die α-syn-Aggregate in unterschiedlichem Ausmaß beherbergen beschrieben worden. Diese Technik kann auch mit Modifikationen in Pufferzusammensetzungen zu aggregierten Proteine ​​von anderen neurodegenerativen Erkrankungen 23,24 untersuchen und auch von transgenen Tierhirngewebe 25-27 angepasst werden. Das wichtigste Kriterium für den Anpassungen sind die Unterschiede in solubikeit und die Gesamtmengen der jeweiligen Proteine, von denen einige vor allem Kernenergie und kann Hochsalzpuffer muss für eine optimale Extraktion wie für FUS 28 dargestellt.

<table><tbody><tr><td>Tris-HCL</td><td>Sigma</td><td>T5912</td><td></td></tr><tr><td>sodium chloride</td><td>VWR</td><td>27800.291</td><td></td></tr><tr><td>SDS</td><td>Fluka</td><td>71727</td><td></td></tr><tr><td>Urea</td><td>Sigma</td><td>U5378</td><td></td></tr><tr><td>Protease inhibitor tablets&amp;nbsp;</td><td>Roche</td><td>04 693 116001</td><td></td></tr><tr><td>Phosphatase inhibitor tablets&amp;nbsp;</td><td>Roche&amp;nbsp;</td><td>04 906 837001</td><td></td></tr><tr><td>Phosphate buffered saline tablets&amp;nbsp;</td><td>Sigma&amp;nbsp;</td><td>P4417</td><td></td></tr><tr><td>Tween-20&amp;nbsp;</td><td>Sigma</td><td>P9416</td><td></td></tr><tr><td>NuPAGE MOPS SDS running buffer</td><td>Invitrogen</td><td>NP0001</td><td></td></tr><tr><td>NuPAGE transfer buffer</td><td>Invitrogen</td><td>NP0006-1</td><td></td></tr><tr><td>Hybond-P membrane&amp;nbsp;</td><td>GE Healthcare</td><td>RPN303F</td><td></td></tr><tr><td>Whatman 3MM filter paper</td><td>Sigma</td><td>WHA30306185</td><td></td></tr><tr><td>Bis-tris gels 4-12%&amp;nbsp;</td><td>Invitrogen&amp;nbsp;</td><td>NP0322BOX</td><td></td></tr><tr><td>Supersignal West Pico Chemiluminescent substrate</td><td>Pierce</td><td>34080</td><td></td></tr><tr><td>Bio-RAD DC protein assay kit&amp;nbsp;</td><td>Bio-Rad</td><td>500-0112</td><td></td></tr><tr><td>Thickwall Beckman Polycarbonate tubes</td><td>Beckman</td><td>355630</td><td></td></tr><tr><td>Western blot stripping buffer</td><td>Thermo scientific</td><td>46430</td><td></td></tr><tr><td>Syn-1 primary antibody (mouse monoclonal)</td><td>BD Biosciences</td><td>610786</td><td></td></tr><tr><td>beta-actin primary antibody (mouse monoclonal&amp;nbsp;</td><td>Sigma</td><td>A5441</td><td></td></tr><tr><td>HRP cojugated goat anti-mouse secondary antibody</td><td>Santa Cruz</td><td>sc-2031</td><td></td></tr><tr><td>Bovine serum albumin</td><td>Sigma</td><td>A7030</td><td></td></tr><tr><td>Instrument</td><td>Company</td><td>Rotor/ model no&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Benchtop Ultracentrifuge Optima Max</td><td>Beckman</td><td>MLA-80</td><td></td></tr><tr><td>Sonicator</td><td>Heat Systems</td><td>XL20-20</td><td></td></tr><tr><td>Homogeniser</td><td>Jenke and Kunkel</td><td>TP18/10</td><td></td></tr></tbody></table>

sequential extraction of soluble and insoluble alpha-synuclein from parkinsonian brains

Alpha-Synuclein (α-syn) Protein ist reichlich hauptsächlich in Neuronen exprimiert wird, und kommt in einer Reihe von verschiedenen Formen - Monomere, Tetramere, Oligomeren und Fibrillen. Während der Krankheit, α-syn erfährt Konformationsänderungen zu Oligomeren und Aggregaten mit hohem Molekulargewicht, die das Protein mehr unlöslich zu machen sind in der Regel zu bilden. Ungewöhnlich aggregierten α-syn ist ein neuropathologischen Merkmal der Parkinson-Krankheit (PD), Demenz mit Lewy-Körperchen (DLB) und Multisystematrophie (MSA). Biochemischen Charakterisierung und Analyse von unlöslichen α-syn unter Verwendung von Puffern mit zunehmender Waschmittelfestigkeit und Hochgeschwindigkeits-Ultrazentrifugation stellt ein leistungsfähiges Werkzeug, um die Entwicklung von α-syn Pathologie, die mit Fortschreiten der Krankheit assoziiert zu bestimmen. Dieses Protokoll beschreibt die Isolierung von immer unlösliche / aggregierten α-syn aus post-mortem menschlichem Gehirngewebe. Diese Methode kann mit Modifikationen Untersuchungen normaler und abnormaler α angepasst werden-syn Biologie in transgenen Tiermodellen Beherbergen verschiedener α-syn-Mutationen sowie in anderen neurodegenerativen Krankheiten, die aberrant fibrillären Ablagerungen von Proteinen, um ihre jeweiligen Pathologien ähnliche Funktion.

TBS, SDS und Harnstoff lösliche Proteine ​​aus Basalganglien nach dem in Figur 1 dargestellten Protokolls extrahiert wurden auf Gelen laufen gelassen und mit dem Syn-1 monoklonalen Maus-α-syn primären Antikörper immungeblottet. Die TBS löslichen Fraktionen zeigten die Anwesenheit von monomeren α-syn (~ 14 kDa-Spezies) im PD und Kontrollfällen untersucht (Abbildung 2A). Die SDS löslichen Fraktionen zeigten auch reichlich monomeren α-syn in allen drei Subtypen von Fällen untersucht, wie in der geringen Exposition Blot (2C) angezeigt. Die PD Fällen zeigte auch höheres Molekulargewicht (MW) α-syn-Spezies auf der hohen Belichtungs Blot gesehen, die wahrscheinlich Oligomere (2C) sind. Der Harnstoff lösliche Fraktionen von PD Fälle zeigten erhöhte Mengen an α-syn-Monomere, Oligomere und im Vergleich zu Fällen zu steuern aggregierten Spezies. Die neokortikalen idiopathischer PD Fälle zeigen höhere Mengen an AGGREG<html> ATED α-syn-Spezies, während die limbischen Fälle zeigen Zwischenstufen von unlöslichen α-syn. Sowohl die SDS und Harnstoff-Fraktionen aus idiopathischer PD Fälle zeigen variable Ebenen der abgeschnittenen α-syn-Produkte bei 12 kDa und 6 kDa wie beschrieben 20. Im Gegensatz dazu die Steuer Fällen keine unlöslichen oder aggregierten α-syn (2E) zu zeigen. Semi-quantitative Dichte Maßnahmen spiegeln die Menge der LB Last categoriesd mit α-syn Immunhistochemie was die unlösliche Natur der aggregierten α-syn (2B, 2D, 2F) im Neokortex und limbischen PD Fällen. <img alt="Abbildung 1" src="/files/ftp_upload/53415/53415fig1.jpg" /> Abbildung 1. Schematische Darstellung der unlöslichen α-syn-Extraktionsverfahren.rget = &quot;_ blank&quot;&gt; Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen. <img alt="Figur 2" src="/files/ftp_upload/53415/53415fig2.jpg" /> Abbildung 2. Repräsentative Immunoblots von α-syn Stufen von PD und menschlichem Gewebe zu steuern. TBS, SDS und Harnstoff löslichen Fraktionen von Basalganglien (einer Region, die α-syn Pathologie birgt in PD Fälle) der idiopathischen PD Fälle und neurologisch normalen (Kontroll-) Gehirne wurden auf die Anwesenheit von α-syn mit Western Immunoblot analysiert. 10 ug Protein wurde auf jede Spur geladen. In TBS, die Anteile (A), hauptsächlich α-syn-Monomere sind in allen Fällen vorhanden. In SDS-Fraktionen (C), werden einige Oligomere von α-syn zusammen mit Monomeren, die hauptsächlich in der PD Gewebe gesehen. In Harnstoff-Fraktionen (C), Monomere, Oligomere und aggregierte α-syn variabel in der PD Fällen reflectin exprimiertg jeweiligen LB Last. Die neurologisch normalen Kontrollproben zeigen die Gegenwart von nur geringen Mengen an monomeren α-syn. Bitte beachten Sie mögliche Abbauprodukte von α-syn sind in einem Teil der Fälle mit hoher LB Last gesehen. Der feste Pfeilspitze stellt den monomeren Form des α-syn. Der * möglicherweise eine C-terminal verkürzte Form von α-syn, wie zuvor beschrieben 20,26. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53415/53415fig2large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> <table fo:keep-together.within-page="1"><tbody><tr><td> Fall </td><td> Sex </td><td> alter Jahre </td><td> Post-mortem-Verzögerung (Stunden) </td><td> pH-Wert des Gewebes </td></tr><tr><td> Neokortikalen 1 </td><td> M </td><td> 82 </td><td> 40 </td><td> 6.3 </td></tr><tr><td> Neokortikalen 2 </td><td> F</td><td> 75 </td><td> 35,3 </td><td> 6.4 </td></tr><tr><td> Limbic 1 </td><td> M </td><td> 81 </td><td> 28,5 </td><td> 6.2 </td></tr><tr><td> Limbic 2 </td><td> F </td><td> 79 </td><td> 36,5 </td><td> 6.2 </td></tr><tr><td> Control 1 </td><td> M </td><td> 80 </td><td> 38 </td><td> 6.1 </td></tr><tr><td> Control 2 </td><td> F </td><td> 83 </td><td> 32,5 </td><td> 6.3 </td></tr></tbody></table> Tabelle 1 Begrenzte Demographie der Fälle verwendet

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Sequential Extraction of Soluble and Insoluble Alpha-Synuclein from Parkinsonian Brains

Here, we present a protocol for the isolation of increasingly insoluble/aggregated alpha-synuclein (&#945;-syn) from post-mortem human brain tissue. Through the utilization of buffers with increasing detergent strength and high-speed ultracentrifugation techniques, the variable properties of &#945;-syn aggregation in diseased and non-diseased tissue can be examined.

Sequentielle Extraktion von löslichen und unlöslichen Alpha-Synuclein von Parkinson-Brains

Alpha-synuclein (&#945;-syn) protein is abundantly expressed mainly within neurons, and exists in a number of different forms - monomers, tetramers, ...

sequential-extraction-soluble-insoluble-alpha-synuclein-from

Research

JoVE Journal

Neuroscience

17.1K Aufrufe.  UCL Institute of Neurology. Here, we present a protocol for the isolation of increasingly insoluble/aggregated alpha-synuclein (α-syn) from post-mortem human brain tissue. Through the utilization of buffers with increasing detergent strength and high-speed ultracentrifugation techniques, the variable properties of α-syn aggregation in diseased and non-diseased tissue can be examined.

Serie: Sequential Extraction of Soluble and Insoluble Alpha-Synuclein from Parkinsonian Brains

Enrichment of Detergent-insoluble Protein Aggregates from Human Postmortem Brain

In this study, we describe an abbreviated single-step fractionation protocol for the enrichment of detergent-insoluble protein aggregates from human postmortem brain. The ionic detergent N-lauryl-sarcosine (sarkosyl) effectively solubilizes natively folded proteins in brain tissue allowing the enrichment of detergent-insoluble protein aggregates from a wide range of neurodegenerative proteinopathies, such as Alzheimer&#39;s disease (AD), Parkinson&#39;s disease and amyotrophic lateral sclerosis, and prion diseases. Human control and AD postmortem brain tissues were homogenized and sedimented by ultracentrifugation in the presence of sarkosyl to enrich detergent-insoluble protein aggregates including pathologic phosphorylated tau, the core component of neurofibrillary tangles in AD. Western blotting demonstrated the differential solubility of aggregated phosphorylated-tau and the detergent-soluble protein, Early Endosome Antigen 1 (EEA1) in control and AD brain. Proteomic analysis also revealed enrichment of &#946;-amyloid (A&#946;), tau, snRNP70 (U1-70K), and apolipoprotein E (APOE) in the sarkosyl-insoluble fractions of AD brain compared to those of control, consistent with previous tissue fractionation strategies. Thus, this simple enrichment protocol is ideal for a wide range of experimental applications ranging from Western blotting and functional protein co-aggregation assays to mass spectrometry-based proteomics.

An abbreviated fractionation protocol for the enrichment of detergent-insoluble protein aggregates from human postmortem brain is described.

Anreicherung von Waschmittel-unlösliche Aggregate von Post-mortem Gehirn

In this study, we describe an abbreviated single-step fractionation protocol for the enrichment of detergent-insoluble protein aggregates from human ...

Forschung

Biochemie

Novel Atomic Force Microscopy Based Biopanning for Isolation of Morphology Specific Reagents against TDP-43 Variants in Amyotrophic Lateral Sclerosis

Because protein variants play critical roles in many diseases including TDP-43 in Amyotrophic Lateral Sclerosis (ALS), alpha-synuclein in Parkinson&#8217;s disease and beta-amyloid and tau in Alzheimer&#8217;s disease, it is critically important to develop morphology specific reagents that can selectively target these disease-specific protein variants to study the role of these variants in disease pathology and for potential diagnostic and therapeutic applications. We have developed novel atomic force microscopy (AFM) based biopanning techniques that enable isolation of reagents that selectively recognize disease-specific protein variants. There are two key phases involved in the process, the negative and positive panning phases. During the negative panning phase, phages that are reactive to off-target antigens are eliminated through multiple rounds of subtractive panning utilizing a series of carefully selected off-target antigens. A key feature in the negative panning phase is utilizing AFM imaging to monitor the process and confirm that all undesired phage particles are removed. For the positive panning phase, the target antigen of interest is fixed on a mica surface and bound phages are eluted and screened to identify phages that selectively bind the target antigen. The target protein variant does not need to be purified providing the appropriate negative panning controls have been used. Even target protein variants that are only present at very low concentrations in complex biological material can be utilized in the positive panning step. Through application of this technology, we acquired antibodies to protein variants of TDP-43 that are selectively found in human ALS brain tissue. We expect that this protocol should be applicable to generating reagents that selectively bind protein variants present in a wide variety of different biological processes and diseases.

Using atomic force microscopy in combination with biopanning technology we created a negative and positive biopanning system to acquire antibodies against disease-specific protein variants present in any biological material, even at low concentrations. We were successful in obtaining antibodies to TDP-43 protein variants involved in Amyotrophic Lateral Sclerosis.

Novel Rasterkraftmikroskopie.Wie Biopanning für Isolierung von Morphologie Spezifische Reagenzien gegen TDP-43 Varianten in Amyotrophe Lateralsklerose

Because protein variants play critical roles in many diseases including TDP-43 in Amyotrophic Lateral Sclerosis (ALS), alpha-synuclein in ...

Biotechnik

Detection of Disease-associated &#945;-synuclein by Enhanced ELISA in the Brain of Transgenic Mice Overexpressing Human A53T Mutated &#945;-synuclein

In addition to established methods like Western blot, new methods are needed to quickly and easily quantify disease-associated &#945;-synuclein (&#945;SD) in experimental models of synucleopathies. A transgenic mouse line (M83) over-expressing the human A53T &#945;S and spontaneously developing a dramatic clinical phenotype between eight and 22 months of age, characterized by symptoms including weight loss, prostration, and severe motor impairment, was used in this study. For molecular analyses of &#945;SD (disease-associated &#945;S) in these mice, an ELISA was designed to specifically quantify &#945;SD in sick mice. Analysis of the central nervous system in this mouse model showed the presence of &#945;SD mainly in the caudal brain regions and the spinal cord. There were no differences in &#945;SD distribution between different experimental conditions leading to clinical disease, i.e., in uninoculated and normally aging transgenic mice and in mice inoculated with brain extracts from sick mice. The specific detection of &#945;SD immunoreactivity using an antibody against Ser129 phosphorylated &#945;S by ELISA essentially correlated with that obtained by Western blot and immunohistochemistry. Unexpectedly, similar results were observed with several other antibodies against the C-terminal part of &#945;S. The propagation of &#945;SD, suggesting the involvement of a &#8220;prion-like&#8221; mechanism, can thus be easily monitored and quantified in this mouse model using an ELISA approach.

An ELISA offering a novel quantitative approach is described. It specifically detects disease-associated &#945;-synuclein (&#945;SD) in a transgenic mouse model (M83) of synucleinopathy using several antibodies against either the Ser129 phosphorylated &#945;S form or the C-terminal part of the protein.

Nachweis von krankheitsassoziierten α-Synuclein durch verbesserte ELISA im Gehirn von transgenen Mäusen Expression Menschen A53T Mutierte α-Synuclein

In addition to established methods like Western blot, new methods are needed to quickly and easily quantify disease-associated &#945;-synuclein (&#945;SD) ...

Medizin

Exogenous Administration of Microsomes-associated Alpha-synuclein Aggregates to Primary Neurons As a Powerful Cell Model of Fibrils Formation

For years, the inability of replicating formation of insoluble alpha-synuclein (&#945;S) inclusions in cell cultures has been a great limitation in the study of &#945;S aggregation in Parkinson&#39;s Disease (PD). Recently, the development of new animal models through the exogenous inoculation of brain extracts from diseased &#945;S transgenic mice or PD patients has given new hopes to the possibility of creating more adequate cell models of &#945;S aggregation. Unfortunately, when it comes to cells in cultures, administration of raw brain extracts has not proven as successful as in mice and the source of choice of exogenous aggregates is still in vitro preformed &#945;S fibrils.
We have developed a method to induce the formation of intracellular &#945;S inclusions in primary neurons through the exogenous administration of native microsomes-associated &#945;S aggregates, a highly toxic &#945;S species isolated from diseased areas of transgenic mice. This fraction of &#945;S aggregates that is associated with the microsomes vesicles, is efficiently internalized and induces the formation of intracellular inclusions positive for aggregated and phosphorylated &#945;S. Compared to in vitro-preformed fibrils which are made from recombinant &#945;S, our method is faster and guarantees that the pathogenic seeding is made with authentic &#945;S aggregates extracted from diseased animal models of PD, mimicking more closely the type of inclusions obtained in vivo. As a result, availability of tissues rich in &#945;S inclusions is mandatory.
We believe that this method will provide a versatile cell-based model to study the microscopic aspects of &#945;S aggregation and the related cellular pathophysiology in vivo and will be a starting point for the creation of more accurate and sophisticated cell paradigm of PD.

The goal of this protocol is to provide a cell-based system that replicates the formation of alpha-synuclein aggregates in vivo. Intracellular alpha-synuclein inclusions are seeded in primary neurons by the internalization and propagation of exogenous administered native microsomes-associated alpha-synuclein aggregates isolated from diseased alpha-synuclein transgenic mice.

Exogene Verabreichung von Alpha-Synuclein Microsomen verbundenen Aggregate zur primären Neuronen als eine mächtige Zellmodell der Fibrillen Bildung

For years, the inability of replicating formation of insoluble alpha-synuclein (&#945;S) inclusions in cell cultures has been a great limitation in the ...

Neurowissenschaften

Targeting Alpha Synuclein Aggregates in Cutaneous Peripheral Nerve Fibers by Free-floating Immunofluorescence Assay

To date, for most neurodegenerative diseases only a post-mortem histopathological definitive diagnosis is available. For Parkinson&#39;s disease (PD), the diagnosis still relies only on clinical signs of motor involvement that appear later on in the disease course, when most of the dopaminergic neurons are already lost. Hence, there is a strong need for a biomarker that can identify patients at the beginning of disease or at the risk of developing it. Over the last few years, skin biopsy has proved to be an excellent research and diagnostic tool for peripheral nerve diseases such as small fiber neuropathy. Interestingly, a small fiber neuropathy and alpha synuclein (&#945;Syn) neural deposits have been shown by skin biopsy in PD patients. Indeed, skin biopsy has the great advantage of being an easily accessible, minimally invasive and painless procedure that allows the analysis of peripheral nervous tissue prone to the pathology. Moreover, the possibility of repeating the skin biopsy in the course of the follow-up of the same patient allows studying the longitudinal correlation with the disease progression. We set up a standardized reliable protocol to investigate the presence of &#945;Syn aggregates in skin nerve fibers of the PD patient. This protocol involves few short fixation steps, a cryotome sectioning and then a free-floating immunofluorescence double-staining with two specific antibodies: anti Protein Gene Product 9.5 (PGP9.5) to mark the cutaneous nerve fibers and anti 5G4 for detecting &#945;Syn aggregates. It is a versatile, sensitive and easy to perform protocol that can also be applied for targeting other proteins of interest in skin nerves. The ability to mark &#945;Syn aggregates is another step forward to the use of skin biopsy as a tool for establishing a pre-mortem histopathological diagnosis of PD.

Here, we present a protocol for a free-floating indirect immunofluorescence assay on skin biopsy sections that allows for the identification of disease specific conformation variants of alpha synuclein involved in Parkinson disease and multiple proteins of the peripheral nervous system.

Targeting Alpha Synuclein Aggregates in Kutane periphere Nervenfasern durch frei schwebenden Immunfluoreszenz-Assay

To date, for most neurodegenerative diseases only a post-mortem histopathological definitive diagnosis is available. For Parkinson&#39;s disease (PD), the ...

Generation of Alpha-Synuclein Preformed Fibrils from Monomers and Use In Vivo

Use of the in vivo alpha-synuclein preformed fibril (&#945;-syn PFF) model of synucleinopathy is gaining popularity among researchers aiming to model Parkinson&#39;s disease synucleinopathy and nigrostriatal degeneration. The standardization of &#945;-syn PFF generation and in vivo application is critical in order to ensure consistent, robust &#945;-syn pathology. Here, we present a detailed protocol for the generation of fibrils from monomeric &#945;-syn, post-fibrilization quality control steps, and suggested parameters for successful neurosurgical injection of &#945;-syn PFFs into rats or mice. Starting with monomeric &#945;-syn, fibrilization occurs over a 7-day incubation period while shaking at optimal buffer conditions, concentration, and temperature. Post-fibrilization quality control is assessed by the presence of pelletable fibrils via sedimentation assay, the formation of amyloid conformation in the fibrils with a thioflavin T assay, and electron microscopic visualization of the fibrils. Whereas successful validation using these assays is necessary for success, they are not sufficient to guarantee PFFs will seed &#945;-syn inclusions in neurons, as such aggregation activity of each PFF batch should be tested in cell culture or in pilot animal cohorts. Prior to use, PFFs must be sonicated under precisely standardized conditions, followed by examination using electron microscopy or dynamic light scattering to confirm fibril lengths are within optimal size range, with an average length of 50 nm. PFFs can then be added to cell culture media or used in animals. Pathology detectable by immunostaining for phosphorylated &#945;-syn (psyn; serine 129) is apparent days or weeks later in cell culture and rodent models, respectively.&#160;

The goal of this article is to outline the steps required for the generation of fibrils from monomeric alpha-synuclein, subsequent quality control, and use of the preformed fibrils in vivo.

Generation von Alpha-Synuclein vorgeformten Fibrillen aus Monomers und Einsatz In Vivo

Use of the in vivo alpha-synuclein preformed fibril (&#945;-syn PFF) model of synucleinopathy is gaining popularity among researchers aiming to model ...

Studying Pre-formed Fibril Induced &#945;-Synuclein Accumulation in Primary Embryonic Mouse Midbrain Dopamine Neurons

The goal of this protocol is to establish a robust and reproducible model of &#945;-synuclein accumulation in primary dopamine neurons. Combined with immunostaining and unbiased automated image analysis, this model allows for the analysis of the effects of drugs and genetic manipulations on &#945;-synuclein aggregation in neuronal cultures. Primary midbrain cultures provide a reliable source of bona fide embryonic dopamine neurons. In this protocol, the hallmark histopathology of Parkinson&#8217;s disease, Lewy bodies (LB), is mimicked by the addition of &#945;-synuclein pre-formed fibrils (PFFs) directly to neuronal culture media. Accumulation of endogenous phosphorylated &#945;-synuclein in the soma of dopamine neurons is detected by immunostaining already at 7 days after the PFF addition. In vitro cell culture conditions are also suitable for the application and evaluation of treatments preventing &#945;-synuclein accumulation, such as small molecule drugs and neurotrophic factors, as well as lentivirus vectors for genetic manipulation (e.g., with CRISPR/Cas9). Culturing the neurons in 96 well plates increases the robustness and power of the experimental setups. At the end of the experiment, the cells are fixed with paraformaldehyde for immunocytochemistry and fluorescence microscopy imaging. Multispectral fluorescence images are obtained via automated microscopy of 96 well plates. These data are quantified (e.g., counting the number of phospho-&#945;-synuclein-containing dopamine neurons per well) with the use of free software that provides a platform for unbiased high-content phenotype analysis. PFF-induced modeling of phosphorylated &#945;-synuclein accumulation in primary dopamine neurons provides a reliable tool to study the underlying mechanisms mediating formation and elimination of &#945;-synuclein inclusions, with the opportunity for high-throughput drug screening and cellular phenotype analysis.

Here, we present a detailed protocol to study neuronal &#945;-synuclein accumulation in primary mouse dopamine neurons. Phosphorylated &#945;-synuclein aggregates in neurons are induced with pre-formed &#945;-synuclein fibrils. Automated imaging of immunofluorescently labeled cells and unbiased image analysis make this robust protocol suitable for medium-to-high throughput screening of drugs that inhibit &#945;-synuclein accumulation.

Studium der vorgeformten Fibril-induzierten Synuclein-Akkumulation in primären embryonalen Maus-Midbrain-Neuronen

The goal of this protocol is to establish a robust and reproducible model of &#945;-synuclein accumulation in primary dopamine neurons. Combined with ...

Analyzing the Parkinson's Disease Mouse Model Induced by Adeno-associated Viral Vectors Encoding Human &#945;-Synuclein

Parkinson&#39;s disease is a neurodegenerative disorder that involves the death of the dopaminergic neurons of the nigrostriatal pathway and, consequently, the progressive loss of control of voluntary movements. This neurodegenerative process is triggered by the deposition of protein aggregates in the brain, which are mainly constituted of &#945;-synuclein. Several studies have indicated that neuroinflammation is required to develop the neurodegeneration associated with Parkinson&#39;s disease. Notably, the neuroinflammatory process involves microglial activation as well as the infiltration of peripheral T cells into the substantia nigra (SN). This work analyzes a mouse model of Parkinson&#39;s disease that recapitulates microglial activation, T-cell infiltration into the SN, the neurodegeneration of nigral dopaminergic neurons, and motor impairment. This mouse model of Parkinson&#39;s disease is induced by the stereotaxic delivery of adeno-associated viral vectors encoding the human wild-type &#945;-synuclein (AAV-h&#945;Syn) into the SN. The correct delivery of viral vectors into the SN was confirmed using control vectors encoding green fluorescent protein (GFP). Afterward, how the dose of AAV-h&#945;Syn administered in the SN affected the extent of h&#945;Syn expression, the loss of nigral dopaminergic neurons, and motor impairment were evaluated. Moreover, the dynamics of h&#945;Syn expression, microglial activation, and T-cell infiltration were determined throughout the time course of disease development. Thus, this study provides critical time points that may be useful for targeting synuclein pathology and neuroinflammation in this preclinical model of Parkinson&#39;s disease.

This work analyzes the vector dose and exposure time required to induce neuroinflammation, neurodegeneration, and motor impairment in this preclinical model of Parkinson&#39;s disease. These vectors encoding the human &#945;-synuclein are delivered into the substantia nigra&#160;to recapitulate the synuclein pathology associated with Parkinson&#39;s disease.

Analyse des Parkinson-Mausmodells, das durch Adeno-assoziierte virale Vektoren induziert wird, die menschliches α-Synuclein kodieren

Parkinson&#39;s disease is a neurodegenerative disorder that involves the death of the dopaminergic neurons of the nigrostriatal pathway and, ...

<meta charset="utf8"></head><body>α-Synuclein-Vermehrung: Intranasale Verabreichung bei der Parkinson-Krankheit

Technique for Intranasal Administration of &#945;-Synuclein Aggregates

Parkinson's disease (PD) is a neurodegenerative disorder characterized by the presence of Lewy bodies, which are aggregates of &#945;-synuclein (&#945;-Syn). Recently, the disease was proposed to develop and progress through the prion-like propagation of &#945;-Syn aggregates from the olfactory bulb (OB) or dorsal nucleus of the vagus nerve. Although the origin of &#945;-Syn aggregates in the OB remains unclear, their propagation from the olfactory mucosa has been recently suggested. We previously showed that intranasal administration of &#945;-Syn aggregates in a mouse model induced &#945;-Syn pathology in the OB of mice. In this study, we present a method of intranasal administration of &#945;-Syn aggregates that induced &#945;-Syn pathology in the OB of mice. Intranasal administration of &#945;-Syn aggregates is a very simple and straightforward method, and we believe it will be a useful tool in the research for elucidating the origin of &#945;-Syn pathology in the OB and the pathway of &#945;-Syn propagation through the olfactory system.

<meta charset="utf8"></head><body>Technik zur intranasalen Verabreichung von α-Synuclein-Aggregaten

The present protocol describes a method for intranasal administration of &#945;-synuclein aggregates. This method provides insights into &#945;-synuclein propagation from the olfactory mucosa to the olfactory bulb in Parkinson's disease.