Diese Arbeit wurde unterstützt von Grants-in-Aid für wissenschaftliche Forschung (KAKENHI) wie folgt: 15H 05724, 16H 01491 und 15H 04289.

Alle Versuche wurden durchgeführt in Übereinstimmung mit den Richtlinien für Tierversuche vom National Institute of Genetics (NIG), und alle Verfahren wurden vom Ausschuss NIG für Animal Care und Nutzung (Genehmigung Nr. 26-9) genehmigt.
(1) Tiere
<ol><li>
Selektive Zucht
	<ol>
<li>Erstellen Sie Wild abgeleitet heterogene Lager (WHS)6 Mäuse durch die Kreuzung 8 Inzucht Stämme (MSM, HMI, BLG2, PGN2, KJR, KHK, NJL und BFM/2) unter Vermeidung jeder Inzucht (Paarung zwischen Geschwister oder Vettern)7. Führen Sie eine selektive Zucht, beginnend in der dritten Generation (G3), durch die Auswahl von Mäusen, die anzeigen länger "Einwirkzeit" (ausgewählte Gruppe, 16 Familien der Paarung Paare) laut der aktiven Zahmheit testen (siehe Punkt 3.1).</li>
		<li>Die nicht ausgewählten Steuerelement Gruppe (auch 16 Familien der Paarung Paare) über zufällige Paarung von G3 weiter zu generieren. Für ein repräsentatives Experiment anhand Mäuse aus ausgewählten (S1) und nicht ausgewählt (C1) Gruppen von WHS Mäusen gewonnen, das Muster der aktiven und passiven Zahmheit mit den drei Zahmheit Tests (siehe Schritt 3.1-3.3). Verwenden Sie für die Experimente 10 G15 Mäuse pro Gruppe (S1 und C1).</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Repräsentative Thema Tiere
	<ol>
<li>Entwöhnen Sie alle Mäuse von ihren Eltern im Alter von 3 Wochen zu und beherbergen sie in einer gleichgeschlechtlichen Gruppen mit wurfgeschwistern, mit Standardgröße Kunststoffkäfige mit Hackschnitzel, bis des Tests. Alle Tiere an einem NIG Tierhaus unter einem 12/12 h Hell/Dunkel-Zyklus (Leuchten von 06:00 bis 18:00) und eine Konstante Temperatur (23 ± 2 ° C) zu erhalten.</li>
		<li>Sicherstellen Sie, dass Nahrung und Wasser zur Verfügung Ad Libitum. Testen Sie die Mäuse bei 6 Wochen alt während die lichtperiode, ihre Interaktionen mit Menschen während eines Teils des Tages zu analysieren, wenn Menschen in der Regel aktiv sind.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Umgang mit Protokoll
	<ol>
<li>Pinzette große bedeckt mit Silikon-Schläuche, um die Mäuse auf neue Käfige zu übertragen, indem sie sanft an ihren Schwänzen aufnehmen. Pinzette, trennen Sie sie von ihren Eltern bei der Entwöhnung und verschieben Sie sie während der Experimente. Keine der Mäuse sollten Handhabung vor den Zahmheit Tests erhalten.</li>
		<li>Übertragen Sie die Mäuse auf einen experimentellen Raum kurz vor die Zahmheit Tests.</li>
		<li>Halten Sie die männliche Mäuse getrennt voneinander nach dem Test zwischen männlicher Aggression bei WHS Mäusen zu vermeiden.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. Ausrüstung
<ol><li>Verwenden Sie einen offenen Bereich Apparat (400 x 400 x 400 mm, grau Polyvinylchlorid).</li>
	<li>Beleuchten Sie das freie Feld mit einem Clip-Licht mit einer neutralen weißen Lampe (100 Lux) fixiert auf einer Höhe von 450 mm über das freie Feld (Abbildung 1).</li>
	<li>Notieren Sie alle Verhaltensweisen, die mit einer handelsüblichen digitalen Kompaktkamera behoben bei 850 mm über dem offenen Feld mit einem Stativ (Abbildung 1).</li>
	<li>Stoffhandschuhe unter Latex-Handschuhe zum Schutz der Hände von gebissen während des passiven Zahmheit Tests (eine seltene Reaktion) zu tragen.</li>
	<li>Messen Sie die Testphase mit einer Stoppuhr.</li>
</ol>3. Test
Hinweis: Die ersten beiden Tests (aktive Zahmheit und passive Zahmheit) verliefen für 1 min, und der Aufenthalt-auf-Hand-Test wurde für weniger als 1 min durchgeführt. Alle drei Versuche wurden im offenen Feld Apparat durchgeführt und mit einer Digitalkamera aufgenommen. Iodophore Desinfektion Verfahren sollte auf alle befindende vor Verhalten Studien durchgeführt werden.
<ol><li>
Verfahren für die aktive Zahmheit testen
	<ol>
<li>Schalten Sie die digitale Kamera und Aufnahme starten.</li>
		<li>Heben Sie eine Maus sanft durch den Schweif mit ein paar großen Pinzette (siehe Schritt 1.3.1) und aus dem Hause Käfig in der Mitte des Geräts öffnen-Feld übertragen.</li>
		<li>Die Stoppuhr zu starten.</li>
		<li>Legen Sie die linke Hand auf der linken unteren Ecke des Geräts.</li>
		<li>Halten Sie die Handfläche nach oben und bewegen Sie den Finger langsam und stetig um sicherzustellen, dass die Maus die Hand mit einem Menschen verbindet. Die durchschnittliche Zeit bis alle vier Finger vom kleinen Finger auf dem Zeigefinger bewegen sollte etwa 0,5 s, mit einem ständig wiederholten Bewegung-Zyklus.</li>
		<li>Bewegen Sie die Hand in Richtung der Maus langsam, mit einer Durchschnittsgeschwindigkeit von ca. 13 cm/s, bei 10 cm von der Seite der Maus Körper stoppen.</li>
		<li>Halten Sie den gleichen Abstand, wenn die Maus versucht, sich zu bewegen. Wenn die Maus sich nähert, halten Sie die Hand in der gleichen Position und weiterhin die Finger leicht zu bewegen. Wenn die Maus versucht, den Arm hinauf, zurück zum Feld mit der freien Hand.</li>
		<li>Schließen Sie den Test nach 1 min, zurückziehen der Hand, und fahren Sie mit der passiven Zahmheit Test.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Verfahren für die passive Zahmheit testen
	<ol>
<li>Die gleichen Schritte wie bei der aktiven Zahmheit Test, aber anstatt 10 cm weg von der Maus Körper zu stoppen, langsam mit der Maus mit den Fingerspitzen berühren.</li>
		<li>Lassen Sie die Finger in der gleichen Position, Kontaktaufnahme mit der Maus, bis die Maus Weg bewegt. Wenn die Maus versucht, Kontakt zu brechen, folgen, mit einer durchschnittlichen Geschwindigkeit von ca. 23 cm/s und Verfallsdatum der Touch.</li>
		<li>Schließen Sie den Test nach 1 min. neu starten die Stoppuhr sofort um den Aufenthalt-auf-Hand-Test zu starten.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Verfahren für die Aufenthalt-auf-Hand testen
	<ol>
<li>Heben Sie die Maus am Schwanz mit ein paar großen Pinzette und legen Sie es vorsichtig auf die linke Handfläche. Halten Sie die Hand nah am Boden des Geräts öffnen-Feld.</li>
		<li>Schlag die Maus vorsichtig mit einer Durchschnittsgeschwindigkeit von 0,5 s/Hub mit dem linken Daumen, bis es die Hand verlässt.</li>
		<li>Wiederholen Sie die Schritte 3.3.1 - 3.3.2 3 X.</li>
		<li>Stoppen Sie nach dem dritten Versuch die Video-Aufnahme; Alle Zahmheit Tests sind nun abgeschlossen.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Post-experimentelle Verfahren
	<ol>
<li>Wiegen die Maus und die Anzahl der Kot und Urin in das freie Feld verlassen.</li>
		<li>Markieren Sie die Maus einzeln über ein Ohr-Punsch.</li>
		<li>Wischen Sie den Apparat und Experimentator Handschuhe mit einem Papiertuch in 0,2 % Jodophor Desinfektionsmittel getränkt.</li>
		<li>Reinigen Sie das Gerät mit einem trockenen Papiertuch.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. Verhaltensstörungen Analysen
Hinweis: Video-Aufnahmen wurden erzielte mit TanaMove Version 0.01 (Windows 7), Event-Recording-Software für Verhaltens-Analysen (Abbildung 2). Die Software ist frei verfügbar (ergänzende Materialien 1) oder auf unserer Website (http://www.mgrl-lab.jp/MGRL_software.html). Eine Person, die blind für die Testbedingungen wurde erzielte alle Aufnahmen. Die Dauer des Verhaltens aller Indizes wurde in Schritten von 0,1 s gemessen. Während der Bewertung, der Betrachter den entsprechenden Buchstaben auf der Tastatur gedrückt (siehe Punkt 4.1) bei der Feststellung eines bestimmten Verhaltens.
<ol><li>
Zuordnung der Tasten zur Videoanalyse
	<ol>
<li>Schlüssel für jeden Index Verhalten zuweisen. Mit entsprechenden Tasten für jeden Verhaltens Index ist entscheidend, um die Daten automatisch in Schritt 4.3 zusammenzufassen. Hinweis: Die in dieser Studie verwendeten Zuordnungen sind in Abbildung 3dargestellt.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Video-Analyse
	<ol>
<li>Analysieren Sie jede Videoaufnahme 3 X für verschiedene behavioral Indices (Abb. 3 b). Selbst Pflege Verhalten wurde nicht gezählt. Stellen Sie sicher, dass die eingebaute Lautsprecher des Computers eingeschaltet ist, um den Timer-Sound im Video zu hören.</li>
		<li>Starten Sie TanaMove.</li>
		<li>Drag & drop die video-Datei in das Fenster des TanaMove analysiert werden. Bestätigen Sie, dass die Datei geladen ist und, dass der Pfad und Name der ausgegebenen CSV-Datei im Feld Data File [csv] Datei korrekt ist.</li>
		<li>Klicken Sie auf die Schaltfläche " Fertig ". Dadurch wird ein neues Fenster, um die zugeordneten Schlüssel eingeben.</li>
		<li>Klicken Sie auf die Schaltfläche Wiedergabe , um die video-Datei zu starten. Klicken Sie auf die Taste Stop , um die Videodatei zu pausieren.</li>
		<li>Drücken Sie Taste A , wenn die Maus beobachtet wird, "Richtung" oder Annäherung an die Hand, darunter stehend zu schnuppern. Drücken Sie die Taste R , wenn die Maus "Locomoting" ohne Überschrift in Richtung der Hand während des aktiven Zahmheit Tests beobachtet wird.</li>
		<li>Drücken Sie die Taste W für mindestens 0,3 s (mindestens drei Intervalle im Fenster "") Wenn der Timer Ton bei 60 s.</li>
		<li>Die Analyse des passiven Zahmheit Tests zu initiieren, nachdem die linke Hand das Video eingibt. Drücken Sie Taste A , wenn die Maus in Richtung oder nähert sich die Hand und die Taste R , wenn die Maus beobachtet wird Reisen ohne in Richtung der Hand während des passiven Zahmheit Tests beobachtet wird.</li>
		<li>Drücken Sie die Taste W für mindestens 0,3 s (mindestens drei Intervalle im Fenster "") Wenn der Timer Ton bei 60 s.</li>
		<li>Drücken Sie Taste T wenn die Maus "bleiben" beobachtet, wird auf der Seite in den Aufenthalt-auf-Hand-Test.</li>
		<li>Klicken Sie nach dem Aufenthalt-auf-Hand-Test auf die Taste Stop , um die Videobeobachtung zu stoppen.</li>
		<li>Klicken Sie auf die Schaltfläche " zurück " und geben Sie einen neuen Dateinamen für die CSV-Daten-Ausgabe.</li>
		<li>Klicken Sie auf Fertig , um ein neues Fenster geben Sie die zugeordneten Tasten zu aktivieren.</li>
		<li>Klicken Sie auf spielen , starten das Videomaterial und die Beobachtung des aktiven Zahmheit Tests zu initiieren.</li>
		<li>Drücken Sie die Taste T , wenn die Maus beobachtet "Kontaktaufnahme" mit den Menschen, umfasst alle Freiwilligen sich berührenden Verhalten aber nicht zufällig Kontakte, z. B. Landung auf einer Palme nach dem Sprung, während die aktiven Zahmheit testen.</li>
		<li>Drücken Sie die Taste W für mindestens 0,3 s (mindestens drei Intervalle im Fenster "") Wenn der Timer Ton bei 60 s.</li>
		<li>Drücken Sie die Taste T , wenn die Maus den Experimentator, seinen Körper während des passiven Zahmheit Tests zu berühren kann.</li>
		<li>Drücken Sie die Taste W für mindestens 0,3 s (mindestens drei Intervalle im Fenster "") Wenn der Timer Ton bei 60 s.</li>
		<li>Klicken Sie auf die Taste Stop , um das Video zu stoppen.</li>
		<li>Klicken Sie auf die Schaltfläche " zurück " und geben Sie einen neuen Dateinamen für die CSV-Daten-Ausgabe.</li>
		<li>Klicken Sie auf Fertig , um ein neues Fenster geben Sie die zugeordneten Tasten zu aktivieren.</li>
		<li>Klicken Sie auf spielen , starten das Videomaterial und die Beobachtung des aktiven Zahmheit Tests zu initiieren.</li>
		<li>Drücken Sie die Taste J , wenn die Maus "springen" während des aktiven Zahmheit Tests beobachtet wird.</li>
		<li>Drücken Sie die Taste W für mindestens 0,3 s (mindestens drei Intervalle im Fenster "") Wenn der Timer Ton bei 60 s. Starten Sie die Beobachtung des passiven Zahmheit Tests.</li>
		<li>Drücken Sie die Taste J , wenn die Maus "springen" während des passiven Zahmheit Tests beobachtet wird.</li>
		<li>Klicken Sie auf die Taste Stop , um die Videobeobachtung zu stoppen, wenn der Timer-bei 60 Ton s.</li>
		<li>Klicken Sie auf die Schaltfläche " zurück " und geben Sie einen neuen Dateinamen für die CSV-Daten-Ausgabe.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Zusammenfassung der Daten
	<ol>
<li>Speichern Sie alle raw-Daten-Dateien (CSV) in demselben Ordner mit der ergänzenden 2. Xlsm -Datei (ergänzende Materialien 2).</li>
		<li>Öffnen Sie die ergänzende 2. Xlsm -Datei und klicken Sie auf die Schaltfläche " zusammenfassen ".</li>
		<li>Speichern Sie die Ergebnisse als separate Datei und verwenden Sie es zur weiteren Analyse des Verhaltens Zahmheit.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Albert, F. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phenotypic+differences+in+behavior%2C+physiology+and+neurochemistry+between+rats+selected+for+tameness+and+for+defensive+aggression+towards+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Hormones+and+Behavior%22%5BJournal%5D)">Phenotypic differences in behavior, physiology and neurochemistry between rats selected for tameness and for defensive aggression towards humans.</a> Hormones and Behavior. 53 (3), 413-421 (2008).</li>
<li>Belyaev, D. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Destabilizing+selection+as+a+factor+in+domestication%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Heredity%22%5BJournal%5D)">Destabilizing selection as a factor in domestication.</a> Journal of Heredity. 70 (5), 301-308 (1978).</li>
<li>Trut, L. <a target="_blank" href="https://www.jstor.org/stable/27857815">Early canid domestication: the farm-fox experiment.</a> American Scientist. 87 (2), 160-169 (1999).</li>
<li>Price, E. O. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPrice%2C+EO+%22Animal+Domestication+and+Behavior%22">Animal Domestication and Behavior</a>. , CABI Publishing. New York, NY. (2002).</li>
<li>Goto, T., Tanave, A., Moriwaki, K., Shiroishi, T., Koide, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selection+for+reluctance+to+avoid+humans+during+the+domestication+of+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Genes%2C+Brain+and+Behavior%22%5BJournal%5D)">Selection for reluctance to avoid humans during the domestication of mice.</a> Genes, Brain and Behavior. 12 (8), 760-770 (2013).</li>
<li>Matsumoto, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+breeding+and+selection+mapping+using+a+novel+wild-derived+heterogeneous+stock+of+mice+revealed+two+closely+linked+loci+for+tameness%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Selective breeding and selection mapping using a novel wild-derived heterogeneous stock of mice revealed two closely linked loci for tameness.</a> Scientific Reports. 7, 4607(2017).</li>
<li>Koide, T., Goto, T., Takano-Shimizu, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genomic+mixing+to+elucidate+the+genetic+system+of+complex+traits%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Animals%22%5BJournal%5D)">Genomic mixing to elucidate the genetic system of complex traits.</a> Experimental Animals. 61 (5), 503-509 (2012).</li>
<li>Albert, F. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+architecture+of+tameness+in+a+rat+model+of+animal+domestication%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Genetic architecture of tameness in a rat model of animal domestication.</a> Genetics. 182 (2), 541-554 (2009).</li>
<li>Cottle, C. A., Price, E. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+the+nonagouti+pelage-color+allele+on+the+behavior+of+captive+wild+Norway+rats+%28Rattus+norvegicus%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Comparative+Psychology%22%5BJournal%5D)">Effects of the nonagouti pelage-color allele on the behavior of captive wild Norway rats (Rattus norvegicus).</a> Journal of Comparative Psychology. 101 (4), 390-394 (1987).</li>
<li>Hayssen, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+the+nonagouti+coat-color+allele+on+behavior+of+deer+mice+%28Peromyscus+maniculatus%29%3A+a+comparison+with+Norway+rats+%28Rattus+norvegicus%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Comparative+Psychology%22%5BJournal%5D)">Effects of the nonagouti coat-color allele on behavior of deer mice (Peromyscus maniculatus): a comparison with Norway rats (Rattus norvegicus).</a> Journal of Comparative Psychology. 111 (4), 419-423 (1997).</li>
<li>Arakawa, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+male-specific+QTL+for+social+interaction+behavior+in+mice+mapped+with+automated+pattern+detection+by+a+hidden+Markov+model+incorporated+into+newly+developed+freeware%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Methods%22%5BJournal%5D)">A male-specific QTL for social interaction behavior in mice mapped with automated pattern detection by a hidden Markov model incorporated into newly developed freeware.</a> Journal of Neuroscience Methods. 234, 127-134 (2014).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts preisgeben.

Die repräsentativen Ergebnisse umfassen neun Verhaltens Indizes aus der aktiven Zahmheit, passive Zahmheit und Aufenthalt-auf-Hand-Tests. Ein Vergleich der Ergebnisse zwischen den ausgewählten und Kontrollgruppen zeigte deutliche Unterschiede in der Zahmheit. Diese Ergebnisse zeigen, dass die drei Tests zur Messung der Zahmheit bei Mäusen gültig sind.
Zahmheit können bei Tieren nur schwer empirisch quantifizierbar sein. Verschiedene Methoden wurden entwickelt für die Bewertung der Zahmhe...

Selektiver Zucht während der Domestikation hat die Merkmale der domestizierten Tiere, machen sie besser angepasst für das Leben mit Menschen1,2,3geändert. "Zahmheit" ist ein gemeinsames Verhalten Merkmal bei domestizierten Tieren beobachtet. Die Studien der Zuchtauslese für Zahmheit bei Tieren zeigen, wie ihre Phänotypen im Laufe der Domestizierung verändert haben. In einer berühmten Studie Füchse wurden gezielt für Zahmheit gezüchtet und eine Gruppe von Füchsen, die ein hohes Maß an Zahmheit ausgestellt wurde etablierten2. Die Füchse zeigten auch andere Phänotyp-Änderungen, die Morphologie, Fortpflanzung, Fellfarbe und physiologischen Eigenschaften. Selektive Zucht für Zahmheit bei Mäusen, eine beliebte Versuchstier kann helfen, den Mechanismus der Veränderung in einer Vielzahl von Phänotypen während der Domestikation zu offenbaren.
Zahmheit hat zwei Verhaltens Komponenten: aktive Ansätze für Menschen (aktive Zahmheit) und eine Ermäßigung bei der Vermeidung von Menschen (passive Zahmheit)4. In einer früheren Studie, wir drei Verhaltens Tests zur Charakterisierung der Zahmheit Ebenen bei Mäusen etabliert: aktive Zahmheit, passive Zahmheit und Aufenthalt-auf-Hand-tests-5. Der erste Test wurde entwickelt, um eine Maus aktiv Zahmheit durch Messung der Latenz der seine spontane Annäherung an ein Mensch und die Zeit verbrachte er in Kontakt mit einer menschlichen Hand zu quantifizieren. Der zweite Test wurde entwickelt, um passive Zahmheit quantifizieren durch Messen wie lange eine Maus toleriert von Menschenhand berührt. Der Aufenthalt-auf-Hand-Test sollte Verhaltens Vermeidung von leicht durch eine menschliche Hand gestreichelt zu quantifizieren. Diese drei Bewertungen erfordern nur einen offenen Bereich Apparat, eine Digitalkamera und ein großes paar Pinzette. Sie können nacheinander innerhalb von 3 Minuten, so dass eine große Menge der zu sammelnden Daten pro Tag abgeschlossen werden.
In der vorangegangenen Studie wir gekennzeichnet und Zahmheit Verhaltensweisen mit einer Reihe von Inzucht Mausstämme verglichen: 10 wilde Stämme, ein japanischer schicke Maus abgeleitet Stamm und sechs Labor Stämme5. Die meisten domestizierten Stämme zeigten eine deutlich höhere passive Zahmheit als wilde Sorten, aber die aktive Zahmheit unterschieden sich nicht zwischen den beiden Gruppen. Aus diesen Ergebnissen schlossen wir, dass die domestizierten Mäuse, die die Gründer der laborbelastungen sind überwiegend für ihre passive Zahmheit, aber nicht für aktive Zahmheit, in ihrer Zucht-Geschichte ausgewählt wurden.
Als nächstes führten wir selektiven Zucht mit acht Wilde Maus-Stämmen eine genetisch heterogene Bevölkerung6zu generieren. Wir entschieden uns für die Tiere, die hoch auf dem aktiven Zahmheit Test und erfolgreich erzielte ihre aktive Zahmheit in aufeinanderfolgenden Generationen erhöht im Vergleich zu einer Kontrollgruppe. Dieses Ergebnis zeigte, dass die Tests zuverlässig die Zahmheit bei Mäusen messen.
Hier beschreiben wir die umfassende Methode zur Messung von Verhaltensstörungen Indizes mit drei Verhaltens Tests. Zuerst erklären wir den Aufbau und die notwendigen Geräte. Als nächstes wir ausführlich die schrittweise Anleitung für die Durchführung der Experimente, Sammeln von Daten durch Video und Analyse sagte Daten mithilfe von Freeware, die wir entwickelt. Zu guter Letzt zeigen wir repräsentative Ergebnisse den Pool von selektiv gezüchteten Mäusen mit einer Kontrollgruppe verglichen.

<table><tbody><tr><td>open-field apparatus</td><td>O&amp;rsquo;Hara &amp;amp; Co. Ltd.</td><td>OF-3102</td><td>400&amp;times;400&amp;times;400 mm, grayish polyvinylchloride</td></tr><tr><td>compact digital camera</td><td>Ricoh Company, Ltd.</td><td>CX-5</td><td>production in the company is over</td></tr><tr><td>latex pure gloves</td><td>AS ONE</td><td>BioLab, IKG-8002</td><td></td></tr><tr><td>stopwatch</td><td>SEIKO</td><td>SSBJ018</td><td></td></tr><tr><td>Iodophor sanitizer</td><td>Ecolab G.K. (CLEA Japan)</td><td>CL-4123</td><td>Mikro Klene</td></tr></tbody></table>

measuring active and passive tameness separately in mice

Domestizierte Tiere wie Hunde und Labormäusen zeigen ein hohes Maß an Zahmheit, die wichtig für den Menschen leicht handhabbar ist. Zahmheit hat zwei Verhaltens Komponenten: eine Abneigung gegen Menschen (passive Zahmheit) und eine Motivation für den Ansatz Menschen (aktive Zahmheit) zu vermeiden. Zur Quantifizierung dieser Komponenten bei Mäusen entwickelt wir zuvor Verhaltens Tests für aktive Zahmheit, passive Zahmheit und die Bereitschaft, sich auf eine menschliche Hand bleiben jeweils entwickelt, um innerhalb von 3 Minuten abgeschlossen sein. Die gewonnenen Daten wurden mit einer großen Anzahl von Mäusen pro Generation analysiert für selektive Zucht verwendet. Der aktive Zahmheit-Test misst die Bewegung der Maus in Richtung einer menschlichen Hand und den Kontakt, den, dem es in eingreift. Der passive Zahmheit Test misst die Dauer der Zeit, dass eine Maus menschelt toleriert. Im Aufenthalt-auf-Hand-Test eine Maus liegt auf einer menschlichen Hand und langsam mit dem Daumen dieser Hand berührt; die Dauer der Zeit, die das Tier auf die Hand bleibt wird gemessen. Hier beschreiben wir den Test set-up Apparat, erläutern Sie die Verfahren und die entsprechenden Daten-Analyse zu diskutieren. Schließlich erklären wir, wie die Ergebnisse interpretieren.

Wir haben bisher selektive Zucht für aktive Zahmheit in Miceandsuccessfully produziert-Mäuse, die ein hohes Maß an aktiver Zahmheit6zeigte durchgeführt. Die repräsentativen Ergebnisse der Zahmheit Tests für die ausgewählten und nicht ausgewählten Gruppen von Mäusen auf die 15th Generation (G15) sind in Abbildung 4dargestellt. Mäuse aus der ausgewählten Gruppe erzielte höher auf der aktiven Zahmheit Test, zeigen e...

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Measuring Active and Passive Tameness Separately in Mice

Zahmheit bei Tieren beinhaltet eine Reduzierung der Vermeidung Reaktionen auf den Menschen (passive Zahmheit) und eine Erhöhung in aktive Ansätze für den Menschen (aktive Zahmheit). Hier beschreiben wir ausführliche Protokolle für drei Verhaltens Tests (aktive Zahmheit, passive Zahmheit und Aufenthalt-auf-Hand-Tests), das aktive und passive Zahmheit von Mäusen getrennt zu messen.

Messung der aktiven und passiven Zahmheit separat bei Mäusen

Domesticated animals such as dogs and laboratory mice show a high level of tameness, which is important for humans to handle them easily. Tameness has two ...

measuring-active-and-passive-tameness-separately-in-mice

Research

JoVE Journal

Behavior

7.1K Aufrufe.  National Institute of Genetics. Zahmheit bei Tieren beinhaltet eine Reduzierung der Vermeidung Reaktionen auf den Menschen (passive Zahmheit) und eine Erhöhung in aktive Ansätze für den Menschen (aktive Zahmheit). Hier beschreiben wir ausführliche Protokolle für drei Verhaltens Tests (aktive Zahmheit, passive Zahmheit und Aufenthalt-auf-Hand-Tests), das aktive und passive Zahmheit von Mäusen getrennt zu messen.

Serie: Measuring Active and Passive Tameness Separately in Mice

Behavioral Phenotyping of Murine Disease Models with the Integrated Behavioral Station (INBEST)

Due to rapid advances in genetic engineering, small rodents have become the preferred subjects in many disciplines of biomedical research. In studies of chronic CNS disorders, there is an increasing demand for murine models with high validity at the behavioral level. However, multiple pathogenic mechanisms and complex functional deficits often impose challenges to reliably measure and interpret behavior of chronically sick mice. Therefore, the assessment of peripheral pathology and a behavioral profile at several time points using a battery of tests are required. Video-tracking, behavioral spectroscopy, and remote acquisition of physiological measures are emerging technologies that allow for comprehensive, accurate, and unbiased behavioral analysis in a home-base-like setting. This report describes a refined phenotyping protocol, which includes a custom-made monitoring apparatus (Integrated Behavioral Station, INBEST) that focuses on prolonged measurements of basic functional outputs, such as spontaneous activity, food/water intake and motivated behavior in a relatively stress-free environment. Technical and conceptual improvements in INBEST design may further promote reproducibility and standardization of behavioral studies.

Behavioral Phenotyping of Murine Disease Models with the Integrated Behavioral Station INBEST

Prolonged and comprehensive monitoring of mice in a home-cage environment provides a deeper understanding of aberrant behavior in murine models of brain diseases. This paper describes the Integrated Behavioral Station (INBEST) as the key component of contemporary behavioral analysis.

Behavioral Phänotypisierung von murinen Krankheitsmodelle mit dem Integrated Behavioral Station (INBEST)

Due to rapid advances in genetic engineering, small rodents have become the preferred subjects in many disciplines of biomedical research. In studies of ...

Forschung

Verhalten

Measuring the Strength of Mice

Kondziela7 devised the inverted screen test and published it in 1964. It is a test of muscle strength using all four limbs. Most normal mice easily score maximum on this task; it is a quick but insensitive gross screen, and the weights test described in this article will provide a finer measure of muscular strength.
There are also several strain gauge-based pieces of apparatus available commercially that will provide more graded data than the inverted screen test, but their cost may put them beyond the reach of many laboratories which do not specialize in strength testing. Hence in 2000 a cheap and simple apparatus was devised by the author. It consists of a series of chain links of increasing length, attached to a "fur collector" a ball of fine wire mesh sold for preventing limescale build up in hard water areas. An accidental observation revealed that mice could grip these very tightly, so they proved ideal as a grip point for a weight-lifting apparatus. A common fault with commercial strength meters is that the bar or other grip feature is not thin enough for mice to exert a maximum grip. As a general rule, the thinner the wire or bar, the better a mouse can grip with its small claws.
This is a pure test of strength, although as for any test motivational factors could potentially play a role. The use of scale collectors, however, seems to minimize motivational problems as the motivation appears to be very high for most normal young adult mice.

Deficits in muscular strength occur in many clinical conditions such as motor neuron disease. The inverted screen and weight lifting tests described here measure strength in mice almost exclusively, with minimal influence of factors such as coordination.

Messung der Stärke von Mäusen

Kondziela7 devised the inverted screen test and published it in 1964. It is a test of muscle strength using all four limbs. Most normal mice easily score ...

Medizin

Use of the Open Field Maze to Measure Locomotor and Anxiety-like Behavior in Mice

Animal models have proven to be invaluable to researchers trying to answer questions regarding the mechanisms of behavior. The Open Field Maze is one of the most commonly used platforms to measure behaviors in animal models. It is a fast and relatively easy test that provides a variety of behavioral information ranging from general ambulatory ability to data regarding the emotionality of the subject animal. As it relates to rodent models, the procedure allows the study of different strains of mice or rats both laboratory bred and wild-captured. The technique also readily lends itself to the investigation of different pharmacological compounds for anxiolytic or anxiogenic effects. Here, a protocol for use of the open field maze to describe mouse behaviors is detailed and a simple analysis of general locomotor ability and anxiety-related emotional behaviors between two strains of C57BL/6 mice is performed. Briefly, using the described protocol we show Wild Type mice exhibited significantly less anxiety related behaviors than did age-matched Knock Out mice while both strains exhibited similar ambulatory ability.

A protocol is provided to use an Open Field Maze to access general locomotor activity, anxiety and emotionality in a laboratory mouse model.

Die Nutzung der Open Field Maze auf Bewegungsapparat und Angst-ähnliches Verhalten bei Mäusen messen

Animal models have proven to be invaluable to researchers trying to answer questions regarding the mechanisms of behavior. The Open Field Maze is one of ...

Experimental Assessment of Mouse Sociability Using an Automated Image Processing Approach

Mouse is the preferred model organism for testing drugs designed to increase sociability. We present a method to quantify mouse sociability in which the test mouse is placed in a standardized apparatus and relevant behaviors are assessed in three different sessions (called session I, II, and III).
The apparatus has three compartments (see Figure 1), the left and right compartments contain an inverted cup which can house a mouse (called &#34;stimulus mouse&#34;).
In session I, the test mouse is placed in the cage and its mobility is characterized by the number of transitions made between compartments. In session II, a stimulus mouse is placed under one of the inverted cups and the sociability of the test mouse is quantified by the amounts of time it spends near the cup containing the enclosed stimulus mouse vs. the empty inverted cup. In session III, the inverted cups are removed and both mice interact freely. The sociability of the test mouse in session III is quantified by the number of social approaches it makes toward the stimulus mouse and by the number of times it avoids a social approach by the stimulus mouse.
The automated evaluation of the movie detects the nose of the test mouse, which allows the determination of all described sociability measures in session I and II (in session III, approaches are identified automatically but classified manually). To find the nose, the image of an empty cage is digitally subtracted from each frame of the movie and the resulting image is binarized to identify the mouse pixels. The mouse tail is automatically removed and the two most distant points of the remaining mouse are determined; these are close to nose and base of tail. By analyzing the motion of the mouse and using continuity arguments, the nose is identified.
<img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/52508/52508fig1.jpg" /> 
Figure 1. Assessment of Sociability During 3 sessions. Session I (top): Acclimation of test mouse to the cage. Session II (middle): Test mouse moving freely in the cage while the stimulus mouse is enclosed in an inverted cup. Session III (bottom): Both test mouse and stimulus mouse are allowed to move freely and interact with each other.

This protocol describes a method to quantify mouse sociability. Mice are videotaped as they move and interact in a special cage. Movie processing allows for the automated quantification of sociability with excellent accuracy and reliability.

Experimentelle Bewertung der Maus Sociability einer automatisierten Bildverarbeitung Ansatz

Mouse is the preferred model organism for testing drugs designed to increase sociability. We present a method to quantify mouse sociability in which the ...

T-maze Forced Alternation and Left-right Discrimination Tasks for Assessing Working and Reference Memory in Mice

Forced alternation and left-right discrimination tasks using the T-maze have been widely used to assess working and reference memory, respectively, in rodents. In our laboratory, we evaluated the two types of memory in more than 30 strains of genetically engineered mice using the automated version of this apparatus. Here, we present the modified T-maze apparatus operated by a computer with a video-tracking system and our protocols in a movie format. The T-maze apparatus consists of runways partitioned off by sliding doors that can automatically open downward, each with a start box, a T-shaped alley, two boxes with automatic pellet dispensers at one side of the box, and two L-shaped alleys. Each L-shaped alley is connected to the start box so that mice can return to the start box, which excludes the effects of experimenter handling on mouse behavior. This apparatus also has an advantage that in vivo microdialysis, in vivo electrophysiology, and optogenetics techniques can be performed during T-maze performance because the doors are designed to go down into the floor. In this movie article, we describe T-maze tasks using the automated apparatus and the T-maze performance of &alpha;-CaMKII+/- mice, which are reported to show working memory deficits in the eight-arm radial maze task. Our data indicated that &alpha;-CaMKII+/- mice showed a working memory deficit, but no impairment of reference memory, and are consistent with previous findings using the eight-arm radial maze task, which supports the validity of our protocol. In addition, our data indicate that mutants tended to exhibit reversal learning deficits, suggesting that &alpha;-CaMKII deficiency causes reduced behavioral flexibility. Thus, the T-maze test using the modified automatic apparatus is useful for assessing working and reference memory and behavioral flexibility in mice.

This article presents the protocol of T-maze tests using a modified automated apparatus for assessing the learning and memory functions in mice.

T-Labyrinth Erzwungener Wechsel und die Links-Rechts-Discrimination Aufgaben für die Beurteilung der Arbeitsbedingungen und Referenz-Gedächtnis bei Mäusen

Forced alternation and left-right discrimination tasks using the T-maze have been widely used to assess working and reference memory, respectively, in ...

Neurowissenschaften

The Tail Suspension Test

The tail-suspension test is a mouse behavioral test useful in the screening of potential antidepressant drugs, and assessing of other manipulations that are expected to affect depression related behaviors. Mice are suspended by their tails with tape, in such a position that it cannot escape or hold on to nearby surfaces. During this test, typically six minutes in duration, the resulting escape oriented behaviors are quantified. The tail-suspension test is a valuable tool in drug discovery for high-throughput screening of prospective antidepressant compounds. Here, we describe the details required for implementation of this test with additional emphasis on potential problems that may occur and how to avoid them. We also offer a solution to the tail climbing behavior, a common problem that renders this test useless in some mouse strains, such as the widely used C57BL/6. Specifically, we prevent tail climbing behaviors by passing mouse tails through a small plastic cylinder prior to suspension. Finally, we detail how to manually score the behaviors that are manifested in this test.

The tail-suspension test is validated as an experimental procedure to assess antidepressant efficacy of drug treatments in mice. Mice are suspended by their tails for six minutes and escape-related behaviors are assessed. We describe procedures used in conducting the tail suspension test.

The Tail Suspension Test-

The tail-suspension test is a mouse behavioral test useful in the screening of potential antidepressant drugs, and assessing of other manipulations that ...

Assessment of Sexual Behavior of Male Mice

Sexual behavior is highly species-specific. Although rodents have slightly different sexual behaviors, mice and rats have a similar sexual behavioral pattern. The purpose of this article is to describe the hormone-induced estrus ovariectomized female model and the experimental procedure for the assessment of sexual behavior of male mice. The most important sexual behavioral elements are demonstrated in the video and illustrations. The critical steps, advantages, and limitations of the sexual behavior test are explained as well. Finally, the behavior parameters are presented, and mounting, intromission, and ejaculation processes in mating are distinguished. Behavioral parameters are assessed in terms of the occurred duration and counts during the test period.

This article describes how to perform sexual behavior tests in male mice.

Bewertung des Sexualverhaltens männlicher Mäuse

Sexual behavior is highly species-specific. Although rodents have slightly different sexual behaviors, mice and rats have a similar sexual behavioral ...

Untersuchung aktiver Abwehrverhaltensweisen bei Mäusen mit modifizierter Angstkonditionierung

Modified Fear Conditioning for Inducing Flight Behaviors in Mice

The appropriate manifestation of defensive behavior in a threatening situation is critical for survival. The prevailing theory suggests that an active defensive behavior, such as jumping or rapid darting, is expressed under high threat imminence or actual threat, whereas passive defensive behavior, such as freezing, is expressed when the threat is predicted, but the threat imminence is relatively low. In classical fear conditioning, subjects typically exhibit freezing as a conditioned defensive response, with little expression of active defensive behavior in most cases. Here, we introduce a modified fear conditioning procedure for mice to observe the transition from freezing to flight and vice versa, involving five repetitive pairings of conditioned stimuli (CS; continuous tone, 8 kHz, 95 dB SPL (sound pressure levels)) and unconditioned stimuli (US; foot shock, 0.9 mA, 1.0 s) over two days. This modified fear conditioning procedure requires a relatively large number of conditioning sessions and conditioning days but does not necessitate a high-intensity foot shock for modest expression of flight behavior. Using the same context for conditioning and salient CS presentations is essential to elicit flight behaviors. This modified fear conditioning procedure is a reliable method for observing active defensive behaviors in mice, providing an opportunity to elucidate the fine mechanisms and characteristics of such behaviors in a fearful context.

Autor im Rampenlicht: Erforschung neuronaler Korrelate von defensiven Verhaltensweisen beim Lernen und Aussterben von Angst

To study flight behaviors in a fearful context, we introduce a modified fear conditioning protocol. This protocol ensures that mice consistently exhibit flight behaviors during cue presentation in the fear conditioning.

Modifizierte Angstkonditionierung zur Induktion von Fluchtverhalten bei Mäusen

The appropriate manifestation of defensive behavior in a threatening situation is critical for survival. The prevailing theory suggests that an active ...

Messung der aktiven und passiven Zahmheit separat bei Mäusen

Zusammenfassung

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