Dieses Modell der Myokardischämie-Reperfusion wird durch einen selbstgebauten Retraktor, ein Polyvinylchloridchlorid-Röhrchen und eine einzigartige Knotenmethode verbessert. Diese Technik ist mit einer höheren Überlebensrate und einer größeren Schlaggröße verbunden. Diese Methode wird die Überlebensrate der Myokardischämie-Reperfusionsverletzung bei Ratten verbessern, was die klinische Therapie der Myokardischämie-Reperfusionsverletzung in Zukunft beleuchten wird.
Nachdem Sie die Ratte betäubt haben, richten Sie den mittleren Abschnitt von zwei Büroklammern aus, um eine S-Form zu bilden, und ziehen Sie den breiten Abschnitt jedes S nach unten, um einen kleinen Retraktor zu bilden. Schneiden Sie ein Polyvinylchloridrohr mit einem Durchmesser von zwei Millimetern in sieben Millimeter lange Stücke. Führen Sie eine 10 Zentimeter lange 4-0-Naht in das PVC-Rohr ein und binden Sie seine Enden zusammen.
Schneiden Sie dann eine Nut in der Mitte des PVC-Rohrs mit einer ophthalmologischen Schere, um die Naht in der Ligationsperiode zu platzieren. Befestigen Sie die Gliedmaßen der Ratte mit Klebeband, indem Sie die Ratte in Rückenlage auf die Operationsplatte legen. Rasieren Sie den Hals und den linken vorderen Brustbereich mit Enthaarungscreme und reinigen Sie die Haut mit 75% Alkohol und Jodphor Peeling.
Schneiden Sie dann die Haut des Halses längs entlang der mittleren Halslinie mit einer ophthalmologischen Schere. Trennen Sie die Nackenmuskulatur mit einer Augenpinzette und platzieren Sie einen Retraktor auf jeder Seite, um sie weiter einzuziehen. Nachdem Sie die Luftröhre freigelegt haben, identifizieren Sie den Raum zwischen dem vierten und fünften Luftröhrenring.
Machen Sie einen drei Millimeter großen Schnitt parallel zum Kricoidknorpel zwischen dem vierten und fünften Trachealring mit dem stumpfen Rand einer Nadelspitze. Führen Sie durch den Schnitt einen Saugtrokar in die Luftröhre ein und belüften Sie die Ratte mechanisch, um die normale Atmung mit einer Rate von 80 Atemzügen pro Minute und einem Tidalvolumen von acht Millilitern pro Kilogramm aufrechtzuerhalten. Als nächstes machen Sie einen vier bis fünf Zentimeter langen Schnitt vom Xiphoid in die Mitte des zweiten linken Interkostalraums, während Sie das Gerüst in einem Winkel von 45 Grad halten.
Trennen Sie sanft und langsam die Brustmuskeln major und Serratus vordere Muskeln mit einer Augenpinzette, um Zugang zum Interkostalraum zu erhalten. Machen Sie einen 1,5 Zentimeter großen Schnitt quer zwischen der linken, dritten und vierten Rippe mit einer Augenschere. Um Verletzungen vorzubeugen, legen Sie Wattebällchen, die in der physiologischen Kochsalzlösung getränkt sind, über die Lunge in die Brusthöhle.
Sezieren Sie das Perikard mit einer Augenpinzette. Heben Sie dann den linken Vorhofanhängsel mit einer Pinzette an und identifizieren Sie das koronare Ostium, das an der Wurzel der Aortenarterie vorhanden ist. Im Abschnitt zwischen linker Lunge und Ohrmuschel ligaten Sie das LAD und den vorpräparierten kurzen Schlauch zusammen mit einer 6-0 chirurgischen Naht.
Binden Sie sie mit einem Schlupfknoten und legen Sie den Schlupfknoten in die Nut des PVC-Rohres. Ziehen Sie dann das ligierte Rohr und LAD mit einem zweiten Schlupfknoten für 45 Minuten fest. Notieren Sie die Farbänderung im vorderen Teil des linken Ventrikels und die Erhöhung des ST-Segments auf dem Elektrokardiogramm während der Ischämieperiode.
Klemmen Sie die Brustmuskulatur und die Haut mit einem Arterienclip fest und bedecken Sie die Wunde mit feuchter Kochsalzgaze, lösen Sie dann den Schlupfknoten und entfernen Sie den vorbereiteten kurzen Schlauch nach 45 Minuten. Ratten, die sich entweder einer bestehenden oder verbesserten Myokardischämie und Reperfusionsverletzungsverfahren unterzogen hatten, hatten Myokardinfarkte, während Ratten aus der Scheingruppe dies nicht taten. Darüber hinaus wiesen die bestehenden und experimentellen Modellgruppen für Myokardischämie und Reperfusionsverletzungen einen signifikanten Unterschied in der Größe des Myokardinfarkts auf.
Die experimentelle Modellgruppe hatte eine größere Myokardinfarktgröße als die bestehende Modellgruppe. Hämatoxylin-, Eosin- und Masson-Färbungen zeigen, dass die Kardiomyozyten sowohl der experimentellen als auch der bestehenden Modellgruppe kritische Schäden und Nukleose erfahren hatten, während sie von zahlreichen Neutrophilen infiltriert wurden. Die Ratten in den bestehenden und experimentellen Modellgruppen Myokardischämie und Reperfusionsverletzung zeigen erhöhte Elektrokardiogramm-STT-Segmente als die Scheingruppe.
Es gab signifikante Unterschiede zwischen dem experimentellen Modell und der Scheingruppe oder den vorhandenen Modell- und Scheingruppen. Darüber hinaus war das TT-Segment in der experimentellen Modellgruppe höher als in der bestehenden Modellgruppe. Die Überlebensrate unterschied sich signifikant zwischen den beiden Modellgruppen Myokardischämie und Reperfusionsverletzung.
Die Sterblichkeitsrate betrug 40% während der Reperfusionsperiode, während in der experimentellen Modellgruppe keine der Ratten während der Operation starb, was zeigt, dass das derzeit verbesserte Modell eine höhere Überlebensrate hatte. Das Wichtigste ist, dass wir die Röhre in den Knoten stecken. In der Zwischenzeit den Schlupfknoten in die Nut des Rohres legen.
Diese Methode kann auch Einblicke in den Bereich der Myokardischämie-Reprovisionierungsverletzung und der Myokardinfektion geben.
