Method Article
Este artículo describe los diversos procedimientos de selección para las ratas y ratones para detectar endo-o ectoparasitismo. Varios ensayos de diagnóstico se ha demostrado, tanto las que son adecuadas para su uso en animales vivos y los que se utilizan después de la eutanasia del animal. Fotografías para ayudar en la identificación de los parásitos de ratas y ratones se incluirán.
Parásitos internos y externos siguen siendo una preocupación importante en las instalaciones de roedores de laboratorio, y muchas instalaciones de investigación puerto algunos animales parasitados. Antes de embarcarse en un examen de los animales contra los parásitos, dos cosas deben ser consideradas. Uno: ¿qué va a hacer uso de la información recogida, y dos: que la prueba es la más adecuada. Sabiendo que los animales tienen parásitos puede ser algo que el centro acepta, pero a menudo hay una necesidad de tratar a los animales y luego para determinar la eficacia del tratamiento. Los parásitos pueden ser detectados en los animales a través de varias técnicas, incluyendo las muestras tomadas de animales vivos o sacrificados. Históricamente, las pruebas con mayor sensibilidad diagnóstica necesaria la eutanasia del animal, a pesar de PCR ha permitido que las pruebas de alta sensibilidad para varios tipos de parásitos. En este artículo muestra los procedimientos para la detección de endo-y ectoparásitos en ratones y ratas. Los mismos procedimientos se aplican a otros roedores, aunque las especies de parásitos que se encuentran son diferentes.
1. Endoparásitos examen (Tabla 1)
1. Prueba de la cinta perianal (véase también la sección 5, los cuales generalmente se realizan al mismo tiempo)
2. Flotación fecal
3. Concentración de materia fecal y la centrifugación
4. El examen directo de los intestinos de helmintos y protozoos
2. Ectoparásito examen (Tabla 3)
5. Piel arrancar el examen de los ectoparásitos (prueba de la cinta)
6. Raspado de la piel
7. El examen directo de pelaje
3. Los resultados representativos:
Ver los ficheros asociados la identificación de los parásitos siguientes: (Nota: estos procedimientos se detecta cualquier tipo de huevo, helmintos o quistes presentes en las heces o en la piel y el pelo, y sólo unos pocos de estos se enumeran a continuación)
Endoparásitos:
Syphacia muris (huevo, gusano) | Chilomastix bettencourti |
Syphacia obvelata (huevo, gusano) | Hexamastix muris |
Aspiculuris tetraptera (huevo, gusano) | Retortamonas sp. |
Rodentolepis nana (huevo, gusano) | Giardia spp. |
Tritrichomonas muris | Spironucleus muris |
Entamoeba muris |
Ectoparásitos:
Myocoptes musculinis | Radfordia affinis |
Myocoptes musculinis | Radforida ensifera |
Myobia musculi |
Cinta de prueba | Flotación fecal | FCC | Un examen directo | PCR | |
Protozoos | - | + | + + | + + + | + + + / NA 2 |
Metazoos | |||||
Lombriz intestinal | + / - 3 | + / - 4 | + 4 | + + + | + + + |
Tenia 5 | - | + | + + | + + + | NA |
Ascárides otros cinco | - | + | + + + | + + + | NA |
1. Este método requiere la eutanasia del animal.
2. No hay métodos de detección de PCR disponibles actualmente para todos los protozoarios.
3. Este método es el más apropiado para detectar Syphacia spp.
4. Este método es más probable detectar Aspiculuris, y menos probabilidades de detectar Syphacia.
5. Tenias y lombrices que no sean los oxiuros son muy raros en los ratones y las ratas de laboratorio moderno.
Tabla 1. Clase de endoparásitos y el método de detección apropiado. Algunos métodos requieren la eutanasia del animal. NA indica método no está disponible actualmente para estos parásitos + indica la idoneidad del método para la detección del parásito en cuestión, y -. Indica que el método no es recomendado para ese parásito.
Solución | Peso específico | Ingredientes por 1 litro de H 2 O |
Cloruro de sodio | 1.20 | 311 g de cloruro de sodio |
Nitrato de sodio | 1.20 | 338 g de nitrato de sodio |
Nitrato de sodio | 1.30 | 616 g de nitrato de sodio |
Azúcar | 1.20 | 1170 g de sacarosa 1 |
Azúcar Sheather | 1.27-1.30 | 1563 g de sacarosa 1 |
De sulfato de zinc | 1.18 | 493 g de sulfato de zinc |
1. Estas soluciones requieren refrigeración o la adición de 9 ml de fenol como conservante.
Tabla 2. Soluciones de flotación fecal (de Smith et al.)
Piel arrancar (prueba de la cinta) | Raspado de la piel 1 | Un examen directo | PCR | |
Los piojos | - | - | + + | NA |
Los ácaros | + | + | + + + | + + + / NA 3 |
Las pulgas 4 | - | - | + | NA |
Las garrapatas 4 | - | - | + + | NA |
1. Este método requiere anestesia si se va a realizar en un animal vivo.
2. Este método requiere la eutanasia del animal.
3. No hay métodos de detección de PCR disponibles actualmente para todas las especies de ácaros.
4. Las pulgas y garrapatas son extremadamente raras en las modernas instalaciones de animales de laboratorio.
Tabla 3. Clase de ectoparásitos y el método de detección apropiado. Algunos métodos requieren la eutanasia del animal, y otros métodos que requieren anestesia para llevarlas a cabo en animales vivos. NA indica método no está disponible actualmente para estos parásitos. NA indica método no está disponible actualmente para estos parásitos + indica la idoneidad del método para la detección del parásito en cuestión, y -. Indica que el método no es recomendado para ese parásito.
Cuando se trabaja en un laboratorio, la seguridad siempre debe ser una preocupación. Recuerde que debe usar el equipo protector apropiado cuando se trabaja con los animales y para limpiar su estación de trabajo con desinfectante antes y después. Estos métodos están diseñados principalmente para encontrar los parásitos de los roedores de laboratorio en los lugares examinados, es decir, son capaces de detectar los parásitos exóticos o muy raras, así como los oxiuros más comunes y los ácaros de la piel. A pesar de que son igualmente aplicables a otras especies, roedores silvestres pueden tener parásitos adicionales en lugares como el hígado, tejido subcutáneo y el cerebro, no se evalúa por los métodos anteriores.
Los autores son todos los empleados de Charles River, un proveedor de pruebas de diagnóstico y reactivos, incluyendo las pruebas descritas anteriormente.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Reactivo nombre | Empresa | Número de catálogo | Comentarios |
Tabla de cortar | Thermo Electron Corp | Cat # 36114 | |
Tijeras pequeñas | Roboz | RS-5910, G204 | Hojas de 23 mm, 3,5 "de largo, recto |
Tijeras medianas | Roboz | RS-6808, G207 | 5 " |
Fórceps curvo | Roboz | RS-8254 (M1/21004) | 4.5 ", serrado, ligera curva |
Fórceps Microdissecting | Roboz | RS-5238 | Hudson (Ewald) |
Tejidos fórceps pinzas | Roboz | RS-8160 | Diente de ratón |
Metálica de la sonda | VWR | Cat. # 25778-000 | |
Hemostatos | Ventaja | V97-48 | |
Palillos aplicadores | Puritano | Los aplicadores de 6 pulgadas, Ref # 807 | |
Microscopio de disección | Olimpo | SZ51, Schott, ACE1 | |
Una caja de petri | VWR | Gato de 100 mm, # 3401PDNL | |
Cubreobjetos | VWR | Micro cubierta de vidrio, Cat # 48366-067 | |
Diapositivas | VWR | Microscopio VistaVision diapositivas Cat. # 16004-368 | |
Asa de inoculación | VWR | Cat. # 50815-040 | |
Microscopio de luz | Olimpo | Modelo # BX41TF | |
Horno de laboratorio | Quincy Lab Inc. | Modelo 10 Horno de laboratorio | |
Centrífugo | Beckman Coulter | Allegra X-12R | |
Vórtice | VWR | Mini-vórtice | |
Probeta | Kimble-Chase | Tubo de 15 ml centrífuga desechables, Cat # 73790-15 | |
Cubreobjetos | VWR | Plástico se desliza microscopio cubrir, Cat 22 mm, # 48376-049 | |
Blanco las tapas | VWR | Cat. # 60869-089 | |
Yodo | Rowley bioquímicos instituto | Cat # SO-364 | |
De sulfato de zinc | Sigma Aldrich | Cat # 1000917519, Z4750-500G | |
Sacarosa | Mallinckrodt productos químicos | Cat # 8360-06 | |
Fenol | EMD | Cat # PX0510-1 | |
Celofán cinta | Grapas | Cinta invisible, Cat # 504712 | |
De aceite mineral | Mallickrodt | Cat # 6358 |
Solicitar permiso para reutilizar el texto o las figuras de este JoVE artículos
Solicitar permisoThis article has been published
Video Coming Soon
ACERCA DE JoVE
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. Todos los derechos reservados