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Method Article
Este protocolo detalla una síntesis fácil de un solo papel de nanopartículas de óxido de manganeso (MnO) por descomposición térmica de acetilacetona de manganeso(II) en presencia de oleilamina y éter de dibenzilo. Las nanopartículas MnO se han utilizado en diversas aplicaciones, incluyendo imágenes por resonancia magnética, biodesefacción, catálisis, baterías y tratamiento de aguas residuales.
Para aplicaciones biomédicas, las nanopartículas de óxido metálico como el óxido de hierro y el óxido de manganeso (MnO) se han utilizado como biosensores y agentes de contraste en la resonancia magnética (RM). Mientras que las nanopartículas de óxido de hierro proporcionan un contraste negativo constante en la RMN sobre los períodos de tiempo experimentales típicos, MnO genera contraste positivo conmutable en la RMN a través de la disolución de MnO a Mn2+ a pH bajo dentro de los endosomas celulares para "encender" el contraste de LA RMN. Este protocolo describe una síntesis de una sola olla de nanopartículas MnO formada por la descomposición térmica del acetilcetono de manganeso(II) en oleilamina y éter de dibenzilo. Aunque ejecutar la síntesis de nanopartículas MnO es simple, la configuración experimental inicial puede ser difícil de reproducir si no se proporcionan instrucciones detalladas. Por lo tanto, el conjunto de cristalería y tubos se describe primero a fondo para permitir que otros investigadores reproduzcan fácilmente la configuración. El método de síntesis incorpora un controlador de temperatura para lograr una manipulación automatizada y precisa del perfil de temperatura deseado, lo que afectará al tamaño y la química de las nanopartículas resultantes. El protocolo de descomposición térmica se puede adaptar fácilmente para generar otras nanopartículas de óxido metálico (por ejemplo, óxido de hierro) e incluir disolventes orgánicos alternativos y estabilizadores (por ejemplo, ácido oleico). Además, la relación entre disolvente orgánico y estabilizador se puede cambiar para seguir impactar las propiedades de las nanopartículas, que se muestra en este documento. Las nanopartículas MnO sintetizadas se caracterizan por su morfología, tamaño, composición a granel y composición superficial a través de microscopía electrónica de transmisión, difracción de rayos X y espectroscopia infrarroja de transformación de Fourier, respectivamente. Las nanopartículas MnO sintetizadas por este método serán hidrófobas y deben manipularse aún más a través del intercambio de ligandos, encapsulación polimérica o taponamiento lipídico para incorporar grupos hidrófilos para la interacción con fluidos biológicos y tejidos.
Las nanopartículas de óxido metálico poseen propiedades magnéticas, eléctricas y catalíticas, que se han aplicado en la bioimagen1,2,3, tecnologías de sensores4,5, catálisis6,7,8, almacenamiento de energía9, y purificación de agua10. Dentro del campo biomédico, las nanopartículas de óxido de hierro y las nanopartículas de óxido de manganeso (MnO) han demostrado utilidad como agentes de contraste en la resonancia magnética (RM)1,,2. Las nanopartículas de óxido de hierro producen un contraste negativo robusto en la RMN T2* y son lo suficientemente potentes como para visualizar células etiquetadas individuales in vivo11,12,,13; sin embargo, la señal de RMN negativa no se puede modular y permanece "ON" durante toda la duración de los experimentos típicos. Debido al hierro endógeno presente en el hígado, la médula ósea, la sangre y el bazo, el contraste negativo generado a partir de nanopartículas de óxido de hierro puede ser difícil de interpretar. Las nanopartículas MnO, por otro lado, responden a una caída del pH. La señal de RMN para nanopartículas MnO puede pasar de "OFF" a "ON" una vez que las nanopartículas se internalizan dentro de los endosomas de pH bajo y lisosomas de la célula diana, como una célula cancerosa14,15,16,17,18,19. El contraste positivo en la RMN T1 producido desde la disolución de MnO hasta Mn2+ a pH bajo es inconfundible y puede mejorar la especificidad de la detección de cáncer al iluminarse únicamente en el sitio objetivo dentro de un tumor maligno. El control sobre el tamaño, la morfología y la composición de las nanopartículas es crucial para lograr la máxima señal de RMN a partir de nanopartículas MnO. En este documento, describimos cómo sintetizar y caracterizar nanopartículas MnO utilizando el método de descomposición térmica y observamos diferentes estrategias para ajustar las propiedades de las nanopartículas alterando variables en el proceso de síntesis. Este protocolo se puede modificar fácilmente para producir otras nanopartículas magnéticas como nanopartículas de óxido de hierro.
Las nanopartículas MnO han sido producidas por una variedad de técnicas incluyendo la descomposición térmica20,,21,22,23,24,25, hidro/solvothermal26,27,28,29, exfoliante30,31,32,33,34, reducción de permanganatos35,36,37,38, y adsorción-oxidación39,40,41,42. La descomposición térmica es la técnica más utilizada que consiste en disolver precursores de manganeso, disolventes orgánicos y agentes estabilizadores a altas temperaturas (180 – 360 oC) bajo la presencia de una atmósfera gaseosa inerte para formar nanopartículas MnO43. De todas estas técnicas, la descomposición térmica es el método superior para generar una variedad de nanocristales MnO de fase pura (MnO, Mn3O4 y Mn2O3)con una distribución de tamaño estrecho. Su versatilidad se destaca a través de la capacidad de controlar estrechamente el tamaño, la morfología y la composición de las nanopartículas alterando el tiempo de reacción44,45,46, temperatura44,47,48,48, tipos / ratios de reactivos20,45,47,48,50 y gas inerte47,48,50 utilizados. Las principales limitaciones de este método son el requisito de altas temperaturas, la atmósfera libre de oxígeno y el recubrimiento hidrófobo de las nanopartículas sintetizadas, que requiere una mayor modificación con polímeros, lípidos u otros ligandos para aumentar la solubilidad para aplicaciones biológicas14,,51,,52,,53.
Además de la descomposición térmica, el método hidro/solvotermal es la única otra técnica que puede producir una variedad de fases MnO incluyendo MnO, Mn3O4y MnO2; todas las demás estrategias sólo forman productos MnO2. Durante la síntesis hidro/solvotermal, precursores como el estearato Mn(II)54,55 y Mn(II) acetato27 se calientan a entre 120-200 oC durante varias horas para lograr nanopartículas con una distribución de tamaño estrecho; sin embargo, se requieren recipientes de reacción especializados y las reacciones se realizan a altas presiones. Por el contrario, la estrategia de exfoliación implica el tratamiento de un material en capas o a granel para promover la disociación en capas individuales 2D. Su principal ventaja está en la producción de nanohojas MnO2, pero el proceso de síntesis es largo que requiere varios días y el tamaño resultante de las hojas es difícil de controlar. Alternativamente, permanganatos como KMnO4 pueden reaccionar con agentes reductores como el ácido oleico56,57, óxido degrafeno 58 o poli(clorhidrato de alilamina)59 para crear nanopartículas MnO2. El uso de KMnO4 facilita la formación de nanopartículas a temperatura ambiente durante unos minutos o horas en condiciones acuosas43. Desafortunadamente, la síntesis rápida y el crecimiento de las nanopartículas hacen que sea difícil controlar con tarifas el tamaño resultante de las nanopartículas. Las nanopartículas MnO2 también se pueden sintetizar utilizando adsorción-oxidación mediante la cual los iones Mn2+ se adsorben y se oxidan a MnO2 por oxígeno en condiciones básicas. Este método producirá pequeñas nanopartículas MnO2 con una distribución de tamaño estrecho a temperatura ambiente durante varias horas en medios acuosos; sin embargo, el requisito de adsorción de iones Mn2+ y condiciones alcalinas limita su aplicación generalizada43.
De los métodos de síntesis de nanopartículas MnO discutidos, la descomposición térmica es la más versátil para generar diferentes nanocristales monodispersos de fase pura con control sobre el tamaño, la forma y la composición de las nanopartículas sin necesidad de recipientes de síntesis especializados. En este manuscrito, describimos cómo sintetizar nanopartículas MnO por descomposición térmica a 280 oC utilizando el acetilcetonato de manganeso (II) (Mn(II) ACAC) como la fuente de iones Mn2+, oleilamina (OA) como agente reductor y estabilizador, y éter de dibenzil (DE) como disolvente bajo una atmósfera de nitrógeno. La configuración de cristalería y tubos para la síntesis de nanopartículas se explica en detalle. Una ventaja de la técnica es la inclusión de un controlador de temperatura, sonda termopar y manto de calentamiento para permitir un control preciso sobre la velocidad de calentamiento, la temperatura máxima y los tiempos de reacción a cada temperatura para ajustar el tamaño y la composición de las nanopartículas. Aquí, mostramos cómo el tamaño de las nanopartículas también se puede manipular cambiando la proporción de OA a DE. Además, demostramos cómo preparar muestras de nanopartículas y medir el tamaño de las nanopartículas, la composición a granel y la composición de la superficie mediante microscopía electrónica de transmisión (TEM), difracción de rayos X (RDX) y espectroscopia infrarroja de transformación de Fourier (FTIR), respectivamente. Se incluyen más instrucciones sobre cómo analizar las imágenes y espectros recopilados de cada instrumento. Para generar nanopartículas MnO de forma uniforme, debe estar presente un estabilizador y un flujo de nitrógeno adecuado; XRD and TEM results are shown for undesired products formed in the absence of OA and under low nitrogen flow. En la sección Discusión, destacamos los pasos cruciales en el protocolo, las métricas para determinar la síntesis exitosa de nanopartículas, la variación adicional del protocolo de descomposición para modificar las propiedades de las nanopartículas (tamaño, morfología y composición), la solución de problemas y las limitaciones del método, y las aplicaciones de las nanopartículas MnO como agentes de contraste para la imagen biomédica.
1. Vidrio y montaje de tubos – que se realizarán sólo la primera vez
NOTA: La Figura 1 muestra la configuración experimental para la síntesis de nanopartículas MnO con conexiones de tubo numeradas. La figura S1 muestra la misma configuración con los componentes principales de cristalería etiquetados. Si hay un desajuste entre el tubo resistente a productos químicos y el tamaño de conexión de vidrio, cubra primero la conexión de vidrio con una pieza corta de tubo más pequeño antes de agregar el tubo resistente a productos químicos para que las conexiones se ajusten.
2. Configuración de equipos y cristalería – que se realizará durante cada experimento
ADVERTENCIA: Todos los pasos que implican disolventes requieren el uso de una campana de humo químico, así como un equipo de protección personal (EPP) adecuado, incluyendo gafas de seguridad, bata de laboratorio y guantes. La configuración de fabricación de nanopartículas debe montarse en la campana de humos.
3. Síntesis de nanopartículas
4. Colección de nanopartículas
5. Tamaño de nanopartículas y morfología superficial (TEM)
6. Análisis cuantitativo del diámetro de las nanopartículas
7. Composición a granel de nanopartículas (XRD)
8. Análisis de espectros XRD
9. Composición de la superficie de nanopartículas (FTIR)
10. Análisis de los espectros FTIR
Para confirmar la síntesis exitosa, se deben ensayar nanopartículas MnO para el tamaño y la morfología (TEM), la composición a granel (XRD) y la composición de la superficie (FTIR). La Figura 2 muestra imágenes TEM representativas de nanopartículas MnO sintetizadas utilizando proporciones decrecientes de oleilamina (OA, el estabilizador) al éter de dibenzilo (DE, el disolvente orgánico): 60:0, 50:10, 40:20, 30:30, 20:40, 10:50. Las imágenes TEM ideales consisten en nanopartículas...
El protocolo del presente documento describe una síntesis fácil y de una olla de nanopartículas MnO utilizando Mn(II) ACAC, DE y OA. Mn(II) ACAC se utiliza como el material de partida para proporcionar una fuente de Mn2+ para la formación de nanopartículas MnO. El material de partida se puede sustituir fácilmente para permitir la producción de otras nanopartículas de óxido metálico. Por ejemplo, cuando se aplica el ACAC de hierro(III), las nanopartículas Fe3O4 se pueden generar...
Los autores no tienen nada que revelar.
Este trabajo fue apoyado por los fondos de inicio del Departamento de Ingeniería Química y Biomédica de WVU (M.F.B.). Los autores desean agradecer a la Dra. Marcela Redigolo por orientación sobre la preparación de la red y la captura de imágenes de nanopartículas con TEM, Dr. Qiang Wang por su apoyo en la evaluación de espectros XRD y FTIR, Dr. John Zondlo y Hunter Snoderly para programar e integrar el controlador de temperatura en el protocolo de síntesis de nanopartículas, James Hall por su asistencia en el montaje de la configuración de síntesis de nanopartículas , Alexander Pueschel y Jenna Vito por ayudar en la cuantificación de diámetros de nanopartículas MnO a partir de imágenes TEM, y el centro de investigación compartido WVU para el uso del TEM, XRD y FTIR.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Chemicals and Gases | |||
Benzyl ether (DE) | Acros Organics | AC14840-0010 | Concentration: 99%, 1 L |
Drierite | W. A. Hammond Drierite Co. LTD | 23001 | Drierite 8 mesh, 1 lb |
Ethanol | Decon Laboratories | 2701 | 200 proof, 4 x 3.7 L |
Hexane | Macron Fine Chemicals | 5189-08 | Concentration: ≥98.5%, 4 L |
Hydrochloric acid | VWR | BDH3030-2.5LPC | Concentration: 36.5 - 38.0 % ACS, 2.5 L |
Manganese (II) acetyl acetonate (Mn(II)ACAC) | Sigma Aldrich | 245763-100G | 100 g |
Nitrogen gas tank | Airgas | NI R300 | Research 5.7 grade nitrogen, size 300 cylinder |
Nitrogen regulator | Airgas | Y11244D580-AG | Single stage brass 0-100 psi analytical cylinder regulator CGA-580 with needle outlet |
Oleylamine (OA) | Sigma Aldrich | O7805-500G | Concentration: 70%, technical grade, 500 g |
Silicone oil | Beantown Chemical | 221590-100G | 100 g |
Equipment | |||
Centrifuge | Beckman-Coulter | Avanti J-E | JA-20 fixed-angle aluminum rotor, 8 x 50 mL, 48,400 x g |
Hemisphere mantle | Ace Glass Inc. | 12035-17 | 115 V, 270 W, 500 mL, temperature up to 450 °C |
Hot plate stirrer | VWR | 97042-642 | 120 V, 1000 W, 8.3 A, ceramic top |
Temperature controller | Yokogawa Electric Corporation | UP351 | |
Temperature probe | Omega | KMQXL-040G-12 | Immersion probe, temperature up to 1335 °C |
Vacuum oven | Fisher Scientific | 282A | 120 V, 1800 W, temperature up to 280 °C |
Vortex mixer | Fisher Scientific | 02-215-365 | 120 V, 50/60 Hz, 150 W |
Water bath sonicator | Fisher Scientific | FS30H | Ultrasonic power 130 W, 3.7 L tank |
Tools and Materials | |||
Dumont tweezer | Electron Microscopy Sciences | 72703D | Style 5/45, Dumoxel, 109 mm, for picking up TEM grids |
Dumont reverse tweezer | Ted Pella | 5748 | Style N2a, 118 mm, NM-SS, self-closing, holding TEM grids in place for sample preparation |
Mortar and pestle | Amazon | BS0007 | BIPEE agate mortar and pestle, 70 X 60 X 15 mm labware |
Nalgene™ Oak Ridge tubes | ThermoFisher Scientific | 3139-0050 | Polypropylene copolymer, 50,000 x g, 50 mL, pack of 10 |
Scintillation vials | Fisher Scientific | 03-337-4 | 20 mL vials with white caps, case of 500 |
TEM grids | Ted Pella | 01813-F | Carbon Type-B, 300 mesh, copper, pack of 50 |
Glassware Setup | |||
4-neck round bottom flask | Chemglass Life Sciences | CG-1534-01 | 24/40 joint, 500 mL, #7 chem thread for thermometers |
6-port vacuum manifold | Chemglass Life Sciences | CG-4430-02 | 480 nm, 6 ports, 4 mm PTFE stopcocks |
Adapter | Chemglass Life Sciences | CG-1014-01 | 24/40 inner joint, 90° |
Condenser | Chemglass Life Sciences | CG-1216-03 | 24/40 joint, 365 mm, 250 mm jacket length |
Drierite 26800 drying column | Cole-Parmer | EW-07193-00 | 200 L/hr, 90 psi |
Funnel | Chemglass Life Sciences | CG-1720-L-02 | 24/40 joint, 100 powder funnel, 195 mm OAL |
Interlocked worm gear hose clamp | Grainger | 16P292 | 1/2" wide stainless steel clamp, 3/8" to 7/8" diameter, to secure condenser tubing, 10 pack |
Keck clips | Kemtech America Inc | CS002440 | 24/40 joint |
Metal claw clamp | Fisher Scientific | 05-769-7Q | 22cm, three-prong extension clamps |
Metal claw clamp holder | Fisher Scientific | 05-754Q | Clamp regular holder |
Mineral oil bubbler | Kemtech America Inc | B257040 | 185 mm |
Rotovap trap | Chemglass Life Sciences | CG-1319-02 | 24/40 joints, 100 mL, self washing rotary evaporator |
Rubber stopper | Chemglass Life Sciences | CG-3022-98 | 24/40 joints, red rubber |
Tubing for air/water | McMaster-Carr | 6516T21 | Clear Tygon PVC for air/water, B-44-3, 1/4" ID, 1/16" wall, 25 ft |
Tubing for air/water | McMaster-Carr | 6516T26 | Clear Tygon PVC for air/water, B-44-3, 3/8" ID, 1/16" wall, 25 ft |
Tubing for chemicals | McMaster-Carr | 5155T34 | Clear Tygon PVC for chemicals, E-3603, 3/8" ID, 1/16" wall, 50 ft |
Analysis Programs | |||
XRD analysis program | Malvern Panalytical | N/A | X'Pert HighScore Plus |
FTIR analysis program | Varian, Inc. | N/A | Varian Resolutions Pro |
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