Iniciar sesión

Se requiere una suscripción a JoVE para ver este contenido. Inicie sesión o comience su prueba gratuita.

En este artículo

  • Resumen
  • Resumen
  • Introducción
  • Protocolo
  • Resultados
  • Discusión
  • Divulgaciones
  • Agradecimientos
  • Materiales
  • Referencias
  • Reimpresiones y Permisos

Resumen

Este protocolo describe cómo construir un sistema de cadena de polimerasa de flujo continuo basado en un chip microfluídico y cómo construir un sistema de electroforesis capilar en el laboratorio. Presenta un método sencillo para el análisis de ácidos nucleicos en el laboratorio.

Resumen

La reacción en cadena de la polimerasa (PCR) es un método tradicional empleado para la amplificación de un gen diana que ha desempeñado un papel importante en el diagnóstico biomolecular. Sin embargo, la PCR tradicional requiere mucho tiempo debido a la eficiencia de la variación de baja temperatura. En este trabajo se propone un sistema de PCR de flujo continuo (CF-PCR) basado en un chip microfluídico. El tiempo de amplificación se puede reducir en gran medida ejecutando la solución de PCR en un microcanal colocado en calentadores configurados a diferentes temperaturas. Además, dado que la electroforesis capilar (CE) es una forma ideal de diferenciar los productos de PCR positivos y falsos positivos, se construyó un sistema de CE para lograr una separación eficiente de los fragmentos de ADN. En este trabajo se describe el proceso de amplificación de Escherichia coli (E. coli) mediante el sistema CF-PCR construido internamente y la detección de los productos de PCR mediante CE. Los resultados demuestran que el gen diana de E. coli se amplificó con éxito en 10 minutos, lo que indica que estos dos sistemas pueden utilizarse para la rápida amplificación y detección de ácidos nucleicos.

Introducción

La reacción en cadena de la polimerasa (PCR) es una técnica de biología molecular utilizada para amplificar fragmentos específicos de ADN, amplificando así trazas de ADN cientos de millones de veces. Ha sido ampliamente utilizado en el diagnóstico clínico, la investigación médica, la seguridad alimentaria, la identificación forense y otros campos. El proceso de PCR consta principalmente de tres pasos: desnaturalización a 90-95 °C, recocido a 50-60 °C y extensión a 72-77 °C. El ciclo térmico es una parte importante del proceso de PCR; sin embargo, el termociclador de PCR tradicional no solo es voluminoso sino también ineficiente, ya que requiere aproximadamente 40 minutos para completar 25 ciclos. Para superar estas limitaciones, se construyó internamente un sistema de PCR de flujo continuo (CF-PCR), basado en un chip microfluídico. La CF-PCR puede ahorrar mucho tiempo al conducir la solución de PCR a microcanales colocados en calentadores a diferentes temperaturas 1,2,3,4,5.

Como la electroforesis capilar (CE) tiene muchas ventajas, como alta resolución, alta velocidad y excelente reproducibilidad 6,7,8,9,10,11, se ha convertido en una herramienta popular en el laboratorio para el análisis de ácidos nucleicos y proteínas. Sin embargo, la mayoría de los laboratorios, especialmente los laboratorios del mundo en desarrollo, no pueden permitirse esta tecnología debido al alto precio del instrumento CE. Aquí, hemos esbozado protocolos sobre cómo fabricar el chip microfluídico CF-PCR y cómo construir un sistema CE versátil en el laboratorio. También demostramos el proceso de amplificación de E. coli por este sistema CF-PCR y la detección de los productos de PCR por el sistema CE. Siguiendo los procedimientos descritos en este protocolo, los usuarios deberían ser capaces de fabricar chips microfluídicos, preparar soluciones de PCR, construir un sistema de CF-PCR para la amplificación de ácidos nucleicos y configurar un sistema de CE simple, incluso con recursos limitados, para separar fragmentos de ADN.

Protocolo

NOTA: Consulte la Tabla de materiales para obtener detalles relacionados con todos los materiales, reactivos y equipos utilizados en este protocolo.

1. Fabricación de chip microfluídico CF-PCR

  1. Calentar la oblea de silicona a 200 °C durante 25 minutos para eliminar la humedad.
  2. Dispense 1 ml de fotorresistencia SU-8-2075 por pulgada de oblea. Hágalo girar en la oblea de silicio con un recubridor giratorio a 500 rpm durante 5-10 s con una aceleración de 100 rpm/s, y luego a 2.000 rpm durante 30 s con una aceleración de 500 rpm/s.
  3. Hornee suavemente la oblea de silicona a 65 °C durante 3 minutos, luego a 95 °C durante 15 minutos.
  4. Establezca 150 - 215 mJ/cm² como energía de exposición para la máquina de fotolitografía y grabe el patrón diseñado en la fotorresistencia con una máscara de fotolitografía. Coloque la oblea de silicona y la máscara listas para la exposición.
  5. Después de la exposición, hornee la oblea de silicio a 65 °C durante 2 minutos y luego a 95 °C durante 7 minutos.
  6. Sumerja la oblea de silicio en la solución reveladora para eliminar el exceso de fotorresistencia y sáquela cuando se puedan ver los microcanales (Figura 1). Use isopropanol para enjuagar la solución reveladora residual.
  7. Mezcle el prepolímero de polidimetilsiloxano (PDMS) y el agente de curado en una proporción de 10:1. Vierta la solución mezclada de PDMS en el molde de réplica y solidifique a 80 °C durante 60 min.
  8. Unir el chip microfluídico PDMS en un portaobjetos después de la activación con un limpiador de plasma y solidificarlos a 80 °C durante 30 min lo antes posible (Figura 2).
    NOTA: Las dimensiones exteriores del chip son 80,0 mm × 30,0 mm × 0,4 mm. Hay 40 canales serpentinos (100 μm × 1,46 mm × 100 μm, ancho × largo × profundidad) en el chip microfluídico.

2. Preparación de la solución de PCR

  1. Descongele los reactivos por completo antes de la configuración. Utilice un mezclador de vórtice y una centrífuga para asegurarse de que los reactivos estén bien mezclados.
  2. Prepare un tubo de centrífuga, agregando los siguientes componentes en este orden: 33,75 μL de agua, 1,0 μL de plantilla de ADN, 0,5 μL de cebador, 5,0 μL de tampón, 4,0 μL de mezcla de dNTP, 1,5 μL de Tween 20, 3,5 μL de PVP y, finalmente, 0,25 μL de ADN polimerasa.
    NOTA: Aquí, la plantilla de ADN utilizada es E. coli. Los cebadores para E. coli y los componentes de la solución de PCR se enumeran en la Tabla 1 y la Tabla 2, respectivamente.
  3. Mezcle la solución por vórtice.

3. Construcción del sistema CF-PCR

  1. Prepare dos calentadores cerámicos de coeficiente de temperatura positivo (PTC), dos relés de estado sólido, dos controladores de temperatura PID, dos sensores de temperatura y un cable de alimentación.
    NOTA: El tamaño de los calentadores cerámicos PTC depende del tamaño del chip microfluídico; la longitud debe ser mayor que la longitud del chip: la longitud, el ancho y la altura de los calentadores cerámicos PTC utilizados aquí es de 10 cm x 2 cm x 0,4 cm.
  2. Conecte el calentador al relé de estado sólido.
  3. Conecte el relé de estado sólido al controlador de temperatura PID.
  4. Conecte la sonda del sensor de temperatura a la parte inferior de los dos calentadores y conecte el terminal al controlador de temperatura PID.
  5. Conecte dos relés de estado sólido en serie y conecte el cable de alimentación.
  6. Imprima en 3D una ranura para los dos calentadores y mantenga los calentadores en el mismo plano (consulte el Archivo complementario 1 para ver los archivos STL necesarios para la impresión 3D).
    NOTA: Deje un espacio de aire de 12 mm entre los dos calentadores.
  7. Coloque el chip microfluídico en los dos calentadores.
  8. Prepare una bomba de jeringa y una jeringa, fije la jeringa en la bomba de jeringa, conecte un tubo de silicona (0,8 mm de diámetro interior [ID]) con una jeringa y conecte una aguja de acero (0,7 mm de diámetro interior) a la parte superior del tubo de silicona (Figura 3).
  9. Inserte la aguja de acero en la entrada del chip microfluídico.
  10. Coloque una punta de pipeta en la salida del chip para recoger los productos de PCR.

4. Construcción del sistema CE

  1. Utilice una fuente de alimentación de alto voltaje para generar un campo eléctrico de campo pulsado; Tenga en cuenta los electrodos positivo y negativo.
  2. Utilice una lámpara de mercurio como fuente de luz y filtre la longitud de onda de excitación de la lámpara de mercurio a través de un filtro.
  3. Coloque el capilar en la platina del microscopio.
  4. Recoja la emisión de fluorescencia con el objetivo y luego decútala usando un tubo fotomultiplicador R928 (PMT). Observa el microscopio y el capilar. Encienda la luz en condiciones de habitación oscura; La luz de excitación es recogida por el objetivo.
  5. Utilice el software LABVIEW de desarrollo propio para controlar la fuente de alimentación y completar la adquisición de datos (descrito en los pasos 6.3-6.6). Véase https://github.com/starliyan/labview/blob/main/CZE20170723.vi.
    NOTA: Todos los experimentos se realizaron en un cuarto oscuro, y el esquema del sistema CE se muestra en la Figura 4.

5. Ejecute la solución de PCR

  1. Preajuste la temperatura de los calentadores del sistema CF-PCR a 65 °C y 95 °C.
  2. Coloque el chip microfluídico en los dos bloques calefactores.
  3. Inserte la punta del tubo de silicona en un tubo de centrífuga que contenga 50 μL de la solución de PCR (a partir del paso 2.3). Tire del émbolo de la jeringa para extraer lentamente la solución. Fije la jeringa en una bomba de jeringa. Inserte la aguja de acero en la entrada del chip microfluídico.
  4. Ajuste el caudal de la bomba a 10 μL/min y pulse el botón de inicio para empujar la solución en el microcanal a la entrada del microchip.
  5. Recoja los productos de PCR en la salida del chip microfluídico.
    NOTA: Enjuague el canal con agua ultrapura antes y después de la PCR para eliminar las impurezas.

6. Detección de los productos de PCR por este sistema CE construido internamente

  1. Preparar un capilar con una longitud total de 8 cm y una longitud efectiva de 6 cm.
  2. Prepare el tampón de separación mezclando 100 μL de hidroxietilcelulosa al 1 % (HEC, p/v), 2 μl de 100 veces SYBR Green I y 98 μl de agua ultrapura para obtener un 0,5 % de HEC (p/v) que contenga 1 x SYBR Green I.
  3. Llene el capilar con el tampón de separación preparado utilizando una bomba de vacío.
  4. Introduzca la tensión de inyección (800 V) y el tiempo de inyección (2,0 s) en la interfaz del software, haga clic en el botón de inicio y espere a que los productos de PCR se introduzcan electrodinámicamente en el capilar a 100 V/cm (2,0 s).
    NOTA: En este paso, los productos de PCR se colocan en el electrodo negativo y el tampón se coloca en el electrodo positivo.
  5. Introduzca la tensión continua (800 V) en la interfaz del software, haga clic en el botón de inicio y ejecute la electroforesis a 100 V/cm de intensidad de campo eléctrico.
    NOTA: En este paso, tanto el electrodo positivo como el negativo se colocan con tampón.
  6. Haga clic en el botón de parada después de que todos los fragmentos de ADN se separen en el capilar.
  7. Enjuague el capilar con agua esterilizada durante 1 minuto después de cada ejecución.

Resultados

La figura 5 representa el electroferograma de los productos de PCR y los marcadores de ADN. La traza (Figura 5A) es el resultado de CE del producto amplificado por CF-PCR, la traza (Figura 5B) es el resultado de CE del producto amplificado por ciclos térmicos y la traza (Figura 5C) es el resultado de CE de la escalera de ADN de 100 pb. Primero amplificamos el gen diana de E. coli en el sistema...

Discusión

Tanto la PCR como la CE son dos biotecnologías populares en el análisis de ácidos nucleicos. En este trabajo se describe la amplificación de E. coli y la detección de los productos de PCR utilizando los sistemas CF-PCR y CE, ambos de fabricación propia. El gen diana de E. coli se amplificó con éxito en 10 minutos debido a las altas tasas de transferencia de calor. Los fragmentos de ADN menores de 1.500 pb se separaron en 8 minutos (Figura 5). La gran ventaja de esta...

Divulgaciones

Los autores no tienen conflictos de intereses que declarar.

Agradecimientos

Este trabajo contó con el apoyo de la Comisión de Ciencia y Tecnología de la Municipalidad de Shanghái, China (Nº 19ZR1477500 y Nº 18441900400). Agradecemos el apoyo financiero de la Universidad de Shanghái para la Ciencia y la Tecnología (No.2017KJFZ049).

Materiales

NameCompanyCatalog NumberComments
100 bp DNA ladderTakara Bio Inc.3422A
10x Fast Buffer ITakara Bio Inc.RR070A
10x TBEBeijing Solarbio Science & Technology Co., Ltd.T1051
developer solutionAlfa Aesar, USAL15459
dNTP mixture (2.5 μM)Takara Bio Inc.RR070A
EC-FSangon Biotech, Shanghai, China
EC-RSangon Biotech, Shanghai, China
HEC,1300KSigma-Aldrich, USA9004-62-0
isopropanolAladdin, Shanghai, China67-63-0
microscopeOlympus, JapanBX51
photolithography SUSS MicroTec, GermanyMJB4
photomultiplier tube Hamamatsu Photonics, JapanR928
photoresistMicroChem, USASU-8 2075
PID temperature controllers Shanghai, ChinaXH-W2023
plasma cleaner Harrick PlasmaPDC-32G-2
polyvinyl pyrrolidone (PVP)Aladdin, Shanghai, ChinaP110608
pumpHarvard ApparatusPHD2000
silicone tubing BIO-RAD,USA7318210
solid-state relaysKZLTD, ChinaKS1-25LA
SpeedSTAR HS DNA Polymerase Takara Bio Inc.RR070A
steel needlezhongxinqiheng,Suzhou,China
SYBR GREEN figure-materials-2426Solarbio, Beijing, ChinaSY1020
temperature sensorsEasyShining Technology, Chengdu, ChinaTCM-M207
Template (E. coli)Takara Bio Inc.AK601
Tween 20Aladdin, Shanghai, ChinaT104863
voltage power supply Medina, NY, USATREK MODEL 610E

Referencias

  1. Li, Z., et al. All-in-one microfluidic device for on-site diagnosis of pathogens based on an integrated continuous flow PCR and electrophoresis biochip. Lab on a Chip. 19 (16), 2663-2668 (2019).
  2. Crews, N., Wittwer, C., Gale, B. Continuous-flow thermal gradient PCR. Biomedical Microdevices. 10 (2), 187-195 (2008).
  3. Li, Z., et al. Design and fabrication of portable continuous flow PCR microfluidic chip for DNA replication. Biomedical Microdevices. 22 (1), 5 (2019).
  4. Kim, J. A., et al. Fabrication and characterization of a PDMS-glass hybrid continuous-flow PCR chip. Biochemical Engineering Journal. 29 (1-2), 91-97 (2006).
  5. Shen, K., Chen, X., Guo, M., Cheng, J. A microchip-based PCR device using flexible printed circuit technology. Sensors and Actuators B: Chemical. 105 (2), 251-258 (2005).
  6. Harstad, R. K., Johnson, A. C., Weisenberger, M. M., Bowser, M. T. Capillary Electrophoresis. Analytical Chemistry. 88 (1), 299-319 (2016).
  7. Redman, E. A., Mellors, J. S., Starkey, J. A., Ramsey, J. M. Characterization of intact antibody drug conjugate variants using microfluidic capillary electrophoresis-mass spectrometry. Analytical Chemistry. 88 (4), 2220-2226 (2016).
  8. Britz-Mckibbin, P., Kranack, A. R., Paprica, A., Chen, D. D. Quantitative assay for epinephrine in dental anesthetic solutions by capillary electrophoresis. Analyst. 123 (7), 1461-1463 (1998).
  9. Maeda, H., et al. Quantitative real-time PCR using TaqMan and SYBR Green for Actinobacillus actinomycetemcomitans, Porphyromonas gingivalis, Prevotella intermedia, tetQgene and total bacteria. FEMS Immunology and Medical Microbiology. 39 (1), 81-86 (2003).
  10. Hajba, L., Guttman, A. Recent advances in column coatings for capillary electrophoresis of proteins. TrAC Trends in Analytical Chemistry. 90, 38-44 (2017).
  11. Kleparnik, K. Recent advances in combination of capillary electrophoresis with mass spectrometry: methodology and theory. Electrophoresis. 36 (1), 159-178 (2015).

Reimpresiones y Permisos

Solicitar permiso para reutilizar el texto o las figuras de este JoVE artículos

Solicitar permiso

Explorar más artículos

Bioingenier aN mero 201

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacidad

Condiciones de uso

Políticas

Investigación

Educación

ACERCA DE JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. Todos los derechos reservados