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CUT&RUN y sus variantes se pueden utilizar para determinar la ocupación de proteínas en la cromatina. Este protocolo describe cómo determinar la localización de proteínas en la cromatina utilizando uliCUT&RUN unicelular.
Determinar las ubicaciones de unión de una proteína en la cromatina es esencial para comprender su función y los posibles objetivos reguladores. La inmunoprecipitación de cromatina (ChIP) ha sido el estándar de oro para determinar la localización de proteínas durante más de 30 años y se define por el uso de un anticuerpo para extraer la proteína de interés de la cromatina sonicada o digerida enzimáticamente. Más recientemente, las técnicas de anclaje de anticuerpos se han vuelto populares para evaluar la localización de proteínas en la cromatina debido a su mayor sensibilidad. Cleavage Under Targets & Release Under Nuclease (CUT&RUN) es el derivado de todo el genoma del inmunoaprestigio de cromatina (ChIC) y utiliza la proteína A recombinante unida a la nucleasa microcócica (pA-MNasa) para identificar la región constante IgG del anticuerpo dirigida a una proteína de interés, lo que permite la escisión específica del sitio del ADN que flanquea la proteína de interés. CUT&RUN se puede utilizar para perfilar modificaciones de histonas, factores de transcripción y otras proteínas de unión a la cromatina, como los factores de remodelación de nucleosomas. Es importante destacar que CUT&RUN se puede utilizar para evaluar la localización de proteínas asociadas eucromáticas o heterocromáticas y modificaciones de histonas. Por estas razones, CUT&RUN es un método potente para determinar los perfiles de unión de una amplia gama de proteínas. Recientemente, CUT&RUN ha sido optimizado para el perfil del factor de transcripción en poblaciones bajas de células y células individuales y el protocolo optimizado se ha denominado CUT&RUN de entrada ultra baja (uliCUT&RUN). Aquí, se presenta un protocolo detallado para el perfil de factor de una sola celda utilizando uliCUT& RUN en un formato manual de 96 pocillos.
Muchas proteínas nucleares funcionan interactuando con la cromatina para promover o prevenir actividades basadas en plantillas de ADN. Para determinar la función de estas proteínas que interactúan con la cromatina, es importante identificar las ubicaciones genómicas en las que se unen estas proteínas. Desde su desarrollo en 1985, la inmunoprecipitación de cromatina (ChIP) ha sido el estándar de oro para identificar dónde se une una proteína a la cromatina 1,2. La técnica chIP tradicional tiene el siguiente flujo de trabajo básico: las células se cosechan y se reticulan (generalmente con formaldehído), la croma....
Declaración de ética: Todos los estudios fueron aprobados por la Oficina Institucional de Bioseguridad de Protecciones de Investigación de la Universidad de Pittsburgh.
1. Prepara cuentas magnéticas
NOTA: Realice antes de la clasificación de celdas y mantenga el hielo hasta su uso.
Aquí, se presenta un protocolo detallado para el perfil de proteínas unicelulares en cromatina utilizando un formato manual de 96 pocillos uliCUT&RUN. Si bien los resultados variarán según la proteína que se perfila (debido a la abundancia de proteínas y la calidad de los anticuerpos), el tipo de célula y otros factores contribuyentes, los resultados anticipados para esta técnica se discuten aquí. La calidad celular (apariencia celular y porcentaje de células viables) y la clasificación de una sola célula deb.......
CUT&RUN es un protocolo eficaz para determinar la localización de proteínas en la cromatina. Tiene muchas ventajas en relación con otros protocolos, que incluyen: 1) alta relación señal-ruido, 2) protocolo rápido y 3) baja cobertura de lectura de secuenciación requerida, lo que lleva a ahorros de costos. El uso de proteína A o proteína A/G-MNasa permite aplicar CUT&RUN con cualquier anticuerpo disponible; por lo tanto, tiene el potencial de perfilar rápida y fácilmente muchas proteínas. Sin embargo, la adapta.......
Los autores declaran no tener intereses contrapuestos relacionados con este proyecto.
Agradecemos a los miembros del Laboratorio Hainer por leer y comentar una versión anterior de este manuscrito. Este proyecto utilizó el NextSeq500 disponible en el Núcleo de Secuenciación de Ciencias de la Salud de la Universidad de Pittsburgh en el Hospital Pediátrico UPMC de Pittsburgh para la secuenciación con un agradecimiento especial a su director, William MacDonald. Esta investigación fue apoyada en parte por el Centro de Computación de Investigación de la Universidad de Pittsburgh a través de los recursos informáticos proporcionados. Este trabajo fue apoyado por el Número de Subvención R35GM133732 de los Institutos Nacionales de Salud (a S.J.H.).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1.5 mL clear microfuge tubes | ThermoFisher Scientific | 90410 | |
1.5 mL tube magnetic rack | ThermoFisher Scientific | 12321D | |
1.5 mL tube-compatible cold centrifuge | Eppendorf | 5404000537 | |
10 cm sterile tissue culture plates | ThermoFisher Scientific | 150464 | |
10X T4 DNA Ligase buffer | New England Biolabs | B0202S | |
15 mL conical tubes | VWR | 89039-656 | |
1X TE buffer | ThermoFisher Scientific | 12090015 | |
200 µL PCR tubes | Eppendorf | 951010022 | |
2X quick ligase buffer | New England Biolabs | M2200 | Ligase Buffer |
5X KAPA HiFi buffer | Roche | 7958889001 | 5X high fidelity PCR buffer |
7-Amino-Actinomycin D (7-AAD) | Fisher Scientific | BDB559925 | |
96-well magnetic rack | ThermoFisher Scientific | 12027 or 12331D | |
96-well plate | VWR | 82006-636 | |
AMPure XP beads | Beckman Coulter | A63881 | polystyrene-magnetite beads; Due to potential variability between AMPure XP bead lots, it is recommended that your AMPure bead solution be calibrated. See manufacturer’s instructions |
Antibody to protein of interest | varies | ||
ATP | ThermoFisher Scientific | R0441 | |
BioMag Plus Concanavalin A beads | Polysciences | 86057-10 | ConA-conjugated paramagnetic microspheres |
BSA | |||
Calcium Chloride (CaCl2) | Fisher Scientific | AAJ62905AP | |
Cell sorter | BD FACSAria II cell sorter | Requires training | |
Cell-specific media for cell culture | Varies | ||
Chloroform | ThermoFisher Scientific | C298-500 | Chloroform is a skin irritant and harmful if swallowed; handle in a chemical fume hood using gloves, a lab coat, and goggles |
Computer with 64-bit processer and access to a super computing cluster | For computational analyses of resulting sequencing datasets | ||
DNA spin columns | Epoch Life Sciences | 1920-250 | |
dNTP set | New England Biolabs | N0446S | |
EGTA | Sigma Aldrich | E3889 | |
Electrophoresis equipment | varies | ||
Ethanol | Fisher Scientific | 22032601 | 100% vol/vol ethanol is highly flammable; handle in a chemical fume hood using gloves, a lab coat, and goggles |
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) | Fisher Scientific | BP2482100 | |
FBS | Sigma Aldrich | F2442 | |
Glycerol | Fisher Scientific | BP229-1 | |
Glycogen | VWR | 97063-256 | |
HEPES | Fisher Scientific | BP310-500 | |
Heterologous S. cerevisiae DNA spike-in | homemade | Prepared from crosslinked, MNase-digested, and agarose gel extracted genomic DNA purified of protein/RNA and diluted to 10 ng/mL. We recommend yeast genomic DNA, but other organisms can be used if needed. | |
Hydrochloric Acid (HCl) | Fisher Scientific | A144-212 | Hydrochloric Acid is very corrosive; handle in a chemical fume hood using gloves, a lab coat, and goggles |
Ice Bucket | varies | ||
Illumina Sequencing platform (e.g., NextSeq500) | Illumina | ||
Incubator with temperature and atmosphere control | ThermoFisher Scientific | 51030284 | |
KAPA HotStart HiFi DNA Polymerase with 5X KAPA HiFi buffer | Roche | 7958889001 | hotstart high fidelity polymerase |
Laminar flow hood | Bakery Company | SG404 | |
Manganese Chloride (MnCl2) | Sigma Aldrich | 244589 | |
Micropipette set | Rainin | 30386597 | |
Minifuge | Benchmark Scientific | C1012 | |
NEB Adaptor | New England Biolabs | E6612AVIAL | Adaptor |
NEB Universal primer | New England Biolabs | E6611AVIAL | Universal Primer |
NEBNext Multiplex Oligos for Illumina kit | New England Biolabs | E7335S/L, E7500S/L, E7710S/L, E7730S/L | Indexed Primers |
Negative control antibody | Antibodies-Online | ABIN101961 | |
Nuclease Free water | New England Biolabs | B1500S | |
PCR thermocycler | Eppendorf | 2231000666 | |
Phase lock tubes | Qiagen | 129046 | |
Phenol/Chloroform/Isoamyl Alcohol (PCI) | ThermoFisher Scientific | 15593049 | Phenol is harmful if swallowed or upon skin contact; handle in a chemical fume hood using gloves, a lab coat, and goggles |
Phsophate buffered saline (PBS) | ThermoFisher Scientific | 10814010 | |
Pipette aid | Drummond Scientific | # 4-000-100 | |
Polyethylene glycol (PEG) 4000 | VWR | A16151 | |
Potassium Chloride (KCl) | Sigma Aldrich | P3911 | |
Potassium Hydroxide (KOH) | Fisher Scientific | P250-1 | CAUTION KOH is an eye/skin irritant as a solid and corrosive in solution. Handle in a chemical fume hood using gloves, a lab coat, and goggles |
Protease Inhibitors | ThermoFisher Scientific | 78430 | |
ProteinA/G-MNase | Epicypher | 15-1016 | pA/G-MNase |
ProteinA-MNase, purified from pK19pA-MN | Addgene | 86973 | |
Proteinase K | New England Biolabs | P8107S | |
Qubit 1X dsDNA HS Assay Kit | ThermoFisher Scientific | Q33230 | |
Qubit Assay tubes | ThermoFisher Scientific | Q32856 | |
Qubit Fluorometer | ThermoFisher Scientific | Q33238 | |
Quick Ligase with 2X Quick Ligase buffer | New England Biolabs | M2200S | |
RNase A | New England Biolabs | T3010 | |
Sodium Acetate (NaOAc) | ThermoFisher Scientific | BP333-500 | |
Sodium Chloride (NaCl) | Sigma Aldrich | S5150-1L | |
Sodium dodecyl sulfate (SDS) | ThermoFisher Scientific | BP166-500 | SDS is poisonous if inhaled; handle with care in well ventilated spaces using gloves, eye protection, and an N95-grade respirator when handling |
Sodium Hydroxide (NaOH) | Fisher Scientific | S318-1 | NaOH is an eye/skin irritant as a solid and corrosive in solution. Handle in a chemical fume hood using gloves, a lab coat, and goggles |
Spermidine | Sigma Aldrich | S2626 | |
Standard Inverted Light Microscope | Leica | 11526213 | |
Standard lab agarose gel materials | Varies | ||
Standard lab materials such as serological pipettes and pipette tips | Varies | ||
T4 DNA Ligase | New England Biolabs | M0202S | |
T4 DNA Polymerase | New England Biolabs | M0203S | |
T4 PNK | New England Biolabs | M0201S | |
Tabletop vortexer | Fisher Scientific | 2215414 | |
Taq DNA Polymerase | New England Biolabs | M0273S | |
Thermomixer | Eppendorf | 5384000020 | Alternatively, can use a waterbath |
Tris base | Fisher Scientific | BP152-5 | |
Triton X-100 | Sigma Aldrich | 9002-93-1 | Triton X-100 is hazardous; use a lab coat, gloves, and goggles when handling |
Trypsin | Fisher Scientific | MT25052 | |
Tube rotator | VWR | 10136084 | |
USER enzyme | New England Biolabs | M5505S |
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