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El presente protocolo describe el aislamiento de microARN de las glándulas salivales de las garrapatas y las vesículas extracelulares purificadas. Este es un procedimiento universal que combina reactivos y suministros de uso común. El método también permite el uso de un pequeño número de garrapatas, lo que resulta en microARN de calidad que se pueden secuenciar fácilmente.
Las garrapatas son ectoparásitos importantes que pueden vectorizar múltiples patógenos. Las glándulas salivales de las garrapatas son esenciales para la alimentación, ya que su saliva contiene muchos efectores con propiedades farmacéuticas que pueden disminuir las respuestas inmunes del huésped y mejorar la transmisión de patógenos. Un grupo de tales efectores son los microARN (miARN). Los miRNAs son secuencias cortas no codificantes que regulan la expresión génica del huésped en la interfaz garrapata-huésped y dentro de los órganos de la garrapata. Estos pequeños ARN se transportan en la saliva de la garrapata a través de vesículas extracelulares (EV), que sirven para la comunicación inter e intracelular. Se han identificado vesículas que contienen miRNAs en la saliva de las garrapatas. Sin embargo, se sabe poco sobre los roles y perfiles de los miRNAs en las vesículas y glándulas salivales de las garrapatas. Además, el estudio de vesículas y miRNAs en la saliva de garrapatas requiere procedimientos tediosos para recolectar saliva de garrapatas. Este protocolo tiene como objetivo desarrollar y validar un método para aislar miRNAs de vesículas extracelulares purificadas producidas por cultivos de órganos ex vivo . Los materiales y la metodología necesarios para extraer miRNAs de vesículas extracelulares y glándulas salivales de garrapatas se describen aquí.
Las garrapatas son ectoparásitos que vectorizan muchos patógenos a la vida silvestre, el ganado, los humanos y sus mascotas 1,2. La alimentación con garrapatas resulta en una pérdida económica significativa al causar daños en la piel, reducir el peso y la producción de leche debido a la anemia severa y la transmisión de patógenos potencialmente mortales que causan enfermedades 1,3,4,5. Las prácticas de control actuales para el manejo de las poblaciones de garrapatas se centran en el ....
Todos los experimentos con animales se realizaron siguiendo el protocolo de uso de animales (AUP # 2020-0026) aprobado por el comité institucional de cuidado y uso de animales (AICUC) de la Universidad de Texas A & M. Las especies de garrapatas, Ixodes scapularis y Rhipicephalus (Boophilus) microplus, y los conejos blancos machos de Nueva Zelanda, de 42 a 72 días de edad, se utilizaron para el presente estudio. I. scapularis fue recibido del Centro para el Control de Enfermedades (CDC) y la Universidad Estatal de Oklahoma, certificado como libre de patógenos. R. microplus fue criado en el Laboratorio de Investigación de Garrapatas d....
El presente protocolo proporciona una metodología detallada para extraer miRNAs de glándulas salivales y EV. Según los resultados, este protocolo es efectivo para el aislamiento de miRNA de adultos de dos especies diferentes de garrapatas, I. scapularis y R. microplus, y también se puede usar potencialmente en otras especies de garrapatas. La concentración de EV (partículas/ml) se midió a través de NTA. Para R. microplus, cada género y etapa de la vida contenía tres réplicas.......
El protocolo actual proporciona una metodología detallada para extraer miRNA de las glándulas salivales y los EV. Sin embargo, hay consideraciones importantes, todas las cuales se detallan en las notas para cada sección de este protocolo. La cápsula y la malla deben asegurarse durante la alimentación con garrapatas para evitar que las garrapatas se escapen. La preparación y colocación de la cápsula se describen en Koga et al.40. Se deben realizar varias réplicas de las disecciones de garr.......
Los autores declaran no tener conflicto de intereses.
Estamos muy agradecidos por la asistencia del Laboratorio de Garrapatas de la Fiebre del Ganado en Edinburg, Texas. Nos gustaría agradecer a Michael Moses, Jason Tidwell, James Hellums, Cesario Agado y Homer Vasquez. También nos gustaría agradecer la asistencia de Sarah Sharpton, Elizabeth Lohstroh, Amy Filip, Kelsey Johnson, Kelli Kochcan, Andrew Hillhouse, Charluz Arocho Rosario y Stephanie Guzmán Valencia durante todo el proyecto. Nos gustaría agradecer al Grupo de Escritura de Mujeres en Entomología (AWE) de Texas A&M Aggie por su ayuda y consejos durante la redacción de este manuscrito. Los siguientes reactivos fueron proporcionados por los Centros para el Contro....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.22 µm syringe filter | GenClone | 25-240 | |
1 µm nylon syringe filter | Tisch Scientific | 283129028 | |
1 inch black adhesive | Amazon | B00FQ937NM | Capsule |
10 mL needeless syringe | Exelint | 26265 | |
3' and 5' Adapters | Illumina | 20024906 | NEXTFLEX Small RNA-Seq Kit |
4 mm vannas scissors | Fine Science Tools | 15000-08 | |
4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazineethanesulfonic acid | Sigma-Aldrich | 1.1523 | |
70Ti rotor | Beckman Coulter | 337922 | |
Amphotericin | Corning | 30-003-CF | |
Beads | Illumina | 20024906 | NEXTFLEX Small RNA-Seq Kit |
Bioanalyzer | Agilent | G2939BA | |
Bioanalyzer kit | Agilent | 5067-1513 | |
Centrifuge 5425 | Eppendorf | ||
Chloroform | Macron | UN1888 | |
Cyverse Discovery Enviornment | https://cyverse.org/discovery-environment | ||
Dissecting microscope | Nikon | SMZ745 | |
Double-sideded carpet tape | amazon | 286373 | |
Falcon Tubes, 50 mL | VWR | 21008-940 | |
Fetal Bovine Serum | Gibco | FBS-02-0050 | |
fine forceps | Excelta | 5-S-SE | |
Foamies, 2 mm | Amazon | B004M5QGBQ | Capsule |
Isoflurane | Phoenix Pharmaceuticals manfactured | 193.33165.3 | |
Ixodes scaplaris | CDC, Oklahoma State University | ||
L15C300 medium | In-lab | ||
lipoprotein-cholesterol concentrate | MPI | 02191476-CF | |
Microscope slide | VWR | 10118-596 | |
miRDeep2 | https://github.com/rajewsky-lab/mirdeep2 | ||
M-MuLV Reverse Transcriptase | Illumina | 20024906 | NEXTFLEX Small RNA-Seq Kit |
molecular grade ethanol | Fischer Bioreagents | UN1170 | |
multi-well 24 well tissue culture treated plate | Corning | 353047 | |
Nanopaticle Tracking Analyzer machine | Malvern Panalytical | ||
Nanosep with 300K Omega filter | Pall Corporation | OD3003C33 | |
NEXTFLEX Small RNA-Seq Kit v3 | PerkinElmer | ||
NextSeq 500/550 High Output Kit (75 cycles) | Illumina | 20024906 | |
Optima XPN 90 Ultracentrifuge | Beckman Coulter | ||
Penicillin | Thermofischer Scientific | ICN19453780 | |
Pippettes | Ependorff | ||
polycarbonate centrifuge bottle | Beckman Coulter | 355618 | |
Qiagen miRNeasy kit | Qiagen | 217084 | |
QIAzol lysis reagent | Qiagen | 79306 | |
Qubit | Thermofisher | Q32880 | |
Qubit kit | Thermofisher | Q10212 | |
Rabbits | Charles River | ||
Reverse Universal Primer | Illumina | 20024906 | NEXTFLEX Small RNA-Seq Kit |
Rhipicephalus microplus | Cattle Fever Tick Research Labratoty | ||
Rifampicin | Fischer Bioreagents | 215544 | |
RNAlater | Invitrogen | 833280 | |
RNAse free tubes | VWR | 87003294 | |
RNAse inhibitor | Thermo Fischer | 11111729 | |
RNAse/DNAse free water | Qiagen | 217084 | |
RNeasy Minelute spin column | Qiagen | 217084 | Qiagen miRNeasy kit |
RPE Buffer | Qiagen | 217084 | Qiagen miRNeasy kit |
RT Buffer | Illumina | 20024906 | NEXTFLEX Small RNA-seq kit |
RT Forward Primer | Illumina | 20024906 | NEXTFLEX Small RNA-seq kit |
RTE Buffer | Qiagen | 217084 | Qiagen miRNeasy kit |
Sodium bicarbonate | Sigma-Aldrich | S6014-25G | |
Sorvall ST16 | Thermo Fischer | 75004380 | |
Sterilized Gauze sponges | Covidien | 2187 | |
Sterilized PBS | Sigma | RNBK0694 | |
streptomycin | thermofischer Scientific | 15240062 | |
TapeStation | Aligent | G2991BA | |
Tear Mender Instant Fabric and Leather Adhesive | Amazon | 7.42836E+11 | Capsule |
Tissue Adhesive | 3M VetBond | ||
Triple Antibiotics | dechra | 17033-122-75 | |
Tryptose phosphate broth | BD | BD 260300 |
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