Este estudio fue financiado por los Institutos Nacionales de Salud (NIH) Core Grant (5P30EY008098) y los siguientes fondos de XW: Subvenciones del NIH R01EY016099 e Investigación para Prevenir la Ceguera Premio al Desarrollo Profesional. Damos las gracias a Kira Lathrop de asistencia en la imagen confocal.

Día 1. Preparación 1. Establecer cruces de pescado Establecer cruces de pares de pez cebra en la noche. Para evitar el apareamiento al azar antes de la hora que desee, utilice separadores para separar los peces de ambos sexos en los cassettes de apareamiento. Que expresan GFP peces transgénicos se utilizan como fuente de blastómeros de los donantes. La línea pt104 transgénicos (Zou et al., 2008), se utiliza aquí, expresa GFP doquier bajo el control del promotor EF1. La expresión de GFP permite la visualización de las células del donante de imágenes en vivo. Otras líneas de peces transgénicos que expresan proteínas fluorescentes adecuados pueden ser utilizados para necesidades específicas. 2. Preparar en forma de cuña de agarosa pozos para la celebración de embriones Vierta derretida 1% de agarosa, preparados de huevo en el agua E3 (Westerfield, 2007), en una placa de Petri. Flotar un molde de plástico que tiene forma de cuña, protuberancias en la solución de agarosa y dejar que la solución de agarosa completamente solidifique. Retire el molde con cuidado y sumerja la cama de agarosa con agua E3. 3. Prepare las agujas del trasplante Utilice un extractor de aguja vertical (David Kopf Instruments) en ajuste de potencia de 11,5 a fabricar agujas tirando pipetas capilares de vidrio (Instrumento Mundial de Precisión). Buenos consejos aguja cónica con ejes largos. Moler las puntas de aguja en un ángulo de 45 grados con una amoladora Micro (Marishige) hasta las aberturas biselado de 40 45μm de diámetro interior se obtiene (Fig. 1A). Para limpiar las puntas de aguja, conectar una manguera a la parte roma de la aguja, conectar la manguera a una jeringa, y luego extraerla, y liberar una solución al 10% de ácido fluorhídrico hasta que toda la suciedad visible desaparezca. Después, lave la punta con agua destilada, seguido de etanol al 100%. Seque al aire las agujas hasta que se evapore el etanol. Es importante asegurarse de que las puntas estén completamente secas: el etanol residual va a arruinar las agujas durante la etapa de pulido de alta temperatura. Para suavizar y pulir las asperezas de las puntas de aguja, cocinar las puntas de aguja con el calor generado por el filamento de un falsificador Micro (Marishige). No permita que las puntas de la aguja toca el filamento durante el pulido. La cantidad de electricidad que pasa a pesar de que el filamento y la distancia entre el filamento y la punta de la aguja puede ser ajustada para alcanzar las condiciones deseadas de calefacción. La temperatura no debe ser demasiado alto: esta se derrite y se deforman las puntas de aguja. Después de las aristas son alisadas, cuidadosamente tocar el filamento se calienta con la punta de la aguja y tire suavemente el filamento de la aguja para generar un extremo en punta (Fig. 1B). Una aguja, suave y limpia es fundamental para obtener blastómeras intactas de los donantes y para no dañar a los embriones de acogida. 4. Prepare una investigación de embriones de posicionamiento Tire de una pipeta de vidrio sobre una llama de gas para obtener una sonda fina de vidrio con un extremo alisado. Esta sonda se utiliza para colocar los embriones en la orientación correcta antes del trasplante. Día 2. Blastómero trasplante 1. Recoger y embriones dechorionate Al día siguiente, quitar los separadores de los cartuchos de cruz para que los peces a su compañero. Colocar los embriones en una placa Petri con agua E3. Luego, los embriones dechorionate manualmente arrancando el corion de los embriones con un par de pinzas finas. Use una pipeta de vidrio con eje doblado cuidadosamente para transferir los embriones dechorionated en agarosa pozos. Evitar cualquier contacto de los embriones con el aire, lo que causa que los embriones a punto de estallar. Deje que los embriones se desarrollan a 28,5 ° C en los pozos de agarosa hasta 3 horas después de la fecundación, o HPF. 2. Establecer un aparato de trasplante Mientras que los embriones se desarrollan, crear un aparato de trasplante mediante la conexión de la aguja del trasplante a la llena de aceite mineral micro-sistema de bombeo. Asegúrese de que el sistema no se escapa y no hay burbujas de aire atrapadas en el sistema. Volver llenar la aguja trasplante completo con aceite mineral, con excepción de los 0,5 a 1 l de espacio en la apertura de la punta. 3. El trasplante de blastómeros Para trasplante de blastómeros, el uso de una sonda de vidrio para orientar el posicionamiento del lado blastómeros de los embriones 3-4-HPF hacia arriba. A continuación, insertar suavemente la aguja del trasplante en un embrión de donante y poco a poco aspirar 05.20 blastómeras en la aguja. Insertar la aguja blastómero lleno en un embrión de acogida y liberación de los blastómeros lentamente. El sitio en el que los blastómeros son liberados influirá en su progenie localizar en las etapas posteriores del desarrollo. Para analizar el desarrollo de la retina y el cerebro, las células liberan en el polo animal. Durante el trasplante, asegúrese de que la punta de la aguja no contacto con el aire. Para reducir al mínimo los daños mecánicos, los embriones de acogida se queda en los pozos de agarosa a 28,5 ° C hasta el día siguiente. Entonces, tTRANSFERENCIA los embriones mosaico de placas de 24 pocillos previamente recubierto con 0,5 ml de agarosa al 1%, con un embrión en cada pozo. 1 ml de agua de huevo E3 se añade a cada pocillo. Para prevenir las infecciones bacterianas, añadir 10 l de 100 veces la penicilina y estreptomicina para el agua de huevo E3. Día 3. Incorporación de imágenes en vivo y de los embriones mosaico 1. Incorporación de embriones Prepare un 1,5% de agarosa de bajo punto de fusión (LMP) en agua de huevo E3 y mantener la solución en un baño de 30 ° C el agua. La transferencia de un embrión de mosaico a un plato de cultivo de tejidos FluoroDish con fondo de cristal de 0,17 mm de espesor (Instrumentos del Mundo de Precisión). Eliminar el agua E3 exceso de salir del embrión apenas cubierta por una cantidad mínima de E3. Añadir 30-50 l LMP fundido 1,5% para el embrión. Rápidamente la posición del ojo o el cerebro lo más cerca del fondo de cristal como sea posible antes de que la solución de agarosa solidifica. Después de que la solución se enfríe, añadir más solución de agarosa para asegurar aún más los embriones en su lugar. Luego, sumerja la agarosa solidificada bloque con 3.2 ml de agua de huevo E3. 2. Microscopía confocal Por microscopía confocal, un objetivo de inmersión en agua invertido (Olympus, PlanApo, 40 X/0.90 WLSM, Japón) con una profundidad de foco grande se utiliza. Una gota de agua se agrega en el objetivo y luego colocar un plato de cultivo de tejidos FluoroDish en el objetivo. Para el desarrollo de la imagen, realizar time-lapse de imágenes de la toma de fotografías de los embriones cada 5 minutos. Dependiendo de la naturaleza de los experimentos, los intervalos de tiempo entre las tomas deben ser ajustados. Los resultados representativos La figura 2 muestra una representación de 24 HPF pez cebra mosaico. La expresión de GFP se destacan las células del donante en verde. Las células neuroepiteliales retina abarcan todo el espesor de la pared de la retina. La película muestra los movimientos de las células del donante en el cerebro de acogida en 24 HPF. Células aviso morfologías cambiar con el tiempo. <img src="/files/ftp_upload/1924/1924fig1.jpg" alt="Figura 1" /> Figura 1. Las formas de las puntas de aguja trasplante. A. La apertura biselada de la punta de una aguja estaba libre de escombros después de lavados con ácido fluorhídrico. B. Una punta se generó en la punta de la aguja. <img src="/files/ftp_upload/1924/1924fig2.jpg" alt="Figura 2" /> Figura 2. Visualización de las buenas prácticas agrarias-que expresan las células del donante en un quimérico embriones de pez cebra en 24 HPF. El panel izquierdo muestra las señales de las buenas prácticas agrarias en el cerebro y la retina. El panel central es una imagen de campo claro del embrión. El panel derecho muestra la imagen fusionada. Movie 1. Imágenes en vivo de las células GFP donante positivo demostrado los grandes cambios en la morfología de las células cerebrales neuroepiteliales durante el desarrollo. Los cuadros individuales de la película fueron recogidos cada 5 minutos entre las 24 y 25 HPF. <a href="http://www.jove.com/files/ftp_upload/1924/1924_Wei_Movie1.wmv">Haga clic aquí para ver la película</a> .

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	<li>Zou, J., Lathrop, K., Sun, M., Wei, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intact+RPE+maintained+by+Nok+is+essential+for+retinal+epithelial+polarity+and+cellular+patterning+in+zebrafish.">Intact RPE maintained by Nok is essential for retinal epithelial polarity and cellular patterning in zebrafish.</a> Journal of Neuroscience. 28 (50), 13684-13695 (2008).</li><li>Westerfield, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+guide+for+the+laboratory+use+of+zebrafish+(Danio+rerio).">A guide for the laboratory use of zebrafish (Danio rerio).</a> THE ZEBRAFISH BOOK. , (2007).</li><li>Ho, R. K., Kane, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cell-autonomous+action+of+zebrafish+spt-1+mutation+in+specific+mesodermal+precursors.">Cell-autonomous action of zebrafish spt-1 mutation in specific mesodermal precursors.</a> Nature. 348, 728-730 (1990).</li><li>Catalano, A., Raymond, P., Goldman, D., Wei, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Zebrafish+dou+yan+Mutation+Causes+Patterning+Defects+and+Extensive+Cell+Death+in+the+Retina.">Zebrafish dou yan Mutation Causes Patterning Defects and Extensive Cell Death in the Retina.</a> Developmental Dynamics. 236 (5), 1295-1236 (2007).</li></ol>

En este vídeo, se demuestra un método para el trasplante de blastómeros para analizar el desarrollo de la retina y el cerebro en el pez cebra. Este protocolo también se puede utilizar para analizar el desarrollo de otros tejidos y órganos, simplemente la liberación de los blastómeros de los donantes a los lugares correspondientes en los embriones de acogida. El etiquetado con las moléculas de las buenas prácticas agrarias se obtiene un fondo más limpio que el etiquetado con tinte fluorescente dextrano conjugad...

E3 agua de huevo: <ul><li> 5 mM NaCl </li><li> 0,17 mM KCl </li><li> 0,33 mM CaCl 2 </li><li> 0,33 mM MgSO 4 </li><li> 0,1% de azul de metileno </li></ul>

transplantation of gfp-expressing blastomeres for live imaging of retinal and brain development in chimeric zebrafish embryos

Las células cambian mucho en su ubicación y la propiedad durante la embriogénesis. Estos cambios están regulados por las interacciones entre las células y su medio ambiente. Embriones quiméricos, que se componen de células de los antecedentes genéticos diferentes, son una gran herramienta para estudiar las interacciones célula-célula mediada por los genes de interés. La transparencia de embriones de pez cebra en las primeras etapas de desarrollo permite la visualización directa de la morfogénesis de los tejidos y órganos a nivel celular. Este sentido, demuestran un protocolo para generar quimérico retinas y cerebros de embriones de pez cebra y para realizar las imágenes en vivo de las células del donante. El protocolo contempla la preparación de las agujas del trasplante, el trasplante de las buenas prácticas agrarias-que expresa blastómeras donantes para GFP-negativos los ejércitos, y el examen de comportamiento de los donantes de células en la microscopía confocal en vivo. Con ligeras modificaciones, este protocolo también se puede utilizar para estudiar el desarrollo embrionario de otros tejidos y órganos en el pez cebra. Las ventajas de utilizar la GFP a las células de los donantes etiqueta también se discuten.

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Transplantation of GFP-expressing Blastomeres for Live Imaging of Retinal and Brain Development in Chimeric Zebrafish Embryos

Demostramos un protocolo para generar embriones quiméricos de pez cebra para vivir el comportamiento de imagen celular durante la embriogénesis.

El trasplante de las buenas prácticas agrarias-que expresa Blastómeros de imágenes en vivo del desarrollo de la retina y el cerebro en embriones de pez cebra quiméricos

Cells change extensively in their locations and property during embryogenesis. These changes are regulated by the interactions between the cells and their ...

transplantation-gfp-expressing-blastomeres-for-live-imaging-retinal

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Biology

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