Los autores desean agradecer al Programa Nacional de Investigación y Desarrollo Clave de China (Subvención No. 2021YFD2200502), a la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (Subvención No. 31971736) por el apoyo financiero.

1. Preparación de plántulas de bambú.
<ol><li>Prepare plántulas de bambú moso (Phyllostachys edulis) utilizando semillas cosechadas en Guilin, Guangxi, China. Comience remojando las semillas en agua durante 2-3 días, asegurándose de cambiar el agua diariamente. A continuación, crea un sustrato mezclando tierra y vermiculita en una proporción de 3:1.</li>
	<li>Siembre las semillas empapadas en el sustrato para que germinen. Mantener las plántulas en condiciones de laboratorio, manteniendo la temperatura entre 18-25 °C. Asegurar un fotoperiodo de 16 h de luz/8 h de oscuridad con una intensidad de luz de 250-350 μmol/m2/s durante la fase de luz.</li>
	<li>Mantener una humedad relativa de aproximadamente el 60%. Para la infección por Agrobacterium, use plántulas que tengan 15 días de edad y una altura de 2-10 cm, que es la mejor etapa para la transformación. NOTA: Debido a que la floración del bambú es impredecible, las semillas no están disponibles todos los años. Las semillas generalmente se almacenan durante 2-3 años a 4 °C en un ambiente seco y aún pueden mantener una viabilidad de más del 20%.</li>
</ol>2. Preparación de plásmidos y Agrobacterium
<ol><li>Plásmidos: Para validar el efecto de expresión transitoria, se emplea la construcción pHDE-35S::RUBY que contiene un gen reportero visible impulsado por el promotor CaMV 35S 10. Para la edición de genes, utilice la construcción pCambia1300-Ubi::Cas9, que lleva el gen Cas9 impulsado por el promotor Ubi 11 del maíz. Inserte las secuencias guía de sgRNA de PeVDE y otros genes diana entre los dos sitios AarI en la construcción pCambia1300-Ubi::Cas9 9.</li>
	<li>Inserte las secuencias de ARN guía CRISPR/Cas9 entre los dos sitios de endonucleasa de restricción AarI de la construcción pCambia1300-Ubi::Cas9 , incluidos los genes diana PeVDE y PeCCR5 .</li>
	<li>Agregue GGCA al extremo 5' de la secuencia de 20 nucleótidos y sintetice una secuencia de ADN monocatenario. Complemente inverso la secuencia de 20 nucleótidos y agregue AAAC al extremo 5', luego sintetice otra secuencia de ADN monocatenario.</li>
	<li>Diluir ambas secuencias de ADN monocatenario a una concentración de 10 nM/L en agua diluida, mezclar bien y calentar a 95 °C durante 5 min. Deje que la mezcla se enfríe a temperatura ambiente, lo que da como resultado la formación de adaptadores de doble hebra.</li>
	<li>Conecte los adaptadores con el fragmento lineal pCambia1300-Ubi::Cas9 digerido por la endonucleasa AarI utilizando la ADN ligasa T4 y secuencie el vector CRISPR/Cas9 construido para obtener la construcción de orientación génica deseada.</li>
	<li>Para transformar plásmidos en Agrobacterium, utilice el método de congelación-descongelación de la siguiente manera: mezcle 1 μL de los plásmidos (concentración: 10 - 1.000 ng/μL) con 100 μL de células competentes para Agrobacterium (eficiencia de traducción: > 1 x 104 unidades formadoras de colonias/μg) y mézclelos suavemente. Coloca la mezcla en hielo durante 5 min. Transfiera la mezcla a nitrógeno líquido durante 5 min.</li>
	<li>Descongelar la mezcla al baño maría a 37 °C durante 5 min. Añadir 500 μL de medio Luria-Bertani (LB) a la mezcla e incubar en una incubadora agitadora a 28 °C a 200 rpm durante 2-3 h. En el caso de los plásmidos pHDE-35S::RUBY, introducirlos individualmente en las cepas AGL1, GV3101, LBA4044 y EHA105 de Agrobacterium tumefaciens (A. tumefaciens)12. En el caso de los plásmidos CRISPR/Cas9, introdúzcalos en la cepa GV3101 de A. tumefaciens.</li>
	<li>Cultivar Agrobacterium en medio de peptona de extracto de levadura (YEP) (10 g de extracto de carne de vacuno, 10 g de extracto de levadura y 5 g de NaCl por L) con los antibióticos correspondientes (espectinomicina para 35S::RUBY y kanamicina para CRISPR/Cas9) a 28 °C. Las colonias individuales se observaron 36-48 h después del cultivo.</li>
	<li>Recoja y transfiera las colonias a medio líquido YEP (con los antibióticos correspondientes) para un mayor crecimiento. Después de 24-36 h, utilice los cebadores de RUBY-F y RUBY-R (Tabla 1) para realizar PCR y confirmar la transferencia exitosa de plásmidos a Agrobacterium.</li>
	<li>Transfiera 1 mL del Agrobacterium transformado con éxito en 100 mL de medio YEP líquido fresco (con los antibióticos correspondientes) y luego crezca durante la noche a 28 °C a un OD600 de 0,8.</li>
	<li>Centrifugar la suspensión bacteriana a 4.000 x g durante 5 min a 4 °C, lavar el gránulo bacteriano una vez con el medio de infiltración de suspensiones (10 mM MgCl2 y 10 mM MES-KOH [pH 5,6]), y luego centrifugar de nuevo. Vuelva a suspender el gránulo bacteriano en un medio de infiltración en suspensión a un diámetro exterior600 de 0,6 para la transformación del bambú.</li>
</ol>3. Agrobacteria mediada en el sistema de transformación de plantas
<ol><li>Prepárate para la transformación; Retire con cuidado las plántulas con raíces adheridas al suelo del sustrato, asegurándose de que las raíces permanezcan intactas. Envuelva las plántulas con papel de aluminio para mantener la humedad y evitar que el suelo se desprenda (Figura 1A).</li>
	<li>Transfiera las plántulas envueltas a un ambiente con mayor humedad (humedad relativa del aire >90%) y menor iluminación (intensidad inferior a 50 μmol/m 2/s) durante2 h.</li>
	<li>Con una aguja afilada de una jeringa, enrolle la parte superior de las hojas inmaduras rizadas (aproximadamente a 1-2 cm de la parte superior) de las plántulas de bambú una o dos veces (como lo indican los triángulos rojos en la Figura 1A).</li>
	<li>Luego, sumerja la parte superior herida de las plántulas en suspensiones de Agrobacterium. Realice todo el proceso, desde la herida hasta la inmersión en Agrobacterium rápidamente, ya que la herida fresca aumentará la eficiencia de la inoculación.</li>
	<li>Transfiera inmediatamente las plántulas a una cámara de vacío con una presión de 25-27 mmHg durante 2 minutos (Figura 1B).</li>
	<li>Después de aspirar, desenvuelva con cuidado las plántulas y vuelva a plantarlas en el sustrato. Coloque las plántulas en luz tenue u oscuridad (<50 μmol/m 2/s) con alta humedad (HR>90%) a temperatura ambiente (18-25 °C) durante2 días. Posteriormente, cultive las plántulas en condiciones normales de crecimiento, regándolas cada 5-7 días. Observar sus fenotipos para proporcionar materiales para experimentos posteriores.</li>
</ol>4. Diseño de ARN de guía única (sgRNA) para la edición de genes
<ol><li>Identificar un sitio de motivo adyacente protoespaciador (PAM) ubicado cerca de un dominio específico y conservado de la secuencia del gen diana. Asegúrese de que la secuencia PAM específica sea NGG en este sistema CRISPR/Cas9. Verifique la especificidad en el objetivo de la secuencia seleccionada realizando una búsqueda de BlastN en la base de datos del genoma del bambú. Asegúrese de que el sgRNA sea único, especialmente en la región aguas arriba y cerca del PAM 9,11. NOTA: Esta comparación reducirá efectivamente los posibles sitios fuera del objetivo en el genoma afectados por el proceso de edición de genes.</li>
	<li>Diseñe dos sgRNAs (sgRNA-1 y sgRNA-2) en el primer exón del gen PeVDE 13. Incluya los sitios de restricción de la edad I aguas arriba de la PAM en sgRNA-1 y los sitios de restricción XbaI aguas arriba de laPAM en sgRNA-2. Diseñe un sgRNA en el cuarto exón del gen PeCCR5, que codifica el motivo conservado de KNWYCYGK. Este motivo es fundamental para la catálisis de CCRs14.</li>
	<li>Diseñe una secuencia espaciadora de 20 nucleótidos adyacente al sitio PAM. Esta secuencia espaciadora guiará a la enzima Cas9 al sitio objetivo para la escisión del ADN y la posterior edición de genes. NOTA: Es aconsejable elegir una región diana aguas arriba del sitio de escisión de la enzima endonucleasa dentro del sitio PAM. Esto facilitará la validación de la eficiencia de la edición de genes.</li>
</ol>5. Diseño de cebadores y PCR
<ol><li>Diseñe manualmente cebadores específicos para la amplificación de los fragmentos PeVDE y PeCCR5 . Diseñe los cebadores aguas arriba y aguas abajo para que se ubiquen al menos a 100 pb fuera del sitio objetivo, con una diferencia de longitud de más de 100 pb para permitir una separación de bandas distintiva durante la electroforesis. Diseñar cebadores para la amplificación de RUBY dentro de los primeros 500 pb del gen. En la Tabla 1 se proporciona una lista de todas las imprimaciones utilizadas.</li>
	<li>Utilice una ADN polimerasa de alta fidelidad para la PCR. En este caso, utilice la ADN polimerasa con alta fidelidad y amplificación eficiente en la clonación de genes.</li>
	<li>Prepare la mezcla de reacción de PCR de la siguiente manera: tampón 5x (Mg2+ Plus): 4 μL; Mezcla de dNTP (2,5 mM cada una): 1,6 μL; Cebadores directos e inversos (10 pmol cada uno): 1 μL cada uno; ADN del genoma del bambú (aproximadamente 50 ng); ADN polimerasa (2,5 U/μL): 0,2 μL; Diluir el agua hasta un volumen total de 20 μL.</li>
	<li>Siga las condiciones de funcionamiento de la PCR: Desnaturalización inicial a 98 °C durante 5 min; Desnaturalización a 98 °C durante 10 s; Recocido a 56 °C durante 5 s; Extensión a 72 °C durante 30 s; Repita la desnaturalización hasta la extensión durante 32 ciclos; Extensión final a 72 °C durante 5 min; Mantener a 4 °C indefinidamente. NOTA: Las condiciones de PCR se proporcionan como ejemplo y es posible que deban optimizarse para aplicaciones u objetivos específicos.</li>
</ol>6. Extracción de ADN, digestión de enzimas endonucleasas y secuenciación
<ol><li>Separe la región con valores más bajos de NPQ de las hojas frescas de bambú con unas tijeras, como se identifica en el fluorímetro PAM de imágenes (consulte el paso 7.4). Congele las muestras de hojas con nitrógeno líquido y transfiera las muestras de hojas congeladas a un mortero. Muele las muestras hasta obtener un polvo fino con un mortero, agregando suficiente nitrógeno líquido durante el proceso de molienda. Este paso ayuda a liberar el contenido celular, incluido el ADN.</li>
	<li>Extraiga el ADN genómico de la hoja en polvo utilizando el método de bromuro de amonio de cetiltrimetilamonio (CTAB). Añadir 50 mg de muestras de polvo de hojas a 800 μL de una solución de CTAB al 2%. Mezclar bien la muestra e incubar a 65 °C durante 30 min, agitando suavemente cada 5 min.</li>
	<li>Agregue un volumen igual de cloroformo/alcohol isoamílico (24:1, v/v) y agite vigorosamente la mezcla. Después de la centrifugación a 8.000 g durante 8 min, transfiera el sobrenadante a un tubo nuevo.</li>
	<li>Añadir un volumen igual de cloroformo/alcohol isoamílico y repetir el paso 6.3. Añadir un volumen igual de isopropanol helado e invertir el tubo varias veces antes de colocarlo a -20 °C durante 30 min. Después de centrifugar a 8.000 x g durante 5 min, deseche el sobrenadante.</li>
	<li>Lavar el gránulo de ADN 2 veces con etanol al 75% a 4 °C, luego disolver en 50 μL de agua.</li>
	<li>Amplifique el ADN genómico que contiene el sitio diana de los genes diana de hojas de bambú de tipo salvaje e infectadas con Agrobacterium con el protocolo del paso 5.4.</li>
	<li>Realizar la digestión de la enzima endonucleasa de los productos de PCR. Seleccione una enzima específica que reconozca los sitios de restricción deseados dentro de los fragmentos de ADN amplificados. Utilice las endonucleasas AgeI y XbaI para la digestión.</li>
	<li>Preparar una mezcla de reacción compuesta por AgeI o XbaI (20 unidades/μL)- 1 μL, 1 μg de productos de PCR, 10x tampón- 5 μL, y añadir agua hasta un volumen total de 50 μL. Incubar a 37 °C durante 1 h.</li>
	<li>Analizar la proporción de fragmentos de ADN digeridos mediante electroforesis en gel. Compare los fragmentos digeridos de las muestras de tipo salvaje e infectadas por Agrobacterium para evaluar la eficiencia de la edición de genes.</li>
	<li>Marque las secuencias del adaptador de transposasa TCGTCGGCAGCGTCAGATGTGTGTATAAGAGACAG y GTCTCGTGGGCTCGGAGATGTGTATAAGAGACAG en el extremo 5' de los cebadores directo e inverso, respectivamente, para la amplificación de los fragmentos PeVDE y PeCCR5 9,15. Utilice el protocolo descrito en el paso 5.4 para la amplificación. Preparar los productos de PCR (antes de la digestión) para la secuenciación profunda.</li>
</ol>7. Medición de la fluorescencia de la clorofila de los valores de NPQ en hojas
<ol><li>Antes de las mediciones, exponga las plántulas de bambú a condiciones de alta intensidad de luz de 1200 μmol/m 2/s durante2 h. Esta exposición aumenta la cantidad de luz absorbida y activa el sistema de fotoprotección en las hojas.</li>
	<li>Utilice un fluorímetro PAM para medir la fluorescencia de clorofila PS II in vivo de las hojas de bambú. Ajuste la intensidad de la luz actínica a 800 μmol/m2/s para mediciones de fluorescencia de 6 minutos. Durante este período, aplique un pulso de saturación cada 30 s para obtener curvas de fluorescencia de clorofila. Los valores estables de las curvas se utilizarán para los cálculos13.</li>
	<li>Calcule el enfriamiento no fotoquímico (NPQ) utilizando la fórmula: NPQ = (F m - F m') / F m' donde F m representa la fluorescencia máxima en el estado adaptado a la oscuridad, y Fm' representa la fluorescencia máxima en cualquier estado adaptado a la luz.</li>
	<li>Supervise los valores de NPQ desde la interfaz visual del software de imágenes. El software permite el análisis y la visualización en tiempo real de los datos de fluorescencia, incluidos los valores NPQ.</li>
</ol>

Desarrollo de métodos de transformación y edición de genes en bambú

<ol>
	<li>Jiang, Z. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> World Bamboo and Rattan (in Chinese). , (2002).</li><li>Ye, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+efficient+plant+regeneration+and+transformation+system+of+ma+bamboo+(Dendrocalamus+latiflorus+Munro)+started+from+young+shoot+as+explant.">An efficient plant regeneration and transformation system of ma bamboo (Dendrocalamus latiflorus Munro) started from young shoot as explant.</a> Frontiers in Plant Science. 8, 1298 (2017).</li><li>Ye, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Robust+CRISPR/Cas9+mediated+genome+editing+and+its+application+in+manipulating+plant+height+in+the+first+generation+of+hexaploid+Ma+bamboo+(Dendrocalamus+latiflorus+Munro).">Robust CRISPR/Cas9 mediated genome editing and its application in manipulating plant height in the first generation of hexaploid Ma bamboo (Dendrocalamus latiflorus Munro).</a> Plant Biotechnology Journal. 18 (7), 1501-1503 (2020).</li><li>Xiang, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Production+of+purple+Ma+bamboo+(Dendrocalamus+latiflorus+Munro)+with+enhanced+drought+and+cold+stress+tolerance+by+engineering+anthocyanin+biosynthesis.">Production of purple Ma bamboo (Dendrocalamus latiflorus Munro) with enhanced drought and cold stress tolerance by engineering anthocyanin biosynthesis.</a> Planta. 254 (3), 50 (2021).</li><li>Huang, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+efficient+genetic+transformation+and+CRISPR/Cas9-based+genome+editing+system+for+moso+bamboo+(Phyllostachys+edulis).">An efficient genetic transformation and CRISPR/Cas9-based genome editing system for moso bamboo (Phyllostachys edulis).</a> Frontiers in Plant Science. 13, 822022 (2022).</li><li>Lee, M. W., Yang, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transient+expression+assay+by+agroinfiltration+of+leaves.">Transient expression assay by agroinfiltration of leaves.</a> Methods in Molecular Biology. 323, 225-229 (2006).</li><li>Canto, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transient+expression+systems+in+plants:+potentialities+and+constraints.">Transient expression systems in plants: potentialities and constraints.</a> Advances in Experimental Medicine and Biology. 896, 287-301 (2016).</li><li>Chen, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+method+for+the+production+and+expedient+screening+of+CRISPR/Cas9-mediated+non-transgenic+mutant+plants.">A method for the production and expedient screening of CRISPR/Cas9-mediated non-transgenic mutant plants.</a> Horticulture Research. 5, 13 (2018).</li><li>Sun, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+biotechnology+for+in-planta+gene+editing+and+its+application+in+promoting+flavonoid+biosynthesis+in+bamboo+leaves.">A new biotechnology for in-planta gene editing and its application in promoting flavonoid biosynthesis in bamboo leaves.</a> Plant Methods. 19 (1), 20 (2023).</li><li>He, Y., Zhang, T., Sun, H., Zhan, H., Zhao, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+reporter+for+noninvasively+monitoring+gene+expression+and+plant+transformation.">A reporter for noninvasively monitoring gene expression and plant transformation.</a> Horticulture Research. 7 (1), 152 (2020).</li><li>Wang, C., Shen, L., Fu, Y., Yan, C., Wang, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+simple+CRISPR/Cas9+system+for+multiplex+genome+editing+in+rice.">A simple CRISPR/Cas9 system for multiplex genome editing in rice.</a> Journal of Genetics and Genomics. 42 (12), 703-706 (2015).</li><li>McCormick, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Leaf+disc+transformation+of+cultivated+tomato+(L.+esculentum)+using+Agrobacterium+tumefaciens.">Leaf disc transformation of cultivated tomato (L. esculentum) using Agrobacterium tumefaciens.</a> Plant Cell Reports. 5 (2), 81-84 (1986).</li><li>Lou, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=a+violaxanthin+de-epoxidase+gene+from+moso+bamboo,+confers+photoprotection+ability+in+transgenic+Arabidopsis+under+high+light.">a violaxanthin de-epoxidase gene from moso bamboo, confers photoprotection ability in transgenic Arabidopsis under high light.</a> Frontiers in Plant Science. 13, 927949 (2022).</li><li>Zhou, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Distinct+cinnamoyl+CoA+reductases+involved+in+parallel+routes+to+lignin+in+Medicago+truncatula.">Distinct cinnamoyl CoA reductases involved in parallel routes to lignin in Medicago truncatula.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (41), 17803-17808 (2010).</li><li>De Roeck, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Deleterious+ABCA7+mutations+and+transcript+rescue+mechanisms+in+early+onset+Alzheimer's+disease.">Deleterious ABCA7 mutations and transcript rescue mechanisms in early onset Alzheimer's disease.</a> Acta Neuropathologica. 134 (3), 475-487 (2017).</li></ol>

Los autores declaran que no tienen intereses contrapuestos.

Este método reduce significativamente el tiempo requerido en comparación con los métodos tradicionales de transformación genética, que suelen tardar entre 1 y 2 años, y logra la expresión transitoria de genes exógenos y la edición genética de genes endógenos en 5 días. Sin embargo, este método tiene limitaciones, ya que solo puede transformar una pequeña proporción de células, y las hojas editadas genéticamente son quiméricas y carecen de la capacidad de regenerarse en plantas completas. Sin embargo, es...

La investigación de la función de los genes en el bambú es muy prometedora para la comprensión avanzada del bambú y para desbloquear su potencial de modificación genética. Una forma efectiva de esto se puede lograr a través del proceso de infección mediada por Agrobacterium en hojas de bambú, mediante el cual el fragmento de ADN-T que contiene genes exógenos se introduce en las células, lo que posteriormente conduce a la expresión de los genes dentro de las células de la hoja.
El bambú es un recurso valioso y renovable con una amplia gama de aplicaciones en la fabricación, el arte y la investigación. El bambú posee excelentes propiedades de madera, como alta resistencia mecánica, tenacidad, rigidez moderada y flexibilidad1, que ahora se usa ampliamente en una variedad de suministros domésticos e industriales, incluidos cepillos de dientes, pajitas, botones, vajillas desechables, tuberías subterráneas y rellenos de torres de enfriamiento para la generación de energía térmica. Por lo tanto, el cultivo de bambú juega un papel crucial en la obtención de variedades de bambú con excelentes propiedades de madera para reemplazar los plásticos y reducir el uso de plástico, proteger el medio ambiente y abordar el cambio climático, además de generar un valor económico significativo.
Sin embargo, la cría tradicional de bambú se enfrenta a desafíos debido a la larga etapa de crecimiento vegetativo y al incierto período de floración. Aunque se han desarrollado y aplicado técnicas de mejoramiento molecular al mejoramiento genético de bambú, el proceso de transformación del gen del bambú requiere mucho tiempo, mano de obra y es complicado debido a los procesos de inducción y regeneración de callos 2,3,4,5. La transformación genética estable a menudo requiere métodos mediados por Agrobacterium, que involucran procesos de cultivo de tejidos como la inducción y regeneración de callos. Sin embargo, el bambú tiene una baja capacidad para la regeneración de callos, lo que limita en gran medida la aplicación de la transformación genética estable en el bambú. Después de que Agrobacterium infecta las células vegetales, el fragmento de ADN-T ingresa a las células vegetales, y la mayoría de los fragmentos de ADN-T permanecen no integrados en las células, lo que resulta en una expresión transitoria. Solo una pequeña porción de fragmentos de ADN-T se integra aleatoriamente en su cromosoma, lo que conduce a una expresión estable. Los niveles de expresión transitoria muestran una curva de acumulación que puede variar para cada gen expresado a partir de un ADN-T entregado por Agrobacterium. En la mayoría de los casos, los niveles más altos de expresión ocurren 3-4 días después de la infiltración y disminuyen rápidamente después de 5-6 días 6,7. Estudios previos han demostrado que más de 1/3 de las mutaciones en plantas editadas genéticamente obtenidas sin presión de selección para resistencia provienen de la expresión transitoria de CRISPR/Cas9, mientras que las restantes menos de 2/3 provienen de la expresión estable después de la integración del ADN en el genoma8. Esto indica que la integración del ADN-T en el genoma de la planta no es necesaria para la edición de genes. Además, la presión de selección para la resistencia inhibe significativamente el crecimiento de células no transgénicas, lo que afecta directamente el proceso de regeneración de los explantes infectados. Por lo tanto, mediante el uso de la expresión transitoria sin presión de selección para la resistencia en el bambú, es posible lograr una expresión no integrada de genes exógenos y estudiar la función génica directamente en los órganos de la planta. Por lo tanto, se puede desarrollar un método fácil y que ahorra tiempo para la expresión y edición de genes exógenos en bambú9.
El método desarrollado de expresión génica exógena y edición génica se caracteriza por su simplicidad, rentabilidad y ausencia de equipos costosos o procedimientos complejos9. En este método, se utilizó el gen endógeno de la violaxantina deepoxidasa (PeVDE) del bambú como indicador de la expresión génica exógena sin presión de selección. Esto se debe a que el PeVDE editado en las hojas de bambú reduce la capacidad de fotoprotección bajo mucha luz y demuestra una disminución en el valor de enfriamiento no fotoquímico (NPQ), que se puede detectar a través de imágenes de fluorescencia de clorofila. Para demostrar la eficacia de este método, otro gen endógeno del bambú, el gen de la cinamoil-CoA reductasa (PeCCR5)9, fue eliminado utilizando este sistema y generó con éxito mutantes de este gen. Esta técnica se puede utilizar para la caracterización funcional de genes que tienen funciones en las hojas de bambú. Al sobreexpresar estos genes transitoriamente en las hojas de bambú, se pueden mejorar sus niveles de expresión o, mediante la edición de genes, se puede reducir su expresión, lo que permite el estudio de los niveles de expresión génica posteriores, los fenotipos de las hojas y el contenido del producto. Esto proporciona un enfoque más eficiente y factible para la investigación de la función génica en el bambú. Esta técnica se puede aplicar a la caracterización funcional de genes que funcionan en hojas de bambú. Al sobreexpresar estos genes transitoriamente en las hojas de bambú, se pueden mejorar sus niveles de expresión o, mediante la edición de genes, se puede reducir su expresión, lo que permite el estudio de los niveles de expresión génica posteriores, los fenotipos de las hojas y el contenido del producto. Además, es importante tener en cuenta que, debido a la extensa poliploidización, la mayoría de los genes comercialmente importantes en los genomas del bambú están presentes en múltiples copias, lo que resulta en redundancia genética. Esto plantea un desafío para realizar la edición multiplexada del genoma en bambú. Antes de la aplicación de técnicas de transformación genética estable o edición de genes, es crucial validar rápidamente las funciones de los genes. Al abordar el problema de las copias múltiples de genes, un enfoque es analizar los perfiles de expresión del transcriptoma para identificar los genes que se expresan activamente durante etapas específicas. Además, dirigirse a los dominios funcionales conservados de estas copias génicas permite el diseño de secuencias diana comunes o la incorporación de múltiples sitios diana en el mismo vector CRISPR/Cas9, lo que permite la eliminación simultánea de estos genes. Esto proporciona un enfoque más eficiente y factible para la investigación de la función génica en el bambú.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>35S::RUBY</td>
			<td>Addgene, United States</td>
			<td>160908</td>
			<td>Plamid construct</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Agrobacterium competent cells of GV3101, EHA105,LBA4404, and AGL1</td>
			<td>Biomed, China</td>
			<td>BC304-01, BC303-01, BC301-01, and BC302-01</td>
			<td>For Agrobacterium infection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CTAB</td>
			<td>Sigma-Aldrich, United States</td>
			<td>57-09-0</td>
			<td>DNA extraction</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Imaging-PAM fluorometer</td>
			<td>Walz, Effeltrich, Germany</td>
			<td></td>
			<td>Detect chlorophyll fluorescence of bamboo leaves</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ImagingWin</td>
			<td>Walz, Effeltrich, Germany</td>
			<td></td>
			<td>Software for Imaging-PAM fluorometer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paq CI or Aar I</td>
			<td>NEB, United States</td>
			<td>R0745S</td>
			<td>Incorporate the target sequence onto the CRISPR/Cas9 vector.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PrimeSTAR Max DNA polymerase</td>
			<td>Takara, Japan</td>
			<td>R045Q</td>
			<td>For gene cloning</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>T4 DNA ligase</td>
			<td>NEB, United States</td>
			<td>M0202V</td>
			<td>Incorporate the target sequence onto the CRISPR/Cas9 vector.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

in planta gene expression and gene editing in moso bamboo leaves

Se desarrolló un novedoso método de transformación génica in planta para el bambú, que evita la necesidad de procesos de inducción y regeneración de callos que requieren mucho tiempo y mano de obra. Este método implica la expresión génica mediada por Agrobacterium a través de heridas y vacío para plántulas de bambú. Demostró con éxito la expresión de genes exógenos, como el reportero RUBY y el gen Cas9 , en hojas de bambú. La mayor eficiencia de transformación para la acumulación de betalaína en plántulas RUBY se logró utilizando la cepa GV3101, con un porcentaje de 85.2% después de la infección. Aunque el ADN extraño no se integró en el genoma del bambú, el método fue eficiente para expresar los genes exógenos. Además, también se ha desarrollado un sistema de edición génica con un reportero nativo utilizando este método, a partir del cual se ha desarrollado un mutante in situ generado por el gen editado de la violaxantina de-epoxidasa de bambú (PeVDE) en hojas de bambú, con una tasa de mutación del 17,33%. La mutación de PeVDE dio lugar a una disminución de los valores de enfriamiento no fotoquímico (NPQ) bajo alta luz, que puede detectarse con precisión con un fluorómetro. Esto convierte al PeVDE editado en un potencial reportero nativo para genes exógenos y endógenos en el bambú. Con el reportero de PeVDE, se editó con éxito un gen de cinamoil-CoA reductasa con una tasa de mutación del 8,3%. Esta operación evita el proceso de cultivo de tejidos o inducción de callos, que es rápido y eficiente para la expresión de genes exógenos y la edición de genes endógenos en el bambú. Este método puede mejorar la eficiencia de la verificación de la función génica y ayudará a revelar los mecanismos moleculares de las vías metabólicas clave en el bambú.

The investigation of gene function in bamboo holds great promise for the advanced understanding of bamboo and unlocking its potential for genetic modification. An effective way of this can be achieved through the process of Agrobacterium-mediated infection in bamboo leaves, whereby the T-DNA fragment containing exogenous genes is introduced into the cells, subsequently leading to the expression of the genes within the leaf cells.
Bamboo is a valuable and renewable resource with a wide range of applications in manufacturing, art, and research. Bamboo possesses excellent wood properties such as high mechanical strength, toughness, moderate stiffness, and flexibility1, which is now widely used in a variety of household and industrial supplies, including toothbrushes, straws, buttons, disposable tableware, underground pipelines, and cooling tower fillers for thermal power generation. Therefore, bamboo breeding plays a crucial role in obtaining bamboo varieties with excellent wood properties for replacing plastics and reducing plastic usage, protecting the environment, and tackling climate change, as well as generating significant economic value.
However, traditional bamboo breeding faces challenges due to the lengthy vegetative growth stage and uncertain flowering period. Although molecular breeding techniques have been developed and applied to bamboo breeding, the process of bamboo gene transformation is time-consuming, labor-intensive, and complicated due to the callus induction and regeneration processes2,3,4,5. Stable genetic transformation often requires Agrobacterium-mediated methods, which involve tissue culture processes such as callus induction and regeneration. However, bamboo has a low ability for callus regeneration, greatly limiting the application of stable genetic transformation in bamboo. After Agrobacterium infects plant cells, the T-DNA fragment enters the plant cells, with the majority of T-DNA fragments remaining non-integrated in the cells, resulting in transient expression. Only a small portion of T-DNA fragments randomly integrate into its chromosome, leading to stable expression. The transient expression levels show an accumulation curve that can vary for each gene expressed from an Agrobacterium-delivered T-DNA. In most cases, the highest expression levels occur 3-4 days after infiltration and quickly decrease after 5-6 days6,7. Previous studies have shown that more than 1/3rd of mutations in gene-edited plants obtained without selection pressure for resistance come from the transient expression of CRISPR/Cas9, while the remaining less than 2/3rd come from stable expression after DNA integration into the genome8. This indicates that T-DNA integration into the plant genome is not necessary for gene editing. Moreover, selection pressure for resistance significantly inhibits the growth of non-transgenic cells, directly affecting the regeneration process of infected explants. Therefore, by using transient expression without selection pressure for resistance in bamboo, it is possible to achieve non-integrated expression of exogenous genes and study gene function directly in plant organs. Hence, an easy and time-saving method can be developed for exogenous gene expression and editing in bamboo9.
The developed exogenous gene expression and gene editing method is characterized by its simplicity, cost-effectiveness, and the absence of expensive equipment or complex procedures9. In this method, the bamboo endogenous violaxanthin de-epoxidase gene (PeVDE) was used as the reporter for exogenous gene expression without selection pressure. This is because the edited PeVDE in bamboo leaves reduces the photoprotection ability under high light and demonstrates a decrease in the non-photochemical quenching (NPQ) value, which can be detected through chlorophyll fluorescence imaging. To demonstrate the effectiveness of this method, another bamboo endogenous gene, the cinnamoyl-CoA reductase gene (PeCCR5)9, was knocked out using this system and successfully generated mutants of this gene. This technique can be used for the functional characterization of genes that have functions in bamboo leaves. By overexpressing these genes transiently in bamboo leaves, their expression levels can be enhanced, or by gene editing, their expression can be knocked down, allowing for the study of downstream gene expression levels, leaf phenotypes, and product contents. This provides a more efficient and feasible approach for gene function research in bamboo. This technique can be applied to the functional characterization of genes that function in bamboo leaves. By overexpressing these genes transiently in bamboo leaves, their expression levels can be enhanced, or by gene editing, their expression can be knocked down, allowing for the study of downstream gene expression levels, leaf phenotypes, and product contents. Additionally, it is important to note that, due to extensive polyploidization, the majority of commercially important genes in bamboo genomes are present in multiple copies, resulting in genetic redundancy. This poses a challenge for performing multiplex genome editing in bamboo. Prior to the application of stable genetic transformation or gene editing techniques, it is crucial to quickly validate gene functions. In addressing the issue of multiple gene copies, one approach is to analyze transcriptome expression profiles to identify genes that are actively expressed during specific stages. Furthermore, targeting the conserved functional domains of these gene copies allows for the design of common target sequences or the incorporation of multiple target sites into the same CRISPR/Cas9 vector, enabling the simultaneous knockout of these genes. This provides a more efficient and feasible approach for gene function research in bamboo.

Autor destacado: Avance de la edición genética en hojas de bambú para alternativas sostenibles al plástico 

En Planta Expresión génica y edición génica en hojas de bambú Moso

In this study, we used Agrobacterium as a vector to introduce foreign DNA fragments into bamboo leaves. Most DNA fragments are not integrated into chromosomes and undergo transient expression. We took advantage of this transient expression to carry out gene editing.The main challenge is the limitation of gene editing of bamboo leaves, which cannot regenerate. This propose difficulties in performing editing in regenerative organs, like young shoots, and obtaining edited branches or subsequent generations with desired genetic challenges. Its main advantage is the time-saving aspect of the principle.By being able to edit bamboo genes directly in bamboo leaves, it allows for quick verification of gene fractions. This eliminates the needs for time-consuming procedures, like tissue culture or transformation, significantly speeding up research on bamboo gene fractions. The primary research will be focused on investigating the molecular mechanism of bamboo biomass formation.This will involve understanding why bamboo grows rapidly, and using that knowledge to develop bamboo varieties which are suitable for plastic substituent.

Expresión génica mediada por agrobacterias en plantas en hojas de bambú Se ha demostrado que el gen reportero RUBY es eficaz en la visualización de la expresión génica transitoria debido a su capacidad para producir betalaína roja viva a partir de la tirosina10. En este estudio, se utilizó la transformación mediada por Agrobacterium para expresar transitoriamente el gen exógeno RUBY en hojas de bambú (...

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En este estudio, se desarrolló en bambú un novedoso método de expresión génica y edición génica en planta mediado por Agrobacterium . Este método mejoró en gran medida la eficiencia de la validación de la función génica en el bambú, lo que tiene implicaciones significativas para acelerar el proceso de mejoramiento del bambú.

A novel in planta gene transformation method was developed for bamboo, which avoids the need for time-consuming and labor-intensive callus induction and ...

En este estudio, utilizamos Agrobacterium como vector para introducir fragmentos extraños de ADN en hojas de bambú. La mayoría de los fragmentos de ADN no están integrados en los cromosomas y sufren una expresión transitoria. Aprovechamos esta expresión transitoria para llevar a cabo la edición genética.El principal desafío es la limitación de la edición genética de las hojas de bambú, que no pueden regenerarse. Esto plantea dificultades para realizar la edición en órganos regenerativos, como brotes jóvenes, y obtener ramas editadas o generaciones posteriores con los desafíos genéticos deseados. Su principal ventaja es el aspecto de ahorro de tiempo del principio.Al poder editar los genes del bambú directamente en las hojas de bambú, permite una rápida verificación de las fracciones genéticas. Esto elimina la necesidad de procedimientos que consumen mucho tiempo, como el cultivo o la transformación de tejidos, lo que acelera significativamente la investigación sobre las fracciones genéticas del bambú. La investigación principal se centrará en investigar el mecanismo molecular de la formación de biomasa de bambú.Esto implicará comprender por qué el bambú crece rápidamente y utilizar ese conocimiento para desarrollar variedades de bambú que sean adecuadas para el sustituto del plástico.

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Research

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Biology

In Planta Gene Expression and Gene Editing in Moso Bamboo Leaves

1.1K vistas.  Key Laboratory of State Forestry and Grassland Administration/Beijing on Bamboo & Rattan Science and Technology. En este estudio, utilizamos Agrobacterium como vector para introducir fragmentos extraños de ADN en hojas de bambú. La mayoría de los fragmentos de ADN no están integrados en los cromosomas y sufren una expresión transitoria. Aprovechamos esta expresión transitoria para llevar a cabo la edición genética.El principal desafío es la limitación de la edición genética de las hojas de bambú, que no pueden regenerarse. Esto plantea dificultades para realizar la edición en órgan...

Video: Autor destacado: Avance de la edición genética en hojas de bambú para alternativas sostenibles al plástico 

A novel in planta gene transformation method was developed for bamboo, which avoids the need for time-consuming and labor-intensive callus induction and regeneration processes. This method involves Agrobacterium-mediated gene expression via wounding and vacuum for bamboo seedlings. It successfully demonstrated the expression of exogenous genes, such as the RUBY reporter and Cas9 gene, in bamboo leaves. The highest transformation efficiency for the accumulation of betalain in RUBY seedlings was achieved using the GV3101 strain, with a percentage of 85.2% after infection. Although the foreign DNA did not integrate into the bamboo genome, the method was efficient in expressing the exogenous genes. Furthermore, a gene editing system has also been developed with a native reporter using this method, from which an in situ mutant generated by the edited bamboo violaxanthin de-epoxidase gene (PeVDE) in bamboo leaves, with a mutation rate of 17.33%. The mutation of PeVDE resulted in decreased non-photochemical quenching (NPQ) values under high light, which can be accurately detected by a fluorometer. This makes the edited PeVDE a potential native reporter for both exogenous and endogenous genes in bamboo. With the reporter of PeVDE, a cinnamoyl-CoA reductase gene was successfully edited with a mutation rate of 8.3%. This operation avoids the process of tissue culture or callus induction, which is quick and efficient for expressing exogenous genes and endogenous gene editing in bamboo. This method can improve the efficiency of gene function verification and will help reveal the molecular mechanisms of key metabolic pathways in bamboo.

In this study, a novel in planta gene expression and gene editing method mediated by Agrobacterium was developed in bamboo. This method greatly improved the efficiency of gene function validation in bamboo, which has significant implications for accelerating the process of bamboo breeding.

Investigación

Biología

Preparation of Bamboo Seedlings and Agrobacterium-Mediated In Planta Transformation System for Gene Expression

Preparation of Bamboo Seedlings and Agrobacterium -Mediated In Planta Transformation System for Gene Expression  

To begin, sow the pre-soaked bamboo seeds into the substrate of soil and vermiculite for germination. For agrobacterium infection, carefully remove the 15 day old seedlings with soil attached roots from the substrate. Wrap the seedlings with tinfoil to maintain moisture and prevent soil detachment.Transfer the wrapped seedlings to the plant growth chamber with higher humidity and lower illumination for two hours. Next, using a sharp needle from a syringe, wound the upper part of curled immature leaves once or twice. Quickly dip the wounded part of the leaves into agrobacterium suspension.Then immediately transfer the seedlings to a vacuum chamber with a pressure of 25 to 27 millimeters of mercury for two minutes. After vacuuming, carefully unwrap the seedlings and replant them into the substrate. Allow the seedlings to grow in a plant growth chamber in dim light with high humidity for two days.Then culture the seedlings under normal growth conditions, watering them every five to seven days.

Preparación de plántulas de bambú y sistema de transformación en planta mediado por agrobacterias para la expresión génica

In Planta Gene Expression and Measurement of Chlorophyll Fluorescence of Non-Photochemical Quenching Values in Bamboo Leaves

Begin by extracting the genomic DNA from the wild-type and Agrobacterium-infected bamboo leaves. Amplify the genomic DNA containing the target site of the target genes from wild-type and Agrobacterium-infected bamboo leaves using the following PCR conditions. After PCR, perform endonuclease enzyme digestion by preparing a reaction mixture containing one microliter of age-1, one microgram of PCR products, and five-microliter 10X buffer.Then, add water to a final volume of 50 microliters. Incubate the digestion mixture at 37 degrees Celsius for one hour. Using gel electrophoresis, analyze the proportion of digested DNA fragments.Compare the digested fragments from the wild-type and Agrobacterium-infected samples to assess gene editing efficiency. Expose the bamboo seedlings to high light intensity conditions to increase the amount of absorbed light quantum and activation of the leaf photoprotection system. Next, turn on the IMAGING-PAM fluorometer and set the actinic light intensity to measure in vivo photosystem II chlorophyll fluorescence of bamboo leaves.The red beta lane color produced by the RUBY gene indicated successful Agrobacterium-mediated gene expression in bamboo leaves. Out of the four Agrobacterium strains, GV3101 strain caused the most significant beta lane accumulation in infected bamboo leaves. After infection with the CRISPR-Cas9 constructs and high light treatments, certain areas of the leaf blades showed lower non-photochemical quenching values.Furthermore, enzyme digestion and sequencing analysis confirmed the successful mutation of the PeVDE gene in the edited regions. Sanger sequencing results of the PeVDE fragment after editing by both sgRNA1 and sgRNA2 showed deletion of a long fragment in the PeVDE gene. After 30 days of Agrobacterium infection, the leaf areas transfected with sgRNAs for both PeVDE and PeCCR5 exhibited lower non-photochemical quenching values.