Esta investigación contó con el apoyo de la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (82201084), la Fundación de Ciencias Postdoctorales de China (2022M722232), la Fundación de Investigación Postdoctoral de Beijing (2023-ZZ-020), el Proyecto Miaopu del Hospital Tiantan de Beijing, la Universidad Médica Capital (2023MP10) y el Fondo General de Investigación, el Consejo de Subvenciones de Investigación de Hong Kong (27111820 y 17116521).

Todos los procedimientos que se describen a continuación fueron aprobados por el Comité de Ética del Hospital Tiantan de Pekín, Universidad Médica de la Capital (NO. KY2023-177-01), y todos los pacientes que participaron en este estudio dieron su consentimiento informado.
1. Criterios de inclusión y exclusión de pacientes
<ol><li>Criterios de inclusión: Clasificar a los pacientes como pacientes con SSp si cumplen con los criterios del Colegio Americano de Reumatología (ACR)/Liga Europea Contra el Reumatismo (EULAR) de 201612. En concreto, basar los criterios de clasificación final en la suma ponderada de cinco ítems: positividad de anticuerpos anti-SSA/Ro y sialadenitis linfocítica focal con una puntuación de foco de ≥ 1 focos/4mm2, puntuando 3 cada uno; una puntuación de tinción ocular anormal de ≥ 5 (o una puntuación de van Bijsterveld de ≥ 4), un resultado de la prueba de Schirmer de ≤ 5 mm/5 min y una tasa de flujo salival no estimulado de ≤ 0,1 mL/min, cada una con una puntuación de 1. Las personas con signos y/o síntomas sugestivos de SS que tienen una puntuación total de ≥ 4 para los ítems anteriores cumplen con los criterios de pSS.</li>
	<li>Criterios de exclusión: Excluir a los pacientes que no pueden cooperar con la recolección de muestras y a los pacientes que están recibiendo tratamiento para la infección oral por Candida . NOTA: Es esencial tener en cuenta que los métodos descritos a continuación también son adecuados para la caracterización integral de las infecciones orales por Candida en individuos con SS secundario.</li>
	<li>Para prevenir posibles contaminaciones durante la recolección, el transporte y el cultivo de muestras de Candida , tome precauciones meticulosas. Esto incluye una preparación experimental meticulosa, el uso de materiales estériles y de un solo uso, el etiquetado adecuado, el sellado seguro de los tubos de muestreo y la realización de procedimientos experimentales en un gabinete de bioseguridad profesional.</li>
</ol>2. Recogida de muestras
<ol><li>Recolección de saliva: Indique a los pacientes que sostengan el tubo con un embudo y dejen que la saliva fluya gradualmente hacia el tubo a lo largo del labio inferior. Al final de la recolección, pida al paciente que escupa toda la saliva restante en la boca en el tubo. Recoge la saliva durante 15 min.</li>
	<li>Enjuague bucal y recolección de hisopos: Si el paciente no tiene flujo de saliva no estimulado o tiene un flujo de saliva no estimulado extremadamente bajo (menos de 0,03 mL/min), frote el área de la mucosa oral con sospecha de infección oral por Candida al menos 10 veces, luego pídale al paciente que use 5 mL de solución salina tamponada con fosfato (PBS; ver Tabla de materiales) para enjuagarse la boca durante 1 minuto. Guarde el enjuague bucal en un tubo estéril de 50 ml y coloque el hisopo en el tubo de enjuague bucal. NOTA: Para los pacientes con pSS con un flujo de saliva no estimulado de más de 0,03 mL/min, el paso 2.2 aún se puede utilizar para recolectar muestras para la detección de infecciones orales por Candida .</li>
</ol>3. Procesamiento de muestras
<ol><li>Agregue 1 mL de PBS a la saliva recolectada. No agregue PBS en el enjuague bucal con PBS. Agite el tubo de enjuague bucal usando un vórtice durante 1 min.</li>
</ol>4. Cultivo de cándida
<ol><li>Para hacer el medio de agar Sabourand (SDA), disuelva 70 g de SDA (ver Tabla de Materiales) en 1000 mL de agua bidestilada.</li>
	<li>Estéril con un autoclave a 121 °C durante 15 min, placa 10 mL de este medio SDA en una placa de cultivo microbiológico de 10 cm (ver Tabla de Materiales) y enfriar.</li>
	<li>Tome 200 μL de la muestra preparada en el paso 3 y escríbala en las placas de cultivo microbiológico de 10 cm preparadas con 10 mL de medio SDA en el paso 4.2.</li>
	<li>Incubar durante 48 h a 37 °C, y la colonia de Candida madurará. Guarde temporalmente el plato SDA con colonias de Candida a 4 °C. Las colonias de Candida cultivadas en el plato SDA se pueden almacenar durante 2-4 semanas.</li>
</ol>5. Identificación de la cepa de Candida
<ol><li>Para hacer el medio, saque 47,7 g de agar diagnóstico Candida (ver Tabla de materiales) en polvo, póngalo en 1000 mL de agua bidestilada y caliéntelo a 100 °C.</li>
	<li>Cuando el medio esté ligeramente hirviendo, colocar 10 mL en una placa de cultivo microbiológico de 10 cm y dejar enfriar.</li>
	<li>Disolver las colonias de Candida en 500 μL de medio SDA (paso 4), suspender y disociar mediante pipeteo.</li>
	<li>Colocar 50 μL de la muestra con colonias de Candida (paso 5.3) en el medio preparado en el paso 5.2. Incubar durante 48 h a 37 °C hasta que las colonias de Candida estén maduras.</li>
	<li>De acuerdo con el color y los patrones de las colonias de Candida , determine la(s) cepa(s) de la Candida adquirida de pacientes con pSS. Utilice los siguientes criterios de identificación de cepas de Candida : la colonia verde esmeralda es Candida albicans, la colonia gris azulada es Candida tropicalis, las colonias rosadas con bordes difusos y microvellosidades son Candida krusei, la pequeña colonia roja violácea es Candida glabrata, la colonia blanca lechosa contiene varias cepas, incluida Candida parapsilosis.</li>
</ol>6. Ensayo de formación de biopelícula de Candida
<ol><li>Para hacer el medio de glucosa (G) a base de nitrógeno de levadura (YNB)-50, pese 1,34 g de YNB (ver Tabla de Materiales) y 1,98 g de D (+)-Glucosa (ver Tabla de Materiales). Disolverlos en 200 mL de agua bidestilada.</li>
	<li>Para hacer el medio YNB-100G, saque 1,34 g de YNB y 3,96 g de D (+)-glucosa y disuélvalos en 200 mL de agua bidestilada.</li>
	<li>Filtre las soluciones con un filtro de jeringa de 0,22 μm (consulte la tabla de materiales). Los medios filtrados YNB-50G e YNB-100G se pueden almacenar a 4 °C durante 3 meses.</li>
	<li>Elija las 3 (o más) colonias de la misma cepa en los platos en el paso 5 y transfiéralas a 200 μL de medio YNB-50G (pasos 6.1 y 6.3) en una placa de 96 pocillos (consulte la Tabla de materiales). Haga esto para las tensiones observadas en el plato. Cultivo durante la noche a 37 °C con agitación a 200 rpm.</li>
	<li>Aspirar la suspensión de Candida , añadir 1 mL de PBS, centrifugar las células de levadura a 1500 x g durante 5 min a temperatura ambiente y desechar el sobrenadante. Repite este paso 2 veces en el mismo tubo.</li>
	<li>Resuspender las células en 1 mL de medio YNB-100G y preparar diferentes diluciones (1:10, 1:100 y 1:1000) de células. Tome 200 μL de suspensión de celda de gradiente y póngala en el medio SDA de 10 cm por el método de placa en espiral13. El recubrimiento se realiza utilizando una máquina que deposita un volumen conocido de muestra en una placa de agar giratoria en una cantidad cada vez menor en forma de espiral de Arquímedes. Cultivo durante 24-48 h a 37 °C.</li>
	<li>Calcule la concentración de células en diferentes diluciones de acuerdo con el número de UFC en la placa SDA basado en un método estándar13. Cuente brevemente las colonias bien separadas en cada plato. Cuente las colonias en un octante desde el borde exterior hacia el centro hasta que se observen al menos 25 colonias. Además, cuente el resto de ese arco donde ocurrió el conteo número 25. Calcule la concentración de las células dividiendo el recuento de colonias por el volumen de líquido correspondiente al área sobre la que se obtuvo el recuento de colonias13. Ajuste la concentración de células a 1 x 107 células/mL.</li>
	<li>Coloque 100 μL de la suspensión celular en YNB-100G en una placa de 96 pocillos e incube a 37 °C durante 2 h mientras agita a 200 rpm.</li>
	<li>Saque con cuidado el sobrenadante, lave 2 veces con PBS y retire las células de levadura flotantes. La biopelícula de Candida se forma en la parte inferior de la placa de 96 pocillos.</li>
</ol>7. Ensayo de formación de hifas
NOTA: Solo la Candida que puede formar hifas (como la Candida albicans) puede ser inducida para la formación de hifas. Vaya al paso 8 para una mayor caracterización de Candida que no puede formar hifas (como Candida glabrata).
<ol><li>Vuelva a suspender la suspensión de células de levadura en el paso 6.6 y ajuste la concentración de células a 1 x 106 células/mL con medio YNB-100G.</li>
	<li>Para preparar el medio de crecimiento completo RPMI 1640, agregue 50 mL de suero fetal bovino (ver Tabla de Materiales) en 450 mL de medio RPMI 1640 (ver Tabla de Materiales) y almacene a 4 °C para realizar más experimentos.</li>
	<li>Transfiera 2 μL de suspensión celular de Candida diluida en 200 μL de medio de crecimiento completo RPMI 1640 a una placa de 96 pocillos y cultive durante la noche a 37 °C para permitir que se formen las hifas y las células de levadura.</li>
</ol>8. Prueba de frotis de KOH y ensayo de tinción de CFW
<ol><li>Extraiga 1 μL de muestras del paso 3 o del paso 6 o del paso 7 utilizando un bucle moldeado con precisión (consulte la tabla de materiales) y extienda un área de 1 cm x 1 cm en los portaobjetos de vidrio. Espera a que se seque a temperatura ambiente.</li>
	<li>Para hacer una solución de KOH al 10%, pese 10 g de polvo de KOH (consulte la Tabla de materiales) y disuélvalo en 100 ml de agua bidestilada.</li>
	<li>Caliente ligeramente el portaobjetos con una lámpara de alcohol hasta que la muestra se disuelva. Teñir los portaobjetos preparados en el paso 8.1 con un 10% de KOH (paso 8.2) y cubrir con un cubreobjetos. Presione ligeramente el cubreobjetos para que la muestra quede transparente.</li>
	<li>Visualiza las hifas y las células de levadura bajo el microscopio.</li>
	<li>Manche los portaobjetos preparados en el paso 8.1 con una gota de CFW (consulte la Tabla de materiales), cubra con un cubreobjetos y espere 1 min.</li>
	<li>Visualice las hifas utilizando un microscopio de fluorescencia con aumentos de 100x y 200x. CFW se excita a 355 nm y se detecta a 300-440 nm. Fotografía las imágenes bajo el tiempo de exposición. Repita 3 veces para evitar resultados falsos positivos.</li>
</ol>9. Prueba de susceptibilidad a los antifúngicos
NOTA: Esta prueba se realiza de acuerdo con las instrucciones del fabricante para el kit de susceptibilidad a hongos similares a levaduras (microdilución; consulte la tabla de materiales).
<ol><li>Prepare colonias de Candida (paso 4) de menos de 4 días de edad con la ampolla de NaCl al 0,85% (ver Tabla de Materiales) y adquiera la suspensión que tenga una turbidez equivalente a 2 McFarland. Determine la turbidez de acuerdo con el kit de estándares de McFarland (consulte la tabla de materiales). Utilice la suspensión de Candida preparada al instante.</li>
	<li>Pipetee 135 μL de medio ATB F2 en el kit que contiene 3 x 104 células de levadura/ml en cada cúpula de la tira reactiva y coloque la tapa. Coloque la tira reactiva en un recipiente sellado. Cultivo durante 24 h a 35 °C.</li>
	<li>Observe el crecimiento de la cándida con interpretación visual (consulte el manual del usuario). Para conocer el valor de referencia (rango de referencia), consulte el manual del usuario. Compruebe si el orificio de control está creciendo adecuadamente. Si el crecimiento del hoyo de control es insuficiente o no crece, entonces los resultados no se pueden leer y necesitan otras 24 h de cultivo.</li>
</ol>

Diagnóstico e identificación de la cepa de la cándida oral relacionada con pSS

<ol>
	<li>Wang, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microbiota+dysbiosis+in+primary+Sj&#246;gren's+syndrome+and+the+ameliorative+effect+of+hydroxychloroquine.">Microbiota dysbiosis in primary Sj&#246;gren's syndrome and the ameliorative effect of hydroxychloroquine.</a> Cell Rep. 40 (11), 111352 (2022).</li><li>Humphrey, S. P., Williamson, R. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+review+of+saliva:+normal+composition,+flow,+and+function.">A review of saliva: normal composition, flow, and function.</a> J Prosthet Dent. 85 (2), 162-169 (2001).</li><li>Marsh, P. D., Do, T., Beighton, D., Devine, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Influence+of+saliva+on+the+oral+microbiota.">Influence of saliva on the oral microbiota.</a> Periodontol 2000. 70 (1), 80-92 (2016).</li><li>Vila, T., Rizk, A. M., Sultan, A. S., Jabra-Rizk, M. 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S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oral+complications+of+Sj&#246;gren's+syndrome.">Oral complications of Sj&#246;gren's syndrome.</a> Oral Maxillofac Surg Clin North Am. 26 (1), 55-62 (2014).</li><li>Mathews, S. A., Kurien, B. T., Scofield, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oral+manifestations+of+Sj&#246;gren's+syndrome.">Oral manifestations of Sj&#246;gren's syndrome.</a> J Dent Res. 87 (4), 308-318 (2008).</li><li>Leung, K. C. M., McMillan, A. S., Cheung, B. P. K., Leung, W. 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Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Candida+identification:+a+journey+from+conventional+to+molecular+methods+in+medical+mycology.">Candida identification: a journey from conventional to molecular methods in medical mycology.</a> World J Microbiol Biotechnol. 30 (5), 1437-1451 (2014).</li><li>Bauters, T. G., Nelis, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+chromogenic+and+fluorogenic+membrane+filtration+methods+for+detection+of+four+Candida+species.">Comparison of chromogenic and fluorogenic membrane filtration methods for detection of four Candida species.</a> J Clin Microbiol. 40 (5), 1838-1839 (2002).</li><li>Soto-Rojas, A. E., Villa, A. 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REF 14204.</a> Biomerieux. , (2014).</li><li>Zhang, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+widely+used+ATB+FUNGUS+3+automated+readings+in+China+and+its+misleading+high+MICs+of+Candida+spp.+to+Azoles:+Challenges+for+developing+countries'+clinical+microbiology+labs.">The widely used ATB FUNGUS 3 automated readings in China and its misleading high MICs of Candida spp. to Azoles: Challenges for developing countries' clinical microbiology labs.</a> PLoS One. 9 (12), e114004 (2014).</li><li>Hu, L., Zhou, P., Zhao, W., Hua, H., Yan, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fluorescence+staining+vs.+routine+KOH+smear+for+rapid+diagnosis+of+oral+candidiasis-A+diagnostic+test.">Fluorescence staining vs. routine KOH smear for rapid diagnosis of oral candidiasis-A diagnostic test.</a> Oral Dis. 26 (5), 941-947 (2020).</li><li>Samaranayake, L. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Candida+krusei+infections+and+fluconazole+therapy.">Candida krusei infections and fluconazole therapy.</a> Hong Kong Med J. 3 (3), 312-314 (1997).</li><li>Lee, Y., Puumala, E., Robbins, N., Cowen, L. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Antifungal+drug+resistance:+Molecular+mechanisms+in+Candida+albicans+and+beyond.">Antifungal drug resistance: Molecular mechanisms in Candida albicans and beyond.</a> Chem Rev. 121 (6), 3390-3411 (2021).</li><li>Rihab, B., Lina, E. H., No&#233;mie, S. T., Jean, S., Marjolaine, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+experience+of+dry+mouth+and+screening+for+Sjogren's+syndrome+by+the+dentist:+patient-reported+experiences.">The experience of dry mouth and screening for Sjogren's syndrome by the dentist: patient-reported experiences.</a> BMC Oral Health. 23 (1), 1010 (2023).</li><li>Panpetch, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oral+Candida+administration+in+a+Clostridium+difficile+mouse+model+worsens+disease+severity+but+is+attenuated+by+Bifidobacterium.">Oral Candida administration in a Clostridium difficile mouse model worsens disease severity but is attenuated by Bifidobacterium.</a> PLoS One. 14 (1), e210798 (2019).</li><li>Alwaily, E. R., Abood, M. S., Al Uobody, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Diagnosis+of+oral+candidiasis+in+patients+under+12+years:+18S+rRNA+as+a+marker+of+molecular+characterization+of+Candida+tropicalis.">Diagnosis of oral candidiasis in patients under 12 years: 18S rRNA as a marker of molecular characterization of Candida tropicalis.</a> Arch Razi Inst. 78 (1), 475-483 (2023).</li><li>Chen, C. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Candida+infection+as+an+early+sign+of+subsequent+Sj&#246;gren's+syndrome:+A+population-based+matched+cohort+study.">Candida infection as an early sign of subsequent Sj&#246;gren's syndrome: A population-based matched cohort study.</a> Front Med (Lausanne). 8, 796324 (2022).</li></ol>

Los autores no tienen conflictos de intereses que declarar.

En el presente manuscrito, proporcionamos una serie de métodos sistemáticos, simples y factibles para detectar infecciones orales por Candida , identificar cepas de Candida y probar la susceptibilidad antifúngica de los medicamentos de uso común en pacientes con pSS. 
En la práctica, no todos los métodos introducidos en este manuscrito son necesarios. Los métodos de detección oral de Candida se pueden elegir en función del propósito específico. Las pruebas...

La candidiasis es causada por Candida spp., que son patógenos oportunistas. Las cepas comunes incluyen Candida albicans, Candida krusei, Candida glabrata, Candida parapsilosis y Candida dubliniensis1. Las infecciones oportunistas causadas por Candida spp. incluyen infecciones superficiales por Candida y candidiasis invasiva. La candidiasis invasiva ocurre principalmente en individuos inmunocomprometidos; por ejemplo, en pacientes con síndrome de inmunodeficiencia adquirida (SIDA), la candidiasis invasiva puede amenazar significativamente la calidad de vida o incluso la esperanza de vida2. La infección superficial por Candida , como la candidiasis mucocutánea, es más frecuente en los pacientes3. 
La candidiasis oral, una infección superficial por Candida , es la infección fúngica humana más común. Candida albicans es un comensal normal de la boca; se ha reportado que la tasa de portación de Candida spp. oscila entre el 20% y el 75% en la población general sin ningún síntoma4. El crecimiento excesivo de Candida puede provocar molestias locales en los pacientes, como alteración del gusto de la sensación, sensación de ardor en la boca, disfagia debido a una mala nutrición, retraso en la recuperación y estancia hospitalaria prolongada. La candidiasis oral a largo plazo puede conducir a una candidiasis invasiva grave, lo que resulta en una morbilidad y mortalidad significativas5. La candidiasis oral también puede aumentar el riesgo de cáncer oral5. El deterioro de la función de las glándulas salivales es uno de los factores de riesgo para la candidiasis oral6. El inicio de la infección es la adhesión de Candida a las paredes celulares epiteliales. A esto le sigue la proliferación y filamentación de Candida y la formación y maduración de biofilm7. Las biopelículas son extremadamente difíciles de erradicar y son resistentes al tratamiento antifúngico convencional, lo que hace que el tratamiento clínico sea un desafío para la infección oral por Candida asociada a la biopelícula7.
El síndrome primario de Sjögren (SPS) es una enfermedad autoinmune que se caracteriza por sequedad de boca, ojos secos y otros síntomas sistemáticos8. La sequedad bucal es el síntoma más frecuente del pSS. La saliva tiene importantes funciones fisiológicas antifúngicas. Por un lado, puede diluir y fregar la boca y, posteriormente, eliminar organismos de la mucosa. Por otro lado, la saliva contiene proteínas antimicrobianas, como la lactoferrina, la siaoperoxidasa, la lisozima, polipéptidos ricos en histidina y anticuerpos anticándidos específicos, que pueden interactuar con la mucosa oral y prevenir el crecimiento excesivo de Candida6. La reducción del flujo sanguíneo puede predisponer a los pacientes con pSS a la candidiasis oral. Un estudio observacional transversal realizado en 61 pacientes con pSS encontró que el 13,1% de los pacientes con pSS presentaron signos orales de candidiasis y se encontró una correlación significativa y negativa de la unidad formadora de colonias (UFC)/mL de Candida albicans con los niveles de saliva total no estimulada (UWS) y saliva completa estimulada (SWS)9.
Los métodos introducidos en este manuscrito pueden identificar la infección oral por Candida a partir de los atributos morfológicos caracterizados (por ejemplo, las hifas y las células de levadura) en frotis directo o después del cultivo10. La identificación de la cepa de Candida utilizando un agar diagnóstico de Candida se basa en la formación de colonias de diferentes colores con morfología variada, que resultan de la escisión de sustratos cromogénicos por enzimas específicas de la especie11. En este manuscrito, se introducen métodos sistemáticos para la detección de la infección oral por Candida , incluyendo el cultivo oral tradicional de Candida y el examen rápido mediante una prueba de frotis de hidróxido de potasio (KOH) y un ensayo de tinción con blanco de calcofluor (CFW)10. Además, se ha introducido la prueba de susceptibilidad a los antifúngicos, que puede guiar el tratamiento clínico de la infección oral por Candida . En situaciones reales, no es necesario realizar todos los métodos introducidos en este manuscrito; los métodos de detección oral de Candida se pueden seleccionar de acuerdo con el propósito. El examen de la infección oral por Candida y la determinación de cepas de Candida en pacientes con pSS no solo benefician el tratamiento de la enfermedad, sino que también ayudan a evaluar la caracterización de la candidiasis oral y los perfiles de especies.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.22 &#181;m Syringe Filter</td>
			<td>MERCK</td>
			<td>SLGV004SL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1.5 mL Centrifuge Tube</td>
			<td>axygen</td>
			<td>MCT-150-C-S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 cm Microbiological Culture Dishes</td>
			<td>Jet Bio-Filtration Co. Ltd</td>
			<td>TCD000100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>15 mL Centrifuge Tube</td>
			<td>Jet Bio-Filtration Co., Ltd</td>
			<td>CFT011150</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50 mL Centrifuge Tube</td>
			<td>Corning</td>
			<td>430290</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>96-well Microplates</td>
			<td>Corning</td>
			<td>3599</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>API 0.85% NaCl ampule</td>
			<td>BIOMERIEUX</td>
			<td>20070</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Calcofluor White Stain</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>18909-100ML-F</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CHROMagar Candida</td>
			<td>CHROMagar</td>
			<td>P002860</td>
			<td>Candida diagnostic agar</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>D(+)-Glucose Monohydrate</td>
			<td>Sinopharm Chemical Reagent Co.,Ltd</td>
			<td>10010518</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum&#160;</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>26170035</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>McFarland Standards Kit</td>
			<td>BIOMERIEUX</td>
			<td>70900</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nunc precision molded loops&#160;</td>
			<td>ThermoFisher Scientific</td>
			<td>254399</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate Buffered Saline</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>C10010500BT</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potassium Hydroxide</td>
			<td>Aladdin</td>
			<td>P112284-500g</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PowerSoil DNA Isolation Kit&#160;</td>
			<td>MO BIO</td>
			<td>12888-50</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RPMI 1640 Medium</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>11875119</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sabourand&#39;s Agar Medium</td>
			<td>Solarbio</td>
			<td>S9710</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Yeast Nitrogen Base Without Amino acids</td>
			<td>Solarbio</td>
			<td>Y8040</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Yeast-like Fungal Susceptibility Kit (Microdilution)</td>
			<td>BIOMERIEUX</td>
			<td>14204</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

examination of oral candida infection in primary sj&#246;gren&#39;s syndrome patients

El síndrome de Sjögren primario (ssp) es una enfermedad autoinmune caracterizada por síntomas como sequedad de boca, ojos secos y otros síntomas sistemáticos. Debido a la hiposalivación que experimentan los pacientes con SPp, a menudo se produce disbacteriosis oral. Una complicación común de la pSS es la infección oral por Candida . En este artículo, los autores describen métodos sistemáticos que pueden diagnosticar eficazmente la infección oral por Candida e identificar las cepas de Candida utilizando saliva, hisopos de la mucosa oral o enjuagues bucales de pacientes con pSS. El agar dextrosa de Sabouraud (SDA), el ensayo de formación de hifas, la prueba de frotis de hidróxido de potasio (KOH) y el ensayo de tinción con blanco de calcofluor (CFW) se utilizan para el diagnóstico de la infección oral por Candida . Se utiliza un agar diagnóstico de Candida para la identificación de cepas de Candida . Por último, las pruebas de susceptibilidad a los antifúngicos se utilizan para determinar el tratamiento farmacológico antifúngico adecuado. Este método estandarizado puede mejorar el diagnóstico, el tratamiento y la investigación futura de las infecciones orales por Candida relacionadas con pSS. El diagnóstico precoz, mediante este método, también puede prevenir las complicaciones que surjan debido a la demora en recibir el tratamiento adecuado.

Candidiasis is caused by Candida spp., which are opportunistic pathogens. Common strains include Candida albicans, Candida krusei, Candida glabrata, Candida parapsilosis, and Candida dubliniensis1. Opportunistic infections caused by Candida spp. include superficial Candida infections and invasive candidiasis. Invasive candidiasis mainly happens in immunocompromised individuals; for example, in patients with acquired immunodeficiency syndrome (AIDS), invasive candidiasis can significantly threaten the quality of life or even the life span2. Superficial Candida infection, such as mucocutaneous candidiasis, is more common in patients3. 
Oral candidiasis, a superficial Candida infection, is the most common human fungal infection. Candida albicans is a normal commensal of the mouth; the carriage rate of Candida spp. has been reported to range from 20% to 75% in the general population without any symptoms4. Overgrowth of Candida can lead to local discomfort in patients, such as the altered taste of sensation, burning sensation in the mouth, dysphagia due to poor nutrition, delayed recovery, and prolonged hospital stay. Long-term oral candidiasis can lead to severe invasive candidiasis, resulting in significant morbidity and mortality5. Oral candidiasis can also increase the risk of oral cancer5. Impaired salivary gland function is among the risk factors for oral candidiasis6. The initiation of infection is the adhesion of Candida to epithelial cell walls. This is followed by the proliferation and filamentation of Candida and the formation and maturation of biofilm7. Biofilms are extremely difficult to eradicate and are resistant to conventional antifungal treatment, making clinical treatment a challenge for biofilm-associated oral Candida infection7.
Primary Sj&#246;gren's syndrome (pSS) is an autoimmune disease that is characterized by dry mouth, dry eyes, and other systematic symptoms8. Dry mouth is the most frequent symptom of pSS. Saliva has important physiological antifungal functions. On the one hand, it can dilute and scour the mouth and thereafter remove organisms from the mucosa. On the other hand, saliva contains antimicrobial proteins, such as lactoferrin, sialoperoxidase, lysozyme, histidine-rich polypeptides, and specific anti-candidal antibodies, which can interact with the oral mucosa and prevent the overgrowth of Candida6. The reduced saliva flow may predispose pSS patients to oral candidiasis. An observational cross-sectional study conducted in 61 pSS patients found that 13.1% of pSS patients presented oral signs of candidiasis and colony forming unit (CFU)/mL of Candida albicans was found significantly and negatively correlated with levels of unstimulated whole saliva (UWS) and stimulated whole saliva (SWS)9.
The methods introduced in this manuscript can identify oral Candida infection based on characterized morphological attributes (e.g., the hyphae and yeast cells) in direct smear or after culturing10. The strain identification of the Candida using a Candida diagnostic agar is based on the formation of different colored colonies with varied morphology, which result from the cleavage of chromogenic substrates by species-specific enzymes11. In this manuscript, systematic methods for detecting oral Candida infection are introduced, including traditional oral Candida culture and rapid examination by potassium hydroxide (KOH) smear test and calcofluor white (CFW) staining assay10. Additionally, the antifungal susceptibility test, which can guide clinical oral Candida infection treatment, has been introduced. In actual situations, it is not necessary to perform all of the introduced methods in this manuscript; the oral Candida detection method(s) can be selected according to the purpose. The examination of oral Candida infection and the determination of Candida strains in pSS patients not only benefit the disease treatment but also help assess the characterization of oral candidiasis and the species profiles.

Autor destacado: Diagnóstico oral de cándida para avanzar en el régimen de tratamiento clínico para pacientes con pSS

Examen de la infección oral por Candida en pacientes con síndrome de Sjögren primario

In this research, we present a protocol for the examination of oral candida infection in patients with primary Sjogren syndrome, which can be used for timely treatment to avoid infection-related complications. We provide a series of systematic, simple, and feasible methods for detecting oral candida infections, identifying candida strains, and testing the antifungal susceptibility of commonly-used drugs in patients with primary Sjogren's syndrome. Maybe our focus on the role of oral candida infection in the onset and the progression of primary Sjogren's syndrome pathologists in our future studies.

En este estudio, se seleccionaron 12 pacientes con pSS como pacientes representativos y se les realizó un cribado de detección de infección oral por Candida (Tabla 1). Entre estos pacientes, algunos pacientes presentaban lesiones orales típicas de la infección por Candida , incluyendo queilitis angular (caracterizada por grietas en las comisuras de la boca, descamación e hiperemia, Figura 1A), edema rojo brillante en la mucosa gingival, pseudomembrana...

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En este trabajo se presenta un protocolo para el examen de la infección oral por Candida en pacientes con síndrome de Sjögren primario, que puede ser utilizado para el tratamiento oportuno y, posteriormente, evitar complicaciones relacionadas.

Primary Sj&#246;gren's syndrome (pSS) is an autoimmune disease characterized by symptoms such as dry mouth, dry eyes, and other systematic symptoms. Due ...

En esta investigación se presenta un protocolo para el examen de la infección oral por cándida en pacientes con síndrome de Sjögren primario, que puede ser utilizado para el tratamiento oportuno y evitar complicaciones relacionadas con la infección. Proporcionamos una serie de métodos sistemáticos, simples y factibles para detectar infecciones orales por cándida, identificar cepas de cándida y probar la susceptibilidad antifúngica de los medicamentos de uso común en pacientes con síndrome de Sjögren primario. Tal vez nuestro enfoque en el papel de la infección oral por cándida en el inicio y la progresión de los patólogos primarios del síndrome de Sjögren en nuestros estudios futuros.

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Research

JoVE Journal

Medicine

Examination of Oral Candida Infection in Primary Sj&#246;gren&#39;s Syndrome Patients

562 vistas.  Capital Medical University. En esta investigación se presenta un protocolo para el examen de la infección oral por cándida en pacientes con síndrome de Sjögren primario, que puede ser utilizado para el tratamiento oportuno y evitar complicaciones relacionadas con la infección. Proporcionamos una serie de métodos sistemáticos, simples y factibles para detectar infecciones orales por cándida, identificar cepas de cándida y probar la susceptibilidad antifúngica de los medicamentos de uso común en pacientes con ...

Video: Autor destacado: Diagnóstico oral de cándida para avanzar en el régimen de tratamiento clínico para pacientes con pSS

Primary Sj&#246;gren's syndrome (pSS) is an autoimmune disease characterized by symptoms such as dry mouth, dry eyes, and other systematic symptoms. Due to the hyposalivation experienced by pSS patients, oral dysbacteriosis often occurs. A common complication of pSS is the oral Candida infection. In this article, the authors describe systematic methods that can effectively diagnose oral Candida infection and identify the Candida strains using saliva, oral mucosal swabs, or mouthwash from pSS patients. The Sabouraud's Dextrose Agar (SDA), hyphal formation assay, potassium hydroxide (KOH) smear test, and calcofluor white (CFW) staining assay are used for the diagnosis of oral Candida infection. A Candida diagnostic agar is used for the identification of Candida strains. Finally, antifungal susceptibility testing is used to determine appropriate antifungal drug treatment. This standardized method can enhance the diagnosis, treatment, and future research of pSS-related oral Candida infections. Early diagnosis, using this method, can also prevent any complications arising due to delay in receiving appropriate treatment.

Here, we present a protocol for the examination of oral Candida infection in patients with primary Sj&#246;gren's syndrome, which can be used for timely treatment and, thereafter, avoiding related complications.

Investigación

Medicina

Sample Collection for Diagnosis of Oral Candida in pSS Patients

To begin, select the participants based on the framed inclusion criteria. For saliva collection, instruct the patient to hold the tube with a funnel and let the saliva flow gradually into the tube along the lower lip for 15 minutes. At the end, ask the participant to spit all the remaining saliva into the tube.In case of low, unstimulated saliva flow, swab the oral mucosa in infection-suspected areas at least 10 times, and let the patient rinse their mouth with five milliliters of PBS for one minute. Then collect the mouthwash in a 50-milliliter sterile tube and put the swab into it. Add one milliliter of PBS to the collected saliva and vortex the tube for one minute.