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Method Article
Nous présentons une biopuce microfluidique à base électrochimique-pour la détection d'hybridation d'ADN. Après ssADN sonde fonctionnalisation, la spécificité, la sensibilité et la limite de détection sont étudiées avec des objectifs de ssADN complémentaires et non complémentaires. Les résultats illustrent l'influence des événements d'hybridation d'ADN sur le système électrochimique, avec une limite de détection de 3,8 nM.
La miniaturisation des procédures analytiques de paillasse dans la micro-échelle fournit des avantages significatifs en ce qui concerne le temps de réaction, le coût, et l'intégration des étapes de pré-traitement. L'utilisation de ces dispositifs vers l'analyse des événements d'hybridation de l'ADN est important car il offre une technologie pour de vrai l'évaluation des temps de biomarqueurs au point-of-care pour diverses maladies. Toutefois, lorsque l'empreinte de l'appareil diminue la domination de divers phénomènes physiques augmente. Ces phénomènes influent sur la précision de fabrication et la fiabilité de fonctionnement du dispositif. Par conséquent, il existe un grand besoin pour la fabrication de précision et de faire fonctionner ces dispositifs d'une manière reproductible dans le but d'améliorer la performance globale. Ici, nous décrivons les protocoles et les méthodes utilisées pour la fabrication et le fonctionnement d'une biopuce microfluidique à base électrochimique pour une analyse précise des événements d'hybridation d'ADN. La biopuce est composé de deux parties: une puce microfluidique avectrois micro-canaux parallèles en polydiméthylsiloxane (PDMS), et une micro-puce Arrayed électrochimique 3 x 3. Les événements d'hybridation d'ADN sont détectés en utilisant la spectroscopie d'impédance électrochimique (SIE) d'analyse. L'analyse permet EIS variations de surveillance des propriétés du système électrochimique qui sont dominantes à ces échelles de longueur. Avec la possibilité de surveiller les changements à la fois de transfert de charge et de résistance à la diffusion avec le biocapteur, nous démontrons que la sélectivité pour les objectifs de ADNsb complémentaires, une limite de détection calculée de 3,8 nM, et une réactivité croisée avec d'autres ADN à un brin non-complémentaire de 13% après 20 min d'incubation. Cette méthode permet d'améliorer les performances des dispositifs miniaturisés en éclaircissant sur le comportement de diffusion à l'échelle micro-régime et en permettant l'étude des événements d'hybridation d'ADN.
Lab-on-a-chip microfluidique dispositifs (LOC) de fournir de nombreux avantages dans le diagnostic clinique, la surveillance environnementale et la recherche biomédicale. Ces dispositifs utilisent des canaux microfluidiques pour commander l'écoulement de fluide dans les régions de la puce où une variété de procédures peut avoir lieu notamment de mélange des réactifs, l'affinité de liaison sur la base, la transduction du signal, et la culture de cellules 4.1. Microfluidique offre de nombreux avantages par rapport aux outils de diagnostic cliniques conventionnels tels que des lecteurs de plaques de microtitration ou des essais de retard sur gel d'électrophorèse. Les dispositifs microfluidiques nécessitent 2 à 3 ordres de grandeur (au lieu de nanolitres microlitres) de moins de réactifs pour réaliser des tests similaires. En outre, ces dispositifs peuvent accroître la vitesse à laquelle certains événements biologiques se produisent en raison de la plus petite confinement des espèces dans les canaux 5,6. En troisième lieu, les capteurs peuvent être intégrés dans des dispositifs microfluidiques utilisant des techniques de lithographie et de gravure, qui peuvent fournir detectio sans étiquetten. Enfin, ces dispositifs sont peu coûteux à produire et nécessiter peu de travail de la part du technicien pour fonctionner 7-10.
Détection sans étiquette est habituellement effectuée en utilisant un capteur optique ou électrique. Les unités optiques peuvent présenter de meilleures performances de détection en raison de faibles niveaux d'interférence avec des analytes dans l'échantillon. Néanmoins, leur performance est compromise dans les cas où le fond de l'échantillon a la même longueur d'onde de résonance que le capteur 11. Il ya de nombreux avantages à l'aide de signaux électriques pour effectuer une détection chimique et biologique dans les systèmes microfluidiques. La fabrication est intrinsèquement moins compliqué puisque ces capteurs ne nécessitent généralement des électrodes à motifs pour fonctionner. En outre, les signaux électriques peuvent être directement interfacés avec la plupart des équipements de mesure pendant que les autres modalités de signaux peuvent nécessiter un transducteur pour convertir le signal de 12 à 15. Capteurs électriques mesurent généralement des changements dans impedance 16,17, capacité 18 ou 19 redox activité. Cependant, de nouveaux défis sont présentés comme ces systèmes sont miniaturisés. Les défis les plus importants à surmonter sont les suivants: préparation de l'échantillon et le mélange des fluides (en raison de la faible volume d'échantillon et le nombre de Reynolds), les effets physiques et chimiques (y compris les forces de capillarité, la rugosité de surface, les interactions chimiques entre les matériaux de construction et les analytes), faible signalisation sur-bruit (produit par la réduction de la superficie de la surface et du volume) de 20 à 23, et tout risque d'interférence à partir de substances à analyser électro-actif dans des échantillons biologiques complexes (par exemple, de sang et de salive). Une enquête plus approfondie de ces effets se traduira par des lignes directrices pour une fabrication précise et le fonctionnement de ces dispositifs d'une manière reproductible qui permettraient d'améliorer leur performance globale.
La détection d'hybridation d'ADN est largement utilisé pour le diagnostic des maladies génétiques et 24,25 différentes formes de cancer 26. Chaque année, plusieurs souches de la grippe sont identifiés chez les patients utilisant les résultats de techniques d'hybridation d'ADN 27. Le virus de la grippe représente à lui seul 36 000 décès chaque année aux États-Unis 28. Ces exemples pourraient bénéficier d'une paillasse dispositif microfluidique qui peut effectuer les mêmes techniques d'essai comme un essai de déplacement de lecteur de plaque ou d'un gel avec un volume d'échantillon et à une faible fraction du coût, sans sacrifier la sensibilité ou la spécificité. En raison des nombreux avantages de l'étiquette libre-détection électrochimique, il a été largement utilisée pour la détection d'événements d'hybridation d'ADN 29,30. Une configuration d'électrodes, où la macro-échelle (de l'ordre du millimètre) sont plongées dans des béchers avec la solution d'intérêt peut être utilisée pour fournir des données très sensibles en ce qui concerne la cinétique de liaison des séquences d'ADN simples brins à leurs séquences complémentaires correspondantes. Récemment, il ya eu quelques progrès en intégrant la détection électrochimique en microfluidics pour hybridation de l'ADN. Des études ont été effectuées en ce qui concerne la cinétique d'hybridation 31 et de l'intégration de capteurs de détection 15 dans les canaux microfluidiques. Cependant, il existe encore un besoin pour un dispositif microfluidique à haut débit rapide qui permet d'analyser les événements d'hybridation d'ADN en parallèle, sans étapes compliquées de préparation de l'échantillon.
Le dispositif présenté dans ce travail fournit une plate-forme qui permet de multiples interactions qui seront projetés en parallèle et sans étapes compliquées de préparation des échantillons. Notre protocole présente comment microfluidique à base de biopuces électrochimiques sont microfabriqués avec les systèmes micro-électromécaniques (MEMS) 32,33. On décrit le procédé de fabrication à la fois de la puce microfluidique, en polydiméthylsiloxane (PDMS), et la puce électrochimique, composé d'un réseau d'électrodes. La fonctionnalisation chimique de la biopuce avec des sondes ADN simple brin est également abordé. Enfin, la capalité du biocapteur pour détecter spécifiquement et analyser des cibles d'ADN simple brin est démontrée. Dans l'ensemble, la biopuce microfluidique à base électrochimique-est une technique rapide et l'analyse à haut débit. Il peut être utilisé pour étudier les interactions entre les molécules biologiques et les transducteurs conductrices, et peut être utilisé dans une variété d'applications de laboratoires sur puce.
1. microfabrication de la puce microfluidique
2 Monter le périphérique
3 Analyser hybridation de l'ADN
REMARQUE: Introduire chaque solution lentement dans le canal à un débit de 200 ul / h de débit jusqu'à ce que tout le canal est rempli.
Procédé de fabrication précise et contrôlable pour le dispositif expérimental est essentiel dans la recherche. Il permet aux chercheurs d'obtenir des expériences de débit reproductibles et élevés. Ici, nous avons démontré un rendement élevé, un processus de microfabrication haute reproductibilité d'une biopuce microfluidique à base électrochimique (Figure 1). Avec un faible taux d'échec, quelques dispositifs ont montré des problèmes de liaison qui mènent à une fuite de s...
Nos travaux montrent la fabrication d'une biopuce à base électrochimique microfluidique, et son utilisation pour l'analyse d'événements d'hybridation d'ADN. Grâce à un processus de microfabrication à haut rendement contrôlée, nous développons un dispositif composé de canaux micrométriques intégrés à un réseau de transducteurs électrochimiques. Nous avons mis au point des paramètres de traitement de la procédure de contrôle de photolithographie de la puce électrochimique et le mou...
Les auteurs n'ont rien à divulguer.
Les auteurs remercient la Fondation Robert W. Deutsch, l'Agence de réduction de la Defense Threat (DTRA), et la Fondation nationale des sciences émergentes frontières dans la recherche et l'innovation (EFRI) pour un soutien financier. Les auteurs remercient également le NanoCenter Maryland et son Fablab de soutien de salle blanche.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Name of Material/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
Material | |||
4'' Silicon wafer | Ultrasil | 4-5664 | Single side polished; P-type; Boron doped; Orientation 1-0-0; Thickness 500 micron; Resistance 10-20 ohm*cm |
Shipley 1813 photoresist ("PR1") | Microchem | positive photoresist | |
AZ5214 photoresist ("PR2") | Hoechst Celanse | positive photoresist | |
SU-8 50 photoresist ("PR3") | Microchem | negative photoresist | |
Gold etchant | Transene | TFA | No dilution |
Chromium etchant | Transene | 1020AC | No dilution |
PDMS elastomer | Dow Corning | 3097366 1004 | |
PDMS curing agent | Dow Corning | 3097358 1004 | |
Biopsy punching tool | Healthlink | BP20 | |
Tygon flexible tubing | Cole Parmer | R 3603 | .015" |
Tygon flexible adapter | Cole Parmer | 06417-41 | .0625" |
1 mL syringe | Beckton-Dickenson | 301025 | |
Monobasic potassium phosphate | Fluka | 1551139 | |
Potassium phosphate dibasic anhydrous | Sigma | RES20765-A7 | |
Sodium chloride | Sigma-Aldrich | S7653 | |
tris(2-carboxyethyl)phosphine | Aldrich | C4706 | |
6-mercapto-1-hexanol | Aldrich | 451088 | |
20x concentrated saline-sodium citrate buffer | Sigma | 93017 | |
Potassium hexacyanoferrate(III) | Aldrich | 455946 | |
Sodium ferrocyanide | Aldrich | CDS001589 | |
Target ssDNA #1 | Integrated DNA Technologies (IDT) | 100 nmole DNA oligo | 5’-/5ThioMC6-D/AAAGCTCCGATAGCGCTCCG TGGACGTCCC-3’ |
Complementary ssDNA #1 | Integrated DNA Technologies (IDT) | 100 nmole DNA oligo | 5’-GGGACGTCCACGGAGCGCTA TCGGAGCTTT-3’ |
Target ssDNA #2 | Integrated DNA Technologies (IDT) | 100 nmole DNA oligo | 5’-/5ThioMC6-D/ACGCGTCAGGTCATTGACGA ATCGATGAGT-3’ |
Complementary ssDNA #2 | Integrated DNA Technologies (IDT) | 100 nmole DNA oligo | 5’-ACTCATCGATTCGTCAATGA CCTGACCCGT-3’ |
Target ssDNA #3 | Integrated DNA Technologies (IDT) | 100 nmole DNA oligo | 5’-/5ThioMC6-D/ACCTAGATCCAGTAGTTAGA CCCATGATGA-3’ |
Complementary ssDNA #3 | Integrated DNA Technologies (IDT) | 100 nmole DNA oligo | 5’-TCATCATGGGTCTAACTACT GGATCTAGGT-3’ |
Instrument | |||
Plasma Enhanced Chemical Vapor Deposition (PECVD) | Oxford Instruments | PlasmaLab System 100 | Chamber pressure 1000 mTorr, Tempreture 200 celsius degrees, RF power 20 W, Gasses: a) N2O flow rate 710 sccm; b) a composition of 5% SiH4 and 95% N2 gasses flow rate 170 sccm, SiO2 growth rate 690 Angstrom/minute. |
DC sputtering unit | AJA International | ATC 1800-V | For Chrome: Chamber pressure 10 mTorr, Argon flow rate 20 sccm, Supplied DC power 200 W, Sputter rate 10 nm/min. For Gold: Chamber pressure 10 mTorr, Argon flow rate 20 sccm, Supplied DC power 200 W, Sputter rate 36 nm/min. |
E-beam evaporation system | Denton | Custom-built | For Titanium: Chamber pressure <2E-6 Torr, Supplied power to the e-gun 7.5k W, Filament current 150-200 mA, Evaporation rate 6-10 Angstrom/second. For Platinum: Chamber pressure <2E-6 Torr, Supplied power to the e-gun 7.5k W, Filament current 150-200 mA, Evaporation rate 2-3 Angstrom/second. |
Potentiostat | CH Instruments | 660D | |
Syringe pump | KD Scientific | KDS230 |
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