Dérivation des adultes fibroblastes humains et de leur conversion directe dans les cellules progénitrices neurales extensible

Résumé

Génération de cellules souches pluripotentes induites offre des perspectives fascinantes pour la dérivation de la greffe autologue. Toutefois, la progression à travers un état pluripotent et laborieux re-différenciation entrave encore la traduction clinique. Nous décrivons ici la dérivation des fibroblastes humains adultes et leur conversion directe dans des cellules progénitrices neurales induites et la différenciation ultérieure dans les lignées neurales.

Résumé

Génération de cellules souches induites pluripotentes (CSPi) à partir de fibroblastes adultes de la peau et de la différenciation subséquente dans des cellules somatiques fournit des perspectives fascinantes pour la dérivation de greffes autologues qui contournent les barrières d'histocompatibilité. Toutefois, la progression à travers un état pluripotent et la différenciation complète subséquente en lignées désirées reste un obstacle pour la traduction clinique de la technologie iPSC raison de l'instabilité génomique potentiel et néoplasiques. Récemment, nous et d'autres avons montré que les cellules somatiques peuvent non seulement être converties en CSPi mais aussi en différents types de cellules souches somatiques multipotentes en utilisant des facteurs définis, contournant ainsi la progression à travers l'état pluripotent. En particulier, la conversion directe de fibroblastes humains en cellules progénitrices neurales induites (iNPCs) annonce la possibilité d'une source cellulaire autologue roman pour diverses applications telles que le remplacement de la cellule, la modélisation des maladieset le dépistage de la drogue. Ici, nous décrivons l'isolement des adultes fibroblastes primaires humains par biopsie de la peau et de leur conversion directe efficace en temps opportun iNPCs par l'expression restreinte de Oct4, Sox2, Klf4, ainsi que c-Myc. Colonies neuroépithéliales Sox2 positifs apparaissent après 17 jours d'induction et de lignes INPC peuvent être établies de manière efficace par l'isolement et l'expansion monoclonal. Réglage précis de la multiplicité de l'infection virale et la supplémentation du facteur inhibiteur de la leucémie au cours de la phase d'induction représentent des facteurs critiques pour atteindre des rendements de conversion de jusqu'à 0,2%. Jusqu'à présent, les lignes INPC spécifiques au patient pourraient être élargis pour plus de 12 passages et uniformément présentent des caractéristiques morphologiques et moléculaires de cellules souches / progénitrices neurales, comme l'expression de la nestine et Sox2. Les lignes INPC peuvent être différenciées en neurones et les astrocytes comme jugé par coloration TUJ1 et contre GFAP, respectivement. En conclusion, nous rapportons un protocole robuste pour la dérivation et de direconversion de ct de fibroblastes humains en cellules progénitrices neurales stable extensibles qui pourraient fournir une source cellulaire pour des applications biomédicales telles que le remplacement des cellules neurales autologue et de la modélisation de la maladie.

Introduction

En 2006 Yamanaka et ses collègues ont pu montrer pour la première fois la possibilité d'une reprogrammation de cellules somatiques dans un état ​​pluripotent ^1. Cette dédifférenciation a été obtenue par la surexpression de quatre facteurs de transcription Oct4, Sox2, Klf4, et c-Myc dans des fibroblastes murins. Les dits induits des cellules souches pluripotentes générés (CISP) montrent l'équivalence fonctionnelle de cellules souches embryonnaires (CSE) et peuvent donc être différenciées en tous les types de l'organisme adulte cellulaires. Un an plus tard, à la reprogrammation CSPi pourrait aussi être atteint pour les fibroblastes humains ^2. Des expériences sur des modèles animaux démontrent que les cellules iPSC dérivés peuvent généralement être utilisées pour la thérapie de remplacement cellulaire, par exemple dans des maladies (le PD) de Parkinson ^5.3. Cependant, plusieurs limites associées à l'utilisation des CSPi représentent barrages routiers pour la pleine réalisation de leur potentiel thérapeutique. De tous, la reprogrammation de cellules d'abord dans un état pluripotent et aprèscontrôle de la qualité est généralement un temps et processus inefficace rendement dans les procédures de culture cellulaire vastes et donc coûteuses. Deuxièmement, iPSCs doivent être re-différencié dans le type cellulaire souhaité d'intérêt avant l'application biomédicale et de la probabilité de cellules pluripotentes résiduels dans la population différenciée recèle un important potentiel tumorigène et affiche ainsi un risque élevé après la transplantation de cellules ^6. En troisième lieu, le processus de reprogrammation est habituellement obtenue en induisant les facteurs de reprogrammation par infection rétrovirale ou lenti-. L'intégration de ces virus dans le génome de l'hôte pourrait conduire à la mutagenèse par insertion et / ou la réactivation incontrôlée des transgènes ^7,8. Les systèmes non-intégration ont été développés pour fournir les facteurs de reprogrammation pour cibler les cellules, ce qui minimise le risque de mutagenèse insertionnelle et transgène réactivation. Des exemples de ces approches sans transgène sont la reprogrammation de cellules en utilisant non-intégrationAdeno virus Sendai ou ^9,10, vecteurs à base d'ADN ¹¹ ou l'application de méthodes exempts d'ADN, comme la transfection de l'ARNm synthétique ¹² ou transduction de protéines recombinantes ^13,14. Un autre procédé prometteur pour la dérivation de iPSC libre transgène est l'utilisation de constructions de reprogrammation loxP lentiviral modifié et suppression ultérieure de transgènes en utilisant le système de recombinaison Cre-loxP ADN ^15,16.

Une approche plus simple pour générer des cellules neurales pour la thérapie de remplacement de la cellule représente la conversion directe des fibroblastes en neurones post-mitotiques ^17-20. Vierbuchen et al. A rapporté que la surexpression de facteurs de transcription ASCL1, Brn2 Myt1l et des résultats dans la production de 20% des neurones à partir de ¹⁷ fibroblastes murins. En 2011, il a été montré que les trois mêmes facteurs de transcription, en combinaison avec la surexpression de NeuroD1 permettent transdifférenciation des fibroblastes humains en neurons ^19. neurones humaines induite pourraient également être générés par la surexpression de Ascl1 et Ngn2 sous double SMAD- et GSK3β- inhibition ^20. Notamment, la conversion directe des fibroblastes en neurones génère, une population de cellules post-mitotique non-prolifération qui ne permet pas d'expansion et de biobanques.

Récemment, la conversion directe des fibroblastes dans une population de cellules souches neurales / progénitrices prolifération a été signalé ^21-26. Par souci de clarté, tous ces types cellulaires seront nommés en tant que cellules progénitrices neurales induites (de iNPCs) dans ce rapport. Han et al. Surexprimé Brn4, Sox2, c-Myc et Klf4 pour générer iNPCs. Comme leurs homologues de cellules souches neurales dérivées de cellules de tissus soit primaire ou pluripotentes ces iNPCs sont tripotential et pourraient être différenciées en neurones, astrocytes et oligodendrocytes ^21. Notre groupe a rapporté un protocole de conversion légèrement différente impliquant la surexpression de Sox2, Klf4Et c-Myc et induite Oct4-expression pour 5 jours seulement. Avec cette approche, nous pourrions générer proliférant de manière stable iNPCs de embryonnaires et adultes fibroblastes murins qui présentent silencieux complet des facteurs de la reprogrammation ^22. Contrairement à iPSCs, iNPCs ne présentent pas de pouvoir tumorigène ²⁷ après la transplantation. Nous avons utilisé des cellules converti avec succès dans un modèle animal de démyélinisation, rats déficients en myéline, ce qui démontre que iNPCs sont cliniquement utiles ^22. Jusque-là, les PNJ ne pourraient être générés à partir de cellules souches pluripotentes ou tissu neural primaire ^28-32. iNPCs sont des cellules de manière stable extensibles qui peuvent être cryoconservés et sont capables de se différencier en neurones, astrocytes et oligodendrocytes. Beaucoup d'efforts ont été faits pour adapter le protocole de conversion directe de la souris à des cellules humaines ^23,26,33,34. En 2012, il a été publié que la surexpression du facteur de Sox2 unique dans des fibroblastes est suffisante pour générer murin et humain iNPCs 33. Les auteurs ont rapporté génération de iNPCs droits de fibroblastes de prépuce fœtales et les caractérisent par coloration contre Sox2 et Nestin. Cependant, les cellules cibles utilisés pour la reprogrammation représentent un type de cellule très particulière qui ne sera pas disponible en pratique clinique et il n'y avait pas la caractérisation fonctionnelle des cellules converties par la transplantation dans un modèle animal effectué. Une publication plus récente décrit la génération des progéniteurs neuronaux restreintes de fibroblastes foetaux humains par la surexpression de Sox2, c-Myc et soit Brn2 ou Brn4 ^34. Les lignées cellulaires générées ont montré une capacité d'auto-renouvellement et peuvent se différencier en différents types de neurones terminaux. Cependant, l'utilisation de fibroblastes foetaux est défavorable, étant donné que ces cellules sont d'origine hétérogène et on ne peut pas exclure la présence de résidus, par exemple, les cellules souches de la crête neurale dans les préparations. En 2014, Zhu et al. Ont rapporté la conversion directe de l'être humain adulte et néonatales fibroblastes en cellules progénitrices neurales tripotential par la surexpression de Sox2 avec Oct4 ou Oct4 seul et l'addition de petites molécules à des milieux de culture cellulaire. Notamment, sur la base de leurs études Sox2 seule était insuffisante pour induire une conversion directe ^26. Plus récemment, Lu et al. A rapporté que la surexpression de la Yamanaka facteurs Oct4-, Sox2-, Klf4-, c-Myc par virus Sendai pendant 24 heures et l'inactivation ultérieure du virus par l'augmentation des résultats de température dans la génération de neurones expansible tripotential ²³ cellules précurseurs. En conclusion, bien que les protocoles de conversion publiés pour les cellules humaines ont jusqu'ici en commun la surexpression d'au moins un ou plusieurs des facteurs Yamanaka, souvent en temps opportun restreint, il n'y a aucune indication claire des facteurs moléculaires minimales nécessaires à la conduite directe conversion en iNPCs. La surexpression de Oct4 opportun limité par des moyens génétiques, la transfection avec de l'ARNm synthétique, ou cprotéines ell infiltrant avec une expression constitutive de Sox2, Klf-4, et c-Myc n'a pas abouti à des lignées stables INPC humains encore. Ainsi, l'application de virus Sendai à surexpriment tous les facteurs Yamanaka et en temps opportun de limiter leur activité par inactivation par la chaleur des virus ²³ ainsi que les conditions d'induction de médias optimisés ^22,31 neuronal représente la stratégie préférée à ce jour.

Plusieurs études démontrent la fonctionnalité cellulaire de NNC ou leurs homologues différenciées dans les différents modèles de maladies animales. Progéniteurs neuronaux à partir de cellules souches pluripotentes humaines ont été transplantées dans des modèles murins de la maladie de la sclérose en plaques neuroinflammatoire ^35,36. L'applicabilité de cellules progénitrices neurales CSEh dérivées dans l'EAE (encéphalomyélite auto-immune expérimentale) -mice a été montré la première fois en 2008 ^35. Cellules précurseurs neurales multipotentes ont été injectés dans les ventricules du cerveau de la souris, et le résultat de la transplantationed dans la réduction des signes cliniques de l'EAE. Kim et al. Généré précurseurs oligodendrogliales de CSEh et transplanté ceux intracérébroventriculairement dans EAE-souris. Bien que les greffes ne survivent pas plus de 10 jours, les souris ont montré une amélioration significative de la fonction et de la réduction des cellules immunitaires pro-inflammatoires dans la substance blanche ³⁶ neurologique. la thérapie de cellules souches a également été appliquée pour le ciblage préclinique de la maladie de Parkinson que les PNJ peuvent être utilisés avec succès dans les modèles animaux respectifs. Pour cela, les cellules progénitrices ont été soit dérivées de tissu cérébral fœtal ³⁷ différenciées à partir de cellules souches pluripotentes ^{38 à 40} ou de cellules souches mésenchymateuses ⁴¹ ont été utilisés. En 2012, nous avons montré que iNPCs de souris sont capables de produire une protéine protéolipidique, la principale composante de protéine de la myéline, après la transplantation dans le cerveau de rats (md) de la myéline déficient ^22. Par cette expérience preuve-de-principe APPLICABIL thérapeutiquelité de iNPCs a d'abord été prouvé et bientôt confirmé par une autre étude ^32. Toutefois, le potentiel d'utilisation thérapeutique de iNPCs humains reste à explorer.

Ici, nous montrons un processus robuste et intégré de (i) la dérivation de cellules primaires humaines de patients adultes par biopsie de la peau, (ii) la conversion directe de fibroblastes humains dans un état progénitrices neurales et (iii) la capacité de iNPCs à se différencier en neurones et lignages gliales. L'utilisation de ce protocole aidera à accélérer la génération de cellules humaines autologues pour des applications thérapeutiques.

Protocole

Les fibroblastes humains utilisés dans cette étude ont été obtenues à partir d'une biopsie de poinçon de la peau après l'obtention du consentement et de la clairance éthique informé par le comité d'éthique de l'Université de Würzburg, Allemagne (rapport éthique no: 96/11 en date du 10.06.2011).

1. biopsie de

1. Désinfectez la peau du patient. Anesthésier partie de la peau dont la biopsie sera prélevé (de préférence une zone exposée au soleil moins) à l'aide de 0,5 à 1 ml de chlorhydrate de mépivacaïne intradermique et préparer biopsie de la peau en utilisant une biopsie 3mm poinçon stérile, rincer biopsie avec du DPBS + 1 pl / 1 ml gentamicine et retirer graisse. Rincer la biopsie deux fois avec DPBS + gentamicine, aspirer DPBS complètement et couvercle biopsie avec Dispase II (2,4 U / ml) et incuber 16 - 18 h à 4 ° C.
2. Aspirer Dispase complètement, se laver deux fois avec DPBS et enlever l'épiderme avec des pincettes. Laver deux fois avec DPBS biopsie, ajouter 2 ml de collagénase de type 2 (500 U / ml CDU), le transfert en tube de 15 ml et ajouter CollagenaSE jusqu'à 5 ml volume total. Incuber pendant 45 min à 37 ° C, 5% CO _2.
3. Centrifugeuse 5 min à 180 xg et éliminer le surnageant après. Resuspendre le culot dans 10 ml de DMEM-FCS-gentamicine-médias (10% de FCS, 1 pl / ml de gentamicine) et centrifuger à nouveau pendant 5 min à 180 x g. Rejeter le surnageant et remettre le culot dans 1,5 ml de DMEM-FCS-gentamicine-médias. Transfert à T25 adhérent ballon de culture de tissu et incuber à 37 ° C, 5% CO _2.
4. Changer de support tous les 3 jours.
5. Après environ 2 semaines, lorsque les cellules sont confluentes dans les parties de la peau, des cellules divisées à l'aide de trypsine / EDTA (0,05%): des cellules de lavage une fois avec du DPBS, incuber 5 minutes à 37 ° C, 5% CO ₂ après addition de 2 ml de trypsine / EDTA (0,05%), ajouter 2 ml de DMEM-FCS-gentamicine médias, transfert à tube de 15 ml et centrifuger à 180 g pendant 5 min; jeter le surnageant du culot et remettre en suspension dans quantité appropriée de DMEM-FCS-gentamicine-médias.
6. Étendre les cellules en changeant le milieu tous les 3 ^rd jour et le clivage comme décrit ci-dessus lorsque les cellules sont confluentes; ajout de gentamicine peut être arrêté après le passage 2.
7. Avant d'utiliser les cellules pour des expériences de conversion directe, assurez-vous d'exclure toute contamination par des mycoplasmes par des dosages standard.
8. Lorsque les cellules ont été élargis, vous pouvez commencer directement la conversion ou congeler les cellules vers le bas en utilisant 10% de DMSO et 90% de FCS. Les cellules doivent être stockées dans -80 ° C pendant 2 jours, puis transférés dans de l'azote liquide pour un stockage à long terme.
9. Pour la préparation de la conversion, laver les cellules une fois avec DPBS, aspirer DPBS et ajouter 2,5 ml de trypsine / EDTA (0,05%). Maintenir pendant 5 min à 37 ° C, 5% CO _2. Appuyez ballon doucement pour détacher les cellules, remettre en suspension dans 2,5 ml de milieu de fibroblastes (DMEM incl. L-Glu + 10% FCS + 1% de NEAA + 1% de pyruvate de sodium) et à transférer 15 ml tube. Centrifuger à 180 g pendant 5 min et aspirer le surnageant. Resuspendre les cellules dans 1 ml de médias fibroblastes et pipette haut et en bas pour générer suspension cellulaire unique.
10. Comptez le nombre de cellules en utilisant une chambre de comptage Fuchs-Rosenthal- ou Neubauer-cellule et la plaque 3 x 10 ⁴ cellules par puits d'une plaque 24. Incuber O / N à 37 ° C, 5% CO _2.

2. L'infection des fibroblastes humains avec Sendai virus et transdifférenciation

REMARQUE: Pour assurer la sécurité, les étapes suivantes virus de manutention doivent être effectuées dans une enceinte de sécurité biologique et d'une hotte à flux laminaire, et avec un équipement personnel approprié de sécurité, notamment un masque chirurgical, pour prévenir l'exposition des muqueuses.

1. Mettez cellules à 100 pi médias fibroblastes (Étape 1.9). Décongeler aliquotes de Oct4-, Klf4-, Sox2- et virus c-myc-Sendai et remettre chaque virus dans 1 ml de médias fibroblastes. Ajouter chaque virus avec un MOI de 3 à cellules (titre de virus varie d'un lot à, mais une aliquote de chaque virus peut généralement être utilisé pour l'infection de 10 puits d'une plaque 24) et mélanger doucement. Incuber O / N à 37 ° C, 5% CO ₂ .
2. Après 24 heures aspirer le milieu et ajouter 500 ul de milieu de neuroinduction (1: 1 de DMEM / F-12: Neurobasal, 1x N2, 1x B27, 1% GlutaMAX, 10 ng / ml hLIF, 3 uM CHIR99021, 2 uM SB431542) et la culture à 39 ° C, 5% de CO ₂ à partir de maintenant. Changer les médias tous les jours.
3. Au jour 6 après l'infection préparer 6 puits des plaques de laminine-enduit: diluer la laminine à 1 pg / ml dans du DPBS, ajouter 1 ml de solution sur 6 ainsi des plaques et de garder à 4 ° C pendant 24 heures.
4. Au jour 7 après l'infection diviser les cellules en utilisant DPBS / EDTA: aspirer les médias et laver les cellules une fois avec DPBS, puis ajouter 500 ul de DPBS / EDTA et incuber pendant 10 min à 37 ° C, 5% de CO _2.
5. Ajouter 500 pi de DMEM / F12 et retirer la suspension de la plaque dans un tube de 15 ml et centrifuger à 180 g pendant 5 min.
6. Aspirer le surnageant et remettre le culot dans 1,5 ml de milieu de neuroinduction, plaque sur 6 et plaques de laminine-couché et ajouter inhibiteur ROCK Y27632 dans un conce finalentration de 10 uM dans les cellules, la culture à 39 ° C, 5% CO _2.
7. Changer les médias tous les jours.
8. Au jour 14 après infection de la culture les cellules à 37 ° C, 5% CO _2. Neuroépithéliales colonies deviennent apparents autour du jour 17 après l'infection par microscopie à contraste de phase. Ils doivent être suffisamment grand pour être ramassé autour du jour 20 après l'infection.

3. Isolation des Colonies Putative INPC

1. Un jour avant la cueillette, manteau un 48 bien-plaque avec la laminine: diluer la laminine à 1 pg / ml dans du DPBS, ajouter 300 pi de solution sur des plaques et de garder à 4 ° C pendant 24 heures. Un jour plus tard aspirer la laminine à partir de plaques et ajouter 200 ul de milieu de neuroinduction dans les puits.
2. Laver les 6 bien des plaques contenant les colonies à être ramassé une fois avec DPBS et ajouter 2 ml par puits de DPBS 6 bien-plaque. Choisissez les colonies mécaniquement: gratter autour des colonies à l'aide d'une aiguille fine pour se débarrasser des cellules environnantes; définir le 2001; l Pipetman sur 50 pi et ramasser les colonies en utilisant les embouts de pipette respectifs.
3. Transférer une colonie de chaque dans un puits d'une 48 bien-plaque de la laminine-enduit et de générer une suspension cellulaire unique mécaniquement par aspiration et refoulement 10 fois. Ajouter inhibiteur de ROCK Y27632 dans une concentration finale de 10 uM dans les cellules.
4. Cultiver les cellules sur la plaque 48-puits à 37 ° C, 5% CO ₂ pendant 2 jours. Changer les médias tous les deux jours jusqu'à ce que les cellules atteignent 80 - 90% de confluence (environ 3 - 4 jours.).

4. Expansion et Cryo-conservation de iNPCs

1. Le repiquage et expansion de iNPCs
   1. Aspirer le milieu et laver les cellules avec du DPBS. Aspirer le DPBS et ajouter 200 ul DPBS / EDTA et incuber pendant 10 min à 37 ° C, 5% de CO _2, ajouter 200 pi de DMEM / F12 et retirer la suspension de la plaque dans un tube de 15 ml, centrifuger à 180 g pendant 5 min .
   2. Aspirer le surnageant et remettre le culot dans 0,5 ml de neuroinduction médias (étape 2.2), plaque sur des plaques 12 puits revêtues de laminine et ajouter un inhibiteur de ROCK Y27632 dans une concentration finale de 10 uM dans les cellules, la culture à 37 ° C, 5% CO _2. Après que les cellules atteignent 80-90% de confluence, soit ils peuvent être congelés ou encore développés de la façon suivante.
2. Gel des iNPCs
   1. Aspirer le milieu et laver les cellules avec du DPBS. Aspirer le DPBS et ajoutez DPBS 300 pi / EDTA et incuber pendant 10 min à 37 ° C, 5% de CO _2, ajouter 300 pi de DMEM / F12 et retirer la suspension de la plaque dans un tube de 15 ml, centrifuger à 180 g pendant 5 min.
   2. Aspirer le surnageant et remettre le culot dans 0,5 ml de milieu de congélation NSC commerciale. Transfert suspension dans des flacons de gel et de mettre dans un récipient de congélation de cellules. Conserver à -80 ° C pendant 2 jours, puis transfert à l'azote liquide pour le stockage à long terme.

5. Différenciation des iNPCs

1. Différenciation vers neuroneal lignée
   1. Culture de cellules sur des plaques revêtues de laminine, comme décrit ci-dessus. Changer de support de neuro-diff-support (DMEM / F-12, N2 1x, 1x B27, 300 ng / ml AMPc, 200 pM de vitamine C, de 10 ng / ml de BDNF, 10 ng / ml GDNF) lorsque les cellules sont d'environ 70% confluentes. Changer les médias chaque jour pendant trois semaines. Avez cellules non divisées lors de la différenciation.
   2. Après trois semaines cellules devraient exprimer le marqueur TUJ1 neuronale. Pour gagner neurones plus matures et sous-types de neurones continuer différenciation jusqu'à 3 mois.
2. Différenciation vers la lignée gliale
   1. Changer de support de support d'induction des cellules gliales (1: 1 de DMEM / F-12: Neurobasal, 1x N2, 1x B27, 10 uM de β-mercaptoéthanol, 100 uM d'acides aminés non essentiels, 1,5 mM de L-glutamine, l'insuline 5 ug / ml, 40 ng / ml de T3) comprenant 20 ng / ml d'EGF pour induire une différenciation en cellules précurseurs gliales. Retirer la moitié des médias et le remplacer par un milieu frais chaque jour pendant environ 2 semaines. Pendant cette période, les cellules doivent être divisés1: 3 en présence d'un inhibiteur de ROCK 10 uM Y27632 lorsque 100% de confluence est atteint.
   2. Après 2 semaines différencier les cellules plus loin dans les astrocytes: lorsque les cellules sont des médias de changement presque confluentes aux médias des astrocytes disponible dans le commerce, changer de support tous les deux jours. Après environ 7 jours cellules commencent à exprimer des marqueurs d'astrocytes (par exemple, GFAP). Si les cellules deviennent confluentes à 100% au cours du protocole de différenciation, les diviser en un rapport de 1: 2 en présence de l'inhibiteur de ROCK 10 uM Y27632.

Résultats

Nous présentons ici la description d'un processus intégré qui permet de générer des cellules induites neurales progénitrices (de iNPCs) à partir de fibroblastes humains qui ont été obtenus par une biopsie de poinçon de la peau en moins de 8 semaines (Figure 1). iNPCs Patient-specifc peuvent être davantage différenciées en lignées neuronales et gliales et abritent un énorme potentiel pour la thérapie de remplacement de la cellule et de la modélisation de la maladie.

Discussion

Ici, nous montrons l'isolement et la conversion directe de fibroblastes humains dans des cellules progénitrices neurales transgène libre-expansibles et leur descendance différenciée en fonction putative pour la thérapie de remplacement cellulaire ou à l'application dans les analyses de dépistage de drogue. La conversion directe de la lignée de cellules somatiques dans NPC a été obtenue par expression forcée de transcription spécifique de la lignée des facteurs ^26,33,34. Néanmoins, dans d...

matériels

Name	Company	Catalog Number	Comments
Astrocyte media	ScienCell	1801
B27	LifeTechnologies	17504-044
BDNF	Peprotech	450-02
Biopsy Punch	pfm medical	48301
cAMP	Sigma	A6885
CHIR99021	Axon medchem	1386
Collagenase Type2	Worthington Biochemical	LS004177
Dispase	PAN	P10-032100
DMEM	LifeTechnologies	41966-029
DMEM F12	LifeTechnologies	11320-033
DMSO	Roth	4720
DPBS	LifeTechnologies	14190-094
EGF	Life Technologies	PHG0313
FCS	Biochrom AG	50115
GDNF	Peprotech	450-10
Gentamicin	Sigma	G1397
GFAP-antibody	Dako	Z0334
GlutaMAX	LifeTechnologies	35050-038
hLIF	Peprotech	300-05
Insulin	Seralab	GEM-700-112-P
Ki67-antibody	NeoMarkers	RM-9106-S
L-Glutamine	LifeTechnologies	25030-024
Laminin	Sigma	L2020
N2	LifeTechnologies	17502-048
Nestin-antibody	R&D Systems	MAB1259
Neurobasal	LifeTechnologies	21103-049
Non-essential amino acids	LifeTechnologies	11140-050
NSC freezing media	Sigma	C6295
Oct4-antibody	Santa Cruz	sc9081
Pax6-antibody	Covance	PRB-278P
SB431542	Invivogen	inh-sb43
Sendai virus: CytoTune Sendai Reprogramming Kit	LifeTechnologies	A1378001
Sodiumpyruvate	Life Technologies	11360-039
Sox1-antibody	R&D Systems	AF3369
Sox2-antibody	R&D Systems	MAB2018
T3	Santa Cruz	sc-205725
Trypsin/EDTA	Life Technologies	15400-054
TUJ1-antibody	Covance	MMS-435P-250
Vitamin C	Sigma	A4544
Y27632	Calbiochem	CAS 146986-50-7
β-Mercaptoethanol	LifeTechnologies	21985023