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Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

Nous présentons ici un protocole pour utiliser thiazole orange pour la détection de l’ADN dans les expériences d’électrophorèse de gel. L’utilisation d’orange thiazole permet d’éliminer le bromure d’éthidium, et la détection par fluorescence peut être réalisée avec UV ou lumière bleue.

Résumé

Électrophorèse de gel d’ADN à l’aide de gel d’agarose est un outil commun dans les laboratoires de biologie moléculaire, permettant la séparation des fragments d’ADN de taille. Après la séparation, l’ADN est visualisé par coloration. Cet article montre comment utiliser ADN thiazole orange sur la tache. Orange de thiazole se compare favorablement à des méthodes de coloration courantes, qu’il est sensible, peu coûteux, excitables avec UV ou lumière bleue (pour éviter les dommages de l’échantillon) et plus sûr que le bromure d’éthidium. Laboratoires déjà équipés pour exécuter les expériences de l’électrophorèse d’ADN en utilisant du bromure d’éthidium peuvent généralement passer colorants sans modification supplémentaire à des protocoles existants, à l’aide de rayons UV pour la détection. Détection de la lumière bleue pour éviter tout endommagement de l’échantillon est possible en outre avec un filtre de source et d’émission de lumière bleue. Laboratoires déjà équipés pour la détection de la lumière bleue peuvent simplement passer colorants sans modification supplémentaire à des protocoles existants.

Introduction

Le but de cette méthode consiste à identifier l’ADN en gels d’agarose en utilisant thiazole orange (TO) pour la détection par fluorescence. En raison de son profil d’innocuité favorable et à faible coût, orange thiazole peut voir particulièrement bénéfique dans les laboratoires d’enseignement de premier cycle et des laboratoires de recherche effectuant la biologie moléculaire, en particulier des trompes et le clonage.

Le bromure d’éthidium reste la teinture plus courante pour la détection de l’ADN en gels d’agarose. C’est principalement parce qu’il peut être obtenu très peu de frais et ne nécessite que d’excitation avec la lumière UV pour détection. Les deux d’éthidium bromure thiazole orange sont peu coûteux, avec détection de faibles limites (ng/voie 1-2)1. Il y a deux principaux inconvénients au bromure d’éthidium, cependant, qui améliore orange thiazole.

Tout d’abord, le bromure d’éthidium est un agent mutagène2 avec un traitement spécial, l’envoi et exigences de la disposition, alors que thiazole orange est moins mutagène (3 – 4 x moins mutagène dans le test d’Ames)3,4 et peuvent être éliminées en général avec déchets chimiques communs.

Deuxièmement, le bromure d’éthidium exige la lumière UV pour la détection. Thiazole orange pouvez utiliser de la même façon de lumière UV si vous le souhaitez, mais peut également être détecté avec la lumière bleue. Lumière UV, bien que couramment utilisé, a quelques inconvénients marquants. Tout d’abord, il est dommageable pour les yeux et la peau humaine. Alors que la lumière UV peut être utilisé en toute sécurité par des professionnels qualifiés, cutanée ou oculaire dommages accidentels (fonctionnellement similaires aux coups de soleil) de la lumière UV de laboratoire ne sont pas rares en particulier avec les scientifiques inexpérimentés. En second lieu, la lumière UV est extrêmement nuisible à ADN échantillons5, ce qui réduit le succès des expériences en aval (par exemple la ligature et transformation)1,6,7. TO permet de détecter avec la lumière bleue (λex, max = 510 nm (488 nm et 470 nm montrent aussi forte excitation)), qui ne provoque pas de lésions cutanées ou d’endommager l’ADN (bien que toute lumière intense peut encore être nocif pour les yeux), qui réduit considérablement les risques pour les deux le scientifique et l’échantillon.

N’est pas l’alternative de colorant fluorescent seulement au bromure d’éthidium ; son avantage est le coût. A été découvert dans les années 1980 comme une tache de réticulocytes8et a trouvé l’utilitaire dans un certain nombre de fluorescence basées sur l’ADN des expériences9,10,11,12,13. Il est actuellement vendu par plusieurs fournisseurs. Est le composé parent de supplémentaires, plus cher, colorants commerciaux bleu lumière – détectables et se comporte de la même façon au cours de l’électrophorèse, UV ou lumière bleue pour détection1. En outre, alors que les autres colorants sont plus sensibles à très faibles concentrations d’ADN que le bromure d’éthidium ou TO, pour des expériences d’électrophorèse génériques, ces colorants sont prohibitifs dans de nombreux contextes.

Protocole

1. préparation du gel

Nota : Pour les protocoles d’électrophorèse sur gel général, voir aussi P.Y. Lee, et al. 14.

  1. Mélanger le gel d’agarose (~ 1 % p/v, pourcentage peut varier pour des séparations de taille particulière) dans un tampon (environ 70 mL pour un mini-gel (8 x 7 cm)). Les mémoires tampons sont couramment TAE (pH de tris-acétate-EDTA, Tris, acétate de 20 mM, 40 mM EDTA 1 mM, environ 8,6) ou TBE (pH de tris-borate-EDTA, Tris, borate de 90 mM, 90 mM à 2 mM EDTA, environ 8,3)).
  2. Ajouter thiazole orange à une concentration finale de 1,3 µg/mL.
    1. Dissoudre thiazole orange dans le DMSO pour faire une solution stock de 10 000 x (13 mg/mL). Tandis que pas particulièrement photosensible, magasin à dans le sombre quand pas en service. Cette solution est stable à température ambiante pendant ~ mois ; entreposage à long terme peut être obtenu par congélation aliquotes (DMSO se figera dans un réfrigérateur standard). N’oubliez pas de tout à fait fondre et remettre en suspension dans une solution congelée avant utilisation.
      Remarque : Le gel peut également être coloré avec TO après électrophorèse (voir étape 2.6). Certain temps pour a un profil d’innocuité améliorés sur le bromure d’éthidium, sécurité de laboratoire standard biologie moléculaire des précautions devraient être maintenues.
  3. Chauffer le mélange de gel d’agarose, tampon et thiazole orange de dissoudre le gel d’agarose (environ 60 s). Cette étape est communément appelé « fusion ». Swirl (5 s) à la dissolution de l’aide si nécessaire.
    Remarque : Pour peuvent également être ajoutés après la cuisson aux micro-ondes si vous préférez.
  4. Laisser la solution d’agarose refroidir brièvement avant de verser dans l’appareil de coulage de gel contenant un peigne approprié.
  5. Laisser la solution de gel d’agarose à se solidifier en gel.

2. chargement et l’exécution du gel

  1. Placer le gel dans l’appareil d’électrophorèse si il n’est pas déjà présent.
  2. Ajouter en cours d’exécution de tampon (TAE ou TBE comme ci-dessus) pour couvrir la surface du gel.
  3. Charger des échantillons d’ADN (couramment 10 μL) en utilisant un colorant de chargement. Inclure une échelle d’ADN de dimensionnement pour référence.
  4. Fixez le couvercle et les électrodes (gel doit être exécuté vers l’anode rouge (positive)).
  5. Mettre sous tension (généralement ~ 100V pour un mini-gel, bien que de taille de gel peut exiger une tension modifiée pour éviter d’endommager le gel) jusqu'à ce que le colorant de chargement a parcouru une distance appropriée (environ 4 à 7 cm pour un mini-gel, bien que la distance peut varier selon le champ d’application).
    Remarque : Comme le bromure d’éthidium et beaucoup d’autres colorants de liaison à l’ADN, orange thiazole est chargé positivement. Par conséquent, ces colorants vont migrer dans la direction opposée d’electrophoresing ADN. Pour les échantillons qui sont jusqu'à maintenant couler le gel pour séparation renforcée, éventuellement le colorant se séparera de petits fragments d’ADN, ce qui entraîne une coloration faible. Dans ces cas, le gel devrait être coloré comme au point 2.6. Cette situation n’est pas propre aux TO, tout chargés positivement colorant qui réversiblement interagit avec l’ADN exposera ce comportement (y compris le bromure d’éthidium, à et autres).
  6. Si à n’a ne pas ajouté avant la coulée (étape 1.2) en gel, teinture par immersion du gel dans la mémoire tampon contenant thiazole orange.
    1. Préparer suffisamment tampon (TAE ou TBE) contenant 1,3 thiazole μg/mL orange complètement recouvrir le gel et trempez le gel avec agitation douce jusqu'à ce que les bandes sont entièrement détecté (environ 20 min).

3. visualisation du gel d’agarose orange de thiazole (transilluminateur UV)

  1. Retirer le gel de l’appareil d’électrophorèse et la placer sur un transilluminateur UV.
    Attention : Lampe UV est nuisible pour la peau et les yeux. N’oubliez pas de porter les yeux (lunettes) et protection du visage (facial). Mains devraient avoir des gants et il faut porter des manches longues.
  2. Si vous le souhaitez, découpe souhaitée des bandes d’ADN de gel (pour une digestion plue ou ligature, par exemple). Exposer le gel à la lumière UV pour que court un laps de temps que possible au cours de l’excision. Ultraviolets (indépendamment de la teinture de l’ADN) endommage l’ADN.
  3. Extraire l’ADN de la tranche de gel à l’aide d’un kit ou protocole disponibles15.

4. visualisation du gel d’agarose orange de thiazole (transilluminateur de lumière bleue ou lampe de poche)

  1. Retirer le gel de l’appareil d’électrophorèse et la placer sur un transilluminateur de lumière bleue (longueur d’onde 470 ~ d’émission maximum nm). Par ailleurs, une LED bleue (~ 470 nm) lampe de poche peut être dirigée vers le gel (que ce soit par dessus ou en dessous).
    NOTE : Tandis que la sensibilité est inférieure à l’aide d’un transilluminateur de lumière bleue au bromure d’éthidium, ADN coloré au bromure d’éthidium peut être détectée par ce protocole de lumière bleue.
  2. Utiliser un filtre d’ambre d’émission (~ 560 nm longpass, soit des lunettes ou carré) pour filtrer la lumière bleue, ce qui permet la visualisation de la fluorescence des complexes ADN : thiazole orange.
    Remarque : Sans le filtre d’émission ambre, il est très difficile de détecter les bandes d’ADN en raison de l’intensité de la source d’excitation de la lumière bleue.
    Attention : Bien que la lumière bleue n’a pas la capacité de gravement endommager les tissus (contrastant UV), prolongées une exposition à une lumière bleue intense pourrait endommager les yeux et ambre d’émission des lunettes ou un filtre doit être utilisé.
  3. Si vous le souhaitez, découper des bandes d’ADN désirées du gel pour les autres applications.
    Remarque : Étant donné que la lumière bleue n’endommage pas l’ADN, il n’est pas nécessaire de découper rapidement bandes (comme par exemple lorsque avec excitation UV à l’étape 3.2).
  4. Extraire l’ADN de la tranche de gel à l’aide d’un kit ou protocole disponibles15.

5. capture d’image

  1. Sélectionnez les paramètres appropriés d’excitation et d’émission dans des appareils d’imagerie gel. L’excitation et l’émission d’orange thiazole (λex, max = 510 nm (488 nm et 470 nm montrent aussi une excitation forte, en plus de la forte excitation aux longueurs d’onde UV) ; λem = 527 nm) sont presque identiques aux commun commercial bleu-lumière – détectable colorants, donc peuvent comporter des instruments préétablies des paramètres de filtre qui peuvent être utilisés.
    Remarque : Certains paramètres de filtre de lumière bleue – détectables colorants commerciaux utilisent les rayons nocifs UV pour l’excitation, donc soyez prudent si l’imagerie avant de découper des bandes. Utilisez si possible une source de lumière bleue excitation lorsque les bandes d’ADN vont être excisées après l’imagerie.
  2. En l’absence d’un système d’imagerie avec des filtres appropriés, prévoir un filtre ambre entre la caméra et la source d’excitation de gel/bleu-clair.

Résultats

Orange de thiazole permet la détection de l’ADN, sans utiliser le bromure d’éthidium et sans moyen de rayons UV endommagent l’ADN. Le bromure d’éthidium est connu pour être mutagène, afin de l’éliminer du labo peut être avantageux. Lumière UV endommage l’ADN et diminue l’efficacité de la transformation significativement, tandis que la lumière bleue n’endommage pas l’ADN. Limites de détection sont similaires entre le bromure d’éthidium, thiazole orange et un colorant ADN commercial commun, ...

Discussion

Le bromure d’éthidium est depuis longtemps un outil standard dans le laboratoire de biologie moléculaire, malgré la toxicité connue. Il souffre également d’exiger la lumière UV, ce qui endommage l’ADN tel qu’il est détecté. Thiazole orange offre une alternative peu coûteuse au bromure d’éthidium, ainsi que des colorants commerciaux utiles mais chers.

Les avantages d’orange thiazole sont ainsi deux fois. Tout d’abord, orange thiazole utilisable simplement comme un rempla...

Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par des fonds de démarrage de TMD de Christopher Newport University.

matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
2-log DNA ladderNew England BiolabsN0469S
Agarose (Genetic Analysis Grade)FisherBP1356-100
Blue-light flashlightWAYLLSHINE (Amazon)WAYLLSHINE Scalable Blue LED
ChemiDoc MPBiorad1708280
DMSOSigma-AldrichD8418
ethidium bromideFisherBP1302-10For comparison, not necessary for protocol
Gel apparatus (Owl Easy Cast)Thermo ScientificB1A
Qiagen Qiaquick Gel extraction kitQiagen28704
Safe Imager Viewing GlassesInvitrogenS37103Necessary for using blue light flashlight.*
SafeImager 2.0 (Blue light transilluminator)InvitrogenG6600Blue light flashlight may be used as alternative
SYBR SafeInvitrogenS33102For comparison, not necessary for protocol
TAE (Tris-Acetate-EDTA)Corning46-010-CM
Thiazole orangeSigma-Aldrich390062
*Glasses are also included with Invitrogen G6600

Références

  1. O'Neil, C. S., Beach, J. L., Gruber, T. D. Thiazole orange as an everyday replacement for ethidium bromide and costly DNA dyes for electrophoresis. Electrophoresis. 39 (12), 1474-1477 (2018).
  2. McCann, J., Choi, E., Yamasaki, E., Ames, B. N. Detection of carcinogens as mutagens in the Salmonella/microsome test: assay of 300 chemicals. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 72 (12), 5135-5139 (1975).
  3. Evenson, W. E., Boden, L. M., Muzikar, K. A., O’Leary, D. J. 1H and 13C NMR Assignments for the Cyanine Dyes SYBR Safe and Thiazole Orange. The Journal of Organic Chemistry. 77 (23), 10967-10971 (2012).
  4. Beaudet, M., Cox, G., Yue, S. . Molecular Probes, Inc. , (2005).
  5. Pfeifer, G. P., You, Y. H., Besaratinia, A. Mutations induced by ultraviolet light. Mutation Research. 571 (1-2), 19-31 (2005).
  6. Cariello, N. F., Keohavong, P., Sanderson, B. J., Thilly, W. G. DNA damage produced by ethidium bromide staining and exposure to ultraviolet light. Nucleic Acids Research. 16 (9), 4157 (1988).
  7. Hartman, P. S. Transillumination can profoundly reduce transformation frequencies. BioTechniques. 11 (6), 747-748 (1991).
  8. Lee, L. G., Chen, C. H., Chiu, L. A. Thiazole orange: a new dye for reticulocyte analysis. Cytometry. 7 (6), 508-517 (1986).
  9. Nygren, J., Svanvik, N., Kubista, M. The Interactions Between the Fluorescent Dye Thiazole Orange and DNA. Biopolymers. , 1-13 (1998).
  10. Svanvik, N., Westman, G., Wang, D., Kubista, M. Light-Up Probes: Thiazole Orange-Conjugated Peptide Nucleic Acid for Detection of Target Nucleic Acid in Homogeneous Solution. Analytical Biochemistry. 281 (1), 26-35 (2000).
  11. Yang, P., De Cian, A., Teulade-Fichou, M. P., Mergny, J. L., Monchaud, D. Engineering Bisquinolinium/Thiazole Orange Conjugates for Fluorescent Sensing of G-Quadruplex DNA. Angewandte Chemie International Edition. 48 (12), 2188-2191 (2009).
  12. Fang, G. M., Chamiolo, J., Kankowski, S., Hovelmann, F., Friedrich, D., Lower, A., Meier, J. C., Seitz, O. A bright FIT-PNA hybridization probe for the hybridization state specific analysis of a C → U RNA edit via FRET in a binary system. Chemical Science. 9 (21), 4794-4800 (2018).
  13. Pei, R., Rothman, J., Xie, Y., Stojanovic, M. N. Light-up properties of complexes between thiazole orange-small molecule conjugates and aptamers. Nucleic Acids Research. 37 (8), e59-e59 (2009).
  14. Lee, P. Y., Costumbrado, J., Hsu, C. Y., Kim, Y. H. Agarose Gel Electrophoresis for the Separation of DNA Fragments. Journal of Visualized Experiments. (62), 1-5 (2012).
  15. Vogelstein, B., Gillespie, D. Preparative and analytical purification of DNA from agarose. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 76 (2), 615-619 (1979).

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