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Prélèvement d'échantillons de sang II

Vue d'ensemble

Source : Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR ; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Université de Notre Dame, Indiana

La collecte du sang de souris et les rats pour l’analyse peut se faire par le biais de diverses méthodes. Chaque méthode de collection a des variations dans le type de contrainte nécessaire, le caractère invasif de la procédure et la nécessité d’une anesthésie générale. 1 Historiquement, l’utilisation de la cavité du sinus rétro-orbitaire a été utilisée, mais pas sans débat. La controverse concernant les dommages potentiels des tissus, ou même la cécité, causée par rétro-orbitaire saigne a conduit au développement de la veine faciale et sous-mandibulaire saignement méthodes chez les souris. Collecte de sang de la veine saphène dans les souris et les rats est une autre technique qui a été développée. Ces procédures ne nécessitent pas d’anesthésie et sont donc indiquées lors de l’utilisation d’anesthésiques peut-être entraîner des résultats de sang ou d’autres données.

Procédure

1. du visage veine saigner chez la souris

  1. Matériel
    1. Collecte de sang est d’une prise libre dans un tube de sang ou un tube Eppendorf. Dans certains cas, il convient de prélever le sang directement dans les tubes de l’hématocrite.
    2. Lancettes de verge d’or seront choisis en fonction de la taille appropriée pour l’animal selon l’âge et le sexe.
      1. Les lancettes sont choisis selon l’âge et la taille des souris comme suit :
        lancet 4mm : 3-4-week-old souris (moins de 15 grammes de poids corpo

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Applications et Résumé

La méthode de collecte de sang peut provoquer une variation dans l’analyse de l’échantillon. Le niveau de compétence du technicien effectuant le prélèvement des échantillons a un impact sur la qualité de l’échantillon et le bien-être de l’animal. L’utilisation d’anesthésiques peut également affecter la qualité de l’échantillon. Les méthodes décrites ici sont toutes effectuées sans l’utilisation de l’anesthésie, donc cette variable a été éliminée. En outre, toutes ces techniques peuv...

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References
  1. Fernandez, I., Arantza, P., Del Teso, N., Perez, V. and Rodriguez-Cuesta, J. 2010. Clinical biochemistry parameters in C57BL/6J mice after blood collection from the submandibular vein and retroorbital plexus. Journal of American Association of Laboratory Animal Science. 49:2. 202-210.
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  3. Hem, A., Smith, A.J. and Solberg, P. 1998. Saphenous vein puncture for blood sampling of the mouse, rat, hamster, gerbil, guinea pig, ferret and mink. Laboratory Animals. 32. 364-368.
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Tags
Blood WithdrawalMiceRatsScientific StudiesMethodsExperimental GoalsRetro orbital Eye BleedTail SnipsNicksIntra cardiac Blood CollectionFacial VeinSubmandibular VeinSaphenous VeinFemoral VeinLess Invasive MethodsAnesthesia free MethodsBlood SampleMurine Facial VeinEquipmentCentrifuge TubeLancet SelectionAnimal RestraintVenipuncture

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Overview

0:58

Facial Vein Bleed

3:28

Submandibular Vein Bleed

5:25

Saphenous Vein Bleed

7:58

Femoral Vein Bleed

10:23

Applications

11:56

Summary

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