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Retirada de Sangue II

Visão Geral

Fonte: Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Universidade de Notre Dame, IN

A coleta de sangue de camundongos e ratos para análise pode ser feita através de uma variedade de métodos. Cada método de coleta tem variações no tipo de contenção necessária, na invasividade do procedimento e na necessidade de um anestésico geral. 1 Historicamente, o uso da cavidade sinusal retro-orbital tem sido utilizado, mas não sem debate. A controvérsia relacionada aos potenciais danos teciduais, ou mesmo cegueira, causada por sangramentos retro-orbitais levou ao desenvolvimento de métodos de sangramento facial e submandibular em camundongos. A coleta de sangue da veia safena em camundongos e ratos é outra técnica que foi desenvolvida. Esses procedimentos não requerem anestesia e, portanto, são adequados quando o uso de anestésicos pode confundir resultados sanguíneos ou outros dados.

Procedimento

1. Veia facial sangra em camundongos

  1. Equipamento
    1. A coleta de sangue é de uma captura grátis em um tubo de sangue ou um tubo Eppendorf. Em alguns casos, é desejável coletar sangue diretamente em tubos hematócritos.
    2. As lancetas goldenrod serão selecionadas com base no tamanho apropriado para o animal de acordo com a idade e o sexo.
      1. As lancetas são selecionadas de acordo com a idade/tamanho dos ratos da seguinte forma:
        Lancet de 4mm: camundongos de 3-4 semanas de idade (menos de 15 gr

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Aplicação e Resumo

O método de coleta de sangue pode causar uma variação na análise da amostra. O nível de habilidade do técnico que realiza a coleta de amostras tem impacto na qualidade da amostra e no bem-estar do animal. O uso de anestésicos também pode afetar a qualidade da amostra. Os métodos aqui descritos são todos realizados sem o uso de anestesia, assim essa variável foi eliminada. Além disso, todas essas técnicas podem ser utilizadas para amostragem serial com mínimo desconforto ao animal.

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Referências
  1. Fernandez, I., Arantza, P., Del Teso, N., Perez, V. and Rodriguez-Cuesta, J. 2010. Clinical biochemistry parameters in C57BL/6J mice after blood collection from the submandibular vein and retroorbital plexus. Journal of American Association of Laboratory Animal Science. 49:2. 202-210.
  2. Joslin, O.T. 2009. Blood collection techniques in exotic small animals. Journal of Exotic Pet Medicine. 18:2. 117-139.
  3. Hem, A., Smith, A.J. and Solberg, P. 1998. Saphenous vein puncture for blood sampling of the mouse, rat, hamster, gerbil, guinea pig, ferret and mink. Laboratory Animals. 32. 364-368.
  4. Diehl, K-H., Hull, R., Morton, D., Pfister, R. Rabemampianina, Y., Smith, D., Vidal, J-M., and van de Vorstenbosch, C. 2001. A good practical guide to the administration of substances and removal of blood, including routes and volumes. Journal of Applied Toxicology. 21. 15-23.
Tags
Blood WithdrawalMiceRatsScientific StudiesMethodsExperimental GoalsRetro orbital Eye BleedTail SnipsNicksIntra cardiac Blood CollectionFacial VeinSubmandibular VeinSaphenous VeinFemoral VeinLess Invasive MethodsAnesthesia free MethodsBlood SampleMurine Facial VeinEquipmentCentrifuge TubeLancet SelectionAnimal RestraintVenipuncture

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Overview

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Facial Vein Bleed

3:28

Submandibular Vein Bleed

5:25

Saphenous Vein Bleed

7:58

Femoral Vein Bleed

10:23

Applications

11:56

Summary

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