(1) Vena facialis bluten bei Mäusen

1. Ausrüstung
   1. Ansammlung von Blut ist aus einen freien Haken in ein Röhrchen Blut oder eine Eppendorf Tube. In einigen Fällen ist es wünschenswert, das Blut direkt in Hämatokrit Röhren zu sammeln.
   2. Goldrute Lanzetten werden basierend auf die passende Größe für das Tier je nach Alter und Geschlecht ausgewählt werden.
      1. Lanzetten sind je nach Alter/Größe von Mäusen wie folgt ausgewählt:
         4mm Lancet: 3-4-Wochen alten Mäusen (unter 15 Gramm Körpergewicht)
         5mm Lancet: weibliche Mäuse unter 10 Wochen (unter ~ 20 Gramm Körpergewicht)
         5mm Lancet: männliche Mäuse jünger als 6 Wochen (unter ~ 20 Gramm Körpergewicht)
         5mm Lancet: für Single-Drop Proben (für Blut Abstriche)
         5,5 mm Lancet: weibliche Mäuse über 10 Wochen (mehr als ~ 20 Gramm Körpergewicht)
         5,5 mm Lancet: männliche Mäuse mehr als 6 Wochen (mehr als ~ 20 Gramm Körpergewicht)
         5,5 mm Lancet: große Proben
2. Zurückhaltung
   1. Mäuse sind zurückhaltend mit der scruffen Technik.
   2. Es ist wichtig, dass-seitliche Bewegung des Kopfes minimiert werden. Dies sorgt für präzise und sichere Venenpunktion mit der Lanzette.
3. Blutentnahme
   1. Die richtige Größe-Lanzette ist senkrecht zur Oberfläche der Haut statt.
   2. Die Lanzette Punkt ist leicht angewinkelt, mit der Spitze in Richtung der Nasenerkers.
   3. Die Lanzette Klinge eignet sich besonders in einer senkrechten Position.
   4. Während der Ruhigstellung der Maus, suchen Sie die ungefähre Fläche von der Vena facialis durch die Messung der Länge des Auges unterhalb der seitlichen Augenwinkel und die Breite des Auges kaudal.
   5. Fühlen Sie mit der Spitze der Lanzette vorsichtig für den Punkt, an dem der Kieferknochen endet.
   6. Positionieren Sie für bessere Genauigkeit bei der Punktion des Schiffes den Mauszeiger im seitlichen liegen.
   7. Durchstechen der Haut an der Schulter der Lanzette an diesem Punkt. Dies geschieht mit einem festen Stoß und nicht als einen Dart zu werfen.
   8. Nach dem Entfernen der Lanzette wird Blut zu fließen beginnen.
   9. Um die Durchblutung zu unterstützen, positionieren Sie den Mauszeiger mit dem Kopf tiefer als das Herz.
   10. Sammeln Sie das Blut in die gewünschten Sammelbehälter.
   11. Tupfen Sie die Punktion Website und Release Druck auf das Genick zur Blutstillung.

Abbildung 1. Vena facialis bluten bei Mäusen.

(2) mandibulären bluten bei Mäusen: Obwohl sehr ähnlich, die Technik für die Vena facialis bluten, gibt es Unterschiede in Ausstattung und feinen Unterschiede in diesem blutende Verfahren.

1. Ausrüstung
   1. Sammlung des Blutes ist von einen freien Haken in ein Röhrchen Blut oder eine Eppendorf Tube. In einigen Fällen ist es wünschenswert, die direkt in Hämatokrit Röhren sammeln.
   2. 18-22-g-Nadeln werden anhand der entsprechenden Größe für das Tier je nach Alter und Geschlecht ausgewählt.
      1. Nadeln sind nach Alter/Größe der Mäuse wie folgt ausgewählt:
         22 Gauge: 3-4 Wochen alten Mäusen (unter 15 Gramm Körpergewicht)
         20 Gauge: weibliche Mäuse unter 10 Wochen (unter ~ 20 Gramm Körpergewicht)
         20 Gauge: männliche Mäuse jünger als 6 Wochen (unter ~ 20 Gramm Körpergewicht)
         20 Gauge: für Single-Drop Proben (für Blut Abstriche)
         18-Gauge: weibliche Mäuse über 10 Wochen (mehr als ~ 20 Gramm Körpergewicht)
         18-Gauge: männliche Mäuse mehr als 6 Wochen (mehr als ~ 20 Gramm Körpergewicht)
         18-Gauge: große Proben
2. Zurückhaltung
   1. Mäuse sind zurückhaltend mit der scruffen Technik.
   2. Es ist wichtig, dass-seitliche Bewegung des Kopfes minimiert werden. Dies sorgt für präzise und sichere Venenpunktion mit der Nadel.
3. Blutentnahme
   1. Die Nadel wird senkrecht zur Oberfläche der Haut gehalten.
   2. Während der Ruhigstellung der Maus, suchen Sie die ungefähre Fläche der mandibulären Ader durch den Schnittpunkt eine Zeile aus dem Mundwinkel eine Zeile aus der seitlichen Augenwinkel des Auges. Dies deckt sich mit eine kleine, haarlose Grübchen kaudalen in die Ecke des Mundes und leicht unter der Kiefer-Linie zu finden.
   3. Positionieren Sie für bessere Genauigkeit bei der Punktion des Schiffes den Mauszeiger im seitlichen liegen.
   4. An dieser Stelle stechen Sie die Haut mit der Spitze der Nadel. Dies geschieht mit einem festen Stoß und nicht als einen Dart zu werfen.
   5. Die Nadel wird nicht über die Spitze der Abschrägung eingefügt.
   6. Nach dem Entfernen der Nadel wird Blut zu fließen beginnen.
   7. Um die Durchblutung zu unterstützen, positionieren Sie den Mauszeiger mit dem Kopf tiefer als das Herz.
   8. Sammeln Sie das Blut in die gewünschten Sammelbehälter.
   9. Tupfen Sie die Einstichstelle, und Druck auf das Genick zur Blutstillung.

Abbildung 2. Mandibulären Ader bluten bei Mäusen.

3. Saphenous bluten

1. Ausrüstung
   1. Kunststoff transparent, flexible Zurückhaltung Zapfen können entweder die Maus oder Ratte verwendet werden. Für Mäuse können modifizierte 50 ml konische Kunststoffrohre zur Zurückhaltung verwendet werden. Für Ratten, modifiziert Plexiglasröhren Zurückhaltung-mit einem Schlitz breit genug, um die hinteren Bein-Dose verlängern verwendet werden.
   2. Bei der Verwendung von Kunststoff Kegel ist es gemessen an der Körperlänge des Tieres, und ein ovales Loch geschnitten auf der Ebene des Oberschenkels.
   3. Eine konische Rohr kann durch das Abschneiden am Ende des Rohres ermöglichen eine Atmung Loch für eine Maus für dieses Blut Erfassungsmethode geändert werden. Ein Slot ist vom Cap Ende des Rohres über ½ Zoll breit und 2 Zoll lang geschnitten. Die Kanten sind in Tuch Band bedeckt oder geglättet für Tiergesundheit.
   4. Eine Blutsperre ist mit einer 3 cc Spritze und einer Länge von 2-0 nonabsorbable Naht hergestellt. ³
   5. Dreifache antibiotische Salbe oder weiße Vaseline dient als feuchtigkeitsbeständig Barriere auf der Haut.
   6. Eine 22 Gauge-Nadel ist die bevorzugte Größe für die Blutentnahme.
   7. Blut wird direkt in Hämatokrit Rohre gesammelt.
2. Zurückhaltung
   1. Flexible Kunststoff-Zapfen
      1. Die Maus oder Ratte wird Nase voran in den Trichter gelegt.
      2. Ende des Kegels wird gefaltet und mit einem kleinen Bindemittel Clip um zu verhindern, dass das Tier verlassen die Zurückhaltung Kegel geschlossen.
      3. Das Hinterbein wird sanft durch die ovale Öffnung in die Leistengegend gezogen.
   2. Konische Rohr für Mäuse
      1. Die Maus befindet sich in der Röhre Nase voran.
      2. Das Hinterbein wird vorsichtig in den Steckplatz geführt.
      3. Der Mittelfinger wird über das Ende des Rohres zu verhindern, dass die Maus verlassen das Rohr gelegt.
      4. Dem Zeigefinger und dem Daumen stabilisieren die Maus Bein.
   3. Plexiglas-Zurückhaltung-Rohr für Ratten
      1. Die Ratte ist in der Röhre Nase voran platziert.
      2. Das Hinterbein wird vorsichtig in den Steckplatz geführt.
      3. Das Ende der Röhre ist gesichert, um zu verhindern, dass die Ratte aus sichern und verlassen das Rohr.
      4. Dem Zeigefinger und dem Daumen stabilisieren die Ratte Bein.
3. Blutentnahme
   1. Das Haar wird von der lateralen Seite des Beines vom Sprunggelenk, das Knie entfernt. Dies kann durch Zupfen, Rasieren oder einer Enthaarungscreme verwenden.
   2. Sobald das Haar entfernt wurde, wird eine kleine Menge der Salbe aufgetragen und in einer sehr dünnen Schicht auf die haarlose Fläche verteilt.
   3. Der Druckverband wird als weit cranially wie möglich und verschärfte angewendet.
   4. Das saphena Schiff quer über die äußere Oberfläche des Beines vom Knie bis zum Knöchel beginnt zu füllen und werden angehoben und einfach zu visualisieren.
   5. Die Nadel ist senkrecht zur Oberfläche der Haut direkt über das Blutgefäß statt. Punktion des Schiffes. Achten Sie darauf, dass Sie nicht die Nadel tief in das Bein zu vermeiden Punktierung des Muskels oder Knochen schlagen eingesetzt.
   6. Das Blut wird sich auf der Oberfläche des Beines zur Abholung mit dem Hämatokrit Rohr Wulst.
   7. Sobald das Blut gesammelt hat, lösen Sie die Blutsperre und Druck über die Punktion zur Blutstillung.
   8. Sobald die Blutung aufgehört hat, entfernen Sie das Tier aus der Zurückhaltung und dem Hause Käfig zurück.

Abbildung 3. Stammvenen bluten bei Mäusen.

4. Femoral Ader für Ratten

1. Ausrüstung
   1. Blut wird in einem Hämatokrit Rohr gesammelt.
   2. Dreifach antibiotische Salbe ist erforderlich, um eine Barriere zwischen der Haut/Haar und das Blut Droplet erstellen.
   3. Eine 22 Gauge-Nadel wird verwendet, um die Vene punktieren.
   4. Ein kleines, tragbares Haarschneider mit ungefähr 1" breite Klinge wird verwendet, um das Haar aus dem Bein zu befestigen.
2. Zurückhaltung
   1. Ratten sind zurückhaltend mit einer klaren, flexiblen Kunststoff Zurückhaltung Kegel.
   2. Die Kunststoff Kegel werden an der Körperlänge und ein ovales Loch schneiden auf der Ebene des Oberschenkels gemessen. Der Kegel wird geschnitten, so dass das Hinterbein mit Zugriff auf die Vene verwirklicht werden kann.
3. Blutentnahme
   1. Das Haar ist von der Innenfläche des Beines von der Leiste bis zum Knie rasiert.
   2. Dreifach antibiotische Salbe ist in einer dünnen Schicht auf die Einstichstelle aufgetragen.
   3. Die Zurückhaltung Person freien dahinterliegende haben die Vene und hält die Ratte mit der Innenfläche des Beines mit Blick auf die Phlebotomist.
   4. Benutzen Sie die Nadel in die Vene punktieren. Die Nadel wird senkrecht gehalten, um die Blutgefäße und die Punktion erfolgt direkt über die Vene.
   5. Die Punktion erfolgt wie in der Nähe des Knies wie möglich, für zusätzliche Probenahme anterior das erste Blut-Sammelstelle.
   6. Das Schiff ist oberflächlich. Die Tiefe der Punktion sollte daher nicht tiefer als die Länge der Schräge der Nadel.
   7. Um die Durchblutung zu unterstützen, positionieren Sie die Ratte mit dem Bein niedriger als das Herz.
   8. Das Blut in den Hämatokrit-Röhren zu sammeln, wie es auf der Hautoberfläche Perlen.
   9. Druck auf das Bein und üben Druck auf die Punktionsstelle zur Blutstillung zu erreichen.

Abbildung 4. Femoral Ader bluten bei Ratten.