Ce travail a été soutenu en partie par une bourse de carrière de la Fondation nationale des sciences (BES-0447713) et d&#39;une subvention de Essilor, International.

Un aperçu des éléments clés nécessaires à la conduite d&#39;une expérience oculomoteur est illustré à la figure 1. Chaque bloc dans le diagramme de flux sera discuté en détail ci-dessous. 1. INSTRUMENTATION SET-UP: <ol><li> Ne importe quel type de contrôleur de mouvement de l&#39;oeil peut être utilisé pour ce système. Nous allons démontrer une suivi de limbe infrarouge et un système de surveillance vidéo. </li><li> Pour tandem mouvements de suivi telles que la poursuite des saccades ou lisse, un seul ordinateur peut être utilisé pour l&#39;affichage visuel. Pour étudier les mouvements oculaires adverses tels que la convergence ou l&#39;interaction de convergence avec tandem mouvements de version (ce est à dire, convergente avec des stimuli saccades) Haploscope est nécessaire avec deux moniteurs de visualisation, voir figure 2. </li></ol> 2. ÉTALONNAGE: <ol><li> L&#39;étalonnage est nécessaire pour convertir une série de mesures à une autre. Les mouvements oculaires sont généralement indiquées en degrés (°) de rotation indiqué à la figure 3. Cependant, l&#39;ordinateur mes moniteurs utilisent des valeurs de pixels par rapport aux chercheurs de vision qui dénotent souvent les stimuli visuels en degrés. Par conséquent, une conversion est nécessaire pour convertir les valeurs de pixel de degrés. On peut utiliser la trigonométrie pour calculer où placer les objectifs physiques pour calibrer les affichages visuels. Par exemple, si le stimulus sur l&#39;écran d&#39;ordinateur se aligne avec une cible physique 2 ° (voir figure 2) alors que la valeur de pixel correspond à un stimulus 2 °. </li><li> Pour étalonner le système, l&#39;opérateur doit ouvrir Pixel2Deg.vei dans le répertoire Visualeyes. Tout d&#39;abord, définir l&#39;écran pour calibrer en utilisant le champ de mode d&#39;étirement. Entrez le numéro 1 pour le moniteur de l&#39;œil gauche et le numéro 2 pour le moniteur de l&#39;oeil droit. Ensuite, exécutez le programme et déplacer la relance de la ligne verte jusqu&#39;à la ligne verte est superposée à la cible physique. Entrez la position connue de la cible physique en degrés et appuyez sur le bouton Enregistrer. Ensuite, cliquez sur la ligne verte. La valeur de degré et pixel sera affiché sur l&#39;écran en til en bas à gauche coin. L&#39;opérateur doit recueillir un minimum de trois points d&#39;étalonnage. </li><li> Après avoir enregistré tous les points d&#39;étalonnage, ouvrez le fichier de sortie de D2P dans le répertoire Visualeyes pour obtenir les points de calibrage. Tracer les points d&#39;étalonnage pour atteindre une équation de régression linéaire. Utiliser l&#39;équation pour calculer la position initiale et finale du stimulus visuel à l&#39;opérateur désire programmer en valeurs de pixels. Un exemple de l&#39;oeil gauche et la courbe d&#39;étalonnage de l&#39;oeil droit obtenu en utilisant cinq points d&#39;étalonnage pour un stimulus de vergence est représenté sur la figure 4. </li><li> Répétez les étapes 2,2 et 2,3 pour l&#39;autre moniteur si le stimulus nécessite un moniteur supplémentaire. </li></ol> 3. VISUALEYES LOGICIEL: <ol><li> Définir un stimulus: L&#39;opérateur doit définir la position initiale et finale de relance de l&#39;œil gauche et à droite avant l&#39;expérience. D&#39;abord, ouvrez un nouveau fichier texte et sur la première ligne, définir la durée initiale et valeurs de position of le stimulus. Quatre paramètres doivent être définis 1) temps (seconde), 2) la position horizontale (pixel), 3) la position verticale (pixel), et 4) la rotation (°) séparés par un onglet. De même, définir les quatre paramètres de la dernière fois et la position du stimulus. Enregistrer le stimulus dans le répertoire Visualeyes comme stimulus_name.vei (VEI = Visualeyes entrée) fichier et répétez cette étape pour l&#39;autre stimulus de l&#39;œil. <ol><li> Le mouvement du stimulus peut être généralisée en deux types de mouvements: une étape brusque ou une rampe continue. Une étape permet au stimulus pour déplacer brusquement ou sauter de la position initiale à la position finale. L&#39;opérateur doit noter que le changement dans le temps est 0,001 secondes pour une relance de l&#39;étape. Dans la rangée suivante, définissez combien de temps vous voulez le stimulus de résider dans la position initiale ainsi que la position finale. Stimuli sont définies en utilisant quatre domaines au sein d&#39;une ligne. Un exemple d&#39;une étape saccades, rampe de poursuite en douceur, étape de vergence et rampe vergence sont présentés dansTableau 1. </li><li> Pour stimuli, vous pouvez avoir un seul stimulus tel une étape ou une séquence de tâches visuelles comme les multiples étapes. </li></ol></li><li> Économisez de stimulation en stimuli Bibliothèque: Il ya plusieurs paramètres par défaut dans l&#39;œil gauche (dc1.txt stimulus / moniteur) et dc2.txt (œil droit stimulus / moniteur) des fichiers dans le répertoire Visualeyes. La première ligne représente le pourcentage de l&#39;écran dans la direction horizontale. La deuxième ligne représente le pourcentage de l&#39;écran dans la direction verticale. Le troisième est l&#39;image d&#39;arrière-plan et le quatrième est l&#39;image d&#39;avant-plan ou de la cible. La cinquième ligne indique à l&#39;ordinateur de fonctionner en mode autonome. Les 6 e qui signifie moniteur (1 est l&#39;oeil droit et l&#39;oeil gauche est 2). Le 7 ème ligne est le rapport d&#39;aspect des moniteurs. Le reste des lignes sont les différents types de stimuli, l&#39;opérateur peut utiliser dans une session expérimentale. <ol><li> Ouvrez le dc1.txt et dc2.txt de la direc VisualeyesTory. Ces deux fichiers contiennent les stimuli de la bibliothèque pour l&#39;œil gauche et l&#39;œil droit, respectivement. Sur la dernière ligne, écrire le nom de fichier de la relance qui a été généré à l&#39;étape 3.1. Le numéro de profil se réfère à la m ème ligne correspondant au nom de fichier de relance. Par exemple, dans la figure 1, le numéro de profil de la stimulation est huit. </li></ol></li><li> On peut répéter les étapes 03.01 à 03.02 pour créer autant de stimuli qui sont nécessaires pour une expérience. </li><li> Ecrire Script pour le protocole expérimental: Ouvrir un fichier de texte pour saisir les commandes de protocole expérimental. Ce fichier est appelé le fichier de script qui signifie que le système sera Visualeyes lire et exécuter chaque commande du script trouvé dans ce fichier. La possibilité de créer un fichier de script pour un protocole expérimental permet à l&#39;utilisateur de comportement répété sessions expérimentales utilisant le même protocole. En outre, de nombreux scripts peuvent être écrits pour faire varier le type et la séquence de commandes expérimentales. Ce fichierpeut être sauvegardé dans le répertoire Visualeyes comme un fichier script_name.ves. (VES = Visualeyes Script) <ol><li> Les fonctions VISUALEYES ont des arguments d&#39;entrée et de sortie. Le tableau 2 montre toutes les fonctions du logiciel Visualeyes. <ol><li> ExpTrial: Cette fonction est utilisée pour appeler le stimulus qui a été enregistré dans la bibliothèque de relance de l&#39;étape 3.2. La longueur des données est le temps qu&#39;il permet d&#39;exécuter la fonction du stimulus. Le tempfile.lwf permet au logiciel Visualeyes pour stocker temporairement les données d&#39;entrée et de sortie dans un tampon de sortie. Lorsque le tempfile.lwf ne est pas défini, lors de l&#39;exécution de cette fonction, il ne sera pas stocker toutes les données entrant pour la numérisation. </li><li> LogFile: Cette fonction délivre des chaînes ou le tampon d&#39;entrée définie à partir ExpTrial dans le fichier out.txt dans le répertoire Visualeyes. Lorsque l&#39;expérience est terminée, l&#39;opérateur doit changer le nom du fichier out.txt à un autre nom. Sinon, les données seront remplacées lors de la prochaine expériment. </li><li> TriggerWait: Cette fonction attend l&#39;objet d&#39;appuyer sur un bouton de déclenchement pour démarrer le ExpTrial et numériser les données. Il se agit d&#39;un canal à la carte d&#39;acquisition numérique qui est en attente pour le signal pour passer d&#39;un haut numérique (5 V) au bas (0 V). </li><li> RandomDelay: Cette fonction génère un retard aléatoire pour éviter prévision ou d&#39;anticipation de la prochaine relance. </li><li> WaveMSD: Cette fonction calcule la moyenne et l&#39;écart type des données. </li></ol></li></ol></li></ol> 4. Placez les mouvements oculaires MONITOR &amp; RUN EXPÉRIENCE: <ol><li> Différents moniteurs des mouvements oculaires telles que le système de la cornée réflexion vidéo d&#39;imagerie, système de suivi limbe ou une bobine de recherche sclérotique peuvent être utilisés pour collecter et enregistrer des mouvements oculaires. </li><li> Avant un sujet peut participer, l&#39;expérience doit être expliqué et le sujet doit lire et signer un formulaire de consentement éclairé approuvé par l&#39;Institutional Review Board. </li><li> Le mu opérateurst régler le moniteur de mouvement des yeux sur le sujet. Tout d&#39;abord, le sujet est invité à fixer sur une cible. L&#39;opérateur ajuste le moniteur de mouvement des yeux pour capturer les attributs anatomiques de l&#39;œil comme le limbe (frontière entre l&#39;iris et la sclérotique) ou l&#39;élève et de réflexion de la cornée selon le moniteur des mouvements oculaires utilisé. </li><li> Une fois le moniteur de mouvement de l&#39;oeil est bien réglé sur le sujet, l&#39;opérateur doit valider que le moniteur de mouvement de l&#39;oeil capture les mouvements oculaires en demandant au sujet de faire convergente ou des mouvements saccadés. </li><li> Ouvrez le programme ReadScript.vei dans le répertoire Visualeyes. Sur le coin supérieur droit, tapez le nom de fichier du fichier expérimental script protocole créé à l&#39;étape 3.4. Ensuite, exécutez le programme ReadScript.vei en poussant la flèche rouge sur le coin supérieur gauche. </li><li> Donnez le sujet sur le bouton de déclenchement et d&#39;expliquer que lorsque le sujet appuie sur le bouton, la collecte des données commencera. Un autre fichier Acquire.vei sera automatique<html> Ly apparaît sur l&#39;écran qui va tracer les données entrantes. Les données sont échantillonnées à 500Hz. </li><li> Lorsque l&#39;expérience est terminée, le ReadScript.vei se arrête automatiquement. A ce moment, allez dans le répertoire Visualeyes et trouvez le fichier out1.txt. Renommez le fichier sinon la prochaine fois que l&#39;opérateur exploite l&#39;expérience, le fichier de données sera écrasé. </li></ol> DONNÉES 5. OFF-LINE ANALYSE: <ol><li> L&#39;opérateur peut analyser les données en utilisant différents logiciels (c.-à Matlab ou Excel). Latence, la vitesse de pointe, ou l&#39;amplitude peuvent être d&#39;intérêt en fonction de l&#39;étude. <ol><li> Un exemple d&#39;un code Matlab analyse est prévue dans le répertoire Visualeyes saccades, de tracer les étapes de convergence et les rampes de convergence. Des exemples de la saccade ensemble, étape de la convergence et la convergence rampe traces de position avec les réponses de vitesse correspondants sont présentés dans la figure 5. </li></ol></li></ol> 6. Les résultats représentatifs: t &quot;&gt; Exemples de l&#39;ensemble des mouvements oculaires enregistrées en utilisant le système Visualeyes est illustré à la figure 5. typiques 10 ° mouvements saccadés sont présentés dans la parcelle 4A. antisaccades sont des réponses saccades lorsque le sujet est dit de faire une saccade dans la direction opposée de . le stimulus visuel et sont illustrés dans la parcelle 4B Ce est une tâche plus exigeante sur le plan cognitif, d&#39;où on peut observer que la latence ou le temps de commencer le mouvement est plus long pour antisaccades (parcelle 4B) par rapport à saccades vers un stimulus visuel aussi appelé prosaccades (parcelle 4A). Vergence réponses à 4 ° étapes sont illustrées dans la parcelle 4C et la convergence des réponses aux rampes de 5 ° / stimuli sont présentés dans la parcelle 4D. Chaque trace est un mouvement individuel des yeux où la rangée supérieure est la position notée en degrés comme un fonction du temps. Les mouvements oculaires sont étalonnés dans les unités de degrés, les angles de compteurs, ou dioptries prismatiques. Notre recherche utilise degré de rotation. La rangée du bas est la vitesse tracés dans ° / s en fonction du temps d&#39;uned est la vitesse du mouvement. L&#39;échelle pour chaque ensemble de données varie en fonction du mouvement. <img src="/files/ftp_upload/2530/2530fig1.jpg" alt="Figure 1" /> Figure 1. Diagramme des éléments clés de mener une expérience oculomoteur. Des exemples de mesures nécessaires pour générer un stimulus en utilisant le logiciel Visualeyes et mener une expérience pour l&#39;analyse de données hors ligne sont affichées. Partie A montre la fenêtre Pixel2Deg.vei. Partie B montre les quatre paramètres nécessaires pour définir un stimulus. Partie C est la bibliothèque stimuli où les lignes de texte en noir dans la bibliothèque de relance sont par exemple stimuli fichiers et le texte rouge définit chaque ligne. Partie D est un exemple d&#39;un protocole expérimental de script. <img src="/files/ftp_upload/2530/2530fig2.jpg" alt="Figure 2" /> Figure 2. Système Visualeyes Haploscope expérimental. Trois moniteurs CRT sont utilisés: 1) Un panneau de contrôle est nécessaire pour voir un stimuliréponses d 2) un moniteur CRT pour l&#39;oeil droit (RE) des stimuli visuels et 3) un moniteur CRT l&#39;œil gauche (LE) des stimuli visuels. Un miroir semi-argenté est placé 30 cm des deux moniteurs CRT stimuli visuels. Il se agit de se assurer que les stimuli sur les moniteurs CRT sont projetées sur le miroir semi-argenté (transmission de 50% et 50% de facteur de réflexion miroir). Le miroir permet au sujet de voir stimuli à partir des écrans d&#39;ordinateur superposées sur des cibles situées à des distances mesurées à partir de l&#39;objet qui est nécessaire pour l&#39;étalonnage. Avec un Haploscope, l&#39;hébergement de la demande dans les deux yeux est maintenue constante. La distance entre les yeux du sujet et le miroir est de 10 cm. Le système peut être ajustée pour se adapter à différentes distances inter-pupillaires (IPD), mais pour cette démonstration, nous allons assumer l&#39;IPD à 6 cm. <img src="/files/ftp_upload/2530/2530fig3.jpg" alt="Figure 3" /> Figure 3. Les calculs de saccades (à gauche) et convergents (à droite) movement à partir de cibles de A à B sont représentées. IPD est la distance inter pupillaire. <img src="/files/ftp_upload/2530/2530fig4.jpg" alt="Figure 4" /> Figure 4. Courbe de calibration de l&#39;œil gauche (en haut de la parcelle) et l&#39;œil droit (tracé du bas) stimulus. Une procédure similaire serait effectuée pour stimuli de poursuite saccadés ou lisses. <img src="/files/ftp_upload/2530/2530fig5.jpg" alt="Figure 5" /> Figure 5. Exemples de saccades (A) antisaccades (B), des mesures de convergence (C) et des rampes de convergence (D) en utilisant le système Visualeyes et analysées en utilisant un programme de MATLAB personnalisé. Traces de position (Ensemble de ° en fonction du temps en secondes) sont tracés dans la rangée supérieure où chaque ligne de couleur représente un mouvement des yeux différents. Les traces correspondantes de vitesse (° / s en fonction du temps en secondes). <table border="1"><tbody><tr><td> Type de stimulation </td><td colspan="4"> Stimulus_Name_Left Eye.vei </td><td colspan="4"> Stimulus_Name_Right_Eye.vei </td></tr><tr><td></td><td> Temps (s) </td><td> x position (pixel) </td><td> y position (pixel) </td><td> La rotation (°) </td><td> Temps (s) </td><td> x position (pixel) </td><td> y position (pixel) </td><td> La rotation (°) </td></tr><tr><td rowspan="2"> Lisse Pursuit rampe </td><td> 0 </td><td> 100 </td><td> 0 </td><td> 0 </td><td> 0 </td><td> 100 </td><td> 0 </td><td> 0 </td></tr><tr><td> 10 </td><td> 200 </td><td> 0 </td><td> 0 </td><td> 10 </td><td> 200 </td><td> 0 </td><td> 0 </td></tr><tr><td width="53" rowspan="4"> Étape saccade </td><td> 0 </td><td> 100 </td><td> 0 </td><td> 0 </td><td> 0 </td><td> 100 </td><td> 0 </td><td> 0 </td></tr><tr&gt; <td> 0,5 </td><td> 100 </td><td> 0 </td><td> 0 </td><td> 0,5 </td><td> 100 </td><td> 0 </td><td> 0 </td></tr><tr><td> 0,501 </td><td> 200 </td><td> 0 </td><td> 0 </td><td> 0,501 </td><td> 200 </td><td> 0 </td><td> 0 </td></tr><tr><td> 3 </td><td> 200 </td><td> 0 </td><td> 0 </td><td> 3 </td><td> 200 </td><td> 0 </td><td> 0 </td></tr><tr><td rowspan="2"> Vergence rampe </td><td> 0 </td><td> 452 </td><td> 0 </td><td> 0 </td><td> 0 </td><td> 973 </td><td> 0 </td><td> 0 </td></tr><tr><td> 10 </td><td> 370 </td><td> 0 </td><td> 0 </td><td> 10 </td><td> 1044 </td><td> 0 </td><td> 0 </td></tr><tr><td rowspan="4"> Étape Vergence </td><td> 0 </td><td> 452 </td><td> 0 </td><td> 0 </td><td> 0 </td><td> 973 </td><td> 0 </td><td&gt; 0 </td></tr><tr><td> 0,5 </td><td> 452 </td><td> 0 </td><td> 0 </td><td> 0,5 </td><td> 973 </td><td> 0 </td><td> 0 </td></tr><tr><td> 0,501 </td><td> 416 </td><td> 0 </td><td> 0 </td><td> 0,501 </td><td> 1002 </td><td> 0 </td><td> 0 </td></tr><tr><td> 3 </td><td> 416 </td><td> 0 </td><td> 0 </td><td> 3 </td><td> 1002 </td><td> 0 </td><td> 0 </td></tr></tbody></table> Tableau 1. Un exemple de Smooth Pursuit Ramp, Step saccades, Vergence rampe et Vergence Étape stimuli <table border="1"><tbody><tr><td> Fonction </td><td> Syntaxe </td></tr><tr><td> ExpTrial </td><td> Mémoire tampon de sortie # = ExpTrial (&quot;Longueur de données: LE Profil: RE Profil&quot;); Exemple: 2 = ExpTrial (&quot;13: 3: 3&quot;); </td></tr><tr><td></td><td> Output Buffer # = Exo première instance (&quot;Longueur de données: LE Profil: RE Profil:. tempfile FLM»); Exemple: 2 = ExpTrial (&quot;13: 3: 3: templfile.lwf&quot;); </td></tr><tr><td> LogFile </td><td> Mémoire tampon de sortie # = LogFile (&quot;TEXT&quot;); Exemple: 0 = LogFile (&quot;Expérience 1&quot;); </td></tr><tr><td></td><td> 0 = LogFile (tampon d&#39;entrée #); Exemple: 0 = FichierJournal (2); </td></tr><tr><td> TriggerWait </td><td> 0 = TriggerWait (Numéro de tampon); Exemple: 0 = TriggerWait (0); </td></tr><tr><td> RandomDelay </td><td> 0 = RandomDelay (&quot;t2: t1&quot;); Exemple: 0 = RandomDelay (&quot;2000: 500&quot;); </td></tr><tr><td> WaveMSD </td><td> Mémoire tampon de sortie # = WaveMSD (tampon d&#39;entrée #); </td></tr></tbody></table> Tableau 2. Fonctions utilisé pour écrire le protocole expérimental dans le Programme Visualeyes

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	<li>Leigh, R. J., Zee, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Neurology of Eye Movements. , (2006).</li><li>Pruehsner, W. R., Enderle, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+operating+version+of+the+Eye+Tracker,+a+system+to+measure+saccadic+eye+movements.">The operating version of the Eye Tracker, a system to measure saccadic eye movements.</a> Biomed Sci Instrum. 38, 113-118 (2002).</li><li>Pruehsner, W. R., Liebler, C. M., Rodriguez-Campos, F., Enderle, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Eye+Tracker+System--a+system+to+measure+and+record+saccadic+eye+movements.">The Eye Tracker System--a system to measure and record saccadic eye movements.</a> Biomed Sci Instrum. 39, 208-213 (2003).</li><li>Rufa, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Video-based+eye+tracking:+our+experience+with+Advanced+Stimuli+Design+for+Eye+Tracking+software.">Video-based eye tracking: our experience with Advanced Stimuli Design for Eye Tracking software.</a> Ann N Y Acad Sci. 1039, 575-579 (2005).</li><li>Cornelissen, F. W., Peters, E. M., Palmer, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Eyelink+Toolbox:+eye+tracking+with+MATLAB+and+the+Psychophysics+Toolbox.">The Eyelink Toolbox: eye tracking with MATLAB and the Psychophysics Toolbox.</a> Behav Res Methods Instrum Comput. 34, 613-617 (2002).</li><li>Han, S. J., Guo, Y., Granger-Donetti, B., Vicci, V. R., Alvarez, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantification+of+heterophoria+and+phoria+adaptation+using+an+automated+objective+system+compared+to+clinical+methods.">Quantification of heterophoria and phoria adaptation using an automated objective system compared to clinical methods.</a> Ophthalmic Physiol Opt. 30, 95-107 (2010).</li><li>Kim, E. H., Granger-Donetti, B., Vicci, V. R., Alvarez, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Relationship+between+Phoria+and+the+Ratio+of+Convergence+Peak+Velocity+to+Divergence+Peak+Velocity.">The Relationship between Phoria and the Ratio of Convergence Peak Velocity to Divergence Peak Velocity.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. , (2010).</li><li>Lee, Y. Y., Granger-Donetti, B., Chang, C., Alvarez, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sustained+convergence+induced+changes+in+phoria+and+divergence+dynamics.">Sustained convergence induced changes in phoria and divergence dynamics.</a> Vision Res. 49, 2960-2972 (2009).</li><li>Maruta, J., Suh, M., Niogi, S. N., Mukherjee, P., Ghajar, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Visual+tracking+synchronization+as+a+metric+for+concussion+screening.">Visual tracking synchronization as a metric for concussion screening.</a> J Head Trauma Rehabil. 25, 293-305 (2010).</li><li>Osanai, R., Kinoshita, M., Hirose, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Eye+movement+disorders+in+myotonic+dystrophy+type+1.">Eye movement disorders in myotonic dystrophy type 1.</a> Acta Otolaryngol Suppl. , 78-84 (2007).</li><li>Kaufman, L. D., Pratt, J., Levine, B., Black, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Antisaccades:+a+probe+into+the+dorsolateral+prefrontal+cortex+in+Alzheimer's+disease.+A+critical+review.">Antisaccades: a probe into the dorsolateral prefrontal cortex in Alzheimer's disease. A critical review.</a> J Alzheimers Dis. 19, 781-793 (2010).</li><li>Hannula, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+Eye+Movement+Monitoring+to+Examine+Item+and+Relational+Memory+in+Schizophrenia.">Use of Eye Movement Monitoring to Examine Item and Relational Memory in Schizophrenia.</a> Biol Psychiatry. , (2010).</li><li>Schubert, M. C., Zee, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Saccade+and+vestibular+ocular+motor+adaptation.">Saccade and vestibular ocular motor adaptation.</a> Restor Neurol Neurosci. 28, 9-18 (2010).</li><li>Noudoost, B., Chang, M. H., Steinmetz, N. A., Moore, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Top-down+control+of+visual+attention.">Top-down control of visual attention.</a> Curr Opin Neurobiol. 20, 183-190 (2010).</li><li>Herwig, A., Beisert, M., Schneider, W. X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=On+the+spatial+interaction+of+visual+working+memory+and+attention:+evidence+for+a+global+effect+from+memory-guided+saccades.">On the spatial interaction of visual working memory and attention: evidence for a global effect from memory-guided saccades.</a> J Vis. 10, (2010).</li><li>McDowell, J. E., Dyckman, K. A., Austin, B. P., Clementz, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neurophysiology+and+neuroanatomy+of+reflexive+and+volitional+saccades:+evidence+from+studies+of+humans.">Neurophysiology and neuroanatomy of reflexive and volitional saccades: evidence from studies of humans.</a> Brain Cogn. 68, 255-270 (2008).</li></ol>

Aucun conflit d&#39;intérêt déclaré.

Étapes critiques: moniteurs de mouvement des yeux doivent être bien ajustés sur le sujet. Par exemple, les moniteurs d&#39;enregistrement des mouvements oculaires fonctionnent dans une plage et doivent être ajustées à l&#39;objet. Si le mouvement de l&#39;oeil du sujet dépasse la plage, alors le système est saturé. Après saturation, le signal de mouvement de l&#39;œil ne est pas valide. L&#39;étalonnage est également critique dans l&#39;enregistrement des mouvements oculaires. Tous...

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Erratum: VisualEyes: A Modular Software System for Oculomotor Experimentation

visualeyes: a modular software system for oculomotor experimentation

études des mouvements des yeux ont fourni une base solide formant une compréhension de la façon dont le cerveau acquiert l&#39;information visuelle à la fois dans le cerveau normal et dysfonctionnel. 1 Cependant, le développement d&#39;une plate-forme pour stimuler et mouvements magasin oculaires peuvent nécessiter une programmation importante, le temps et les coûts. De nombreux systèmes ne offrent pas la flexibilité de programmer de nombreux stimuli pour une variété de besoins expérimentaux. Cependant, le système Visualeyes a une architecture flexible, permettant à l&#39;opérateur de choisir ne importe quel fond et le stimulus premier plan, programme un ou deux écrans pour tandem ou se opposer à des mouvements oculaires et de stimuler l&#39;œil gauche et à droite de façon indépendante. Ce système permet de réduire considérablement le temps de développement de programmation nécessaires pour mener une étude oculomotrice. Le système Visualeyes sera discuté en trois parties: 1) le dispositif d&#39;enregistrement oculomoteur d&#39;acquérir réponses des mouvements oculaires, 2) le logiciel Visualeyes écrit dans LabView, pour générer un ensemble de stimuliet les réponses des magasins que les fichiers texte et 3) l&#39;analyse des données hors ligne. Les mouvements oculaires peuvent être enregistrées par plusieurs types d&#39;instruments tels que: un système limbe de suivi, une bobine de recherche de la sclérotique, ou d&#39;un système d&#39;image vidéo. Stimuli typiques des mouvements oculaires telles que des mesures saccadés, des rampes et convergents étapes convergents avec les réponses correspondantes seront affichés. Dans ce reportage vidéo, nous démontrons la flexibilité d&#39;un système de créer de nombreux stimuli visuels et d&#39;enregistrer les mouvements oculaires qui peuvent être utilisés par les scientifiques et cliniciens pour étudier la santé ainsi que les populations cliniques.

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VisualEyes: A Modular Software System for Oculomotor Experimentation

Contrôle neural et les processus cognitifs peuvent être étudiés par des mouvements oculaires. Le logiciel Visualeyes permet à un opérateur de programmer stimuli sur deux écrans d&#39;ordinateurs utilisant indépendamment un langage simple, des scripts personnalisés. Le système peut stimuler les mouvements oculaires (tandem saccades et la poursuite en douceur) ou mouvements oculaires opposées (vergence) ou ne importe quelle combinaison.

Visualeyes: un système logiciel modulaire pour l&#39;expérimentation oculomoteurs

Eye movement studies have provided a strong foundation forming an understanding of how the brain acquires visual information in both the normal and ...

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

12.6K vues.  New Jersey Institute of Technology.  Contrôle neural et les processus cognitifs peuvent être étudiés par des mouvements oculaires. Le logiciel Visualeyes permet à un opérateur de programmer stimuli sur deux écrans d'ordinateurs utilisant indépendamment un langage simple, des scripts personnalisés. Le système peut stimuler les mouvements oculaires (tandem saccades et la poursuite en douceur) ou mouvements oculaires opposées (vergence) ou ne importe quelle combinaison. 

Vidéo: VisualEyes: A Modular Software System for Oculomotor Experimentation

Physiological Experimentation with the Crayfish Hindgut: A Student Laboratory Exercise

The purpose of the report is to describe dissection techniques for preparing the crayfish hindgut and to demonstrate how to make physiological recordings with a force transducer to monitor the strength of contraction. In addition, we demonstrate how to visually monitor peristaltic activity, which can be used as a bioassay for various peptides, biogenic amines and neurotransmitters. This preparation is amenable to student laboratories in physiology and for demonstrating pharmacological concepts to students. This preparation has been in use for over 100 years, and it still offers much as a model for investigating the generation and regulation of peristaltic rhythms and for describing the mechanisms underlying their modulation. The pharmacological assays and receptor sub-typing that were started over 50 years ago on the hindgut still contribute to research today. This robust preparation is well suited to training students in physiology and pharmacology.

In this report we demonstrate techniques that can be used to investigate the biology of the crayfish hindgut. We show how to dissect a crayfish abdomen and study the associated anatomy, physiology and modulation of activity. The peristaltic activity and strength of contractions are measured using a force transducer.

L&#39;expérimentation physiologique avec l&#39;intestin postérieur écrevisses: un exercice de laboratoire étudiant

The purpose of the report is to describe dissection techniques for preparing the crayfish hindgut and to demonstrate how to make physiological recordings ...

Recherche

Neurosciences

VisioTracker, an Innovative Automated Approach to Oculomotor Analysis

Investigations into the visual system development and function necessitate quantifiable behavioral models of visual performance that are easy to elicit, robust, and simple to manipulate. A suitable model has been found in the optokinetic response (OKR), a reflexive behavior present in all vertebrates due to its high selection value. The OKR involves slow stimulus-following movements of eyes alternated with rapid resetting saccades. The measurement of this behavior is easily carried out in zebrafish larvae, due to its early and stable onset (fully developed after 96 hours post fertilization (hpf)), and benefitting from the thorough knowledge about zebrafish genetics, for decades one of the favored model organisms in this field. Meanwhile the analysis of similar mechanisms in adult fish has gained importance, particularly for pharmacological and toxicological applications.
Here we describe VisioTracker, a fully automated, high-throughput system for quantitative analysis of visual performance. The system is based on research carried out in the group of Prof. Stephan Neuhauss and was re-designed by TSE Systems. It consists of an immobilizing device for small fish monitored by a high-quality video camera equipped with a high-resolution zoom lens. The fish container is surrounded by a drum screen, upon which computer-generated stimulus patterns can be projected. Eye movements are recorded and automatically analyzed by the VisioTracker software package in real time.
Data analysis enables immediate recognition of parameters such as slow and fast phase duration, movement cycle frequency, slow-phase gain, visual acuity, and contrast sensitivity.
Typical results allow for example the rapid identification of visual system mutants that show no apparent alteration in wild type morphology, or the determination of quantitative effects of pharmacological or toxic and mutagenic agents on visual system performance.

The VisioTracker is an automated system for the quantitative analysis of visual performance of larval and small adult fish based on the recording of eye movements. It features full control over visual stimulus properties and real-time analysis, enabling high-throughput research in fields such as visual system development and function, pharmacology, neural circuit studies and sensorimotor integration.

VisioTracker, une approche novatrice automatisé pour l&#39;analyse oculomotrice

Investigations into the visual system development and function necessitate quantifiable behavioral models of visual performance that are easy to elicit, ...

A Lightweight, Headphones-based System for Manipulating Auditory Feedback in Songbirds

Experimental manipulations of sensory feedback during complex behavior have provided valuable insights into the computations underlying motor control and sensorimotor plasticity1. Consistent sensory perturbations result in compensatory changes in motor output, reflecting changes in feedforward motor control that reduce the experienced feedback error. By quantifying how different sensory feedback errors affect human behavior, prior studies have explored how visual signals are used to recalibrate arm movements2,3 and auditory feedback is used to modify speech production4-7. The strength of this approach rests on the ability to mimic naturalistic errors in behavior, allowing the experimenter to observe how experienced errors in production are used to recalibrate motor output.
Songbirds provide an excellent animal model for investigating the neural basis of sensorimotor control and plasticity8,9. The songbird brain provides a well-defined circuit in which the areas necessary for song learning are spatially separated from those required for song production, and neural recording and lesion studies have made significant advances in understanding how different brain areas contribute to vocal behavior9-12. However, the lack of a naturalistic error-correction paradigm - in which a known acoustic parameter is perturbed by the experimenter and then corrected by the songbird - has made it difficult to understand the computations underlying vocal learning or how different elements of the neural circuit contribute to the correction of vocal errors13.
The technique described here gives the experimenter precise control over auditory feedback errors in singing birds, allowing the introduction of arbitrary sensory errors that can be used to drive vocal learning. Online sound-processing equipment is used to introduce a known perturbation to the acoustics of song, and a miniaturized headphones apparatus is used to replace a songbird's natural auditory feedback with the perturbed signal in real time. We have used this paradigm to perturb the fundamental frequency (pitch) of auditory feedback in adult songbirds, providing the first demonstration that adult birds maintain vocal performance using error correction14. The present protocol can be used to implement a wide range of sensory feedback perturbations (including but not limited to pitch shifts) to investigate the computational and neurophysiological basis of vocal learning.

We describe the design and assembly of miniaturized headphones suitable for replacing a songbird&#x2019;s natural auditory feedback with a manipulated acoustic signal. Online sound processing hardware is used to manipulate song output, introduce real-time errors in auditory feedback via the headphones, and drive vocal motor learning.

Un léger Casque-based System pour manipuler Rétroaction sonore chez les oiseaux chanteurs

Experimental manipulations of sensory feedback during complex behavior have provided valuable insights into the computations underlying motor control and ...

A High Content Imaging Assay for Identification of Botulinum Neurotoxin Inhibitors

Synaptosomal-associated protein-25 (SNAP-25) is a component of the soluble NSF attachment protein receptor (SNARE) complex that is essential for synaptic neurotransmitter release. Botulinum neurotoxin serotype A (BoNT/A) is a zinc metalloprotease that blocks exocytosis of neurotransmitter by cleaving the SNAP-25 component of the SNARE complex. Currently there are no licensed medicines to treat BoNT/A poisoning after internalization of the toxin by motor neurons. The development of effective therapeutic measures to counter BoNT/A intoxication has been limited, due in part to the lack of robust high-throughput assays for screening small molecule libraries. Here we describe a high content imaging (HCI) assay with utility for identification of BoNT/A inhibitors. Initial optimization efforts focused on improving the reproducibility of inter-plate results across multiple, independent experiments. Automation of immunostaining, image acquisition, and image analysis were found to increase assay consistency and minimize variability while enabling the multiparameter evaluation of experimental compounds in a murine motor neuron system.

Botulinum neurotoxin is one of the most potent toxins among Category-A biothreat agents, yet a post-exposure therapeutic is not available. The high content imaging approach is a powerful methodology for identifying novel inhibitors as it enables multiparameter screening using biologically relevant motor neurons, the primary target of this toxin.

Une teneur élevée test d&#39;imagerie pour l&#39;identification des inhibiteurs de la neurotoxine botulique

Synaptosomal-associated protein-25 (SNAP-25) is a component of the soluble NSF attachment protein receptor (SNARE) complex that is essential for synaptic ...

Design, Surface Treatment, Cellular Plating, and Culturing of Modular Neuronal Networks Composed of Functionally Inter-connected Circuits

The brain operates through the coordinated activation and the dynamic communication of neuronal assemblies. A major open question is how a vast repertoire of dynamical motifs, which underlie most diverse brain functions, can emerge out of a fixed topological and modular organization of brain circuits. Compared to in vivo studies of neuronal circuits which present intrinsic experimental difficulties, in vitro preparations offer a much larger possibility to manipulate and probe the structural, dynamical and chemical properties of experimental neuronal systems. This work describes an in vitro experimental methodology which allows growing of modular networks composed by spatially distinct, functionally interconnected neuronal assemblies. The protocol allows controlling the two-dimensional (2D) architecture of the neuronal network at different levels of topological complexity.
A desired network patterning can be achieved both on regular cover slips and substrate embedded micro electrode arrays. Micromachined structures are embossed on a silicon wafer and used to create biocompatible polymeric stencils, which incorporate the negative features of the desired network architecture. The stencils are placed on the culturing substrates during the surface coating procedure with a molecular layer for promoting cellular adhesion. After removal of the stencils, neurons are plated and they spontaneously redirected to the coated areas. By decreasing the inter-compartment distance, it is possible to obtain either isolated or interconnected neuronal circuits. To promote cell survival, cells are co-cultured with a supporting neuronal network which is located at the periphery of the culture dish. Electrophysiological and optical recordings of the activity of modular networks obtained respectively by using substrate embedded micro electrode arrays and calcium imaging are presented. While each module shows spontaneous global synchronizations, the occurrence of inter-module synchronization is regulated by the density of connection among the circuits.

This manuscript describes a protocol to grow in vitro modular networks consisting of spatially confined, functionally inter-connected neuronal circuits. A polymeric mask is used to pattern a protein layer to promote cellular adhesion over the culturing substrate. Plated neurons grow on coated areas establishing spontaneous connections and exhibiting electrophysiological activity.

Conception, Traitement de surface, Cellulaire Placage et culture des réseaux neuronaux modulaires Composé de circuits Fonctionnellement Inter-connectées

The brain operates through the coordinated activation and the dynamic communication of neuronal assemblies. A major open question is how a vast repertoire ...

Analyzing Neural Activity and Connectivity Using Intracranial EEG Data with SPM Software

Measuring neural activity and connectivity associated with cognitive functions at high spatial and temporal resolutions is an important goal in cognitive neuroscience. Intracranial electroencephalography (EEG) can directly record electrical neural activity and has the unique potential to accomplish this goal. Traditionally, averaging analysis has been applied to analyze intracranial EEG data; however, several new techniques are available for depicting neural activity and intra- and inter-regional connectivity. Here, we introduce two analytical protocols we recently applied to analyze intracranial EEG data using the Statistical Parametric Mapping (SPM) software: time-frequency SPM analysis for neural activity and dynamic causal modeling of induced responses for intra- and inter-regional connectivity. We report our analysis of intracranial EEG data during the observation of faces as representative results. The results revealed that the inferior occipital gyrus (IOG) showed gamma-band activity at very early stages (110 ms) in response to faces, and both the IOG and amygdala showed rapid intra- and inter-regional connectivity using various types of oscillations. These analytical protocols have the potential to identify the neural mechanisms underlying cognitive functions with high spatial and temporal profiles.

We present two analytical protocols that can be used to analyze intracranial electroencephalography data using the Statistical Parametric Mapping (SPM) software: time-frequency statistical parametric mapping analysis for neural activity, and dynamic causal modeling of induced responses for intra- and inter-regional connectivity.

Analyser l’activité neurale et la connectivité à l’aide des données EEG intracrânienne avec logiciel SPM

Measuring neural activity and connectivity associated with cognitive functions at high spatial and temporal resolutions is an important goal in cognitive ...

Ex Vivo Oculomotor Slice Culture from Embryonic GFP-Expressing Mice for Time-Lapse Imaging of Oculomotor Nerve Outgrowth

Accurate eye movements are crucial for vision, but the development of the ocular motor system, especially the molecular pathways controlling axon guidance, has not been fully elucidated. This is partly due to technical limitations of traditional axon guidance assays. To identify additional axon guidance cues influencing the oculomotor nerve, an ex vivo slice assay to image the oculomotor nerve in real-time as it grows towards the eye was developed. E10.5 IslMN-GFP embryos are used to generate ex vivo slices by embedding them in agarose, slicing on a vibratome, then growing them in a microscope stage-top incubator with time-lapse photomicroscopy for 24-72 h. Control slices recapitulate the in vivo timing of outgrowth of axons from the nucleus to the orbit. Small molecule inhibitors or recombinant proteins can be added to the culture media to assess the role of different axon guidance pathways. This method has the advantages of maintaining more of the local microenvironment through which axons traverse, not axotomizing the growing axons, and assessing the axons at multiple points along their trajectory. It can also identify effects on specific subsets of axons. For example, inhibition of CXCR4 causes axons still within the midbrain to grow dorsally rather than ventrally, but axons that have already exited ventrally are not affected.

An ex vivo slice assay allows oculomotor nerve outgrowth to be imaged in real time. Slices are generated by embedding E10.5 IslMN:GFP embryos in agarose, slicing on a vibratome, and growing in a stage-top incubator. The role of axon guidance pathways is assessed by adding inhibitors to the culture media.

Ex Vivo Oculomotor Slice Culture from Embryonic GFP-Expressing Mice for Time-Lapse Imaging of Oculomotor Nerve Outgrowth Ex Vivo Oculomotor Slice Culture from Embryonic GFP-Expressing Mice for Time-Lapse Imaging of Oculomotor Nerve Outgrowth Ex Vivo Oculomotor Slice Culture from Embryonic GFP-Expressing Mice for Time-Lapse Imaging of Oculomotor Nerve Outgrowth Ex Vivo

Accurate eye movements are crucial for vision, but the development of the ocular motor system, especially the molecular pathways controlling axon ...

Isolation and Culture of Oculomotor, Trochlear, and Spinal Motor Neurons from Prenatal Islmn:GFP Transgenic Mice

Oculomotor neurons (CN3s) and trochlear neurons (CN4s) exhibit remarkable resistance to degenerative motor neuron diseases such as amyotrophic lateral sclerosis (ALS) when compared to spinal motor neurons (SMNs). The ability to isolate and culture primary mouse CN3s, CN4s, and SMNs would provide an approach to study mechanisms underlying this selective vulnerability. To date, most protocols use heterogeneous cell cultures, which can confound the interpretation of experimental outcomes. To minimize the problems associated with mixed-cell populations, pure cultures are indispensable. Here, the first protocol describes in detail how to efficiently purify and cultivate CN3s/CN4s alongside SMNs counterparts from the same embryos using embryonic day 11.5 (E11.5) IslMN:GFP transgenic mouse embryos. The protocol provides details on the tissue dissection and dissociation, FACS-based cell isolation, and in vitro cultivation of cells from CN3/CN4 and SMN nuclei. This protocol adds a novel in vitro CN3/CN4 culture system to existing protocols and simultaneously provides a pure species- and age-matched SMN culture for comparison. Analyses focusing on the morphological, cellular, molecular, and electrophysiological characteristics of motor neurons are feasible in this culture system. This protocol will enable research into the mechanisms that define motor neuron development, selective vulnerability, and disease.

Isolation and Culture of Oculomotor, Trochlear, and Spinal Motor Neurons from Prenatal Islmn:GFP Transgenic Mice

This work presents a protocol to yield homogeneous cell cultures of primary oculomotor, trochlear, and spinal motor neurons. These cultures can be used for comparative analyses of the morphological, cellular, molecular, and electrophysiological characteristics of ocular and spinal motor neurons.

Isolement et culture des neurones oculomoteurs, trochlear et moteurs rachidiens de l'islmnprénatal :GFP Souris transgéniques

Oculomotor neurons (CN3s) and trochlear neurons (CN4s) exhibit remarkable resistance to degenerative motor neuron diseases such as amyotrophic lateral ...

Extracellular Electrophysiology in Modular Neuronal Cell Culture

Électrophysiologie extracellulaire dans la culture cellulaire neuronale modulaire

Un système d’implant de sonde économique et polyvalent pour l’électrophysiologie chez la souris

The DREAM Implant: A Lightweight, Modular, and Cost-Effective Implant System for Chronic Electrophysiology in Head-Fixed and Freely Behaving Mice

Chronic electrophysiological recordings in rodents have significantly improved our understanding of neuronal dynamics and their behavioral relevance. However, current methods for chronically implanting probes present steep trade-offs between cost, ease of use, size, adaptability, and long-term stability.
This protocol introduces a novel chronic probe implant system for mice called the DREAM (Dynamic, Recoverable, Economical, Adaptable, and Modular), designed to overcome the trade-offs associated with currently available options. The system provides a lightweight, modular and cost-effective solution with standardized hardware elements that can be combined and implanted in straightforward steps and explanted safely for recovery and multiple reuse of probes, significantly reducing experimental costs.
The DREAM implant system integrates three hardware modules: (1) a microdrive that can carry all standard silicon probes, allowing experimenters to adjust recording depth across a travel distance of up to 7 mm; (2) a three-dimensional (3D)-printable, open-source design for a wearable Faraday cage covered in copper mesh for electrical shielding, impact protection, and connector placement, and (3) a miniaturized head-fixation system for improved animal welfare and ease of use. The corresponding surgery protocol was optimized for speed (total duration: 2 h), probe safety, and animal welfare.
The implants had minimal impact on animals&#39; behavioral repertoire, were easily applicable in freely moving and head-fixed contexts, and delivered clearly identifiable spike waveforms and healthy neuronal responses for weeks of post-implant data collection. Infections and other surgery complications were extremely rare.
As such, the DREAM implant system is a versatile, cost-effective solution for chronic electrophysiology in mice, enhancing animal well-being, and enabling more ethologically sound experiments. Its design simplifies experimental procedures across various research needs, increasing accessibility of chronic electrophysiology in rodents to a wide range of research labs.

Pleins feux sur l’auteur : Comprendre le calcul neuronal naturaliste grâce à la réalité virtuelle et à l’électrophysiologie chez les animaux

Here, we introduce a lightweight, cost-effective probe implant system for chronic electrophysiology in rodents optimized for ease of use, probe recovery, experimental versatility, and compatibility with behavior.

L’implant DREAM : un système d’implant léger, modulaire et économique pour l’électrophysiologie chronique chez les souris fixées à la tête et au comportement libre

Chronic electrophysiological recordings in rodents have significantly improved our understanding of neuronal dynamics and their behavioral relevance. ...