This research was supported by the Department of Veterans Affairs Career Development Award 1IK2BX001701 and the CTSA award UL1TR000445 from the National Center for Advancing Translational Sciences. Its contents are solely the responsibility of the authors and do not necessarily represent official views of the National Center for Advancing Translational Sciences or the National Institutes of Health. Scanning electron microscopy experiments were performed in part through the use of the VUMC Cell Imaging Shared Resource, supported by NIH grants CA68485, DK20593, DK58404, DK59637 and EY08126.

1. H. pylori croissance dans différentes conditions de Fer Disponibilité et co-culture avec des cellules humaines épithéliales gastriques <ol><li> Sélectionnez H. pylori souche PMSS1 pour ces études car il a une île de pathogénicité cag intact et exprime un système IV de sécrétion de type fonctionnement. Utiliser également un mutant de la cage isogéniques (PMSSI Δ cage) comme contrôle négatif. Cultiver les bactéries sur des plaques de TSA complétées avec du sang de mouton à 5% (plaques de gélose au sang) pendant 24 heures à 37 ° C en présence de 5% de CO 2. NOTE: Préparer les réactifs et assembler des matériaux comme indiqué dans le matériel et équipement tableau. Les concentrations finales pour chaque réactif est indiquée entre parenthèses. </li><li> Grattez les bactéries de la plaque à l&#39;aide d&#39;un coton-tige stérile et inoculer dans un bouillon Brucella modifié préparé à partir de composants (voir Matériels et ustensiles de table) et complété avec le cholestérol. Incuber les cultures pendant la nuit à 37° C dans l&#39;air ambiant supplémenté avec 5% de CO2 avec agitation à 200 tours par minute (rpm). NOTE: Le cholestérol est utilisé à la place de sérum de veau fœtal en raison du fait que le sérum est complexe; contenant de nombreuses sources de nutriments tels que le fer hémique qui provoque la variabilité des résultats. </li><li> Le jour de la culture bactérienne, ensemencer les cellules épithéliales gastriques AGS humaines (ATCC CRL-1739) sur le poly-D-lysine lamelles traitées dans des plaques de 12 puits (environ 1 x 10 5 cellules par puits). </li><li> Le jour suivant, les cultures bactériennes diluées à une DO600 de 0,3 dans un bouillon Brucella modifié, seul ou additionné de 100 uM de FeCl3, 200 uM de dipyridyle (un chélateur de fer synthétique) ou 200 pM de dipyridyle plus 250 uM de FeCl3. Incuber les cultures pendant 4 heures à 37 ° C dans l&#39;air ambiant supplémenté avec 5% de CO2 avec agitation à 200 tours par minute. </li><li> Bactéries centrifuger à 1000 xg pour recueillir des cellules et supprimer surnageants avant la remise en suspension in un volume égal de bouillon Brucella modifié frais supplémenté avec du cholestérol. La mesure de la DO600 de la culture (DO 600 = 1,0 = 5,5 x 10 8 cellules / ml) et ajouter des bactéries aux cellules epitheliales en une multiplicité d&#39;infection (MOI) de 20: 1. Réaliser des dilutions en série et des cellules bactériennes en plaque sur des plaques de gélose au sang pour évaluer la viabilité de la cellule bactérienne. </li><li> Incuber H. cellules épithéliales gastriques humaines pylori et AGS co-cultures de 4 heures à 37 ° C en présence de 5% CO 2 dans des conditions statiques avant de procéder à la microscopie électronique à balayage (MEB) la préparation d&#39;échantillons. </li></ol> 2. SEM de la préparation d&#39;échantillons pour visualiser les H. pylori Cag-T4SS Pili <ol><li> Retirer H. pylori et les co-cultures AGS à partir du surnageant incubateur et décanter la culture (sauf pour l&#39;IL-8 ELISA). Laver doucement trois fois avec 0,05 M de tampon cacodylate de sodium (pH 7,4). Fixer les échantillons pendant 2-4 heures à la température ambiante dans une solution de 2,0% de paraformaldéhyde, 2,5% De glutaraldéhyde, et un tampon de cacodylate de sodium 0,05 M. Après fixation primaire, laver échantillons trois fois avec le tampon de cacodylate de sodium 0,05 M. </li><li> Effectuer fixation secondaire en utilisant du tétroxyde d&#39;osmium à 0,1% dans du tampon cacodylate de sodium 0,05 M en deux étapes séquentielles 10 min de fixation. Après fixation secondaire, laver échantillons trois fois avec le tampon de cacodylate de sodium 0,05 M. </li><li> Après la fixation primaire et secondaire, déshydrater échantillons par lavage séquentiel avec des concentrations croissantes d&#39;éthanol, selon le tableau 1. </li><li> Après déshydratation de l&#39;éthanol, effectuer trois lavages successifs de dioxyde de carbone liquide. Puis échantillons secs à un point critique en utilisant un sèche-linge de point critique à une température de 31,1 ° C et une pression de 1073 psi. </li><li> Mont lamelles de talons sur des échantillons d&#39;aluminium SEM et de la peinture avec une fine ligne de l&#39;argent colloïdal au bord de l&#39;échantillon pour atteindre la terre appropriée et éviter de charger lors de l&#39;imagerie SEM. </li><li> échantillons de manteau avec 5 nm deor-palladium en utilisant une machine de revêtement par pulvérisation pour augmenter le signal d&#39;électrons secondaires échantillon et l&#39;effet de bord. </li></ol> 3. Paramètres d&#39;imagerie pour analyses résolution SEM haut <ol><li> Voir les échantillons avec un microscope électronique à balayage Gun à émission de champ (FEG-SEM). </li><li> L&#39;image dans un mode à vide élevé à une distance de travail de 5 à 10 mm. </li><li> Réglez la tension d&#39;accélération de 5 kV. </li><li> Régler la taille de place à 2-2,5. </li><li> Inclinez l&#39;échantillon entre 15-25 degrés pour obtenir une meilleure vue de l&#39;interface hôte-pathogène. </li><li> Donner la priorité à l&#39;imagerie de bactéries adhérentes aux bords des cellules épithéliales à fort grossissement pour la visualisation, en tant que ces zones d&#39;interaction hôte-pathogène sont enrichies en bactéries formant des pili. </li></ol> 4. Analyses statistiques pour évaluer Pili Quantifications <ol><li> Analyser H. pylori pili Cag-T4SS utilisant le logiciel ImageJ pour quantifier le nombre de pili / cellule ainsi que pour cent des cellules présentant l&#39;pili phephénotype selon les instructions ci-dessous. </li><li> Fichiers micrographiques ouvrir dans le logiciel ImageJ. Identifier en tant que pili de structures formées entre la cellule bactérienne et une cellule hôte, avec une largeur uniforme (10-13 nm) et la longueur (60-150 nm). REMARQUE: La structure de pilus est présent sur ​​les souches bactériennes WT, mais absent sur ​​des souches isogéniques tels que Δ cage souches mutantes, qui abritent une inactivation dans le gène codant pour la majeure ATPase que l&#39;assemblage de type IV pouvoirs sécrétion de pilus. </li><li> Calibrer l&#39;outil de mesure en traçant une ligne avec l&#39;outil de ligne droite, puis en cliquant sur l&#39;onglet &quot;Analyser&quot;. Sélectionnez &quot;Scale Set&quot; dans le menu déroulant et entrez la valeur de la barre de grossissement dans la case &quot;Distance connu&quot; et régler l&#39;unité de longueur sur le paramètre approprié (nm). Cliquez sur &quot;OK&quot;. </li><li> Mesurer Cag-T4SS pili en utilisant l&#39;outil de ligne droite à tirer sur la longueur ou la largeur du pili, puis appuyez sur &quot;Ctrl-M&quot; pour mesurer chaque pili. Observez une boîte de dialogue avec les valeurs mesurées. Notez ces valeurs ou copier et coller dans un tableur. </li><li> Utilisez la longueur et la largeur des paramètres précédemment établis 24, caractéristiques de ne pas tenir compte qui ne correspondent pas au profil de Cag-T4SS. Puis quantifier le nombre de pili fondée sur des valeurs qui sont à l&#39;intérieur des seuils 10-13 nm de largeur et 60-150 nm de longueur. </li><li> Analyser la quantification de pili statistiquement par le test t de Student bilatéral utilisant le logiciel GraphPad Prism. </li></ol> 5. Facultatif: évaluation de la sécrétion d&#39;IL-8 en corrélation avec Pilus production <ol><li> Utilisation de surnageants de l&#39;étape 2.1, effectuer un IL-8 ELISA selon les instructions du fabricant avec le kit (voir Matériels et ustensiles de table). </li><li> Analyse de l&#39;IL-8 sécrétée par les cellules hôtes et le calcul de la IL-8 pour cent par rapport à induction WT PMSS1 cultivées dans du milieu seul. Effectuer une analyse statistique utilisant bilatéral test t de Student en utilisant GraphPad Prism siftware. </li></ol>

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K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Peptidoglycan+crosslinking+relaxation+promotes+Helicobacter+pylori's+helical+shape+and+stomach+colonization.">Peptidoglycan crosslinking relaxation promotes Helicobacter pylori's helical shape and stomach colonization.</a> Cell. 141 (5), 822-833 (2010).</li><li>Kodaman, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+and+Helicobacter+pylori+coevolution+shapes+the+risk+of+gastric+disease.">Human and Helicobacter pylori coevolution shapes the risk of gastric disease.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. 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M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Increased+gastric+IL-1&#946;+concentration+and+iron+deficiency+parameters+in+Helicobacter+pylori+infected+children.">Increased gastric IL-1&#946; concentration and iron deficiency parameters in Helicobacter pylori infected children.</a> PLoS One. 8 (2), 57420 (2013).</li><li>Harris, P. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Helicobacter+pylori-associated+hypochlorhydria+and+development+of+iron+deficiency.">Helicobacter pylori-associated hypochlorhydria and development of iron deficiency.</a> J. Clin. Pathol. 66 (4), 343-347 (2013).</li><li>Noto, J. 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L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Unique+host+iron+utilization+mechanisms+of+Helicobacter+pylori+revealed+with+iron-deficient+chemically+defined+media.">Unique host iron utilization mechanisms of Helicobacter pylori revealed with iron-deficient chemically defined media.</a> Infect. Immun. 78 (5), 1841-1849 (2010).</li><li>Shaffer, C. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Helicobacter+pylori+exploits+a+unique+repertoire+of+type+IV+secretion+system+components+for+pilus+assembly+at+the+bacteria-host+cell+interface.">Helicobacter pylori exploits a unique repertoire of type IV secretion system components for pilus assembly at the bacteria-host cell interface.</a> PLoS Pathog. 7 (9), (2011).</li><li>Barrozo, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+plasticity+in+the+type+IV+secretion+system+of+Helicobacter+pylori.">Functional plasticity in the type IV secretion system of Helicobacter pylori.</a> PLoS Pathog. 9 (2), (2013).</li></ol>

The authors declare that they have no competing financial interests.

Le fer est un oligo-élément essentiel pour la plupart des formes de vie, y compris les bactéries pathogènes. Dans un effort pour limiter la viabilité des micro-organismes envahisseurs, les hôtes vertébrés séquestrent fer éléments nutritifs dans un processus connu sous le nom &quot;immunité nutritionnelle» 18. En réponse à cela, les bactéries pathogènes ont évolué à utiliser le fer comme une molécule de signalisation mondiale de sentir leur environnement et de réglementer l&#39;élaborati...

H. pylori infection is a significant risk factor for gastric cancer1. However, disease outcomes vary and depend on numerous factors such as host genetics, genetic diversity of H. pylori strains, and environmental elements such as host diet11. Previous reports have established that a correlation exists between H. pylori infection, iron deficiency (as measured by decreased blood ferritin and hemoglobin concentrations), and increased proinflammatory cytokine production, including IL-8 secretion, which ultimately leads to increased gastric disease progression12. Acute H. pylori infection is also associated with hypochlorhydria which impairs the host&#8217;s ability to absorb nutrient iron, and ultimately leads to changes in iron homeostasis13. These clinical findings suggest that iron availability within the gastic niche could be an important factor in disease outcome. In fact, animal models of H. pylori infection have demonstrated that low dietary iron consumption exacerbates gastric disease14. The reduced iron levels in these animals necessitate that H. pylori induce an iron-acquisition response in order to obtain the iron needed for bacterial replication. H. pylori has the capacity to perturb iron trafficking within host cells to facilitate bacterial replication in a CagA-dependent fashion15. Interestingly, the cag-pathogenicity island has been shown to be regulated by the iron-responsive transcription factor Fur16,17. Furthermore, Cag+ strains are associated with increased inflammation and gastric diseases such as cancer1. These findings support a model whereby H. pylori alters Cag-T4SS expression in an effort to obtain iron from host cells that reside in an iron deplete environment resulting in exacerbated disease outcomes. 
Two factors that increase inflammation and morbidity are Cag expression and low dietary iron intake. These facts support the hypothesis that reduced iron availability increases the production of Cag-T4SS pili at the host pathogen interface resulting in worse gastric disease11-14. The goal of the method provided in this manuscript is to establish the role of the micronutrient iron in the regulation of the Cag-T4SS pilus biogenesis. In previous work, we utilized two approaches to observe an iron-dependent increase in Cag-T4SS expression. First, output strains from animals maintained on high and low iron diets were analyzed and revealed that low-iron diet output strains produced more Cag-T4SS pili than high-iron diet strains14. Second, growing the H. pylori 7.13 strain in vitro in iron replete conditions resulted in reduced pili formation while cells grown in the presence of an iron chelator produced significantly more pili. 
We have continued to investigate the iron-dependent regulation of Cag-T4SS pili phenotype and offer the following optimized protocol and representative results performed with an additional Helicobacter pylori strain, PMSS1. The rationale behind the development of this technique was to correlate increased Cag-T4SS activity in conditions of iron-limitation with increased Cag-T4SS pilus formation. The broader implication and use of this technique will provide optimized culture conditions that result in elevated production of the Cag-T4SS pili. This assay will be useful to researchers seeking to determine the composition and architecture of the Cag-T4SS by enriching for this important bacterial surface feature. The sample preparation and visualization by field-emission gun electron microscopy has numerous advantages over alternative techniques such as light-microscopy methods to visualize the Cag-T4SS and will be appropriate to investigators interested in studying the regulation of this organelle10.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="837">
	<tbody>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:216px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:259px;"></td>
			<td style="width:196px;">Company</td>
			<td style="width:167px;">Catalog Number</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td colspan="2" height="21" style="height:21px;width:475px;">Modified brucella broth</td>
			<td style="width:196px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Peptone from casein (10g/L)</td>
			<td style="width:259px;">Sigma</td>
			<td style="width:196px;">70172</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="38">
			<td height="38" style="height:38px;width:216px;">Peptic digest of animal tissue (10g/L)</td>
			<td style="width:259px;">Sigma</td>
			<td style="width:196px;">70174</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Yeast extract (2g/L)</td>
			<td style="width:259px;">Sigma</td>
			<td style="width:196px;">92144</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Dextrose (1g/L)</td>
			<td style="width:259px;">Sigma</td>
			<td style="width:196px;">D9434</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Sodium chloride (5g/L)</td>
			<td style="width:259px;">Thermo Fisher</td>
			<td style="width:196px;">S271-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Cholesterol (250X) (4mL/L)</td>
			<td style="width:259px;">Life Technologies</td>
			<td style="width:196px;">12531018</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Ferric chloride (100 or 250 uM)</td>
			<td style="width:259px;">Sigma</td>
			<td style="width:196px;">157740-100G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Dipyridyl (200 uM)</td>
			<td style="width:259px;">Sigma</td>
			<td style="width:196px;">D216305-100G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;"></td>
			<td style="width:259px;"></td>
			<td style="width:196px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td colspan="2" height="20" style="height:20px;width:475px;">Modified RPMI</td>
			<td style="width:196px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">RPMI+HEPES (1X)</td>
			<td style="width:259px;">Life Technologies</td>
			<td style="width:196px;">22400-121</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Fetal bovine serum (100 mL/L)</td>
			<td style="width:259px;">Life Technologies</td>
			<td style="width:196px;">10438-026</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;"></td>
			<td style="width:259px;"></td>
			<td style="width:196px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td colspan="2" height="20" style="height:20px;width:475px;">Electron Microscopy Preparation</td>
			<td style="width:196px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="38">
			<td height="38" style="height:38px;width:216px;">Paraformaldehyde (2.0% aqueous)</td>
			<td style="width:259px;">Electron Microscopy Sciences</td>
			<td style="width:196px;">15713</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Gluteraldehyde (2.5% aqueous)</td>
			<td style="width:259px;">Electron Microscopy Sciences</td>
			<td style="width:196px;">16220</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Sodium cacodylate (0.05 M)</td>
			<td style="width:259px;">Electron Microscopy Sciences</td>
			<td style="width:196px;">12300</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="38">
			<td height="38" style="height:38px;width:216px;">Osmium tetroxide (0.1% aqueous)</td>
			<td style="width:259px;">Electron Microscopy Sciences</td>
			<td style="width:196px;">19150</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Ethanol (absolute)</td>
			<td style="width:259px;">Sigma</td>
			<td style="width:196px;">E7023</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Colloidal silver paint</td>
			<td style="width:259px;">Electron Microscopy Sciences</td>
			<td style="width:196px;">12630</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">SEM sample stubs</td>
			<td style="width:259px;">Electron Microscopy Sciences</td>
			<td style="width:196px;">75220</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Coverslips</td>
			<td style="width:259px;">Thermo Fisher</td>
			<td style="width:196px;">08-774-383</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td colspan="2" height="21" style="height:21px;width:475px;">IL-8 Secretion Evaluation</td>
			<td style="width:196px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Quantikine IL-8 ELISA kit</td>
			<td style="width:259px;">R&#38;D Systems</td>
			<td style="width:196px;">D8000C</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

high resolution electron microscopy of the helicobacter pylori cag type iv secretion system pili produced in varying conditions of iron availability

Helicobacter pylori is a helical-shaped, gram negative bacterium that colonizes the human gastric niche of half of the human population1,2. H. pylori is the primary cause of gastric cancer, the second leading cause of cancer-related deaths worldwide3. One virulence factor that has been associated with increased risk of gastric disease is the Cag-pathogenicity island, a 40-kb region within the chromosome of H. pylori that encodes a type IV secretion system and the cognate effector molecule, CagA4,5. The Cag-T4SS is responsible for translocating CagA and peptidoglycan into host epithelial cells5,6. The activity of the Cag-T4SS results in numerous changes in host cell biology including upregulation of cytokine expression, activation of proinflammatory pathways, cytoskeletal remodeling, and induction of oncogenic cell-signaling networks5-8. The Cag-T4SS is a macromolecular machine comprised of sub-assembly components spanning the inner and outer membrane and extending outward from the cell into the extracellular space. The extracellular portion of the Cag-T4SS is referred to as the &#8220;pilus&#8221;5. Numerous studies have demonstrated that the Cag-T4SS pili are formed at the host-pathogen interface9,10. However, the environmental features that regulate the biogenesis of this important organelle remain largely obscure. Recently, we reported that conditions of low iron availability increased the Cag-T4SS activity and pilus biogenesis. Here we present an optimized protocol to grow H. pylori in varying conditions of iron availability prior to co-culture with human gastric epithelial cells. Further, we present the comprehensive protocol for visualization of the hyper-piliated phenotype exhibited in iron restricted conditions by high resolution scanning electron microscopy analyses.

Dans ce rapport, nous avons démontré que les conditions de disponibilité est variable de fer ont la capacité de moduler H. pylori Cag-T4SS pili biogenèse à l&#39;interface hôte-pathogène. Lorsqu&#39;elle est cultivée dans le milieu seul, H. pylori constitue un moyen de pili 3 / cellule. Lorsque H. pylori est cultivé en fer épuiser conditions (à l&#39;aide du chélateur dipyridyle synthétique) qui sont sous-inhibitrice pour la croissance des bactéries (Figure 1), ...

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High Resolution Electron Microscopy of the Helicobacter pylori Cag Type IV Secretion System Pili Produced in Varying Conditions of Iron Availability

Here we describe a method to visualize the oncogenic bacterial organelle known as the Cag Type IV Secretion System (Cag-T4SS). We find that the Cag-T4SS is differentially produced on the surface of H. pylori in response to varying conditions of iron availability.

Haute résolution microscopie électronique de la<em&gt; Helicobacter pylori</em&gt; Cag sécrétion de type IV Système Pili Produit dans différentes conditions de Fer Disponibilité

Helicobacter pylori is a helical-shaped, gram negative bacterium that colonizes the human gastric niche of half of the human population1,2.  H. pylori is ...

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

High Resolution Electron Microscopy of the Helicobacter pylori Cag Type IV Secretion System Pili Produced in Varying Conditions of Iron Availability

14.8K vues.  Vanderbilt University School of Medicine. Here we describe a method to visualize the oncogenic bacterial organelle known as the Cag Type IV Secretion System (Cag-T4SS). We find that the Cag-T4SS is differentially produced on the surface of H. pylori in response to varying conditions of iron availability.

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