Nos recherches portent sur la régénération des muscles squelettiques du visage et du corps. Nous visons à comprendre ce qui limite la régénération chez les mammifères, y compris les humains, en utilisant diverses approches expérimentales. Dans ce projet, nous nous concentrons sur la perte musculaire volumétrique et les approches pour la comprendre mécaniquement et développer des approches thérapeutiques.
Il est difficile de créer des modèles expérimentaux fiables pour la perte musculaire volumétrique, en particulier pour les petits muscles. Les modèles doivent être reproductibles et pertinents pour la condition biologique afin de tester les limites de la régénération et des approches thérapeutiques. Et sans de bons modèles in vivo, il n’est pas possible de comprendre cette blessure.
Ce modèle aide les chercheurs à comprendre la réponse musculaire, les effets du traitement et la régénération après des lésions craniofaciales. Ceci est important car les traitements n’ont pas changé depuis des décennies et la compréhension de la réponse aux lésions peut conduire à de futurs traitements. Le muscle squelettique craniofacial diffère du muscle des extrémités par l’expression des gènes et la composition des fibres.
Les lésions VML les affectent différemment, et notre modèle vise à étudier leur capacité de régénération et à développer de nouvelles approches d’ingénierie tissulaire. Pour commencer, positionnez le rongeur sur son côté gauche, le nez inséré dans un cône nasal anesthésique pour une exposition faciale droite. Appliquez une pommade ophtalmique sur les yeux du rongeur.
Utilisez une crème dépilatoire pour enlever la fourrure du site opératoire. Ensuite, désinfectez le site opératoire à l’aide d’un gommage à l’éthanol et à la bétadine, en répétant plusieurs fois. Après avoir créé une incision longitudinale, élevez le lambeau de peau pour visualiser le masséter droit et les branches buccales et mandibulaires du nerf facial.
À l’aide d’une séparation émoussée, dégagez la peau du fascia sous-jacent. Maintenez les bords de la peau à l’aide de pinces chirurgicales pour une visualisation optimale du muscle sous-jacent. Utilisez une séparation émoussée pour élargir l’espace entre le fascia et le masséter, préservant ainsi l’intégrité du fascia restant.
Ensuite, faites une incision transversale dans le fascia sur la partie antérieure du masséter. Ensuite, utilisez une biopsie à l’emporte-pièce jetable stérilisée pour créer une blessure circulaire dans le muscle, en utilisant l’incision fasciale comme fenêtre sur le masséter superficiel. Utilisez des ciseaux chirurgicaux pour exciser la lésion tissulaire créée par le poinçon de biopsie.
Après cela, ajoutez le biomatériau à la lésion circulaire du masséter. Une fois que l’agent est correctement en place, à l’aide d’une suture monofilament 5-0, suturez la fenêtre fasciale en investissant le muscle pour empêcher la migration de l’agent. Fermez la peau à l’aide d’une technique sous-cutanée simple, interrompue ou courante, à l’aide d’une suture monofilament 5-0.
Appliquez de la colle cutanée sur les sutures pour prévenir la déhiscence de l’incision postopératoire. Placez ensuite les rats dans une cage de récupération avec une source de chauffage externe. Diluer l’antibiotique, triméthoprime-sulfaméthoxazole, dans l’eau potable.
Ajoutez-le à l’eau potable du rongeur pendant sept jours postopératoires.
