JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

שתי שיטות משלימות המבוססות על הזרימה cytometry ומיקרוסקופיה מוצגות המאפשרות כימות, ברמת התא הבודד, של הדינמיקה של ביטוי גנים הנגרמת על ידי ההפעלה של מסלול MAPK בשמרים.

Abstract

כימות של ביטוי גנים ברמת התא הבודד חושפת מנגנוני ויסות רומן מטושטשים במדידות שבוצעו ברמת האוכלוסייה. שתי שיטות מבוססות על מיקרוסקופיה וcytometry זרימה מוצגות כדי להדגים כיצד ניתן לרכוש נתונים כאלה. הביטוי של כתב ניאון המושרה על שפעול מסלול MAPK גליצרול הגבוה osmolarity בשמרים משמש כדוגמא. היתרונות הספציפיים של כל שיטה מודגשים. Cytometry זרימה מודד מספר גדול של תאים (10,000) ומספק מדידה ישירה של הדינמיקה של ביטוי החלבון העצמאי של קינטיקה ההבשלה האיטית של חלבון פלואורסצנטי. הדמיה של תאי חיים על ידי מיקרוסקופ היא לעומת מוגבל למדידה של הטופס התבגר של הכתב בפחות תאים. עם זאת, ערכות נתונים שנוצרו על ידי טכניקה זו יכולה להיות עשיר מאוד הודות לשילובים של כתבים רבים ולמידע המרחב ובזמןהמתקבל מהתאים בודדים. שילוב של שתי שיטות מדידה אלה יכולים לספק תובנות חדשות על הרגולציה של ביטוי חלבון על ידי איתות מסלולים.

Introduction

איתות באמצעות מפלי התמרה לעתים קרובות מגיע לשיאו בביטוי של חלבונים. אפיון פרופיל ביטוי זה הוא מרכיב מפתח בהבנת התפקיד של מסלולים ביולוגיים. זיהוי של הספקטרום של חלבונים והדינמיקה של ההפעלה שלהם מוסדר עד יכול להיות מושגת על ידי טכניקות שונות, כגון מיקרו מערכים, כתמים הצפוניים או כתמים מערביים 1-3. עם זאת, טכניקות אלו הן בממוצע התגובה של אוכלוסייה שלמה של תאים. כדי להבין את הרגולציה הקנס של הביטוי של חלבונים, רצוי לאסוף מדידות ברמת התא בודדת. באופן אידיאלי, מדידות אלה אמורות גם לספק נתונים כמותיים נוחים לפתח מודלים מתמטיים של המסלול הבסיסי.

מיקרוסקופית וcytometry זרימה הן שתי טכניקות, שמתאימים באופן אידיאלי כדי לספק מדידות תא כזה כמותית אחת. תיוג אנדוגני של חלבונים בחלבון פלואורסצנטי יכול bדואר משמש לכמת רמת הביטוי שלהם 4. עם זאת, מאחר שהתוספת של מחצית ניאון גדולה בתחנה הסופית של החלבון יכולה להבהיר את זה שאינו פונקציונלי, הוא לעתים קרובות רצוי יותר כדי ליצור כתבי ביטוי ספציפיים המבוססים על אמרגן הנהיגה הביטוי למבנה ניאון. חלבון הכתב הזה הוא חיצוני למערכת הסלולרית, ולכן אינו משפיע על אירועי איתות המתרחשים בתא.

מיקרוסקופיה וcytometry זרימה שניהם הייתה בשימוש נרחב בתחום איתות השמרים. כדוגמאות; קולמן-לרנר ועמיתים לעבודה מתואמת, בתאים בודדים, הביטוי של הזדווגות כתבים ספציפיים והביעו constitutively על ידי מיקרוסקופ לכמת את הרעש במפל הולכים אותות שמרי הזדווגות 5, Acar ועמיתיו השתמשו cytometry זרימה ללמוד את רשת הרגולציה שליטה על הביטוי של גנים GAL 6. במחקר קודם 7, השתמשנו combinatiבשתי הטכניקות הללו כדי ללמוד את פלט הביטוי מגליצרול osmolarity הגבוה המסלול (HOG) בניצני שמרים. מסלול קינאז חלבון זה mitogen הופעל (MAPK) מופעל על ידי מתח Hyper-האוסמוטי. התוצאה הוא ההפעלה של Hog1 MAPK, אשר translocates לגרעין התא כדי לגרום לתכנית תעתיק וכתוצאה מכך הביטוי של בערך 300 גנים. ללמוד את התהליך הזה, היינו לנו מהונדס כתב ביטוי המבוסס על אמרגן STL1 (גן המושרה באופן ספציפי בתגובה לפעילות Hog1 8) נהיגה הביטוי של חלבון מרובע ונוס ניאון (עמ 'STL1-ע"ע). Cytometry זרימת מדידות חשפו את נוכחותם של שתי אוכלוסיות של תאים ברמה בינונית מתח (0.1 M NaCl) עם רק חלק קטן מהאוכלוסייה המבטאת את כתב הניאון. אנחנו השתמשנו במיקרוסקופ כדי לחקור את ההתנהגות הזאת עוד יותר וגילינו שהרעש הזה בביטוי חלבון היה נשלטת על ידי גורמים פנימיים 9. אנחנו could להתבונן עוד כי תאים עם רמה דומה של פעילות Hog1 יכולים להציג תוצאות ביטוי שונות לחלוטין. השילוב של שתי טכניקות אלה אפשר לנו להדגים כיצד שיפוץ האיטי של גנים תגובת לחץ השפיע על תוצאת הביטוי ברמת התא הבודד 7.

במאמר זה, אנו משתמשים בביטוי של כתב STL1-ע"ע עמ 'הנגרם על ידי הלם Hyper-האוסמוטי כדוגמא לכימות של ביטוי חלבון על ידי מיקרוסקופ וcytometry זרימה. אותו הזן נתון 0.2 מתח M NaCl נחקר בשני הטכניקות. זה יאפשר לנו להדגיש כמה הבדלים עיקריים בשתי טכניקות משלימות מאוד אלה.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

1. מדידות מיקרוסקופית

  1. לחסן 5 מיליליטר של מדיום סינטטי עם שמרים.
  2. לגדל תאים ב30 מעלות צלזיוס למשך לילה.
  3. מדוד את OD 600 של תרבות הלילה למחרת בבוקר.
  4. לדלל תרבות הלילה ב 5 מיליליטר בינוני סינתטית לOD 600 0.05.
  5. לגדול התרבות בדילול מלא ב30 מעלות צלזיוס במשך לפחות 4 שעות.
  6. הכן פי 3 מרוכז (0.6 M) פתרון NaCl במדיום סינטטי.
  7. הכן פתרון 1 מ"ג / מיליליטר של concanavalin (ConA) ב-PBS.
  8. תסנין ~ 200 μl של פתרון ConA לתוך השקופית היטב.
  9. לתת לעמוד במשך 30 דקות.
  10. הסר פתרון ConA.
  11. הוסף 150 μl H 2 O אל הבאר.
  12. הסר H 2 O.
  13. מדוד 600 OD של תרבית תאים.
  14. הכן 300 μl של תרבית תאים בOD 600 = 0.02 בmicrotube 1.5 מיליליטר.
  15. Sonicate התאים באמבט מים במשך 45 שניות.
  16. בקצרה מערבולת מילcrotube.
  17. Sonicate התאים באמבט מים במשך 45 שניות.
  18. בקצרה מערבולת microtube.
  19. הוסף 200 μl של תרבית תאים לטוב.
  20. חכה 30 דקות כדי לאפשר לתאים ליישב לתחתית הבאר.
  21. מניחים את השקף גם במיקרוסקופ.
  22. בחר את הגדרות תאורה עבור ערוץ הניאון שיירשם.
  23. בחר את הגדרות התאורה לשתי תמונות בהירות שדה (אחד קצת מחוץ לפוקוס: 3 מיקרומטר מתחת למישור המוקד, כדי לאפשר פילוח נכון של התאים).
  24. בחר את מרווחי הזמן למדידת הזמן לשגות
  25. בחר את שדות מבט לתמונה.
  26. הפעל את הרכישה של כמה מסגרות.
  27. להשהות את הרכישה להוסיף ל0.6 בינוני M NaCl 100 μl.
  28. קורות חיים הדמיה.

2. מדידות זרימת cytometry

  1. לחסן 5 מיליליטר של מדיום סינטטי עם שמרים.
  2. לגדול ב30 מעלות צלזיוס למשך לילה.
  3. אמצעיOD 600 של תרבות הלילה למחרת בבוקר.
  4. לדלל תרבות הלילה ב 5 מיליליטר בינוני סינתטית לOD 600 0.1.
  5. לגדול ב30 מעלות צלזיוס במשך לפחות 4 שעות כדי להגיע 600 OD של 0.2-0.4.
  6. הכן 1 מ"ג / מיליליטר פתרון cycloheximide בH 2 O.
  7. הכן פי 3 מרוכז (0.6 M) פתרון NaCl במדיום סינטטי.
  8. הכן microtube 1.5 מיליליטר אחד עם של 0.6 בינוני M NaCl 100 μl עבור כל נקודת זמן כדי להימדד.
  9. בזמן 0, להוסיף 200 μl של תרבית תאים לכל microtube.
  10. דגירה עם הרועד ב30 ° C.
  11. בזמן t, להוסיף 30 cycloheximide μl לmicrotube.
  12. חזור על שלב 2.11 עבור כל נקודות הזמן הרצויות.
  13. דגירה כל microtubes לפחות 45 דקות ועד 3 שעות ב30 ° C עם רעד.
  14. הכן צינורות FACS עם 400 μl PBS.
  15. Sonicate התאים באמבט מים במשך דקות 1.
  16. בקצרה מערבולת microtubes.
  17. בןicate התאים באמבט מים במשך דקות 1.
  18. בקצרה מערבולת microtubes.
  19. הוספת 100 תרבית תאי μl מmicrotube לצינור FACS המקביל שלה.
  20. בחר את לייזר 488 ננומטר עירור ו530/30 מסנן bandpass ננומטר לצורך זיהוי.
  21. מבחן אינו מביע ומבטא באופן מלא לדוגמא כדי לוודא אם הם נופלים בטווח רגישות גלאי.
  22. מדוד 10,000 תאים לכל דגימה שנרכשה.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

תוצאות

מיקרוסקופית

תאי שמרים הנושאים את כתב ביטוי p STL1-ע"ע (7 ySP9) הוצמדו לחלק התחתון של השקופית היטב והניחו מתחת למיקרוסקופ. התאים היו מגורה על ידי התוספת של מדיום מתח ישירות לתוך הבאר במהלך פגישת ההדמיה. זה מאפשר לנו לרכוש כמה ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

מיקרוסקופית

הטיפול בהיטב עם ConA הוא צעד חיוני כדי להבטיח הדמיה תקינה של התאים. בגלל ConA יש מסיסות נמוכה ב PBS (5 מ"ג / מיליליטר), תהליך הסינון מאפשר הסרת אגרגטים גדולים שנמצאים בפתרון מסונן ולהפריע להדמיה. תאים לצרף יחסית חזק אל פני הש?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

החוקרים מצהירים כי אין להם אינטרסים כלכליים מתחרים.

Acknowledgements

המחברים מודים למתיאס פיטר וקבוצתו במכון לביוכימיה במכון הטכנולוגי בציריך שבו שיטות אלו פותחו. עבודה זו נתמכה על ידי שוויצרי הקרן הלאומית למדע.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Reagent
Yeast Nitrogen BaseForMediumCYN6202
CSM amino-acid mixForMediumDCS0011
Concanavalin AGE Healthcare17-0450-01
CycloheximideFluka Aldrich SigmaC7698Toxic
ySP9W303Mata leu2::LEU2-pSTL1-quadrupleV enus
pSP34pRS305 pSTL1 (-800 -0) - quadruple V enus
Material
MicroscopeNikonTi-Eclipse
Microscope control softwareMicro-managerVer 1.4.11
Incubation chamberLISThe Box
Fluorescence light sourceLumencorSpectraX
CameraHamamatsuFlash 4.0
Flow cytometerBDFACS calibur
Sonicator bathTelesonicTUC-150
8-well-slide Thermo Lab-tek155409
96-well-plateMatrical bioscienceMGB096-1-2-LG
FACS tubeBD Falcon352054

References

  1. Gasch, A. P., Spellman, P. T., et al. Genomic expression programs in the response of yeast cells to environmental changes. Molecular biology of the cell. 11 (12), 4241-4257 (2000).
  2. de Nadal, E., Zapater, M., Alepuz, P. M., Sumoy, L., Mas, G., Posas, F. The MAPK Hog1 recruits Rpd3 histone deacetylase to activate osmoresponsive genes. Nature. 427 (6972), 370-374 (2004).
  3. Ghaemmaghami, S., Huh, W. -K., et al. Global analysis of protein expression in yeast. Nature. 425 (6959), 737-741 (2003).
  4. Wu, J. -Q., Pollard, T. D. Counting cytokinesis proteins globally and locally in fission yeast. Science. 310 (5746), 310-314 (2005).
  5. Colman-Lerner, A., Gordon, A., et al. Regulated cell-to-cell variation in a cell-fate decision system. Nature. 437 (7059), 699-706 (2005).
  6. Acar, M., Becskei, A., van Oudenaarden, A. Enhancement of cellular memory by reducing stochastic transitions. Nature. 435 (7039), 228-232 (2005).
  7. Pelet, S., Rudolf, F., Nadal-Ribelles, M., de Nadal, E., Posas, F., Peter, M. Transient activation of the HOG MAPK pathway regulates bimodal gene expression. Science. 332 (6030), 732-735 (2011).
  8. de Nadal, E., Casadome, L., Posas, F. Targeting the MEF2-like transcription factor Smp1 by the stress-activated Hog1 mitogen-activated protein kinase. Molecular and Cellular Biology. 23 (1), 229-237 (2003).
  9. Elowitz, M. B., Levine, A. J., Siggia, E. D., Swain, P. S. Stochastic gene expression in a single cell. Science. 297 (5584), 1183-1186 (2002).
  10. Pelet, S., Dechant, R., Lee, S. S., van Drogen, F., Peter, M. An integrated image analysis platform to quantify signal transduction in single cells. Integrative biology : quantitative biosciences from nano to macro. 4 (10), 1274-1282 (2012).
  11. Carpenter, A. E., Jones, T. R., et al. CellProfiler: image analysis software for identifying and quantifying cell phenotypes. Genome biology. 7 (10), R100(2006).
  12. Chernomoretz, A., Bush, A., Yu, R., Gordon, A., Colman-Lerner, A. Using Cell-ID 1.4 with R for microscope-based cytometry. Current protocols in molecular biology. Chapter 14, Unit 14.18(2008).
  13. Dimopoulos, S., Mayer, C., Rudolf, F., Stelling, J. Automatic Single Cell Segmentation in a Variety of Microscopy Images. Current protocols in molecular biology. , (2012).
  14. Miyawaki, A., Nagai, T., Mizuno, H. Mechanisms of protein fluorophore formation and engineering. Current Opinion in Chemical Biology. 7 (5), 557-562 (2003).
  15. Hersen, P., McClean, M. N., Mahadevan, L., Ramanathan, S. Signal processing by the HOG MAP kinase pathway. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (20), 7165-7170 (2008).
  16. Pepperkok, R., Ellenberg, J. High-throughput fluorescence microscopy for systems biology. Nature reviews Molecular cell biology. 7 (9), 690-696 (2006).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

80cytometryMAPK

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved