JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

תאי יונקים המבטאים את קלטת גן פליטת אור (החיידקים לוקס) לייצר אור באופן עצמאי. דינמיקת bioluminescent נובעת בעת החשיפה כימית הוכח כדי לשקף את השפעות הטיפול על גדילה וחילוף חומרים תאיים, מה שהופך את התאים האלה כלי זול, רציף, בזמן אמת רעילות הקרנה שיכול בקלות להיות מותאם לאוטומציה תפוקה גבוהה.

Abstract

תא המבוסס במבחני חוץ גופית יונקים כבר מועסק באופן נרחב כחלופות לניסויים בבעלי החיים למחקרי toxicological אבל היו מוגבל בשל העלויות הכספיות הגבוהות של זמן והכנת מדגם מקביל המתחייבות עקב הטבע ההרסני של שיטות הקרנה מבוססות לוציפראז גחלילית . סרטון זה מתאר את הניצול של תאי יונקים האוטונומיים bioluminescent, אשר אינם דורש תוספת ההרסנית של מצע luciferin, כשיטת זולה וקלילה לניטור ההשפעות הרעילים של תרכובת של עניין. תאי יונקים ביציבות להביע פליטת אור חיידקים מלאה (luxCDABEfrp) קלטת גן אוטונומי לייצר אותות אופטיים שפסגות ב 490 ננומטר ללא תוספת של מצע יקר ואולי מפריע luciferin, עירור על ידי מקור אנרגיה חיצוני, או הרס של המדגם שהוא באופן מסורתי מבוצע במהלך הליך הדמיה אופטיים. עצמאות זו מגירוי חיצוני מציבה את נטל לשמירה על תגובת bioluminescent אך ורק בתא, כלומר את האות שנוצרה הוא זוהה רק במהלך חילוף חומרים פעילים. מאפיין זה הופך את קו התא מבטא-Lux מועמד מצוין לשימוש כbiosentinel כנגד השפעות רעילות בגלל שינויים בייצור bioluminescent מצביעים על השפעות שליליות על צמיחה וחילוף חומרים תאיים. כמו כן, האופי האוטונומי וחוסר הרס מדגם הנדרש מאפשר הדמיה חוזרת ונשנית של אותו המדגם בזמן אמת לאורך כל תקופת חשיפת toxicant ויכולים להתבצע על פני מספר רב של דגימות ציוד הדמיה קיים בשימוש באופן אוטומטי.

Introduction

בארה"ב, תרופות ומוצרים אחרים המיועדים למאכל אדם דורשים הערכה מקיפה לפני שהם מאושרים לשימוש על ידי הצרכנים מזון והתרופות אמריקניות. נטל הכספי לביצוע בדיקה זו מושם על 1 מפתח, אשר מגביר באופן משמעותי את עלות פיתוח מתחם חדש ולכן מיתרגם התייקרות לצרכנים. אמנם באופן מסורתי הרבה יותר של הקרנה זו מנוצל נושאי בעלי חיים לפעול כשליחים למארחי אדם, זה הוכיח להיות נטל כספי גדול, עם הערכת 2.8 מליארד דולרים בילו מדי שנה על ADME / Tox (ספיחה, הפצה, חילוף חומרים, הפרשה, ורעילות ) הקרנה לבד 2 וראיות מצטברות המצביעות על כך מודלים של בעלי חיים לא יכולים לחזות מהימן תגובות toxicological אדם 3. לכן, בבדיקת תא מבוססת התרבות אנושית מבחנה צברה פופולריות בשני העשורים האחרונים בשלה נמוך יחסיתעלות, תפוקה גבוהה יותר, וייצוג טוב יותר של זמינות ביולוגית וטוקסיקולוגיה 4 אנושיים. שיטות הקרנה רעילות המבוססות על תרבות התא נוכחית להעסיק נקודות קצה שונות, כגון מדידת רמות ה-ATP, הקרנת הפעילות של אנזימים זמינים cytoplasmic endogenously, חיטוט היושרה של קרום התא, או מעקב אחר רמת הפעילות של המיטוכונדריה, כדי להעריך את הכדאיות סלולרית 5 , 6. עם זאת, ללא קשר לנקודה הסיום שנבחר, שיטות אלו דורשות כל ההרס של המדגם לפני ניתן לקחת מדידות, ובכך לייצר נתונים רק בנקודת זמן אחת. כתוצאה מכך, מספר גדול של דגימות צריכים להיות מוכן ולטפל במקביל ללימודי קינטיקה toxicological בסיסיים, שוב מוסיפים לעלויות והעבודה הנדרשת לפיתוח מתחם החדש. לחלופין, באמצעות מבחני מופרשים לוציפראז כגון Gaussia 7 לוציפראז, Vargula לוציפראז 8, וMetridia לוציפראז 9פותחו שמבטל את הצורך בתמוגה תא ודורש חלק מכלי התקשורת למדידת נקודת סיום, לעומת זאת, אלה עדיין מוגבלים לדגימה בנקודות זמן שנקבעו מראש, וגם דורש תוספת של מצעי אור הפעלה חיצוניים.

כדי להימנע מהפגיעה של הרס מדגם הנדרש, כמו גם לחסל את העלות של מצעים, קו תא אנושי תוכנן המבטא את פליטת אור מלא חיידקים (לוקס) קלטת גן (luxCDABEfrp) כדי לאפשר לניטור רציף של תאי חיים, כי הוא דומה להדמית תא החי המבוססת על ניאון צבע, אך ללא הליכי חקירת פוטון-הפעלה ומיקרוסקופים נוספים. קו תא זה מסוגל לייצר constitutively אות אופטי לגילוי מתמשך, ישיר ללא צורך בגירוי חיצוני, ובכך נמנע הרס של המדגם. מכאני, אות bioluminescent שנוצרה מהתאים אלה לגרוםS כאשר אנזים לוציפראז luxAB-בנוי מזרז החמצון של אלדהיד שומן ארוך שרשרת (מסונתז ונוצר מחדש על ידי שימוש במוצרי גן luxCDE מצעי אנדוגני) בנוכחות המופחת ריבופלאבין פוספט (2 FMNH, שממוחזר מFMN על ידי גן FRP מוצר) וחמצן מולקולרי 10. ביטוי של לוקס הקסטה בתא המארח ולכן מאפשר לאור להיות מיוצר ומזוהה ללא הרס הסלולר או תוספת מצע אקסוגני. בדומה לכך, האינטראקציה בין גנים ולוקס FMN זמין endogenously וcosubstrates O 2, והדרישה לשמירה על סביבה שיכול לתמוך בהמרה של FMN לFMNH 2, מבטיחה שאות bioluminescent כתוצאה מכך יכולה להיות מזוהות רק מהחיים , תאים פעילים מטבולית.

דרישות אלה בעבר נוצלו על מנת להוכיח כי לוקס-basפלט bioluminescent אד קורלציה חזק עם גודל אוכלוסיית הסלולר 11 וכי חשיפת תרכובת רעילה פוגעת בייצור autobioluminescent אופנה מנה תגובה 12. כאן אנו משתמשים בכליות מתאפיינות בעבר autobioluminescent עוברית אנושית (HEK293) שורת תא 11 כדי להדגים את הקרנת טוקסיקולוגי האוטומטית של אנטיביוטיקה מהמשפחה ידועה bleomycin עם פעילות ה-DNA נזק כדוגמה מייצגת כדי לאמת את היישום של תאי יונקים autobioluminescent לבדיקות רעילות.

Protocol

1. הכנת תא

  1. לשחזר בקבוקון של HEK293 תאי bioluminescent ממניות קפוא חנקן נוזלי ולגדל אותם במדיום השתנה Dulbecco של הנשר (DMEM) בתוספת 10% בסרום שור עוברי, 0.01 חומצות אמינו חיוניות מ"מ, 1x האנטיביוטיקה antimycotic, ופירובט נתרן מ"מ 0.01 בT בקבוק תרבית רקמה 75 על 37 מעלות צלזיוס, 5% CO 2.
    הערה: בתקשורת והרכיבים משלימים תשתנינה בהתאם לקווים סלולריים, ולכן יש לבחור בהתאם.
  2. רענן כל מדיום 2-3 ימים עד שמגיע ~ מפגש% 80.
    הערה: כמות התאים הנדרשים תהיה מבוססת על עיצוב ניסיוני. במידת צורך, ניתן להשיג יותר תאים על ידי subculturing.
  3. קציר תאים לבדיקה.
    1. הסר את המדיום ולשטוף את התאים עם פוספט שנאגרו מלוח (PBS) על ידי בעדינות מתערבל את הבקבוק ולאחר מכן השלכת בילתה PBS.
    2. הוסף טריפסין ולדגור על 37 מעלות צלזיוס למשך 2 דקות,או עד שהתאים יש מנותק מהבקבוק.
    3. לאסוף את התאים המנותקים בPBS ולהעביר אותם לתוך צינור צנטריפוגות נקי.
      הערה: אם שורות תאי nonadherent משמשות תאים נפרדים, על ידי צנטריפוגה ולשטוף פעם עם PBS.
  4. לקבוע את ספירת התאים הכולל שימוש במערכת ספירת תאים אחרות או hemacytometer.
  5. צנטריפוגה ההשעיה תא XG 300 במשך 5 דקות. בטל supernatant ו resuspend התאים במדיום טרי, prewarmed.
  6. מספר שווה של תאי זרע לתוך בארות בודדות של צלחת רב גם אטומה. בדוגמה זו, צלחת 5 x 10 5 תאים בנפח 1 מ"ל לבאר כל צלחת 24 גם שחורה. צלחת נפח שווה של מדיום בבארות בשלושה עותקים לפעול כביקורת שלילית.
    הערה: מספר התאים מצופה בכל טוב הוא גמיש ויכול להיות מותאם לניסויים בודדים. עבור כל שורת תאי bioluminescent, בניסוי לקבוע את הקשר בין מספר תאים וbiolumiפלט nescent, כמו גם את התא לגילוי מינימאלי לספור לפני כל בדיקות רעילות. כדי לעשות זאת, פליטת אור אמצעי על פני מגוון רחב של גודל אוכלוסייה (לדוגמה, 1 x 3-01 אוקטובר x 10 6 תאים) בתנאי הדמיה סטנדרטיים.
  7. טיפול בתאים עם מתחם בדיקה (ים) כמפורט להלן.

2. תכשיר

  1. הכן הכימי שנבדקו כפתרון מניות מרוכז. בדוגמה זו, יש להשתמש בפתרון מניות מ"ל של אנטיביוטיקה ממשפחת bleomycin 100 מ"ג /.
    הערה: כדי למזער את ההשפעות רעילות המבוססות על הרכב פוטנציאליות, במיוחד אם ממס אורגני משמש ככלי לתוספת כימית, מומלץ כי ריכוז מניית להיות לפחות 1,000 פעמים ריכוז שלאחר היישום הרצוי.
  2. מוסיף את הציר הכימי המוכן ישירות אל התאים. בדוגמה זו, מינון האנטיביוטיקה של ריבית בריכוזים סופיים של 100, 200, 300, ו -400 מיקרוגרם / מ"ל ​​בתלתplicate בארות. השאר שלוש בארות של תאים שלא טופלו כקבוצת ביקורת.
    הערה: הריכוז הסופי של כימי היעד צריך להיות נבחר על בסיס מטרות ניסוי ספציפית. מגוון רחב של ריכוזים בדרך כלל נבחן להשיג ספקטרום מלא של ההשפעות הרעילות.

3. הדמיה וניתוח נתונים

  1. מייד לאחר בנוסף כימי, למקם את הצלחת בחדר ההדמיה של המכשיר המתאים לרכישת תמונה ומדידת פליטת אור.
  2. פליטת אור מדוד כל 15 דקות על פני תקופה הפועל 24 שעות באמצעות 10 דקות זמן אינטגרציה לכל קריאה.
    הערה: זמן האינטגרציה בשימוש בדוגמה זו הוא על בסיס לכל צלחת ויכול להיות מותאם למדידה על בסיס לכל היטב באמצעות luminometers אחר של בחירה. יכול גם להיות מותאם זמן האינטגרציה המבוסס על שורת תאי bioluminescent בחר. בגלל פליטת אור מופק עצמאי ללא הרס תא או כל גירוי חיצוני, לקרואניתן לקחת ממצאים בכל נקודת זמן רצויה למלא את מטרות ניסוי ספציפיות.
  3. לכמת את עוצמת bioluminescent מכל באר על ידי זיהוי אזור של עניין באמצעות תוכנה תואמת. להציג את פלט האור או כמו השטף הכולל (פוטונים / שני) או קרינה הממוצעת (פוטונים / steridian שני / 2 ס"מ /) של כל דגימה.

תוצאות

במחקר זה, את הדינמיקה של תאי autobioluminescent HEK293 נוטרו באופן רציף על פני תקופה הפועל 24 שעות בתגובה לחשיפה לאנטיביוטיקה (איור 1). את ההשפעות הרעילות של האנטיביוטיקה הזה, שהוא חבר של המשפחה הידועה bleomycin להרוג תאי חיים באמצעות קשירה ולביקוע DNA 13, הודגמו באמצעות יר...

Discussion

שיטה זו מדגימה את שימוש בתאי יונקים אוטונומי bioluminescent כבassay הקרנת cytotoxicity המבחנה המאפשר לתאים חיים כדי להיות במעקב רציף לאורך החיים שלהם. פרוטוקול זה הוא גמיש וניתן לשינוי כדי להתאים לתנאי ניסוי ספציפיים כנדרש. לדוגמה, בניסוי שהוצג כאן מתאים למעקב אחר השפעות ...

Disclosures

DM סגור, SA ריפ, ו-GS Sayler הם מייסדים ובעלים של 490 ביוטכנולוגיה, Inc

Acknowledgements

מאמצי המחקר האלה נתמכו על ידי הקרן הלאומית למדע החטיבה כימית, Bioengineering, סביבתי, ותחבורה (CBET) מערכות תחת מספרי הפרס CBET-0,853,780 וCBET-1,159,344 והמכונים הלאומי לבריאות, המכון הלאומי למדעי בריאות הסביבה (NIEHS) תחת מספר הפרס 1R43ES022567-01, והמכון הלאומי לסרטן, תכנית הדמיה הסרטן תחת מספר הפרס CA127745-01. מכשיר ומינה IVIS משמש בעבודה זו התקבל מהתכנית של צבא ארצות הברית ביטחון אוניברסיטת מחקר מכשור.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
IVIS LuminaPerkinElmerOther IVIS models and PMT-based plate readers can also be used
Living Imaging 2.0PerkinElmerNewer updates of this software is available
75 cm2 cell culture treated flasksCorning430641
6-well tissue culture-treated platesCostar07-200-83
Black 24-well plateGreiner Bio-One66217496- or 384-well plates can be used for higher throughput applications
Phosphate buffered salineHycloneSH30910
Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM), phenol red-freeHycloneSH30284
Fetal bovine serumHycloneSH3091003
Nonessential amino acids, 100xLife Technologies11140050
Antibiotic-antimycotic, 100xLife Technologies15240062
Sodium pyruvate, 100mMLife Technologies11360070
Zeocin, 100 mg/mlLife TechnologiesR25001
Tripsin, 0.05%Life Technologies25300062

References

  1. U.S. Food and Drug Administration. Is it really FDA approved?. FDA Consumer Health Information. 2, (2009).
  2. Hartung, T. Toxicology for the twenty-first century. Nature. 460, 208-212 (2009).
  3. Olson, H., et al. Concordance of the toxicity of pharmaceuticals in humans and in animals. Regul. Toxicol. Pharmacol. 32, 56-67 (2000).
  4. Stacey, G. Current developments in cell culture technology. Adv. Exp. Med. Biol. 745, 1-13 (2012).
  5. Li, A. P. Screening for human ADME/Tox drug properties in drug discovery. Drug Discov. Today. 6, 357-366 (2001).
  6. Li, A. P. In vitro approaches to evaluate ADMET drug properties. Curr. Top. Med. Chem. 4, 701-706 (2004).
  7. Tannous, B. A. Gaussia luciferase reporter assay for monitoring biological processes in culture and in vivo. Nat. Protoc. 4, 582-591 (2009).
  8. Thompson, E. M., Nagata, S., Tsuji, F. I. Cloning and expression of cDNA for the luciferase from the marine ostracod Vargula hilgendorfii. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 86, 6567-6571 (1989).
  9. Lupold, S. E., Johnson, T., Chowdhury, W. H., Rodriguez, R. A real time Metridia luciferase based non-invasive reporter assay of mammalian cell viability and cytotoxicity via the beta-actin promoter and enhancer. PLoS ONE. 7, (2012).
  10. Meighen, E. A. Molecular biology of bacterial bioluminescence. Microbiol. Rev. 55, 123-142 (1991).
  11. Close, D. M., et al. Autonomous bioluminescent expression of the bacterial luciferase gene cassette (lux) in a mammalian cell line. PLoS ONE. 5, e12441 (2010).
  12. Close, D. M., Hahn, R. E., Ripp, S. A., Sayler, G. S. Determining toxicant bioavailability using a constitutively bioluminescent human cell line. , 1-4 (2011).
  13. Oliva-Trastoy, M., Defais, M., Larminat, F. Resistance to the antibiotic Zeocin by stable expression of the Sh ble gene does not fully suppress Zeocin-induced DNA cleavage in human cells. Mutagenesis. 20, 111-114 (2005).
  14. Close, D. M., Webb, J. D., Ripp, S. A., Patterson, S. S., Sayler, G. S. Remote detection of human toxicants in real time using a human optimized bioluminescent bacterial luciferase gene cassette bioreporter. Proc. SPIE 8371, Sensing Technologies for Global Health, Military Medicine, Disaster Response, and Environmental Monitoring II; and Biometric Technology for Human Identification IX. 837117, (2012).
  15. Close, D. M., Hahn, R. E., Patterson, S. S., Ripp, S. A., Sayler, G. S. Comparison of human optimized bacterial luciferase, firefly luciferase, and green fluorescent protein for continuous imaging of cell culture and animal models. J. Biomed. Opt. 16, e12441 (2011).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

80Cytotoxicity

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved