JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Erratum Notice
  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Erratum
  • Reprints and Permissions

Erratum Notice

Important: There has been an erratum issued for this article. Read More ...

Summary

Performing viral assays in a BSL-4 laboratory is more involved compared to work in a BSL-2 laboratory due to required additional safety precautions. Here, we present an overview of practices and procedures used inside a BSL-4 laboratory illustrating proper Class II biosafety cabinet usage, waste management/disposal, and sample removal.

Abstract

עבודה במעבדה הבלימה 4 בטיחות ביולוגית ברמה (BSL-4) דורש זמן ותשומת לב רבה לפרטים. אותה העבודה אשר נעשתה במעבדת BSL-2 עם פתוגנים הלא גבוהת תוצאה תיקח זמן רב יותר באופן משמעותי באווירת BSL-4. דרישת הזמן גדלה זאת בשל מספר רב של גורמים אשר שמטרתם להגן על החוקר מזיהומים-רכש מעבדה, סביבת העבודה מזיהום פוטנציאל ואת הקהילה המקומית מן השחרור אפשרי של פתוגנים גבוהה מכך. בתוך המעבדה, תנועה מוגבלת עקב צינורות אוויר מצורפים חליפות בטיחות גוף מלא חובה. בנוסף, חיטוי של כל פריט יוסר ארונות בטיחות ביולוגיים Class II (BSCs) נדרש. מומחי מעבדה חייבים להיות מאומנים בפרקטיקות של מעבדת BSL-4 ו חייב להראות בקיאות גבוהה המיומנויות הם מבצעים. המוקד של מאמר זה הוא לתאר הליכים נאותים וטכניקות כדי להבטיח ב מעבדהiosafety ודיוק ניסיוני באמצעות assay רובד נגיפי תקן כהליך למשל. בפרט, שיטות נכונות לעבוד בבטחה בסביבה BSL-4 בעת ביצוע ניסוי יודגש חזותי. טכניקות אלו כוללות: הקמת BSC Class II עבור ניסויים, ניקיון נאות של BSC Class II כאשר סיימו לעבוד, ניהול פסולת וסילוק בטוח של פסולת הנוצרת בתוך מעבדת BSL-4, והסרת דגימות מומתות מבתוך BSL- מעבדה 4 למעבדה BSL-2.

Introduction

כמו בטיחות של אנשי מעבדת טיפול פתוגנים גבוהה מכך (לא prophylaxes זיהום ולא אפשרויות טיפול קיימות) היא בעל חשיבות עליונה, משרד החוץ האמריקאי לבריאות ולשירותי אנוש קימת הנחיות לבניית מתקן ושיטות עבודה מומלצת לניהול הבטוח העבודה עם פתוגנים ביו למעבדות קליניות מנקודת מבט בטיחות ביולוגית 1. באמצעות חקיקה ותקינה, רבים של פרקטיקות ונהלים הפכו דרישות החובה שיש אחריו לעבודה עם פתוגנים אלה. בארצות הברית, פתוגנים המועברים בקלות מאדם לאדם, לגרום שיעורי מקרה הרוגים גבוה, ו / או יש פוטנציאל ההשפעה על בריאות הציבור הגדולות טרור ביולוגי, מסווגים כמו המכון הלאומי לבריאות / המכון הלאומי לאלרגיה ומחלות זיהומיות מחלות (NIH / NIAID) עדיפות א 'פתוגנים או המרכז לבקרת מחלות ומניעתן (CDC) קטגוריה טרור ביולוגי סוכנים 2. בנוסף, hפתוגנים igh-התוצאה מסווגות Tier 1 סוכנים בחרו אם פתוגנים אלה הם סוכני טרור ביולוגיים פוטנציאליים, יש פוטנציאל פגיעה המונית או השפעות הרסניות למשק, תשתיות קריטיות, או אמון ציבור 3.

BSL-4 פעולות, כוללים גישת מכונים עם מעבדות BSL-4, נשלטות מאוד יותר BSL-2/3 פעולות. למשל, הוא משמעותי יותר קשה כדי לקבל גישה למעבדת BSL-4 לעומת מעבדת BSL-2 או BSL-3 עקב דרישות הכשרת חליפה משמעותיות, דרישות חונכות נרחבות, ואת תנאים מוקדמים בטיחות ביולוגית רפואית נוספים. בנוסף, יש בדרך כלל יותר מחסומים אבטחה פיזית במתקן BSL-4 לעומת מתקן BSL-2 או BSL-3 4-6. כפי שמתואר במאמר הראשון שלנו על נהלי כניסת BSL-4 ויציאה, צוות המעבדה לעבור הכשרה מקיפה והקרנה פסיכולוגית להעפיל כניסה למעבדת BSL-4 7. Within במעבדת BSL-4, סיכון לזיהום וטעויות נמנעים או מתן ידי ביצוע נהלים שנקבעו. מחקר חייב להתקדם בזהירות ובכוונה, עם ריבוי משימות או סח דעת מינימאליות. הוא רכן חליפות לחץ חיוביות קשה, ואת מגן הפנים עשוי להגביל הליכים כגון מיקרוסקופיה. כפפות מגושמות לעכב את ביצוע משימות מוטוריקה עדינות, כגון טיפול פריטים קטנים או תיוג צינורות. כדי לצמצם את זמן בילה BSL-4 מעבדות, מומחי מעבדה צריכים לסקור נהלי עבודה לזהות צעדים שניתן לעשות קדימה במעבדת BSL-2 ולאחר מכן להעביר את החומרים הללו לתוך מעבדת BSL-4 עבור השלמת המשימה (ים). כשמוציא חומרים לעיבוד נוסף במעבדת BSL-2, חומרים שתוקנו והוציאו מהמעבדה BSL-4 במכל משני אטומים. דוגמאות של דגימות כי ייתכן שתהיינה הצורך להסירו כוללות: צלחות קבועות או צינורות של חומר נגוע שתנותחנה ידי immunosorbe אנזים צמודNT assay (ELISA), assay immunofluorescence (IFA), או שרשרת פולימראז התגובה (PCR).

בנוסף מגבלות פיסיות יותר שהטילו ציוד מגן אישי הנדרש במעבדות BSL-4 בהשוואה לאלו BSL-2 מעבדות, נהלי איון של פתוגנים גבוהה תוצאת צלחות תרבית תאים וסילוק פסולת מחמירים מאלה הדרושים וירוסים פחות פתוגניים למד במעבדת BSL-2. לכל הפחות, שיטות אלו צריכות לעמוד בדרישת CDC. לדוגמא, צלחות תרבית תאים מזוהמות וחומרים אחרים יכולים להיות מובטלים עם ריאגנטים כימיים, כגון פורמלין ניטראלי שנאגר. מטופלי צלחות או צינורות תרבית תאים יוכנסו לתוך שקיות חותמות חום המכילות פורמלין והוציאו מהמעבדה באמצעות טנק דאנק מלא חיטוי נוזלי. פחי אשפה מלאי פתרונות חיטוי ומרסס חיטוי משמש לקבלת פסולת זמנית שנוצרה במהלך הניסוי ועבור דיסיnfecting כפפות, ניקוי משטחים וכלים ארון בטיחות ביולוגית, בהתאמה. פתרון חיטוי אמוניום הרביעון בריכוז המפורט נחשב את תקן הזהב עבור כל המעבדות בארה"ב BSL-4 (Barr J, תקשורת אישית, 2015). פסולת מוצקה מתוך דלי השפכים autoclaved לחסל פוטנציאל זיהום.

במאמץ חזותי להדגים את זרימת העבודה ואת המגבלות של נהלי BSL-4 בכלל, השתמשנו assay פלאק ויראלי תקן כדוגמא הליך ויראלי נפוץ. בעוד הליך assay ויראלי מתואר באופן כללי, אנו מדגישים את נהלי הבטיחות הביולוגיים בשימוש על מנת להבטיח בטיחות של אנשי מעבדה בפרוטוקול זה. עיין חזותי assay פלאק קלסי קודם עבור רקע נוסף על 8,9 טכניקת assay פלאק.

הנהלים שהוצגו כאן בהתאם למפרטי BMBL שהתוו CDC 1. עם זאת, הפרוטוקולים שהוצגו הםספציפית IRF-פרידריך. יש מתקן BSL-4 כל נהלי עבודה סטנדרטיים שונים (SOPs) ודרכי פעילותן המשפיעים על ביצוע ניסויים בתוך המעבדה BSL-4. הליכים חלופיים לניהול זרם פסולת וביצוע מבחני פלאק עשויים להשתנות בהתאם על הניהול והתפעול של מעבדות אלה. אף על פי כן, הבנה כללית של הקמה של מעבדת חליפה BSL-4 ונהלים לביצוע עבודות עם Class II ארונות בתוך סביבת BSL-4 תסייע למדענים להבין את האילוצים ואת השלכות בטיחות כאשר שוקלים מחקרים של פתוגנים בסיכון גבוהים. מודעות מוגברת של משתפי פעולה מחוץ הקשיים שמסביב עבודה במעבדת BSL-4 יכולה להוביל לציפיות מתואמות וקל יותר בפיתוח אמצעי-נגד רפואי בקהילת המחקר.

Protocol

1. כניסת מעבדה

  1. לאסוף את כל אספקה ממעבדה BSL-2 עבור הניסוי (למשל, תאים, התקשורת, וחומרים מתכלים) לפני הכניסה למעבדה BSL-4.
  2. השלם את הליך הכניסה BSL-4 (מתוארים בפירוט התייחסות 7).

2. הכנת Class II בטיחות ביולוגית הקבינט במעבדת BSL-4

  1. פעם בתוך המעבדה BSL-4, להבטיח את רשימת העבודה הפנימית היומית (איור 1) הושלמה. השלימו את רשימת העבודה אם checklist לא כבר מילא בעבר החוצה וציין אילו וירוסים ישמש. אם את רשימת העבודה הושלמה כבר, להוסיף שם ואשר וירוס ישמש לרשימה.
  2. נקו את BSC Class II על ידי ריסוס למטה מבפנים כולו של BSC (כולל אבנט) עם פתרון חיטוי אמוניום הרביעון כפול 5% (למשל, אמוניום כלוריד בנזיל דימתיל n-אלקיל, n-אלקיל אמוניום בנזיל אתיל דימתילכלוריד או מתאים חיטוי אחר עבור הסוכן בשימוש) ולנגב במגבות נייר 10,11. תרסיס פתרון אתנול 70% בתוך ארון ואת האבנט להסיר את פתרון חיטוי מוזנח.
  3. אם יושב, הניח את הכיסא מול BSC Class II בגובה נוח כדי להבטיח שהחלק האחורי של ארון ניתן להגיע וכי פניו של מומחה המעבדה ממוקמת מעל הפתח הקדמי (איור 2) 11.
  4. כן מכל פסולת עבור ארון הבטיחות הביולוגי. ודא את הריכוז הסופי של פתרון חיטוי אמוניום הרביעון כפול מיכל הפסולת הוא לא פחות מ -5%. לתכנן בהתאם ולעשות פתרון 10% שאליו פסולת תתווסף כי תהיה לדלל את החיטוי. בנוסף, במקום בקבוק תרסיס עם 5 פתרון אמוניום הרביעון חיטוי כפול% בתוך Class II BSC לרסס את כל הפריטים לפני הרחקה בידיים עטויות כפפות במהלך ואחרי השלמת assay.
  5. מניח את החומרים המתאימים דרושים לצורך הניסוי כולו Class II BSC עד בחזרה בארון ככל האפשר כדי למנוע היכרויות חומר חזרו לתוך BSC Class II וההפרעה בזרימת האוויר 11.

דוגמה 3.: assay פלאק

  1. תחזור דגימות המכילים וירוס ולשלוט וירוס ממיקום האחסון ביד להפשיר חומרים באינקובטור ב 37 מעלות צלזיוס.
  2. לייבל בארות של 6 צלחות היטב כדי לשמש על פי דילולים וירוס המתוכנן. סמן את העפעפיים וגוף של הצלחות להבטיח התאמה מוצלחת אם המכסים והגוף מופרדים.
  3. תביא חומרי צעדים 3.1-3.2 לתוך BSC Class II. מניחים את כל הפריטים שיש לא או לא לבוא במגע עם הנגיף בצד אחד ( "הצד נקי") ופסולת בצד השני ( "מהצד המלוכלך"). במידת האפשר, לשמור על "פריטים נקי" לפחות מזה 30 ס"מ "פריטים מלוכלכים" במהלך פעילות מניבת אירוסול 11.
  4. לעבוד קרוב למרכז הפנימי של Class II BSC ככל האפשר, כמרכז בתוך נועד להיות המיקום היעיל ביותר כדי להגן על עצמו 11.
  5. הסר 50 μl של מדגם וירוס ובקרה וירוס ומקום לתוך 450 μl של המדיום של הנשר שונה של Dulbecco עם 2% בסרום שור העובר. להמשיך עם ביצוע דילולים סדרתי רחוק ככל הצורך (איור 3 א).
  6. במהלך דילולים, לערבב את דגימות נגיף לפחות 5 פעמים עם קצה פיפטה לאט ובזהירות בעת שניסה למזער הדור בועות אוויר בדגימות. שינוי עצות פיפטה לאחר כל הוספת הדילול הבא כן.
  7. ב הדילול האחרון, לאחר ערבוב המדגם 5 פעמים, להשליך 50 μl של מדגם וירוס לתוך מיכל פסולת כדי להבטיח כרכים של דילולים שווים.
  8. בעת השלכת טיפים, ולשטוף כל קצה עם פתרון חיטוי מדלי פסולת כדי לטהר את צידו הפנימי והחיצוני של קצה לפני לגרשing קצה לתוך דלי פסולת.
  9. לאחר הדילולים נעשים, להגדיר את בארות הדילול בצד ולהתחיל aspirating תקשורת המבארת צלחות תרבית תאים, עוזב 500 μl של תקשורת בכל טוב של צלחת 6 באר.
  10. כאשר סיים עם פיפטה קצה, לשאוב חיטוי פתרון מדלי פסולת לראש פיפטה באמצעות ידני, נפח מתכווננת, בלחיצת כפתור פיפטור, כדי להבטיח טיהור נאותה של החלק הפנימי של פיפטה. השאר את הקצה לתוך הדלי פסולת עד תום הניסוי.
  11. ברגע התקשורת הוסרה מהצלחות, להוסיף 100 μl של המדגם הנכון לתוך הבאר ההנאה הצלחות מראש שכותרתו בשני עותקים, שינוי עצות כל אחד עבור כל דגימה.
  12. עם השלמת חיסונים assay פלאק, לרסס את בידיים עטויות כפפות עם פתרון חיטוי ולהשתמש במגבת נייר ספוגה פתרון חיטוי לנגב את החלק החיצוני של כל הצלחות לפני הצבת לוחות בחזרה לתוך החממה ביד. מִחָדָשׁכבול התהליך הזה עד שכל הצלחות בחזרה לתוך החממה.
  13. רוק הצלחות בתנועת דמות -8 מנת להבטיח פיזור נאות של המדגם על התאים כל 15 דקות במשך שעה 1.
  14. עם השלמת צלחות נדנדה, לחזור צלחות לתוך BSC Class II יחד עם תערובת של המדיום החיוני המינימאלי של 2x Eagle ו -1.6% נכאת, שכבת חצי מוצק כי קלה יותר לתמרן מ agarose משמשת לטיפול הכיסוי של assay פלאק.
  15. הוסף 2 מ"ל של תערובת כיסוי היטב כל צלחת 6-גם וסלע שוב בתנועה דמות -8 לחלוקה שווה של כיסוי לאורך פני השטח של הבאר. חזור על תהליך זה עד שכל המשמש גם הוא מעולף עם תערובת הכיסוי.
  16. ודא קצה פיפטה סרולוגיות לא נוגע כל נוזל בבארות כדי למנוע זיהום לחצות בעת ביצוע הליך הכיסוי.

סילוק פסול 4. והניקוי של מכשירי קבינט הבטיחות ביולוגי

  1. לחלוטין להטביע את כל חומרי הפסולת בתמיסת חיטוי 5% בתוך הדלי הפסול במשך זמן מגע של 10 דקות לפחות. לחטא טיפים פיפטה, טפטפות סרולוגיות, ופסולת אחרת כמתואר לעיל. בנוסף, לרסס את הדלי פסולת (מבפנים ומבחוץ) עם פתרון חיטוי 5% תנו הפתרון להישאר במגע עם הדלי פסולת במשך זמן מגע של 10 דקות.
  2. בזמן ההמתנה בפעם קשר לחלוף על פסולת, לספוג במגבת נייר עם פתרון חיטוי 5%, לנגב מכשירים כגון micropipettes, ולהסיר אותם מן BSC. ספריי בידיים עטויות כפפות עם פתרון חיטוי 5% לפני הבאת בידיים עטויות כפפות מחוץ BSC Class II.
    1. לאחר הסרת micropipettes מן BSC, לנגב אותם עם מגבת נייר נפרדת עם פתרון אתנול 70%, כדי למנוע הצטברות דביקה על המכשירים. ריסוס כל המכשירים כי לא יכול להימחק, הלכה למעשה, עם חומר חיטוי 5% ולהשאיר במגע עם הפתרון של BSC במשך 10 דקות.
  3. לאחר זמן מגע מספיק, להסיר את כל הפריטים מן BSC. קח פריטים, כולל דלי פסולת המכילה חומרי פסולת, לכיור. לשטוף פריטים שניתן לעשות בה שימוש חוזר כדי להסיר שאריות חומר חיטוי. להחזיר את כל הפריטים למקומות האחסון שלהם.
  4. נקה את משטח העבודה של BSC Class II, הצדדים ארון ובחזרה, פנים של זכוכית, ואת האבנט 1 עם פתרון חיטוי 5% ואחריו פתרון אתנול 70%.
  5. משוך החוצה לרוקן את טפטפות סרולוגיות מן טפטפות סרולוגיות דלי והמקום הפסולים-לחטא משטח במגשים פיפטה נפרד עבור מעוקר (טפטפות סרולוגיות יכולות להוות סכנת הדיאזים עלולים להיקרע דרך שקית האשפה. מניח טפטפות אלה במכל קשיח-צדדי לפני מעוקר).
  6. שופך את תכולת הדלי פסולת לתוך מסננת הממוקמת בתחתית הכיור.
  7. תביא מיכל פסול Biohazard כי הוא ששקית Biohazard אדומה לכיור ושופך את תכולתו של strainer לשקית Biohazard האדום. אל תושיט יד לתוך מסננת כדי להסיר טיפים micropipette שעשויים מקל הפנימי של מסננת. הכה את המסננת לאורך הצד הפנימי של המכל פסולת עד שכל הטיפים מוסרים, או להשתמש פינצטה להסיר טיפים מן המסננת.
  8. יש לשטוף את הדלי ומקום פסולת לייבוש על מתלה ליד הכיור.

5. פסולת מעוקרת

  1. מוציא את שקית Biohazard מן מיכל הפסול Biohazard ומניח מגש חיטוי על עגלה.
  2. השאר שקיות Biohazard פתוחות ומניח חתיכת סרט חיטוי על החלק החיצוני של התיק, חיבור צידי מגש החיטוי לשמור על השקית המאובטחת במגש.
  3. מניח שתי חתיכות של נייר חיטוי על מגש קצה פיפטה סרולוגיות ולתייג אותה עם ראשי התיבות של אחד ואת התאריך. מניחים את המגש פיפטה סרולוגיות על העגלה עם מגש החיטוי.
  4. פתח את החיטוי. חבר את טעינת חיטוי בתנאי / ca הפריקהrt אל החיטוי ולהוציא את פלטפורמת החיטוי נשלף לנוח על העגלה.
  5. הסר את מוט מתכת החיטוי ולפתוח העליון. מניח בקבוקון אינדיקטור ביולוגי המכיל נבגים של Geobacillus stearothermophilus לתוך מוט המתכת לבדוק כי מחזור עיקור החיטוי הושלם בהצלחה.
  6. מניח את מוט המתכת למרכז התיק פסולת במגש החיטוי אך להבטיח כי מוט המתכת עדיין נגיש בקלות.
  7. מניח במגש חיטוי מלא בפסולת ומגש פיפטה סרולוגיות אל רציף החיטוי נשלף ולדחוף אותו בחזרה לתוך החיטוי.
  8. לנתק את טוען עגלת החיטוי / פריקה מן החיטוי ולסגור את דלת החיטוי.
  9. הפעל את החיטוי.
  10. אל תשאיר את החיטוי עד המחזור החל. מסך ההפעלה של החיטוי יציין הזמן הנותר כי הריצה.
  11. לאחר ריצת החיטוי תושלם, להסיר את ind הביולוגיicator ולהעריך לצמיחה על ידי חימום חממה שצוינה. אם הצמיחה מזוהית על אינדיקטור הביולוגי, להפעיל מחדש את האשפה ב החיטוי, ולהעריך מחדש מחוון. אם אין צמיחה מזוהית, להסיר את האשפה מהמתקן.

6. דוגמה: תיקון וצביעת מבחני פלאק

  1. לאחר מספר מתאים של ימים (התלויה על הנגיף בשימוש) עבר, לחזור בחזרה למעבדה ולבצע צעדים ממקטעים 1 ו -2 שוב.
  2. מוציאים בזהירות צלחות assay פלאק מן החממה הושלמה בשלב 3.1.2, ומקום לתוך השנייה BSC מחלקה ביד.
  3. פיפטה את כל החומר מדיה כיסוי ולחלק לתוך מיכל פתרון חיטוי ולהחליף בתערובת של נייטרלי שנאגרו פורמלין 10% וסגול קריסטל 0.8% 12,13. תן לתערובת להישאר על הצלחות במשך 30 דקות כדי להשבית את הנגיף על הצלחות.
  4. לאחר איון, להסיר בזהירות את ניטראליתערובת ומקום סגולים פורמלין / קריסטל שנאגר בתוך מיכל פסולת נפרד להיות מנוטרל לפני הסילוק.
  5. ספריי בידיים עטויות כפפות בחומר חיטוי ולנגב את החלק החיצוני של הצלחות לפני שחילק להם את BSC Class II כפי שתואר לעיל.
  6. המשך לכיור, לשטוף את הצלחות להסיר את כתם עודף, ולאחר מכן למקם את הצלחות על עגלה לייבוש.
  7. לאחר הצלחות הן יבשות לחלוטין, להשתמש בקופסא אור לספור את הפלאק. להקליט את כל הרוזנים לחשב titers וירוס מהמשוואה הסטנדרטית (איור 3 ב).

7. הסרת דוגמאות ממעבדת BSL-4

  1. להשבית כל דגימות כי יהיה לטפל בתנאי מעבדה BSL-2. בצע אחת משתי שיטות שאושרו על ידי משרד הבטיחות הביולוגי הפנימי בבית 1,14 IRF-פרדריק באמצעות 10% ניטראלי שנאגר פורמלין (NBF) או Trizol LS (פנול, isothiocyanate guanidine, thiocyanate אמוניום, סודיום יצטט, גליצרול). העברת samples לצינור או צלחת נקי חדשים מחוץ BSC לפני האריזה להסרה ממעבדת BSL-4.
  2. מחממים חותמים דגימות מומתות צינורות או צלחות בנרתיק חום חותם המכיל חומר חיטוי מספיק 5% או פתרון מקבע לחטא את החלק הפנימי של התיק החיצוני של דוגמיות עוברת העברה לצאת ממעבדת BSL-4. מניחים שקיק זה לתוך כיס אחר הבא באותו הליך.
  3. חותם את הכיס השני והמקום נרתיק אטום-חום לתוך טנק דאנק המכיל פתרון חיטוי 5% לפחות 10 דקות כדי לחטא את החלק החיצוני של כיס-חום אטום.
  4. מלא את ספר יומן טנק דאנק בתוך המעבדה ידי התוויית המספר והגודל של צינורות, נפח צינורות, הסוכן שיושם, שיטת איון בשימוש, מקום שבו דגימות תועברנה.
  5. לתאם עם עמית בצד החיצוני של מעבדת BSL-4 כדי לאחזר את השקיק מטנק דאנק ולקחת דגימות למעבדת BSL-2.

תוצאות

בעקבות הליכים נאותים בתוך המעבדה BSL-4 הם חיוניים להבטחת השלמה בטוחה ויעילה של מבחנים. על ידי פניית הרשימה הפנימית היומית הושלמה (איור 1), צוות המעבדה להבטיח הציוד כי הוא מבצעי מלא. מיצוב גוף עצמו בשעה במרכז BSC מבטיח כי הניסוי מתבצע בתנאי זרימת ...

Discussion

עבודה במעבדת BSL-4 דורשת זמן ניכר ותשומת לב לפרטים. כל סוג של עבודה בסביבה זו מחייבת מאומנת היטב, יסודי, ויחידים מצפוניים. את assay רובד נגיפי התקן קובע מודל מדויק של הליך נפוץ לעבודה עם פתוגנים גבוהה תוצאה במעבדה BSL-4, כמו assay כרוך מושגים מרכזיים בהם עובדי מעבדה חייב להיות מ?...

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The content of this publication does not necessarily reflect the views or policies of the US Department of Health and Human Services (DHHS) or of the institutions and companies affiliated with the authors. This work was funded in part through Battelle Memorial Institute's prime contract with the US National Institute of Allergy and Infectious Diseases (NIAID) under Contract No. HHSN272200700016I. M.R.H., D.P., L.B., K.J. and J.W. performed this work as employees of Battelle Memorial Institute. Subcontractors to Battelle Memorial Institute who performed this work are: S.M. as an employee of MRI Global; M.G.L. as an employee of Lovelace Respiratory Research Institute, Inc.; and J.H.K. as an employee of Tunnell Government Services, Inc.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Micro-Chem PlusNational Chemical Laboratories255
EthanolFisherBP2818500
2 ml 96-Deep Well PlatesFisher278743
10 ml Serological PipetteFisher13-678-11E
25 ml Serological PipetteFisher13-678-11
6-well platesFisher140675
Crystal VioletSigmaHT90132-1L
10% Neutral Buffered FormalinFisher22-050-105
TragacanthFisher50-702-2000 
20 μl Pipette TipsFisher21-402-550
200 μl Pipette TipsFisher21-402-561
1,000 μl Pipette TipsFisher21-402-581
DMEMLonza12-604Q
FBSSigmaF2442-500mL
Penicillin/StreptomycinLonza17-602E
2x EMEMQuality Biological115-073-101
PipettorDrummond4-000-101
1,000 μl Pipette Rainin L-1000XLS+
200 μl Pipette Rainin L-200XLS+
12-Well, Multichannel 200 μl PipettorRaininL12-200XLS+
8-Well, Multichannel 1,000 μl PipettorRaininLA8-1200XLS
AttestExpress Medical Supplies MMM12192
AutoclaveGetingeGEB 2404 AMB-2
Autoclave BagFisher01-828E
2,000 ml BeakerFisher02-591-10H
Autoclave TrayFisher13-359-20B
Pipette TrayFisher13-361-5
37 °C IncubatorFisherWU-39321-00
Biohazard CanRubbermaid CommercialFG614500 RED
Autoclave TapeFisher15-903
Autoclave RodMade by IRF FacilityN/A
Light BoxFisherS11552
Heat SealerFisherNC9793612 
Heat Seal PouchesFisher01-812-25H
Biohazard BagFisher01-828E

References

  1. Shurtleff, A. C., et al. The impact of regulations, safety considerations and physical limitations on research progress at maximum biocontainment. Viruses. 4, 3932-3951 (2012).
  2. de Kok-Mercado, F., Kutlak, F. M., Jahrling, P. B. The NIAID Integrated Research Facility at Fort Detrick. Appl Biosafety. 16, 58-66 (2011).
  3. Keith, L., Moyer, B. R., Cheruvu, N. P. S., Hu, T., et al. Preclinical imaging in BSL-3 and BSL-4 envrionments: imaging pathophysiology of highly pathogenic infectious diseases. Pharmaco-imaging in drug and biologics development. , (2014).
  4. Janosko, K., et al. Safety Precautions and Operating Procedures in an (A)BSL-4 Laboratory: 1. Laboratory Suite Entry and Exit Procedures. J Vis Exp. , (2015).
  5. Baer, A., Kehn-Hall, K. Viral concentration determination through plaque assays: using traditional and novel overlay systems. J Vis Exp. , e52065 (2014).
  6. Gonzalez-Hernandez, M. B., Bragazzi Cunha, J., Wobus, C. E. Plaque assay for murine norovirus. J Vis Exp. , e4297 (2012).
  7. Alfson, K. J., et al. Particle to plaque-forming unit ratio of Ebola virus influences disease course and survival in cynomolgus macaques. J Virol. , (2015).
  8. Shurtleff, A. C., et al. Standardization of the filovirus plaque assay for use in preclinical studies. Viruses. 4, 3511-3530 (2012).
  9. Blow, J. A., Dohm, D. J., Negley, D. L., Mores, C. N. Virus inactivation by nucleic acid extraction reagents. J Virol Methods. 119, 195-198 (2004).

Erratum


Formal Correction: Erratum: Safety Precautions and Operating Procedures in an (A)BSL-4 Laboratory: 2. General Practices
Posted by JoVE Editors on 12/05/2016. Citeable Link.

A correction was made to the authors section in: Safety Precautions and Operating Procedures in an (A)BSL-4 Laboratory: 2. General Practices

One of the authors names was corrected from:

Nicole Joselyn

to:

Nicole Josleyn

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

1164BSL4BSL 4Class II biosafetyClass II BSCPPE

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved