פרוטוקול עבור ההמרה הישירה של Murine העוברי פיברובלסטים לתאי גזע Trophoblast

Summary

Here we present a protocol for the direct conversion of murine embryonic fibroblasts into fully functional and stable trophoblast stem cells by ten day over-expression of Tfap2c, Gata3, Eomes and Ets2.

Abstract

תאי גזע Trophoblast (TSCs) העולות אגב החלטת גורל התא הראשונה בפיתוח יונק. הם יכולים להיות מתורבת במבחנה, שמירה על היכולת העצמית לחדש להתמיין בכל תתי הסוגים של השושלת trophoblast, שווה ערך ל vivo ב גזע עלייה נותן אוכלוסיית תאים לחלק העוברי של השליה. לכן, TSCs מציע מודל ייחודי ללמוד פיתוח שליה עוברי לעומת החלטת גורל תא חוץ עוברית במבחנה. משלב הבלסטוציסט ואילך, מחסום אפיגנטיים מובחן המורכב שינויים מתילציה דנ"א היסטון בחוזקה מפריד הוא שושלות. כאן אנו מתארים פרוטוקול להתגבר על זה המכשול השושלת באופן מלא על ידי חולף ביטוי יתר של רגולטורים מרכזיים trophoblast Tfap2c, Gata3, Eomes ו Ets2 ב פיברובלסטים עובריים בעכברים. תאי גזע trophoblast המושרה מסוגלים עצמי לחדש והם כמעט זהים הבלסטוציסט תא גזע trophoblast נגזר iבמונחי n של מורפולוגיה, ביטוי גנים סמנו דפוס מתילציה. תפקודי במבחנת מבחני vivo לאשר כי התאים האלה מסוגלים להבחין לאורך שושלת trophoblast יוצרת תאים ענקים trophoblast polyploid ו chimerizing השליה כאשר מזריקה blastocysts. האינדוקציה של תאי גזע trophoblast מרקמות סומטיים פותחת אפיקים חדשים ללמוד את מאפיינים גנטיים אפיגנטיים של שושלת חוץ עוברית זה, ומציעה את האפשרות ליצור שורות תאי גזע trophoblast מבלי להרוס את העובר בהתאמה.

Introduction

לאחרונה, במחקר שהשווה כמה גישות של תאי גזע עוברי בעכבר כדי Trophoblast המר גזע תאים גילה כי בכל המערכות המנותחות, מרת שושלת נשארת שלמה. במקום תאי גזע trophoblast המושרה (iTSCs) שנקראים גזע trophoblast תאים דמויי תאים נוצרו שמירה על זיכרון של תא גורל ממוצא ^1. כאן פעלנו ע"פ גישה שונה של דור iTSC. בדומה האינדוקציה הישירה של תאי גזע פלוריפוטנטיים מ פיברובלסטים עובריים בעכברים (MEFs) ^2, iTSCs הומר ישירות מרקמת סומטיים מובחנת. ראשית, זיהינו 12 גורמי מועמד התרמת גורל TSC כאשר ביתר MEFs. בהמשך, הגורמים Tfap2c, Gata3, Eomes ו Ets2 זוהו להיות הכרחי ומספיק אינדוקציה iTSC ^3. במקביל, קבוצה נוספת באופן עצמאי מצאו Tfap2c, Gata3 ו Eomes להיות בהן כדי להפוך את MEFs לתוך iTSCs. עם זאת, באותהמחקר, הזמן הנדרש ביטוי transgene מושווה הרבה יותר זמן במחקר שלנו, המציין קינטיקה מרה שונה, כאשר Ets2 תיאור מקוקטייל transdifferentiation ^4.

בסרום שור עובר קונבנציונלי (FBS) המכיל תרבות של מושרה בתאי גזע trophoblast נגזר הבלסטוציסט מסתמך על הנוכחות של גורמים המופרשים MEFs מומת צמיחה ^5,6. במהלך אינדוקצית iTSC, הגורמים הללו ניתנים על ידי MEFs, אשר חסרים את השילוב המלא של transgenes ואינם עובר transdifferentiation. עם זאת, ברגע הפרט מושבות iTSC הם תת תרבות, הם דורשים מדיה, אשר כבר preconditioned ידי MEFs צמיחה מומת. משם ואילך, iTSCs יכול להיות מתורבת ומטופל כמו TSCs הבלסטוציסט נגזר על פי פרוטוקולים סטנדרטיים. מן הראוי לציין כי, בניגוד טנקה et al. ^5, אנו שגרתי תרבות TSCs ו iTSCs ללא gelatinizing מנות תרבית תאים.

Protocol

כל ניסויי העכבר נערכו על פי החוק הגרמני של הגנה על בעלי חיים וזאת בהסכמה ובאישור ועדות הטיפול המקומיות מוסדיים בעלי החיים (Landesamt fuer נאטור, Umwelt und Verbraucherschutz, נורדריין וסטפליה [המספר מזהה אישור: AZ 84-02.04.2013 .A428]).

1. הכנת Media

1. כן בינוני 293T: בינוני הנשר השונה של Dulbecco (DMEM), 10% (v / v) FBS, L- גלוטמין (2 מ"מ), פירובט נתרן (1 מ"מ), פניצילין / סטרפטומיצין (1x).
2. הכן בינוני MEF: DMEM, 10% (v / v) FBS, L- גלוטמין (2 מ"מ), חומצות אמינו לא חיוניות 1x, פניצילין / סטרפטומיצין (1x).
3. הכן בינוני TS (w / o FGF4 / הפרין): בינוני מכון ממוריאל פארק Roswell (RPMI) 1640, 20% (v / v) FBS (גזע כיתה תרבית תאים), פניצילין / סטרפטומיצין (1x), L- גלוטמין (2 מ"מ פירובט), נתרן (1 מ"מ), 2-mercaptoethanol (0.1 מ"מ).
4. הכן בינוני TS עם FGF4 / הפרין (F4H TS +): RPMI 1640, 20% (v / v) FBS (תא גזעתרבות כיתה), פניצילין / סטרפטומיצין (1x), L- גלוטמין (2 מ"מ), פירובט נתרן (1 מ"מ), 2-mercaptoethanol (0.1 מ"מ), 25 ng / ml FGF4, 1 מיקרוגרם / מ"ל ​​הפרין.
   הערה: FGF4 ו הפרין מתווספים ישירות לתוך התקשורת מיד לפני השימוש.
5. הכן TS-CM עם FGF4 / הפרין (TS-CM + F4H): 70% ממוזג MEF הפרין TS בינוני + 30% מוכן טרי TS בינוני + 25 ng / ml FGF4, 1 מיקרוגרם / מ"ל.
   הערה: FGF4 ו הפרין מתווספים ישירות לתוך התקשורת מיד לפני השימוש.
6. הכן בינוני Transfection: מתקדם DMEM, 2% (v / v) FBS (גזע כיתה תרבית תאים), L- גלוטמין (2 מ"מ), פניצילין / סטרפטומיצין (1x).
7. כן בינוני-ייצור וירוס: המתקדם DMEM, 5% (v / v) FBS (גזע כיתת תרבית תאים), L- גלוטמין (2 מ"מ), פניצילין / סטרפטומיצין (1x).

2. Murine עובריים פיברובלסטים גזירה

1. הזדווגויות סט מתוזמן באמצעות WT 129S2SV נשים וגבר הומוזיגוטים עכברים R26 :: rtTA (שם זן; B6.Cg-GT (ROSA) 26Sor ^{TM1 (rtTA}* M2) Jae / J 7). על עכברי קרב E13.5 ידי נקע בצוואר רחם ולבודד פיברובלסטים עובריים בעכברים עיקריים (MEFs) על פי פרוטוקולים סטנדרטיים ^8. לאחר מכן, תאי צלחת מעובר אחד על צלחת 150 מ"מ תקשורת MEF.
2. לאחר תרבויות MEF העיקרית להגיע confluency על 150 מנות מ"מ, לשטוף תאים פעמיים עם 10 מ"ל PBS ולהוסיף 4 מ"ל 0.05% טריפסין / פתרון EDTA. דגירת מנות עבור 3 - 4 דקות בחממה על 37 מעלות צלזיוס.
3. לאחר דגירה לבדוק אם התאים מנותקים מצלחת באמצעות מיקרוסקופ הפוכה (באמצעות עדשה 10X). הוסף 5 מ"ל של התקשורת MEF להפסיק trypsinization ולאסוף ההשעיה התא לתוך צינור חרוטי 50 מ"ל.
4. השעית תא ברכה מכמה מנות ולאסוף לתוך צינור חרוטי 50 מיליליטר. תא צנטריפוגה ההשעיה 3 דקות ב 200 XG ו -10 מעלות צלזיוס.
5. בטל התא גלולה supernatant ו resuspend ב FBS המכיל 10% (v / v) sulfoxide דימתיל. להקפיא MEFs ב aliquots לשימוש נוסף.
   הערה: לחילופין, להשתמש typ פראידואר העיקרי MEFs; עם זאת, וקטור lentiviral נוספים להביע rtTA צריך להיות transduced יחד עם וקטורים lentiviral אחרים (למשל באמצעות פלסמיד FUdeltaGW-rtTA שתיאר Maherali et al. ^9).
6. הכנת בינוני TS ממוזג MEF
   הערה: לפני ניסויים מרים, MEF הממוזג (CM) TS תקשורת כדי להיות מוכנה, אשר נדרשה עבור תת קווי iTSC פרט (בסעיף 6).
   1. פלייט 1 x 10 ⁷ MEFs מומת mitotically לכל צלחת 150 מ"מ במדיום MEF על המספר הרצוי של מנות. להשבית MEFs ידי-קרינה γ עם מינון של 9 Gy.
      הערה: התשואה לכל צלחת 150 מ"מ הוא כ 60 מ"ל של CM.
   2. יום לאחר ציפוי, לשאוב וזורקים בינוני MEF ולהוסיף 20 מ"ל מוכן טרי בינוני TS (ללא FGF4 / הפרין) על כל מנה של mitotically מומת MEFs ומנות המקום בחזרה לתוך החממה ב 37 מעלות צלזיוס.
   3. לאחר דוגריםTS בינוני במשך שלושה ימים על MEFs mitotically המומת, לאסוף בינוני 50 מ"ל צינורות חרוטים. סנן בינוני דרך פילטר 0.2 מיקרומטר והמשך עם 2.6.4. החלף CM עם 20 מ"ל של מדיום TS טריים להכנת אצווה נוספת של CM.
      הערה: MEFs מומת Mitotically יכול לשמש להכנת CM עד שלוש פעמים.
   4. Aliquot 35 מ"ל של CM מסונן לתוך צינורות 50 מ"ל ולאחסן חרוטי ב -20 ° C עד הצורך. לאחר ההפשרה, להוסיף 15 מ"ל של מדיום מוכן טרי TS על מנת לקבל 70% TS-CM ולאחסן ב 4 מעלות צלזיוס למשך עד חודש.

3. הפקת וקטור Lentiviral בתאי 293T

הערה: כל השלבים מבוצעים בחלל המעבדה מורשה בטיחות ביולוגית רמה 2.

1. לפני ניסויים מרים, להכין וקטורי lentiviral עבור דוקסיציקלין (DOX) תלויים יתר הביטוי של Tfap2c, Gata3, Eomes, Ets2 ו mCherry. עבור כל lentivirus, שיתוף transfect תאים 293T באמצעותוקטור העברת בהתאמה lentiviral יחד עם הפלסמיד אריזת פלסמיד מעטפה להביע VSV-G (לפרטי פלסמיד עיינו בטבלת החומרים).
   הערה: לקבלת מידע מועיל לגבי ייצור וירוס עיין Gavrilescu ואח ^10.. למרות שזה מתאר ייצור רטרו-וירוס, הערות כלליות לגבי איכות תאי 293T ו- DNA פלסמיד מתקיימות לייצור lentivirus גם כן.
   זהירות: אמצעי בטיחות מתאימים צריכים להילקח, כשעובדים עם וקטורים lentiviral ואת העבודה צריכה להתבצע במתקן בטיחות ביולוגית רמה 2.
2. מעיל חמישה 100 מנות מ"מ עם פולי- L- ליזין (100 מיקרוגרם / מ"ל) פתרון על ידי כיסה את המנות עם 5 מ"ל של תמיסת בעדינות נדנדה להפיץ פתרון הציפוי באופן שווה. מניחים את הכלים בחזרה לתוך החממה ב 37 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות. לאחר 30 דקות פתרון ציפוי לשאוב ולשטוף מנות פעם עם PBS.
3. פלייט 7 x 10 ⁶ 293T תאים לכל צלחת ב 10 מ"ל התקשורת 293T תאים, sמנות wirl להפיץ תאים ומקום מנות שווה בחזרה לתוך החממה ב 37 מעלות צלזיוס.
4. למחרת בבוקר, להחליף מדיום הגידול עם 5 מ"ל של מדיום transfection. הוסף 6 μl של המניה 1,000x של פתרון chloroquine (25 מ"מ) ומנות המקום בחזרה לתוך החממה ב 37 מעלות צלזיוס.
5. בינתיים מכינים תערובת transfection:
   1. עבור כל וקטור lentiviral להכין שני צינורות תגובה 5 מיליליטר, שכותרתו A ו- B.
   2. להוסיף 600 μl של 2x HEPES שנאגרו מלוחים (HBS) כדי צינור א
   3. בשנת צינור B תערובת 61.5 פתרון μl ₂ CaCl (2 מ '), עם 18.5 מיקרוגרם lentivector דנ"א 9.25 מיקרוגרם psPAX2 ו 9.25 מיקרוגרם של pMD2.G. כיוון עוצמת 600 μl עם H תרבות כיתה סטרילי ₂ O.
   4. הוסף פתרון ממבחנה B נפתח חכם לצינור בעוד vortexing. דגירת תערובת transfection במשך 15 דקות ב RT.
6. מוסיפים את תערובת transfection מאוד בזהירות טיפה חכם התאים 293T מוכן על צלחת 100 מ"מ. אחרי 5 עד 6 שעות להסיר בינוני ולהחליף עם 10 מ"ל של מדיום וירוס הייצור. מניחים מנות בחזרה לתוך החממה ב 37 מעלות צלזיוס.
   הערה: היזהר בעת ההסרה וההחלפה בינונית מאז תאי 293T לנתק בקלות מהצלחת. שנה בינונית 5-6 שעות לאחר transfection חיונית, שכן חשיפה ממושכת chloroquine הוא רעיל לתאים.
7. למחרת בבוקר, בזהירות להסיר ולסלק בינוני ולהחליף עם 7 מ"ל של מדיום וירוס הייצור.
8. למחרת בבוקר למסוק את המנה הראשונה של מדיום המכיל וירוס. לשאוב בינוני ולאסוף צינור חרוטי 15 מ"ל. שוב, להוסיף 7 מ"ל של מדיום-ייצור וירוס על גבי תאים. חנות וירוס המכיל בינוני במקרר עד המנה השנייה היא שנקטפה ביום שלמחרת.
9. למחרת בבוקר לשאוב את המנה השנייה של מדיום המכיל וירוס הוספתו 15 מיליליטר צינור חרוטים המכיל את המנה הראשונה. תאי 293T יכולים להיות מושלכים עכשיו. מסנן וירוסים המכיל בינוני באמצעות sur 0.45 מיקרומטרfactant ללא אצטט תאית המסנן -membrane. Aliquot מסונן, וירוס המכיל בינוני ולאחסן ב -80 ° C לשימוש נוסף.
   הערה: ייצור וירוס יכול גם להתבצע במנות 6 באר. להקטין כרכים ומספרי טלפונים בהתאם.

4. פיברובלסטים התמרה עם 4 גורמים וקטור בקרת mCherry

הערה: כל השלבים מבוצעים מתקן 2 רמת בטיחות ביולוגית.

1. לקבלת ייצוג סכמטי של מתווה הניסוי לעיין ב איור 1. להפשיר aliquot אחד rtTA-MEFs העיקרי צלחת 3.33 x 10 ⁵ תאים לכל גם צלחת 6-היטב בהיקף כולל של 2 מ"ל של התקשורת MEF. הכן לפחות 3 בארות ומדביקים תוויות עם 4 גורמים (4F), mCherry ושליטה.
   הערה: לחילופין, MEFs סוג בר ניתן להשתמש, כאשר וקטור lentiviral להביע rtTA מתווסף קוקטייל lentivector במהלך שלב 4.2.
2. למחרת אחרי תאים התאושש לחלוטין מן cryopreservation, להחליף מדיה MEF בשלושת 6-בארות עם 0.6 מ"ל (4F), 0.9 מ"ל (mCherry) ו 1 מ"ל (שליטה) של התקשורת התמרה, בהתאמה. להפשיר aliquot אחד PLV-TETO-Tfap2c, -Gata3, -Eomes, -Ets ווירוסים -mCherry ב RT ולהוסיף 100 μl של כל supernatant המכיל וירוס (Tfap2c, Gata3, Eomes, Ets2) לתוך 4F היטב.
   הערה: במקרה של MEFs סוג בר, להקטין את היקף התקשורת preplated ידי 100 μl ובנוסף להוסיף 100 μl של הנגיף FUdeltaGW-rtTA המכיל supernatant לתערובת 4F.
3. הוספת 100 μl של תקשורת וירוס המכיל mCherry אל שכותרתו היטב עם mCherry. להוסיף polybrene לריכוז סופי של 8 מיקרוגרם / מ"ל ​​לבאר כל אחד. מניחים את צלחת בחזרה לתוך החממה ב 37 ° C ו דגירה MEFs O / N עם supernatant המכיל וירוס.
   הערה: במקרה של MEFs סוג בר, להקטין את היקף התקשורת preplated ידי 100 μl ובנוסף להוסיף 100 μl של supernatant המכיל וירוס FUdeltaGW-rtTA.
4. למחרת בבוקר, להסיר בזהירותוירוס המכילים התקשורת לשטוף שלוש פעמים עם 2 מ"ל של PBS. לבסוף, להוסיף 2 מ"ל של התקשורת TS (ללא FGF4 / הפרין).
   הערה: transduced MEFs יכולים לשמש ישירות לניסויים אינדוקציה iTSC או קפוא לשימוש נוסף.

5. פיברובלסטים מרת iTSC

הערה: כל השלבים מבוצעים בחלל המעבדה מורשה בטיחות ביולוגית רמה 2.

1. לשטוף MEFs transduced פעמיים עם 2 מ"ל PBS ואחרי הוספת פתרון 0.5 מ"ל טריפסין / EDTA דגירה אותם בחממה במשך 3 - 4 דקות. בדוק תחת מיקרוסקופ הפוכה להיפרדות תקינה של התאים.
   1. להשבית טריפסין על ידי הוספת בינוני 1 מ"ל TS. מעבירים את ההשעיה התא לתוך צינור צנטריפוגות חרוטי 15 מ"ל במשך 3 דקות ב 200 x ז. בטל supernatant ו resuspend התאים במדיום 2 מ"ל TS. השתמש המדגם מלא untransduced לספור את התאים.
   2. פלייט 4F-MEFs, mCherry-MEFs ו MEFs המלא untransduced כל בצפיפות של 2 x 10 ⁵תאים לכל צלחת תרבית תאים 100 מ"מ ב 10 מ"ל TS בינוני המכיל 2 מיקרוגרם / מ"ל ​​DOX (בינוני TS + FGF4 / הפרין + DOX).
   3. לחלופין, לבצע transdifferentiation על מנות קטנות. פלייט 3.6 x 10 ³ תאים לס"מ ² על גודל המנה הרצויה, נפח בקנה מידה בהתאם.
2. למחרת, באמצעות מיקרוסקופ epifluorescence (באמצעות עדשת 10X ומסנן מתאים עירור קרינה אדום) לפקח ביטוי של חלבון mCherry על מנת להעריך את היעילות התמר.
   הערה: תמרת יעילות צריכה להיות קרובה ל -100%. אם מוות של תאים מוגברת ניכרת לאחר אינדוקציה transgene זה אומר כייל הנגיף היה גבוה מדי. תמרה יש לחזור עם כמות מופחתת של מדיום המכיל וירוס.
3. מעתה לשנות את פני התקשורת על כל מנות פעם ביומיים עד יום 10 לאחר ציפוי. לאחר מכן, להאכיל תאים עם המדיום TS ללא DOX (בינוני TS + FGF4 / הפרין).
4. שימוש בצג מיקרוסקופ הפוך עבורהמראה של 'אזורים transdifferentiated' (עיין תרשים 2B ו- C) על צלחת 4F עד 3 שבועות. מושבות כאלה לא צריכות להיות גלויות על שתי מנות השליטה (mCherry-MEFs ו MEFs untransduced).

בידוד 6. קווי פרט iTSC

הערה: צעד 6.3 במנדף בתרבית רקמה אינו נדרש. מומלץ לנגב את מיקרוסקופ הפוכה עם 70% אתנול כדי למזער את הסיכוי של זיהום חיידקי. מושבות iTSC פרט ניתן לבודד בין ימים 21 ו -28 ימים של transdifferentiation.

1. הוסף 40 μl של פתרון 0.05% טריפסין / EDTA לתוך 12 בארות של צלחת גם 96 U-התחתונה ומניחים את התבנית על הקרח.
2. לפני בידוד המושבה, בינוני לשאוב על צלחת transdifferentiation 4F-MEF. שטפו תאים פעם עם 10 מ"ל PBS. שוב, להוסיף 10 מ"ל PBS ו צלחת מקום תחת מיקרוסקופ הפוכה.
3. בעזרת פיפטה 100 μl מוגדרים 40 μl מתרומם מושבות בודדות, על ידי גircling אותם עם קצה פיפטה aspirating המושבה צפה. העברת תאים של המושבה אחת כל לתוך אחד טוב של המנה 96-מוכן היטב. לאחר קטיף 12 מושבות מניחות צלחת 96-היטב בחממה על 37 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות.
4. לנתק את התאים על ידי pipetting למעלה ולמטה עבור מספר פעמים ההשעיה תא העברה לתוך אחד טוב של צלחת 24 גם עם 500 μl מוכן של מדיום TS-CM (30% TS טרי בינוני + 70% CM + FGF4 / הפרין).
5. למחרת להחליף בינוני עם בינוני TS-CM טרי כדי להסיר תאים מתים. שנה בינונית בכל יום אחר.
6. צג מראה של מושבות אפיתל עם גבולות בהירים (ראה איור 2). לאחר מושבות להופיע, תרבות עד 70% ומחוברות או עד שבוע ובהדרגה להרחיב על מנות גדולות יותר. מעתה ואילך, התרבות תאים כמו בתום לב TSCs, על פי פרוטוקולים סטנדרטיים בתקשורת בסרום המכיל או סרום ללא מדיה, מוגדר ^3,5,11.

תוצאות

על הצלחת שבו ביטוי transgene של 4F מופעל, תאים לשנות מורפולוגיה במהירות (השווה איור 2 א 'וב'). בסביבות יום 14 - 21 אזורים transdifferentiated ברורים לצוץ (שתי דוגמאות ניתנות באיור 2B ו- C). מושבות העיקריות אלה חסרי מורפולוגיה TSC טיפוסית; אולם ברגע שהם ...

Discussion

גורם 4 (Tfap2c, Gata3, Eomes, Ets2) פרוטוקול transdifferentiation המבוסס שהוצג כאן מציע שיטה אמינה לייצר המרת בנאמנות iTSCs מ פיברובלסטים עובריים בעכבר. יתר על כן, השיטה היא גם ישימה עבור פיברובלסטים זנב שלאחר לידה, אם כי עם ירידה יעילה לעומת פיברובלסטים עובריים ^3. באופן כללי, איכות פיבר?...

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Doxycycline hyclate	Sigma-Aldrich	D9891-10G	Dissolve in sterile PBS, prepare 2 mg/ml stock solution. Store aliquots at -20 °C
Chloroquine diphosphate salt	Sigma-Aldrich	C6628-25G	Prepare 25 mM stock solution in sterile cell culture grade water. Store aliquots at -20 °C
Polybrene (Hexadimethrine bromide)	Sigma-Aldrich	107689-10G	Prepare 8 mg/ml stock solution in sterile cell culture grade water. Store aliquots at -20 °C
human recombinant Fibroblast Growth Factor 4	ReliaTech	300-131L	Dissolve in sterile 0.1% BSA in PBS, prepare 25 µg/ml stock solution. Store aliquots at -80 °C
Heparin sodium salt	Sigma-Aldrich	H3149-10KU	Prepare 1 mg/ml stock solution by dissolving in sterile PBS. Store aliquots at -80°C
ProFection Mammalian Transfection System	Promega	E1200
PBS, no calcium, no magnesium	ThermoFisher Scientific	1419-094
DMEM (1x) + GlutaMAX	ThermoFisher Scientific	31966-021
RPMI 1640, no glutamine	ThermoFisher Scientific	31870-025
Advanced DMEM (1x)	ThermoFisher Scientific	12491-015
Trypsin-EDTA (0.05%), phenol red	ThermoFisher Scientific	25300-054
Poly-L-lysine	Sigma-Aldrich	P4707
Fetal bovine serum	Hyclone	SH30071.03IR
Surfactant-free cellulose acetate-membrane filter	Corning	431220
Non-essential amino acids	ThermoFisher Scientific	11140-035
Penicillin Streptomycin	ThermoFisher Scientific	15140-122
Sodium Pyruvate	ThermoFisher Scientific	11360-039
L-glutamine	ThermoFisher Scientific	25030-24
2-Mercaptoethanol	ThermoFisher Scientific	31350-010
Dimethyl sulfoxide (DMSO), cell culture grade	Panreac AppliChem GmbH	A3672,0100
pLV-tetO-Tfap2c	Addgene	70269
pLV-tetO-Gata3	Addgene	70270
pLV-tetO-Eomes	Addgene	70271
pLV-tetO-Ets2	Addgene	70272
pLV-tetO-mCherry	Addgene	70273
psPAX2	Addgene	12260
pMD2.G	Addgene	12259
FUdeltaGW-rtTA	Addgene	19780
Mice B6.Cg-Gt(ROSA)26Sortm1(rtTA*M2)Jae/J 7	JAX Mice	6965
129S2SV	Charles River	129