JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

חוש הריח נוירונים חושיים מבטאים מגוון רחב של מולקולות מיון האקסון להקים מעגלים עצביים נאותים. פרוטוקול זה מתאר שיטת מכתים immunohistochemical לדמיין ביטויים קומבינטוריים של מולקולות מיון האקסון ב טרמיני האקסון של נוירונים חושית חוש הריח.

Abstract

מערכת חוש הריח של העכבר משמש לעתים קרובות כדי ללמוד מנגנונים של המעגל העצבי היווצרות בגלל המבנה האנטומי הפשוט שלה. חוש הריח נוירון (OSN) הוא תא דו קוטבי עם דנדריט יחיד ואקסון unbranched יחיד. OSN מבטא רק גן אחד קולטן הריח (OR), OSNs להביע סוג נתון של או להתכנס אקסונים שלהם כמה קבוצות של glomeruli קבועים של הנורה חוש הריח (OB). תכונה יוצאת דופן של הקרנת OSN היא כי הביע אורס לשחק תפקידים מאלפת הקרנה axonal. ORs לווסת את הביטוי של מולקולות מיון האקסון מרובים וליצור קוד מולקולרית קומבינטורית של מולקולות מיון האקסון ב Termini האקסון OSN. לכן, כדי להבין את המנגנונים המולקולריים של מנגנוני הדרכה האקסון ספציפי, חשוב לאפיין את פרופילי הביטוי שלהם ב טרמיני האקסון OSN בתוך glomerulus אותו. מטרת מאמר זה היה להציג שיטות לאיסוף כמו glomeruli רבים כמו possiblדואר על סעיף OB בודד ועל ביצוע immunostaining באמצעות נוגדנים מרובים. זה יאפשר השוואה וניתוח של דפוסי הביטוי של אקסון מיון מולקולות ללא מכתים וריאציה בין סעיפים OB.

Introduction

במהלך ההתפתחות, נוירונים מחוברים זה לזה בדיוק כדי ליצור מעגלים עצביים נאותים, קריטיים לתפקוד המוח הרגיל. מאחר שמעגלים עצביים חריגים במוח נחשבים כגורמים להפרעות נפשיות כגון אוטיזם וסכיזופרניה, ההבנה של מנגנוני המעגל העצבי היא אחד האתגרים המרכזיים בתחום מדעי המוח.

במערכת חוש הריח של העכבר, כל נוירון חושני חוש הריח (OSN) באפיתל חוש הריח (OE) מבטא רק גן אחד של קולטן חוש הריחתי (OS) או OSNs המבטאים אותו או מתמזגים עם האקסונים שלהם לצמד מסוים של גלומרולי במיקומים סטריאוטיפיים חוש הריח Bulb (OB) 1 , 2 . מערכת הריח העכבר היא מערכת מודל מעולה לחקר המנגנונים המולקולריים של היווצרות מעגל עצבי כי החוקרים יכולים לנצל את הביטוי OR לזהות ספציפייםUbtype של OSNs לדמיין את אתרי ההקרנה של האקסונים OSN כמו מבנים glomerular ברור. תכונה יוצאת דופן של הקרנת OSN היא כי אורס לשחק תפקידים מאלפת הקרנת אקסונים OSN ל OB 3 , 4 , 5 , 6 . באופן ספציפי יותר, לאחר שהאקסונים של OSN מודרכים לאזורי יעד משוערים, הם מופרדים ליצירת גלומרולוס באופן תלוי-תלות. מחקרים קודמים הראו כי מולקולות או לשלוט על הביטוי של המולקולות מיון האקסון, אשר להסדיר הפרדה glomerular 7 , 8 . יתר על כן, ראיות מצטברות עולה כי מולקולות או לייצר את קוד הזהות העצבית על ידי שילוב ייחודי של מולקולות מיון האקסון 9 . לכן, כדי להבין את המנגנון של הפרדת גלומרולרי תלותית, יש צורך לאפיין את הביטוי פרופילים של מיון האקסון molEcules ב OSNs.

פלואורסצנטי immunostaining היא שיטה נפוצה לדמיין את הביטוי של גנים ספציפיים. מאז חלבונים של מולקולות מיון האקסון ממוקמים בעיקר על האקסונים OSN, החוקרים צריכים להשתמש סעיפים OB לאפיין את דפוסי הביטוי שלהם OSNs. חתך העטרה של OB שימש באופן שגרתי עבור immunostaining. עם זאת, הכנה זו מאבדת את המידע הטופוגרפי לאורך הציר הקדמי-אחורי באותו קטע OB. לכן פיתחנו הכנה parasagittal של הצד המדיאלי של OB, אשר יכול לעלות כמו glomeruli רבים סביב סביב באותו סעיף OB. בשילוב עם immunostaining באמצעות נוגדנים מרובים, הכנה זו מאפשרת השוואה וניתוח של דפוסי הביטוי של אקסון מיון מולקולות ללא מכתים וריאציה בין סעיפים OB.

יתר על כן, שיטת מכתים immunohistochemical הוצגה ללא קיבוע לאחר עם PFA אטיפול סוכרוז nd. שיטה זו מאפשרת לחוקרים להשיג מספיק נתונים באיכות גבוהה מכתים לניתוח נתונים רב משתנים. הפרוטוקולים המוצגים כאן יספק פרטים על שיטות רבות עוצמה לחוקרים אשר לומדים את היווצרות מעגלים עצביים חוש הריח.

Protocol

כל ההליכים הניסיוניים בוצעו באישור ועדת האתיקה של ניסויים בבעלי חיים באוניברסיטת טוקיו ובהתאם להנחיות של אוניברסיטת טוקיו לטיפול וטיפול בבעלי מעבדה.

1. הכנת פתרונות

  1. הכן 0.01 M פוספט שנאגרו מלוחים (PBS): להוסיף טבלית PBS (0.14 M NaCl, 0.0027 M KCl, 0.010 M PO 4 3- , pH 7.4) ל 1 L מים מזוקקים ומערבבים ב RT עד שהוא מומס לחלוטין.
  2. הכן paraformaldehyde 4% (PFA) ב PBS: להוסיף 4 גרם של PFA ל 100 מ"ל PBS. מערבבים את הפתרון ב 60 ° C עד שהוא מומס לחלוטין.
    1. לאחר המסת PFA ב PBS, להתאים את ה- pH של הפתרון 7.4 עם 1 N נתרן hydroxide (NaOH). לאחר מכן, מגניב על קרח לסנן את הפתרון באמצעות נייר סינון כדי להסיר כל חומר חלקיקי. חנות ב 4 ° C.
      זהירות: קח את הטיפול המתאים בעת שימוש אלה ריאגנטים. ידיתעם כפפות טיפול ושימוש, משקפי מגן, מעיל מעבדה תחת מכסה המנוע כימי.
      הערה: השתמש טרי 4% PFA פתרון מוכן בתוך 2 ד.
  3. הכן 0.01 M PBS השלימו עם 0.3% Triton X-100 (PBST): להוסיף 3 מ"ל של טריטון X- 100 ל 997 מ"ל של PBS. מערבבים את הפתרון ב RT עד שהוא מומס לחלוטין.
  4. הכן 1% ו 5% חסימת פתרון: להוסיף 10 גרם של חלב רזה ל 200 מ"ל PBST להכין 5% פתרון חסימה. מערבבים ב RT עד שהוא מומס לחלוטין. לדלל 5% חסימת פתרון חמש פעמים עם PBST להכין פתרון חוסם 1%.

2. הכנה של פרזגיטל OB סעיפים

  1. השתמש בעלי חיים בין 1-2 שבועות של גיל. קבוצות גיל אלו מתאימות לניסויים הבאים משום שגלומרולי גלויים היטב וניתן לחתוך את המוח עם הגולגולת.
  2. להרדים את החיה עם הזרקת intraperitoneal של pentobarbital (50 מ"ג / ק"ג משקל גוף). Perfuse החיה transcardially עם קר כקרח 4% PFA ב PBS. טיפול עם כפפות טיפול ושימוש, משקפי מגן, מעיל מעבדה תחת ברדס כימי.
  3. לאחר זלוף, לחתוך את הראש עם מספריים להסיר את העור בזהירות. לאחר מכן, הכנס להב של המספריים לתוך החלל בין השיניים העליונות והתחתונות לחתוך אופקית כדי להסיר את עצם הלסת התחתונה. חתוך משם רקמת עודף עם מלקחיים ומספריים לעזוב את הרקמה חוש הריח כולל OB ו OE.
    הערה: אין להסיר את הגולגולת המקיפה את OB כמו זה שומר על glomeruli המדיאלי מיושר ישר אנכית.
  4. לטבול את רקמת הריח PBS כדי להסיר את האוויר בחלל האף. חותכים את החלק האחורי של המוח אנכית ומניחים את הרקמות חוש הריח על החלק התחתון של עובש הטבעת עם הפנים חיתוך למטה. ממלאים את התבנית עם אופטימלית חיתוך טמפרטורה (OCT) המתחם ולאחר מכן לטבול את עובש לתוך חנקן נוזלי.
    1. לאחר הרקמה במתחם הוא קפוא לחלוטין, דגירה אותו cryosטאט ב -20 מעלות צלזיוס למשך 1 שעות.
  5. הפוך סעיפים parasagittal טורי (10 מיקרומטר) של OB עם cryostat ולאסוף אותם על ידי דבק שקופיות זכוכית מצופים MAS. לאחר הדבקה, יבש את השקופיות מיד עם מייבש מכה.

3. יום 1: Immunostaining Quadruple של פרוסות OB

  1. לשטוף את השקופיות במשך 5 דקות עם PBS ב RT. חזור 3 פעמים.
  2. לחסום את אתרי מחייב ספציפי על ידי דוגרים את השקופיות עבור 1 שעות עם פתרון 5% חסימה ב RT.
  3. דגירה שקופיות O / N עם קוקטייל של נוגדנים ראשוניים (400 μL כל שקופית) ב 1% פתרון חסימה ב RT. השתמש בנוגדנים העיקריים הבאים: נוגדנים נגד חנקן אנטי-קירל 2 (1: 1000), נוגדן (7: 500), נוגדן עכברוש אנטי-OL-protocadherin (1: 500) ו עכבר anti-vesicular גלוטמט transporter2 (VGLUT2) נוגדן (1: 500).

4. יום 2: Immunostaining Quadrple של OBפרוסות

  1. מחק את הפתרון נוגדן ראשוני לשטוף את השקופיות במשך 5 דקות עם PBST ב RT. חזור 3 פעמים.
  2. לדגור את השקופיות עבור 1 שעות עם קוקטייל של נוגדנים משני (400 μL כל שקופית) PBS ב RT. השתמש נוגדנים משני הבאים: חמור אנטי עכבר אלקסה פלואור 405 (1: 400), חמור אנטי עז אלקסה פלואור 488 (1: 400), חמור נגד גינאה חזיר Alexa פלואור 555 (1: 400), חולדה אלקסה פלואורוס 647 (1: 400).
    הערה: כל נוגדנים משני צריך לבוא מאותו המין המארח. בחר אורך גל שונה של הקרינה של נוגדנים משני עבור כל נוגדן ראשוני כדי להבטיח שום חפיפה של אורכי גל.
  3. מחק את הפתרון לשטוף את השקופיות במשך 5 דקות עם PBS ב RT. חזור 3 פעמים.
  4. Mount coverslips על השקופיות עם המדיום הרכבה. לשם כך, להחיל 2 טיפות של המדיום הרכבה על כל שקופית, ולאחר מכן, לשים coverslip ידי הסרת בועות אוויר.

5. עוצמת אותיasurements

  1. השג תמונות פלורסנט עם מיקרוסקופ פלואורסצנטי. השתמש קוביות סינון הבאות: קוביית מסנן DAPI (360/40 ננומטר נרגש, 460/50 ננומטר פליטה, 400 ננומטר המראה dichroic) עבור אלקסה פלואור 405 אותות, קוביית GFP סינון (470/40 ננומטר עירור, 525/50 ננומטר פליטה, ו 495 ננומטר המראה dichroic) עבור אלקסה פלואור 488, קוביית המסנן TRITC (545/25 ננומטר עירור, 605/70 ננומטר פליטה, 565 ננומטר המראה dichroic) עבור אלקסה פלואור 555, ו C5 מסנן קובייה (620/60 ננומטר עירור, 700 / 75 ננומטר פליטה, ו 600 ננומטר המראה dichroic) עבור אלקסה פלואורם 647.
    הערה: התאם את זמן החשיפה לקבלת אותות ניאון של התמונה ללא רוויה.
  2. הגדרת המבנה glomerular ידי אותות immunofluorescence של VGLUT2. למדוד את עוצמות מכתים של מולקולות מיון האקסון בתוך glomeruli עם ImageJ.

6. ניתוח נתונים

  1. הפחתת האותות רקע מן עוצמות מכתים של מולקולות מיון האקסון.
  2. הכן את הE נתונים מטריקס נתונים, אשר יש עמודות המורכבות של אקסון מיון מולקולות ושורות המורכבת glomeruli.
  3. ביצוע ניתוח רכיב ראשי (PCA) באמצעות מערך ביטוי מוכן. לאחר מכן, לקבל את ציוני PCA, יחסי תרומה, וגורם גורם של כל רכיב העיקרי.

תוצאות

מפת גלומרולארית חוש הריח נוצרת על ידי מיקוד גלובלי ראשוני הפרדה glomerular הבאים של אקסונים OSN 1 , 2 . הפרדה גלומרולרית מוסדרת על ידי אינטראקציות אקסונאל דבק / דוחה בתיווך של מולקולות מיון האקסון אשר רמות הביטוי נקבעים על יד?...

Discussion

Quadostple immunostaining של parasagittal סעיפים OB אפשרה להדמיה וכימות של רמות ביטוי של רבים כמו ארבעה מולקולות מיון האקסון בו זמנית במספר גדול יותר של glomeruli. על ידי ניתוח נתונים אלה רב משתנים עם PCA, את המאפיינים של הביטוי של מולקולות אלה ניתן לשער.

?...

Disclosures

המחברים אינם מכריזים על אינטרסים פיננסיים מתחרים.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי קרן מיצובישי, קרן המדע של Takeda, JST PRESTO ו- JSPS KAKENHI Grant מספר 16H06144.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Phosphate-Buffered Saline (PBS) Tablets, pH7.4TAKARA BIOT9181
Skim Milknacalai tesque31149-75
goat anti-Sema7A antibodyR&D SystemsAF2068
rat anti-OLPC antibodyMerck MilliporeMABT20
mouse anti-VGLUT2 antibodyMerck MilliporeMAB5504
goat anti-BIG-2 antibodyR&D SystemsAF2205
gunea pig anti-Kirrel2 antibodyOperon BiotechnologiesAnti-Kirrel2 antibodies were generated by immunizing guinea pigs with KLH-conjugated synthetic peptides (644-673aa): CRLYRARAGYLTTPHPRAFTSYMKPTSFGP
donkey anti-mouse Alexa Fluor 405Abcamab175658
donkey anti-goat Alexa Fluor 488 Jackson ImmunoResearch705-545-003
donkey anti-guinea pig Alexa Fluor 555Thermo Fisher ScientificA21432
donkey anti-rat Alexa Fluor 647Jackson ImmunoResearch712-605-153
Paraformaldehyde (PFA)Wako162-16065
MAS coated slide glassesMATSUNAMIMAS-01
forcepsFine Science Tools11253-27
Vannas Spring ScissorsFine Science Tools15000-00
dissecting scissorsFine Science Tools14090-09
fluorescent microscopeKEYENCEBZ-X700
DAPI filter cubeKEYENCEOP-87762
GFP filter cubeKEYENCEOP-87763
TRITC filter cubeKEYENCEOP-87764
Cy5 filter cubeKEYENCEOP-87766
filter paperADVANTEC00011185
O.C.T compoundSakura FinetekM71484

References

  1. Mori, K., Sakano, H. How is the olfactory map formed and interpreted in the mammalian brain?. Annu Rev Neurosci. 34, 467-499 (2011).
  2. Takeuchi, H., Sakano, H. Neural map formation in the mouse olfactory system. Cell Mol Life Sci. 71, 3049-3057 (2014).
  3. Mombaerts, P., et al. Visualizing an olfactory sensory map. Cell. 87, 675-686 (1996).
  4. Feinstein, P., Mombaerts, P. A contextual model for axonal sorting into glomeruli in the mouse olfactory system. Cell. 117, 817-831 (2004).
  5. Ishii, T., et al. Monoallelic expression of the odourant receptor gene and axonal projection of olfactory sensory neurones. Genes Cell. 6, 71-78 (2001).
  6. Nakashima, A., et al. Agonist-independent GPCR activity regulates anterior-posterior targeting of olfactory sensory neurons. Cell. 154, 1314-1325 (2013).
  7. Serizawa, S., et al. A neuronal identity code for the odorant receptor-specific and activity-dependent axon sorting. Cell. 127, 1057-1069 (2006).
  8. Kaneko-Goto, T., Yoshihara, S., Miyazaki, H., Yoshihara, Y. BIG-2 mediates olfactory axon convergence to target glomeruli. Neuron. 57, 834-846 (2008).
  9. Ihara, N., Nakashima, A., Hoshina, N., Ikegaya, Y., Takeuchi, H. Differential expression of axon-sorting molecules in mouse olfactory sensory neurons. Eur J Neuro. 44, 1998-2003 (2016).
  10. Williams, E. O., et al. Delta Protocadherin 10 is Regulated by Activity in the Mouse Main Olfactory System. Front Neural Circuits. 5, 9 (2011).
  11. Brunet, L. J., Gold, G. H., Ngai, J. General anosmia caused by a targeted disruption of the mouse olfactory cyclic nucleotide-gated cation channel. Neuron. 17, 681-693 (1996).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

Neuroscience124

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved