JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

ננו-חלקיק פפטיד-פולוקסאמין בהרכבה עצמית (PP-sNp) פותח באמצעות מכשיר ערבוב מיקרופלואידי כדי לתמצת ולהעביר רנ"א שליח מתועתק במבחנה . ה-mRNA/PP-sNp המתואר יכול להעביר ביעילות תאים בתרבית במבחנה.

Abstract

חיסוני RNA שליח מתועתקים במבחנה (mRNA) הציגו פוטנציאל עצום במאבק במגפת הקורונה 2019 (COVID-19). מערכות אספקה יעילות ובטוחות חייבות להיכלל בחיסוני ה-mRNA בשל התכונות השבריריות של mRNA. מערכת העברת גנים של ננו-חלקיקי פפטיד-פולוקסאמין (PP-sNp) בהרכבה עצמית תוכננה במיוחד להעברה ריאתית של חומצות גרעין ומציגה יכולות מבטיחות בתיווך העברה מוצלחת של mRNA. כאן מתוארת שיטה משופרת להכנת PP-sNp כדי לפרט כיצד ה-PP-sNp עוטף את ה-mRNA של Metridia luciferase (MetLuc) ומעביר בהצלחה תאים בתרבית. MetLuc-mRNA מתקבל על ידי תהליך שעתוק במבחנה מתבנית DNA ליניארית. PP-sNp מיוצר על ידי ערבוב פפטיד/פולוקסאמין סינתטי עם תמיסת mRNA באמצעות מערבל מיקרופלואידי, המאפשר הרכבה עצמית של PP-sNp. המטען של PP-sNp מוערך לאחר מכן על ידי מדידת פוטנציאל הזטה. בינתיים, הפולידיספריות והגודל ההידרודינמי של ננו-חלקיקי PP-sNp נמדדים באמצעות פיזור אור דינמי. הננו-חלקיקים mRNA/PP-sNp מועברים לתאים בתרבית, וסופרנאטנטים מתרבית התאים נבדקים לפעילות לוציפראז. התוצאות המייצגות מדגימות את יכולתן להעברה חוץ-גופית. פרוטוקול זה עשוי לשפוך אור על פיתוח מערכות אספקת חיסוני mRNA מהדור הבא.

Introduction

החיסון הוכרז כאחת ההתערבויות הרפואיות היעילות ביותר להפחתת התחלואה והתמותה הנגרמות ממחלות זיהומיות1. חשיבות החיסונים הוכחה מאז פרוץ מחלת הקורונה 2019 (COVID-19). בניגוד לתפיסה המסורתית של הזרקת פתוגנים מומתים או מוחלשים, גישות חיסונים מתקדמות, כגון חיסונים מבוססי חומצות גרעין, מתרכזות בשימור התכונות הממריצות את מערכת החיסון של פתוגני המטרה תוך הימנעות מבעיות הבטיחות הפוטנציאליות הקשורות לנגיף המיקרוביאלי השלם הקונבנציונלי - או בחיסונים מבוססי חיידקים. הן חיסונים מבוססי דנ"א והן רנ"א (כלומר, רנ"א שליח מתועתק במבחנה, IVT mRNA) מציגים פוטנציאל מניעתי עד טיפולי נגד מגוון מחלות, כולל מחלות זיהומיות וסרטן 2,3. באופן עקרוני, הפוטנציאל של חיסונים מבוססי חומצות גרעין קשור לייצורם, יעילותם ובטיחותם4. חיסונים אלה יכולים להיות מיוצרים באופן ללא תאים כדי לאפשר ייצור חסכוני, מדרגי ומהיר.

חיסון יחיד המבוסס על חומצות גרעין יכול לקודד אנטיגנים מרובים, מה שמאפשר מטרה לווריאנטים נגיפיים רבים או חיידקים עם מספר מופחת של חיסונים ולחזק את התגובה החיסונית נגד פתוגנים עמידים 5,6. חוץ מזה, חיסונים המבוססים על חומצות גרעין יכולים לחקות את תהליך הפלישה הטבעי של זיהום נגיפי או חיידקי, ולהביא הן לתגובות חיסוניות בתיווך תאי B והן בתאי T. בניגוד לחלק מהחיסונים מבוססי הנגיפים או הדנ"א, חיסונים מבוססי IVT mRNA מציעים יתרון עצום מבחינת בטיחות. הם יכולים לבטא במהירות את האנטיגן הרצוי בציטוזול ואינם משולבים בגנום המארח, מה שמייתר את החששות לגבי מוטגנזה החדרתית7. IVT-mRNA מתפרק באופן אוטומטי לאחר תרגום מוצלח, כך שניתן לשלוט בקלות בקינטיקה של ביטוי החלבון שלו 8,9. על ידי מגיפת נגיף הקורונה 2 (SARS-CoV-2) של תסמונת נשימתית חריפה חמורה, מאמצים של חברות/מוסדות ברחבי העולם אפשרו שחרור לשוק של סוגים רבים של חיסונים. טכנולוגיית חיסון מבוססת mRNA IVT מראה פוטנציאל גדול, ולראשונה, הוכיחה את הצלחתה הצפויה בעבר, הודות לתכנון המהיר שלה ויכולתה הגמישה להסתגל לכל אנטיגן מטרה תוך מספר חודשים. ההצלחה של חיסוני mRNA IVT נגד COVID-19 ביישומים קליניים לא רק פתחה עידן חדש של מחקר ופיתוח חיסוני mRNA IVT, אלא גם צברה ניסיון רב ערך לפיתוח מהיר של חיסונים יעילים להתמודדות עם התפרצויות של מחלות זיהומיות10,11.

למרות הפוטנציאל המבטיח של חיסוני mRNA IVT, ההעברה התוך-תאית היעילה של mRNA IVT לאתר הפעולה (כלומר, ציטופלסמה) ממשיכה להוות מכשול גדול12, במיוחד עבור אלה הניתנים דרך דרכי הנשימה4. IVT mRNA היא מטבעה מולקולה לא יציבה עם זמן מחצית חיים קצר ביותר (~7 שעות)13, מה שהופך את ה-IVT mRNA לנוטה מאוד להתפרקות על ידי RNase14 הנמצא בכל מקום. הלימפוציטים של מערכת החיסון המולדת נוטים לבלוע את ה- mRNA המוכר של IVT במקרים של יישום in vivo . יתר על כן, צפיפות המטען השלילי הגבוהה והמשקל המולקולרי הגדול (1 x 104-1 x 106 Da) של mRNA IVT פוגעים בחדירתו היעילה על פני דו-שכבת השומנים האניונית של קרומי התאים15. לכן, נדרשת מערכת אספקה עם חומרים ביו-פונקציונליים מסוימים כדי לעכב את הפירוק של מולקולות ה-mRNA של IVT ולהקל על ספיגת התאים16.

מלבד כמה מקרים חריגים שבהם נעשה שימוש ישיר ב-mRNA IVT עירום לחקירות in vivo, נעשה שימוש במערכות אספקה שונות כדי לשאת את ה-IVT mRNA לאתר הטיפולי של פעולה17,18. מחקרים קודמים גילו כי רק כמה mRNA IVT מזוהים בציטוזול ללא סיוע של מערכת אספקה19. אסטרטגיות רבות פותחו כדי לשפר את אספקת ה-RNA במאמצים מתמשכים בתחום, החל מעיבוי פרוטמין ועד אנקפסולציה של שומנים20. ננו-חלקיקי ליפידים (LNPs) הם המתקדמים ביותר מבחינה קלינית מבין כלי ההעברה של mRNA, כפי שמוכיחה העובדה שכל חיסוני ה-mRNA COVID-19 המאושרים לשימוש קליני משתמשים במערכות אספקה מבוססות LNP21. עם זאת, LNPs אינם יכולים לתווך טרנספקציה יעילה של mRNA כאשר הפורמולציות מועברות דרך נתיב הנשימה22, מה שמגביל באופן מדהים את היישום של פורמולציות אלה בגרימת תגובות חיסוניות של הרירית או בטיפול במחלות הקשורות לריאתיות כגון סיסטיק פיברוזיס או מחסור ב-α1-antitrypsin. לכן, פיתוח מערכת אספקה חדשנית כדי להקל על אספקה יעילה והעברה של mRNA IVT בתאים הקשורים לדרכי הנשימה נדרש כדי לפתור את הצורך הבלתי מסופק הזה.

אושר כי מערכת העברת הננו-חלקיקים בהרכבה עצמית של פפטיד-פולוקסאמין (PP-sNp) יכולה לתווך את ההעברה היעילה של חומצות גרעין בדרכי הנשימה של עכברים23. PP-sNp מאמצת גישת תכנון מודולרי רב-תכליתית, שיכולה לשלב מודולים פונקציונליים שונים בננו-חלקיקים לצורך סינון ואופטימיזציה מהירים23. הפפטידים הסינתטיים וקופולימרים של בלוקים אמפיפיליים ניטרליים חשמלית (פולוקסאמין) בתוך PP-sNp יכולים לקיים אינטראקציה ספונטנית עם mRNA IVT כדי ליצור ננו-חלקיקים המפוזרים באופן אחיד עם מבנה קומפקטי ומשטח חלק23. PP-sNp יכול לשפר את השפעת הטרנספקציה הגנטית של מולקולות mRNA IVT בתאים בתרבית ובדרכי הנשימה של עכברים23. המחקר הנוכחי מתאר פרוטוקול ליצירת PP-sNp המכיל mRNA IVT המקודד את Metridia luciferase (MetLuc-mRNA) (איור 1). בפרוטוקול זה נעשה שימוש בערבוב מבוקר ומהיר באמצעות מכשיר ערבוב מיקרופלואידי, המשתמש בעיצוב ערבוב עצמות הרינג המדשדש. ההליך קל לביצוע ומאפשר יצירת PP-sNp בגדלים אחידים יותר. המטרה הכללית של ייצור PP-sNp באמצעות מערבל מיקרופלואידי היא ליצור PP-sNp עבור קומפלקס mRNA באופן מבוקר היטב, ובכך לאפשר טרנספקציה יעילה וניתנת לשחזור של תאים במבחנה. הפרוטוקול הנוכחי מתאר את ההכנה, ההרכבה והאפיון של PP-sNp המכיל MetLuc-mRNA.

Protocol

1. שעתוק חוץ גופי של mRNA שעבר שינוי כימי

הערה: זה נדרש להשתמש צינורות ללא נוקלאז, ריאגנטים, כלי זכוכית, טיפים פיפטה, וכו ', כי RNases נמצאים בכל מקום בסביבה, כגון פתרונות מעבדה, משטחי מכשיר, שיער, עור, אבק, וכו ' נקו היטב את משטחי הספסל והפיפטות לפני השימוש, ולבשו כפפות כדי למנוע זיהום RNase.

  1. בצע ליניאריזציה של תבנית הדנ"א.
    1. סנתז את מסגרת הקריאה הפתוחה (ORF) של Metridia luciferase (MetLuc) שלצדה מקדם פולימראז T7, אזור לא מתורגם 5' (UTR), 3'UTR וזנבות פולי (A) ושכפל אותה לווקטור PUC57, המתבטא בחיידקים (ראו טבלת חומרים).
      הערה: רצף הקידוד של תבנית הדנ"א מסופק בקובץ משלים 1.
    2. תרבית חיידקים, lyse את החיידקים, ולטהר את הדנ"א פלסמיד על ידי העמודה המתאימה (ראה ערכת מיצוי DNA פלסמיד בטבלת החומרים).
    3. בצע תגובה יחידה של 50 μL המכילה 2 μL של BamHI, 2 μL של KpnI (ראה טבלת חומרים), ו-2 מיקרוגרם של דנ"א פלסמיד ב-37 °C למשך שעה אחת, והשג ליניאריזציה של תבנית הדנ"א.
  2. בצע שעתוק במבחנה כדי ליצור mRNA ללא כיסוי-IVT.
    1. בצע סינתזת mRNA על ידי תגובה יחידה של 20 μL באמצעות ערכת שעתוק T7 ופסאודורידין (ראה טבלת חומרים): 10 μL (0.8-1 מיקרוגרם) של תבנית DNA ליניארית, 1.5 μL (150 mM) של ATP, פסאודו-UTP, GTP ו- CTP, 2 μL של מאגר שעתוק 10x, 1 μL של אנזים T7, ו- 1 μL של מים נטולי נוקלאז (NF-water). מערבבים היטב את הרכיבים שהוזכרו לעיל ודוגרים בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס למשך 3 שעות.
  3. הסר את הדנ"א של התבנית.
    1. יש להוסיף 1 μL (1 U) של DNase (ללא RNase) לאחר תהליך השעתוק ולדגירה בטמפרטורה של 37°C למשך 15 דקות.
  4. בצע טיהור mRNA ללא כיסוי-IVT באמצעות משקעי ליתיום כלוריד.
    1. טהר את ה-mRNA ללא כיסוי IVT באמצעות ליתיום כלוריד (ראו טבלת חומרים) בריכוז תקין של 10 mM. הוסף 50 μL של 10 mM ליתיום כלוריד ל 20 μL של תמיסת mRNA ללא כיסוי-IVT.
    2. מערבבים היטב את הנפח המלא ומצננים בטמפרטורה של −20°C למשך שעה אחת. אסוף את ה-mRNA ללא כיסוי-IVT למשך 12 דקות ב-12,000 x גרם, אשר מייצר באופן שגרתי 80-120 מיקרוגרם של mRNA ללא כיסוי-IVT מכל תגובה בודדת של 20 μL.
  5. בצע לכידת mRNA IVT.
    1. בצע את מכסה ה-mRNA של IVT באמצעות מערכת המכסה של מכסה 1 (ראה טבלת חומרים). בקצרה, הסר את המבנה המשני של 50 מיקרוגרם של mRNA uncapped-IVT על ידי חימום ב 65 °C למשך 10 דקות, ולאחר מכן קשר את הקצה 5' של mRNA uncapped-IVT עם מכסה 1, אשר מוכן על ידי שינוי מבנה מכסה m7G באמצעות 2.5 μL של s-אדנוזילמתיונין (SAM) (20 mM) ו 4 μL של 2'-O-מתיל-טרנספראז (100 U) בתגובה 100 μL ב 37 °C במשך 30-60 דקות.
    2. יש לטהר 100 μL של ה-IVT mRNA המכוסה באמצעות 250 μL של 10 mM ליתיום כלוריד ולדלל ב-50 μL של NF-מים.
  6. קבע את הטוהר והגודל המולקולרי של mRNA capped-IVT.
    1. מדוד את הריכוז של mRNA capped-IVT באמצעות ספקטרופוטומטר הנראה לעין UV. באמצעות סמן RNA (ראו טבלת חומרים), נתחו את הגודל המולקולרי של mRNA capped-IVT בג'ל אגרוז פורמלדהיד 1% המכיל 18% פורמלדהיד (המתח הוא 120 וולט). ודא שה-mRNA וה-mRNA של ה-capped-IVT מאוחסנים בטמפרטורה של −80 °C.
      הערה: ה-mRNA של IVT נחשב לבעל טוהר טוב ביחס A260/A280 של 1.8-2.1 וביחס A260/A230 של 2.0 או מעט גבוה יותר.

2. יצירת mRNA/PP-sNp של IVT

  1. הכינו את תמיסת המלאי של פולוקסאמין 704 (T704) על ידי סילוק T704 (ראו טבלת חומרים) ב-NF-מים כדי לקבל תמיסת מלאי של 10 מ"ג/מ"ל. אחסן את התמיסה המוכנה בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס.
    הערה: T704 מכיל מבנה בצורת X העשוי מקבוצה מרכזית של אתילנדיאמין המחוברת לארבע שרשראות של בלוקים פולי(פרופילן אוקסיד) (PPO) ובלוקים פולי(אתילן אוקסיד) (PEO)24. המשקל המולקולרי (Mw) של T704 הוא 5500.
  2. הכינו את תמיסת המניות של הפפטיד הסינתטי (sPep, ראו טבלת חומרים) על ידי הריסת ה-sPep (רצף: KETWWETWWTEWTEWTEWTEWKKRRRRRKKKKGACSE
    RSMNFCG) ב-NF-water כדי לקבל תמיסת מלאי של 2 מ"ג/מ"ל ולאחסן בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס.
  3. הכן את תמיסת ה-mRNA של IVT על ידי הפשרת ה-mRNA של ה-IVT (שלב 1) על הקרח וצנטריפוגה תוך זמן קצר במשך 3 שניות ב-300 x גרם בטמפרטורת החדר לפני פתיחת הצינור. דלל את תמיסת ה-mRNA של IVT ל-0.04 מיקרוגרם/מיקרון עם NF-מים.
    הערה: מומלץ לעבוד בארון בטיחות ביולוגית במידת האפשר עם ה-mRNA של IVT.
  4. הכן תמיסת תערובת T704 ו- sPep על ידי דילול תמיסת sPep ל- 0.555 מיקרוגרם / μL ותמיסת T704 ל- 8 מיקרוגרם / μL עם NF-מים. יש לדגום את התמיסה המעורבת למשך 15 דקות בטמפרטורת החדר לפני שימוש נוסף.
    הערה: חשב את רכיב sPep הנדרש בהתבסס על יחס N/P הרצוי. יחס N/P הוא המספר הכולל של שאריות חנקן (N) בתוך ה-sPep למספר הכולל של קבוצות פוספטים טעונות שלילית (P) בתוך ה-mRNA של IVT. חשב את T704 הנדרש בהתבסס על יחס המשקל/משקל (w/w) בין T704 ל-IVT mRNA. יש צורך שהיחס N/P הוא 5 והיחס w/w הוא 100.
  5. הכן את נוסחת ה-MRNA/PP-SNp של IVT בהתאם לשלבים הבאים.
    1. משכו את תמיסת ה-mRNA של IVT (שלב 3) לתוך מזרק של 1 מ"ל, כדי להבטיח שלא יהיו מרווחי אוויר או בועות בקצה המזרק. טען את המזרק לצד אחד של המחסנית ליד הבלוק המסתובב.
    2. מלא מזרק של 1 מ"ל בתמיסת התערובת T704 ו- sPep (שלב 4). הסירו בועות או מרווחי אוויר בקצה המזרק והכניסו את המזרק לכניסה השנייה של המשאבה (ראו טבלת חומרים).
    3. הגדר את המשאבה ביחס זרימה של 1:1 וקצב זרימה כולל של 4-10 מ"ל/דקה.
      הערה: קצב זרימה כולל של 6 מ"ל/דקה הוא אופטימלי במחקרים שהוצגו כאן.
    4. הנח צינור חרוטי נטול RNase של 10 מ"ל (ראה טבלת חומרים) כדי לאסוף את התמיסה המעורבת IVT-mRNA/PP-sNp בסוף נתיב הזרימה של התקן הערבוב.
    5. הפעל את המשאבה כדי להתחיל את הערבוב, תוך הקפדה על קלט נכון של הפרמטרים. לאחר סיום פעולת המשאבה במשך 6 שניות, יש לאסוף את דגימת ה-IVT-mRNA/PP-sNp מהצינור החרוטי.
      הערה: PP-sNp נוצרו באמצעות מערבל מיקרופלואידי (איור משלים 1). המכשיר כולל משאבת זרימה קבועה, התקן קישור, שבב ומכשיר קבוע. בתהליך הערבוב, משאבת הזרימה הקבועה המחוברת לשבב מספקת נוזלים לשבב בהתאם לקצב הזרימה שנקבע מראש. ניתן לחבר את משאבת הזרימה הקבועה המחוברת למספר ערוצי קלט של השבב עם ערוץ יציאה יחיד. רכיבי המכשיר, כולל השבב, התקבלו ממקורות מסחריים והורכבו באופן רציונלי (ראו טבלת חומרים). הפרמטרים, כגון קצב זרימה ונפח של פתרון ה-mRNA של IVT והתמיסה המעורבת T704-sEp, עשויים להיות שונים מאלה המוצגים בפרוטוקול הנוכחי אם נעשה שימוש בהגדרות שונות ויש למטב אותן בהתאם.

3. מדידת הקוטר ההידרודינמי והפולי-דיספרספריות של IVT-mRNA/PP-sNp

  1. יש לדלל אליקוט של תמיסת ה-IVT MRNA/PP-SNp (שלב 2) עם NF-water כדי לקבל נפח סופי של 1 מ"ל.
  2. מדוד את הגודל ההידרודינמי ואת מדד הפולי-פיזור (PDI) באמצעות חצי מיקרו-קובט25. הוסיפו את תמיסת ה-IVT mRNA/PP-sNp לתוך הקובט והכניסו אותה למטר גודל החלקיקים (ראו טבלת חומרים). הגדר נוהל הפעלה סטנדרטי ולחץ על התחל כדי להתחיל ברכישת הנתונים.

4. הכנת התאים להעברה

  1. צלחת תאי אפיתל הסימפונות האנושיים (16HBE) וקו תאים דנדריטיים (DC2.4) ב-96 לוחות באר בצפיפות של 3.5 x 104 תאים /באר 24 שעות לפני ההעברה. לגדל את התאים במדיום תרבית בתוספת 10% סרום בקר עוברי מומת בחום ו-1% פניצילין/סטרפטומיצין.
    הערה: התאים התקבלו ממקור מסחרי (ראה טבלת חומרים).
  2. דגירה של התאים באינקובטור (37 מעלות צלזיוס ו-5% CO2 באטמוספרה) למשך 24 שעות כדי להבטיח שהתאים יהיו מחוברים ב-60%-80% לפני הטרנספיקציה.

5. טרנספקציה של התאים בתרבית

  1. לאחר הסרת מדיום הצמיחה, לשטוף את התאים מצופים עם 0.2 מ"ל / טוב 1x PBS.
  2. הוסף 170 μL של מדיום תרבית ללא סרום לכל באר המכילה את תרביות התאים המצופות.
  3. הוסף את נוסחת ה-IVT mRNA/PP-sNp המכילה 0.4 מיקרוגרם של mRNA של MetLuc (מוכן בשלב 2) עם כמות של 30 μL/well.
  4. דגרו על התאים עם נוסחת ה-MRNA/PP-SNp של IVT בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס באטמוספרה לחה המועשרת ב-5% CO2 למשך 4 שעות.
  5. החלף את מדיום הטרנספקציה ב-0.2 מ"ל של מדיום תרבית טרי בתוספת 10% סרום בקר עוברי מומת בחום ו-1% (v/v) פניצילין/סטרפטומיצין.
    הערה: סרום בקר עוברי היה מחומם בטמפרטורה של 56 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות לצורך השבתה.
  6. לדגום את התאים הטרנספקטיביים בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס ובאטמוספרה מועשרתב-5% CO במשך 24 שעות ולאסוף את הסופרנטנטים שיזוהו מכל באר.

6. ניתוח יעילות העברת תאים באמצעות בדיקת Metridia luciferase (MetLuc)

  1. בדוק את הסופר-נטנט מכל באר עבור פעילות MetLuc באמצעות מצע coelenterazine (ראה טבלת חומרים) בהתאם לשלבים הבאים.
    1. הכן תמיסת בדיקה חדשה על ידי הוספת 1x PBS למצע coelenterazine (ריכוז coelenterazine הוא 15 mM).
    2. וורטקס תמיסת coelenterazine במשך 10 שניות לערבוב יסודי.
    3. יש להוסיף 50 μL של סופרנטנט (שנאסף בשלב 5) לצלחת של 96 בארות.
    4. הגדר את קורא המיקרו-פלטות (ראה טבלת חומרים) עם זמן קריאה של 1,000 אלפיות השנייה לפני הוספת 30 μL של תמיסת coelenterazine (15 mM) לכל באר באופן ידני או על ידי הזרקה אוטומטית.
    5. לחץ על התחל כדי למדוד את אות הזוהר מיד לאחר הוספת תמיסת coelenterazine לסופרנטנט.
      הערה: אות הזוהר נמדד באמצעות קורא מיקרו-לוחות, ופעילותו מתבטאת ביחידות אור יחסיות. הערכים המתקבלים מבארות PBS-transfected ישמשו כפקדים ריקים.

תוצאות

הפלסמיד הרקומביננטי עוכל כדי לייצר את תבנית הדנ"א הליניארית (איור 2A). באמצעות הפרוטוקול המתואר, ערכת השעתוק במבחנה T7 יכולה לייצר עד 80-120 מיקרוגרם של MetLuc-mRNA ללא כיסוי לכל תגובת 20 μL ו-50-60 מיקרוגרם של MetLuc-mRNA מכוסה לכל תגובת 100 μL. כאשר מנתחים אותו באמצעות אלקטרופורזה, MetLuc-mRNA ש...

Discussion

הפרוטוקול המתואר כאן לא רק מאפשר ייצור חסכוני ומהיר של פורמולציות חיסון IVT mRNA עם תכונות מוגדרות, אלא הוא גם מציע את האפשרות להתאים אישית את נוסחת PP-sNp בהתאם למטרות טיפוליות ספציפיות, כגון ריפוי גנטי. על מנת להבטיח את הדור המוצלח של IVT mRNA/PP-sNp, מומלץ להקדיש תשומת לב נוספת לכמה שלבים קריטיים. כאש...

Disclosures

למחברים אין מה לחשוף.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי הקרן הלאומית למדעי הטבע של סין (NSFC, מענק מס '82041045 ו- 82173764), הפרויקט הגדול של מחקר על פתוגנזה ומערכת טכנולוגיה למניעת מגיפות (2021YFC2302500) על ידי משרד המדע והטכנולוגיה של סין, פרויקט הכישרונות הצעירים יוצאי הדופן של צ'ונגצ'ינג: כישרונות צעירים יוצאי דופן (CQYC202005027), והקרן למדעי הטבע של צ'ונגצ'ינג (cstc2021jcyj-msxmX0136). המחברים מודים לד"ר שיאויאן דינג על מדידת הקוטר ההידרודינמי (nm) ומדד הפולידיספרסיה (PDI).

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
BamHITakara1010
cap 1 capping systemJinanM082
Dendritic cell-lineSigmaSCC142
DNA sequenceGenescript
Human bronchial epithelial cellsSigmaSCC150
KpnITakara1068
LPBeyotimeC0533
Lithium chlorideAPEXBioB6083
Malvern Zetasizer Nano ZS90MalvernNB007605
Microfluidic chipZHONGXINQIHENGStandard PDMS chip
Microplate readersThermoFisherVarioskan lux
NanoDrop OneThermoFisherND-ONE-W (A30221)
Nuclease-free waterThermoFisherAM9932
OptiMEMGibco31985070
Penicillin-streptomycinGibco15140122
PseudouridineAPE×BioB7972
QIAprep Spin Miniprep KitQiagen27106
Quanti-LucInvivoGenRep-qlc2
RiboRuler High Range RNA LadderThermoFisherSM1821
RNase-free conical tubeBiosharpBS-100-M
RPMI Medium 1640ThermoFisherC11875500BT
Syringe pumpChemyxFusion 101
T7 transcription KitJinanE131

References

  1. Nature milestones in vaccines. Springer Nature Available from: https://www.nature.com/collections/hcajdiajij (2020)
  2. Barbier, A. J., Jiang, A. Y., Zhang, P., Wooster, R., Anderson, D. G. The clinical progress of mRNA vaccines and immunotherapies. Nature Biotechnology. 40 (6), 840-854 (2022).
  3. Mulligan, M. J., et al. Phase I/II study of COVID-19 RNA vaccine BNT162b1 in adults. Nature. 586 (7830), 589-593 (2020).
  4. Tang, J., et al. Nanotechnologies in delivery of DNA and mRNA vaccines to the nasal and pulmonary mucosa. Nanomaterials. 12 (2), 226 (2022).
  5. Freyn, A. W., et al. A multi-targeting, nucleoside-modified mRNA influenza virus vaccine provides broad protection in mice. Molecular Therapy. 28 (7), 1569-1584 (2020).
  6. Wu, K., et al. Variant SARS-CoV-2 mRNA vaccines confer broad neutralization as primary or booster series in mice. Vaccine. 39 (51), 7394-7400 (2021).
  7. Chaudhary, N., Weissman, D., Whitehead, K. A. mRNA vaccines for infectious diseases: Principles, delivery and clinical translation. Nature Reviews Drug Discovery. 20, 817-838 (2021).
  8. Kormann, M. S. D., et al. Expression of therapeutic proteins after delivery of chemically modified mRNA in mice. Nature Biotechnology. 29 (2), 154-157 (2011).
  9. Tavernier, G., et al. mRNA as gene therapeutic: How to control protein expression. Journal of Controlled Release. 150 (3), 238-247 (2011).
  10. Walsh, E. E., et al. Safety and immunogenicity of two RNA-based Covid-19 vaccine candidates. The New England Journal of Medicine. 383 (25), 2439-2450 (2020).
  11. Baden, L. R., et al. Efficacy and safety of the mRNA-1273 SARS-CoV-2 vaccine. The New England Journal of Medicine. 384 (5), 403-416 (2021).
  12. Guan, S., Rosenecker, J. Nanotechnologies in delivery of mRNA therapeutics using nonviral vector-based delivery systems. Gene Therapy. 24 (3), 133-143 (2017).
  13. Sharova, L. V., et al. Database for mRNA half-life of 19 977 genes obtained by DNA microarray analysis of pluripotent and differentiating mouse embryonic stem cells. DNA Research. 16 (1), 45-58 (2009).
  14. Houseley, J., Tollervey, D. The many pathways of RNA degradation. Cell. 136 (4), 763-776 (2009).
  15. Kowalski, P. S., Rudra, A., Miao, L., Anderson, D. G. Delivering the messenger: Advances in technologies for therapeutic mRNA delivery. Molecular Therapy. 27 (4), 710-728 (2019).
  16. Sahin, U., Karikó, K., Türeci, &. #. 2. 1. 4. ;. MRNA-based therapeutics-developing a new class of drugs. Nature Reviews Drug Discovery. 13, 359-380 (2014).
  17. Hajj, K. A., Whitehead, K. A. Tools for translation: Non-viral materials for therapeutic mRNA delivery. Nature Reviews Materials. 2, 17056 (2017).
  18. Deering, R. P., Kommareddy, S., Ulmer, J. B., Brito, L. A., Geall, A. J. Nucleic acid vaccines: Prospects for non-viral delivery of mRNA vaccines. Expert Opinion on Drug Delivery. 11 (6), 885-899 (2014).
  19. Wadhwa, A., Aljabbari, A., Lokras, A., Foged, C., Thakur, A. Opportunities and challenges in the delivery of mRNA-based vaccines. Pharmaceutics. 12 (2), 102 (2020).
  20. Hou, X., Zaks, T., Langer, R., Dong, Y. Lipid nanoparticles for mRNA delivery. Nature Reviews Materials. 6 (12), 1078-1094 (2021).
  21. Sahin, U., et al. COVID-19 vaccine BNT162b1 elicits human antibody and T(H)1 T cell responses. Nature. 586 (7830), 594-599 (2020).
  22. Azzi, L., et al. Mucosal immune response in BNT162b2 COVID-19 vaccine recipients. EBioMedicine. 75, 103788 (2022).
  23. Guan, S., et al. Self-assembled peptide-poloxamine nanoparticles enable in vitro and in vivo genome restoration for cystic fibrosis. Nature Nanotechnology. 14 (3), 287-297 (2019).
  24. Pitard, B., et al. Negatively charged self-assembling DNA/poloxamine nanospheres for in vivo gene transfer. Nucleic Acids Research. 32 (20), 159 (2004).
  25. Hiroi, T., Shibayama, M. Measurement of particle size distribution in turbid solutions by dynamic light scattering microscopy. Journal of Visualized Experiments. (119), e54885 (2017).
  26. Hassett, K. J., et al. Impact of lipid nanoparticle size on mRNA vaccine immunogenicity. Journal of Controlled Release. 335, 237-246 (2021).
  27. Suk, J. S., et al. The penetration of fresh undiluted sputum expectorated by cystic fibrosis patients by non-adhesive polymer nanoparticles. Biomaterials. 30 (13), 2591-2597 (2009).
  28. Kim, N., Duncan, G. A., Hanes, J., Suk, J. S. Barriers to inhaled gene therapy of obstructive lung diseases: A review. Journal of Controlled Release. 240, 465-488 (2016).
  29. Liu, Z., Fontana, F., Python, A., Hirvonen, J. T., Santos, H. A. Microfluidics for production of particles: Mechanism, methodology, and applications. Small. 16 (9), 1904673 (2020).
  30. Guan, S., Darmstädter, M., Xu, C., Rosenecker, J. In vitro investigations on optimizing and nebulization of IVT-mRNA formulations for potential pulmonary-based alpha-1-antitrypsin deficiency treatment. Pharmaceutics. 13 (8), 1281 (2021).
  31. Shepherd, S. J., Issadore, D., Mitchell, M. J. Microfluidic formulation of nanoparticles for biomedical applications. Biomaterials. 274, 120826 (2021).
  32. Han, J., et al. A simple confined impingement jets mixer for flash nanoprecipitation. Journal of Pharmaceutical Sciences. 101 (10), 4018-4023 (2012).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

186

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved