JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

כאן, אנו מציגים מודל כאב דלקתי שונה עם הזרקת קרגינן שתי כפות אחוריות כדי להעריך את אפקט משכך הכאבים.

Abstract

בדיקת צלחת חמה נמצאת בשימוש נרחב כדי להעריך השפעות משככי כאבים על כאב דלקתי בעכברים. מודל נפוץ של כאב דלקתי נגרם על ידי הזרקה intraplantar של carrageenan בכפה אחורית אחת. עם זאת, הממצאים מהמעבדה שלנו הראו כי עכברים עם הזרקת קרגינן בכפה אחורית אחת הרימו את כפותיהם כדי למנוע רעש תרמי במהלך בדיקת הפלטה החשמלית. בגלל תגובה זו, שיטת ההזרקה הקודמת אינה יכולה לשקף במדויק את סף הכאב התרמי. לכן, חקרנו שיטה חדשה כדי למנוע בעיה זו. במחקר הנוכחי, שינינו את השיטה הקודמת על ידי הזרקת קרגינן לשתי הכפות האחוריות כדי לבסס את המודל של כאב דלקתי. התוצאות הראו כי הזרקת שתי כפות אחוריות עם קרגינן הייתה רגישה ושיטה טובה יותר לגרום לכאב דלקתי בעת שימוש במבחן פלטה חמה מאשר הזרקת כף אחורית יחידה. על בסיס ממצאים אלה, תכננו ניסויים נוספים שבהם עכברים עם הזרקת קרגינן של שתי כפות אחוריות או כפות אחוריות בודדות של קרגינן טופלו באופן תוך-גסטרי בסלקוקסיב (30 מ"ג/ק"ג). תוצאות בדיקת הפלטה החמה הראו כי סלקוקסיב הגדיל את סף הכאב התרמי בעכברים עם הזרקת קרגינן בשתי כפות הרגליים האחוריות, אך לא בעכברים עם הזרקת קרגינן בכפה אחורית אחת. לסיכום, פיתחנו שיטה מעולה להשראת מודל של כאב דלקתי להערכת אפקט משכך כאבים.

Introduction

כאב הוא בעיה של בריאות הציבור ברחבי העולם. הוא מופעל על ידי גירוי תרמי, מכני או כימי מזיק. קשה לבצע מחקרי כאב בבני אדם בגלל חששות אתיים. לכן, שימוש במודלים של כאב בבעלי חיים הוא גישה מרכזית להבנת מנגנוני כאב וטיפולים מחקריים1. בדיקת צלחת חמה כבר בשימוש נרחב להערכה של nociception תרמי hyperalgesia2. נכון לעכשיו, המודל של כאב דלקתי המשמש לבדיקת צלחת חמה מושרה עם הזרקה intraplantar של carrageenan בכפה אחורית אחת. לדוגמה, כדי לחקור את ההשפעה האנטינוסיצפטיבית של מיקרוספרות עמוסות רוטיגוטין, מודל חייתי של כאב דלקתי הוכן על ידי הזרקת כף אחורית אחת3. כדי להעריך את ההשפעות של מעכבי catechol-o-methyl-transferase על nociception תרמי בעכברים, carrageenan ניתן לאזור plantar של הכף האחורית הימנית4. כדי לחקור את התפקיד משכך כאבים של תמצית Posidonia oceanica (L.) Delile, מודל כאב דלקתי הוכן בעכברים על ידי הזרקה intraplantar של carrageenan בכף האחורית הימנית5. עם זאת, הממצאים מהמעבדה שלנו הראו כי עכבר עם הזרקת כף אחורית אחת של קרגינן ירים את כפו כדי למנוע רעש תרמי, אשר מרחיב באופן לא מדויק את תגובת החיה לגירוי תרמי במבחן הפלטה החשמלית. לפיכך, שיערנו כי מודל הכאב הדלקתי עם הזרקת קרגינן בכפה אחורית אחת לא יכול היה לשקף במדויק את סף הכאב התרמי. לכן, ביצענו אופטימיזציה של השיטה על ידי הזרקת קרגינן לשתי הכפות האחוריות כדי לבסס מודל כאב דלקתי שונה.

לעכברים שקיבלו זריקת קרגינן בשתי כפות הרגליים האחוריות לא הייתה דרך להימנע מהגירוי התרמי של שתי הכפות האחוריות בו זמנית. סף הכאב הוגדר כזמן מהנחת העכבר על הפלטה החמה ועד לליקוק העכבר באחת מכפותיו האחוריות. התוצאות אישרו כי מודל הכאב הדלקתי המותאם מתאים יותר להערכת סף הטמפרטורה הנוסיספטיבית. זה עשוי לשפר את היעילות של בדיקת פלטה חמה למחקר ופיתוח של תרופות משככי כאבים.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

פרוטוקול הניסוי אושר על ידי הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים באוניברסיטת יאנטאי (No. YTDX20220425). הנהלים פעלו בהתאם להנחיות המכונים הלאומיים לבריאות לשימוש בחיות מעבדה.

1. בעלי חיים

  1. השתמשו בנקבות עכברי ICR במשקל 20-25 גרם לצורך הניסויים.
  2. אפשרו לבעלי החיים להתאקלם בסביבת חדר הניסויים במשך 3 ימים לפני תחילת הניסויים.
  3. שמרו על חדר הניסויים עם מחזור אור-חושך של 12 שעות, וספקו לעכברים גישה חופשית למים ולצ'או.

2. הכנת תמיסת קרגינן

  1. שוקלים 0.1 גרם של carrageenan. הוסף 10 מ"ל של מלוחים רגילים מעוקרים לצינור.
  2. מוסיפים 0.1 גרם קרגינן לצינור ומערבלים את הצינור למשך 30 שניות.
  3. אספו את תמיסת הקרגינן המעוקר 1%.
  4. הכינו את תמיסת הקרגינן לפני הניסויים.

3. הזרקה intraplantar של carrageenan

  1. השתמש מזרק (0.05 מ"ל, 29G x 1/2 אינץ ', 0.33 מ"מ × 12.7 מ"מ) כדי להזריק את תמיסת קרגינן 1%.
  2. נערו את תמיסת הקרגינן לפני שתמשכו אותה לתוך המזרק. ודא שאין בועה במזרק.
  3. יש לחטא את אזור ההזרקה (כף אחורית) ב-75% אלכוהול.
  4. יש להזריק 30 μL 6,7 של 1% תמיסת קרגינן תת עורית לתוך פני השטח הפלנטריים של הכף האחורית. עבור עכברי קבוצת הביקורת, יש להזריק 30 מיקרוליטר של מי מלח רגילים.
    1. הכנס את המחט באלכסון כלפי מעלה לתוך כרית כף הרגל האחורית. לשמור על יציבות המזרק.
    2. לאחר ההזרקה, משוך את המזרק באיטיות ולחץ על אתר ההזרקה במשך 2 שניות כדי למנוע דליפה.

4. בדיקת פלטה חמה

  1. בצע את בדיקת צלחת חמה 3 שעות לאחר הזרקת intraplantar.
  2. נקו וחיטאו את פני השטח של הפלטה החמה.
  3. הפעל את מנגנון הפלטה החמה. לחץ על הלחצן מצב טמפרטורה . לחץ על CONSTANT כדי לכוון את הטמפרטורה ל- 55 ±- 0.2 °C.
  4. לחץ על לחצן התחל ניסוי ולחץ על תפוצה. קחו עכבר ממיכל האירוח. אחזו בעדינות בתא המטען שלו. הניחו את העכבר במרכז הפלטה החשמלית. לחץ על התחל.
  5. שימו לב ותיעדו את הזמן ללקק את הכף האחורית השמאלית (לעכברים עם הזרקת כף אחורית יחידה) או את הכף האחורית (לעכברים עם הזרקת שתי כפות אחוריות) בתגובה לגירוי החום. לחץ על הדוושה של הפלטה החמה כדי לראות את השעה במסך הפלטה החשמלית. הגדר סף כאב כזמן מהנחת העכבר על הפלטה החמה ועד ליקוק הכף האחורית.
  6. הגדר מגבלה של 60 שניות לבדיקת פלטה חמה 4,8,9. רשום סף כאב של 60 שניות אם מגיעים למגבלה.
    הערה: נקה את מכשיר הפלטה החמה עם 75% אלכוהול לפני הנחת העכבר הבא כדי למנוע הטיה אפשרית עקב ריח שיורי מהעכבר הקודם.

5. הכנת תרחיף סלקוקסיב 1.5 מ"ג / מ"ל

  1. יש ליטול כמוסה אחת המכילה 200 מ"ג סלקוקסיב. קבל את התוכן של הכמוסה ולטחון אותו לתוך אבקה.
  2. הוסף 0.5% נתרן carboxymethyl תאית. הנפח הסופי הוא 13.3 מ"ל. זוהי השעיית החנות של celecoxib.
  3. קח 1 מ"ל של השעיית החנות celecoxib. הוסף 9.0 מ"ל של 0.5% נתרן carboxymethyl cellulose כדי לקבל 1.5 מ"ג / מ"ל של תרחיף celecoxib.
  4. יש לתת 0.2 מ"ל/10 גרם של השעיית celecoxib תוך גסטרית לעכברים.
    הערה: בחר מחט gavage עם אורך 4.0-4.5 ס"מ עבור עכברים במשקל 20-25 גרם.

6. הערכת מודל הכאב הדלקתי המותאם

  1. חלקו באופן אקראי נקבות עכברי ICR לשלוש קבוצות: קבוצת ביקורת, מודל וקבוצת סלקוקסיב.
  2. יש להזריק 30 μL של תמיסת קרגינן 1% תת עורית לתוך פני השטח הפלנטריים של הכף האחורית (כף אחורית אחת או שתי כפות אחוריות). עבור עכברי קבוצת הביקורת, יש להזריק 30 מיקרוליטר של מי מלח רגילים.
  3. לאחר הזרקת קרגינן או מי מלח רגילים, בצע את הטיפול באופן מיידי. מתן תוך-גסטרי של סלקוקסיב במינון של 30 מ"ג/ק"ג לעכברים בקבוצת הסלקוקסיב. עבור עכברים בקבוצות הבקרה והמודל, תוך גזסטרית לנהל 0.5% נתרן carboxymethyl צלולוז.
  4. בצע את בדיקת הפלטה החמה (סעיף 2) ב 3 שעות לאחר הזרקת carrageenan.

7. שיטות סטטיסטיות

  1. הצג את תוצאות הניסוי כממוצע ± סטיית תקן. בצע בדיקת התפלגות נורמלית עם הטוב הסטטיסטי Kolmogorov-Smirnov של מבחן ההתאמה.
  2. נתח את ההשוואה בין שתי הקבוצות באמצעות מבחן t לא מזווג. בצע השוואות קבוצתיות מרובות באמצעות ניתוח חד-כיווני של שונות ואחריו מבחן דנט. שקול את הערך של p < 0.05 מובהק סטטיסטית.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

תוצאות

סף הכאב במודלים של כאב דלקתי
סף הכאב של מודל הכאב הדלקתי עם הזרקת קרגינן בכפה אחורית אחת היה 32.23 ±-11.11 שניות, בעוד שסף הכאב של קבוצת הביקורת היה 27.73 ±-7.08 שניות. בהשוואה לקבוצת הביקורת, סף הכאב של מודל הזרקת כף אחורית אחת לא הראה ירידה משמעותית (p > 0.05, איו?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

כאב הוא תגובת הגנה המופעלת על ידי נזק לרקמות או פציעה. עם זאת, יש לה גם השפעה שלילית על איכות החיים10. לכן, פיתוח משככי כאבים יעילים וחקר מנגנוני כאב נשארים תחומי מחקר פעילים. השיטות להערכת כאב ממלאות תפקיד מפתח בפיתוח תרופות משככי כאבים. הזרקת קרגינן בכפה אחור...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

למחברים אין אינטרסים מנוגדים פוטנציאליים לחשוף.

Acknowledgements

אנו מודים ללסלי מקולום, PhD, מליוואן ביאנג'י (אדנז) (www.liwenbianji.cn), על עריכת הטקסט באנגלית של טיוטה של כתב יד זה.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
AL204 electronic balanceYuheng Battery Co., Ltd YH-400A
CarboxymethylcelluloseTianjin Chemical Co., Ltd 20210326
CarrageenanSigma, MO, USA29H0715
CelecoxibPfizer Inc.8142838
Hot plate UGO Ltd. Co., ItalyPB-200 
ICR female miceJinan Pengyue  Co., Ltd.SCXK20220007
Normal salineKelun Pharmaceutical Co., Ltd H51021157

References

  1. Deuis, J. R., Dvorakova, L. S., Vetter, I. Methods used to evaluate pain behaviors in rodents. Front Mol Neurosci. 10, 284(2017).
  2. Menéndez, L., Lastra, A., Hidalgo, A., Baamonde, A. Unilateral hot plate test: a simple and sensitive method for detecting central and peripheral hyperalgesia in mice. J Neurosci Methods. 113 (1), 91-97 (2002).
  3. Li, T., et al. Rotigotine-loaded microspheres exerts the antinociceptive effect via central dopaminergic system. Eur J Pharmacol. 910, 174443(2021).
  4. Kambur, O., et al. Inhibitors of catechol- O -methyltransferase sensitize mice to pain. Br J Pharmacol. 161 (7), 1553-1565 (2010).
  5. Micheli, L., et al. Efficacy of Posidonia oceanica extract against inflammatory pain: In vivo studies in mice. Mar Drugs. 19 (2), 48(2021).
  6. McCarson, K. E. Models of inflammation: Carrageenan- or complete Freund's adjuvant (CFA)-induced edema and hypersensitivity in the rat. Curr Protoc Pharmacol. 70, 5.4.1-5.4.9 (2015).
  7. Fehrenbacher, J. C., Vasko, M. R., Duarte, D. B. Models of Inflammation: Carrageenan- or Complete Freund's Adjuvant (CFA)-Induced Edema and Hypersensitivity in the Rat. Curr Protoc Pharmacol. Chapter 5 (Unit 5.4), (2012).
  8. Asl, M. K., Nazariborun, A., Hosseini, M. Analgesic effect of the aqueous and ethanolic extracts of clove. Avicenna J Phytomed. 3 (2), 186-912 (2013).
  9. Wang, Y. Analgesic effects of glycoproteins from Panax ginseng root in mice. J Ethnopharmacol. 148 (3), 946-950 (2013).
  10. Zia, F. Z., et al. Are psychedelic medicines the reset for chronic pain? Preliminary findings and research needs. Neuropharmacology. 233, 109528(2023).
  11. Sałat, K., Furgała, A., Sałat, R. Evaluation of cebranopadol, a dually acting nociceptin/orphanin FQ and opioid receptor agonist in mouse models of acute, tonic, and chemotherapy-induced neuropathic pain. Inflammopharmacology. 26 (2), 361-374 (2018).
  12. Wang, J., et al. Anti-inflammatory and analgesic actions of bufotenine through inhibiting lipid metabolism pathway. Biomed Pharmacother. 140, 111749(2021).
  13. Gong, L., et al. Antinociceptive and anti-inflammatory potentials of Akebia saponin D. Eur J Pharmacol. 845, 85-90 (2019).
  14. Deng, J., et al. Comparison of analgesic activities of aconitine in different mice pain models. PloS One. 16 (4), e0249276(2021).
  15. Penn, N. W. Potentiation of morphine analgesic action in mice by beta-carotene. Eur J Pharmacol. 284 (1-2), 191-193 (1995).
  16. Akkol, E. K., Güvenç, A., Yesilada, E. A comparative study on the antinociceptive and anti-inflammatory activities of five Juniperus taxa. J Ethnopharmacol. 125 (2), 330-336 (2009).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

213

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved