JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Protocol
  • Discussion
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

דיסקציה וצמיחה של תאים מאזור המוח הפרט מאפשר חקירה של פרמטרים פיזיולוגיים הסלולר. אנו מתארים שיטה culturing התא הראשוני שמייצר נוירון מועשר תרבויות בסביבה בסרום חופשי.

Abstract

המאפיינים הפיזיולוגיים של נוירונים בהיפוקמפוס נחקרות כלל, בעיקר בגלל מעורבותו של ההיפוקמפוס בלמידה ובזיכרון. תא ראשי culturing בהיפוקמפוס מאפשר מדעני מוח כדי לבחון את פעילות ומאפיינים של הנוירונים בתא הבודד וברמת סינפסה אחת. בסרטון זה נדגים כיצד לבודד ולגדל תאים בהיפוקמפוס של חולדות ראשוני לרך הנולד. ההיפוקמפוס עשוי להיות מבודד כל חיה הנולד בקיצור כמו 2 עד 3 דקות, ואת התרבויות יכול להישמר לתקופה של עד שבועיים. אנו גם בקצרה להדגים כיצד להשתמש אלה נוירונים בהיפוקמפוס הדמיה סידן ratiometric. בעוד פרוטוקול זה מתאר את התהליך עבור בהיפוקמפוס, עם קצת שינוי לא, זה יכול להיות מיושם על אזורים אחרים של המוח.

Protocol

לפני בידוד בהיפוקמפוס

לפני תחילת הבידוד בהיפוקמפוס, לוודא שכל הכלים הם עקרים. תרסיס את מכסה המנוע תרבות עם אתנול 70%, ואת המקום כלים בתוך מכסה המנוע. יהיה עליך 6 - ו 10 ס"מ צלחות פטרי, סטרילי poly-L coverslips זכוכית מצופה, pipettors וטיפים, טפטפות חד פעמיות, וכן pipettor חשמלי. מנקודה זו והלאה, לזכור להשתמש בטכניקה סטרילית הנכון.

  1. הפעל את האמבטיה במים ולוודא כי הוא מחומם עד 37 ° C.
  2. הפתרונות הבאים המאוחסנים ב 4 ° C, יהיה צורך:
    • השתנה הנשר של בינוני (ממ)
    • Neurobasal
    • האנק של שנאגרו מלוחים פתרון (HBSS)
    • Borate פתרון חיץ
    • Pyruvate נתרן פתרון
    • סינון סטרילי גלוקוז פתרון של 20% מים מזוקקים

    • הקפידו לרסס את כל הבקבוקים למטה עם אתנול 70% לפני הכנסתם למכסה המנוע.

  3. קח את אלה פתרונות קפוא מהמקפיא ומניחים אותם באמבט מים חמים:
    • Aliquot 5 מ"ל של סרום סוס
    • 1 מ"ל aliquot של תוסף B-27
    • 1 מ"ל aliquot של אנטיביוטיקה 100x (הפניצילין בתוספת סטרפטומיצין)
    • וגם 0.5 מ"ל aliquot של גלוטמין-L
  4. אחרי פתרונות יש להפשיר, לקחת אותם מתוך האמבטיה מים, ריסוס אותם עם 70% אתנול, ולמקם אותם בשכונה. כעת בינוני ציפוי Neurobasal יכול להיות מוכן.
  5. אחרי פתרונות מוכנים, כובע מכולות בחוזקה ומניחים אותם על 37 ° C אמבטיה להתחמם בעת ביצוע הבידוד בהיפוקמפוס.
  6. כמו כן, לקחת aliquot של טריפסין פרוטאז (2.5%) מן המקפיא ומניחים אותו באמבט מים. טריפסין יהיה לעכל את ההיפוקמפוס גזור, אשר יהיה מבודד לשלב הבא.
  7. קחו צינור חרוטי 15 מ"ל, למלא אותו HBSS, ותווית עם בקבוצת הטיפול. זה המקום שבו מבודדים hippocampi ייאספו בשלב הבא.

בהיפוקמפוס בידוד

  1. כדי להתחיל את הבידוד בהיפוקמפוס, ודא לגורים שזה עתה נולדו נקיים היו להקות חלב שלהם, השליות, ואת חבלי הטבור הוסר על ידי אמם.
  2. מניחים את הגורים בצלחת פטרי, תרסיס עם אתנול 70% לנקות, ולמקם אותם בשכונה. בעלי חיים מומתים מיד לפני culturing.
  3. עבור עיקור נוסף לקחת אחד הגור מצלחת, לטבול את הגור לתוך אתנול 70%, ולאחר מכן לשתי שוטף של HBSS סטרילית.
  4. הסר את הראש מן הגוף במספריים. בעזרת מספריים אותו, חותכים דרך העור את הגולגולת.
  5. בעזרת פינצטה בסדר, קליפת הגולגולת מן המוח במקום את המוח לתוך צלחת פטרי קטנה המכילה כמות קטנה של HBSS סטרילית.
  6. פיל האחורי אונות המוח. ההיפוקמפוס הוא קטן, סוסון ים בצורת מבנה באונה הרקתית המדיאלי.
  7. הסר את ההיפוקמפוס מקום לתוך מ"ל 3 של HBSS בצינור 15 מ"ל. חזור על שלבים אלה עם כל הגור, והמקום כל ההיפוקמפוס מבודדים לתוך שפופרת 15 מ"ל. עכשיו, הגיע הזמן לנתק את רקמות תאים בודדים.

תאים בהיפוקמפוס דיסוציאציה

  1. אחרי הכל hippocampi להיות מבודדים, למלא את שפופרת 15 מ"ל עד 4.5 מ"ל עם HBSS.
  2. הסר את טריפסין מהאמבטיה מים, ריסוס עם אתנול, ומניחים מכסה המנוע. הוסף 0.5 מ"ל של טריפסין אל הצינור, דגירה במשך 15 דקות על 37 ° C.
  3. ב למכסה המנוע, הסר את הפתרון HBSS / טריפסין מהצינור עם פיפטה סטרילית, נזהר לא להפריע hippocampi כי התיישבו אל החלק התחתון של הצינור. הוסף 5 מ"ל של HBSS אל הצינור מערבולת בעדינות. לדגור על 37 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות.
  4. חזור על פעולה זו פעמיים, הסרת HBSS הישן ולהחליף עם פתרון חדש.
  5. קח aliquot של DNAse אני מהמקפיא. הוסף 0.5 מ"ל של DNase את hippocampi ב 4.5 HBSS מ"ל. DNAse מתווספת לקדם איון האנזים.
  6. Triturate הפתרון (או פיפטה למעלה ולמטה) עד שהיא הומוגנית. היזהר לא להכניס בועות לתוך homogenate.
  7. קביעת כדאיות התא עם שיטת הרחקה trypan כחול.
  8. קחו 10 ס"מ צלחת פטרי המכילה 6-8 coverslips, ולהוסיף 10 מ"ל של מדיום ציפוי. פיפטה את המספר הרצוי של תאים תבשיל המכיל את coverslips. מערבולת בעדינות כדי לפזר את התאים, ולוודא coverslips אינם חופפים.
  9. אפשר התאים לצרף עבור 2-4 שעות humidified 37 ° C חממה עם 5% CO 2. לאחר אישור התאים קיימא יש המצורפת, העברת coverslips למנות אדם המכיל בינוני Neurobasal. מניחים את הכלים האלה לתוך החממה.
  10. פעם בשבוע, להחליף שליש בינוני עם בינוני Neurobasal טריים טיפולים ניסיוניים, לפי הצורך. עכשיו, את המאפיינים תפקודית של תאים אלה בתרבות מוכנים להיחקר.

Fura-2 סידן הדמיה של נוירונים בהיפוקמפוס

  1. לאחר נוירונים בהיפוקמפוס תרבותי כבר במבחנה במשך 48 שעות (אך לא קודם לכן), הדמיה ניסויים סידן יכולה להתחיל. בשלב הזה, הנוירונים האלה צריך להתחיל להרחיב את התהליכים. טווח הגיל האופטימלי עבור הדמיה סידן מיום במבחנה 3-7.
  2. תרבויות טען עם Fura, 02:00 במשך 30 דקות ב 37 מעלות צלזיוס, לאחר שהם ניתן הדמיה תחת המטרה 20X באמצעות מנורת קשת קסנון לרגש מחוון סידן צבע ומצלמה CCD 512 ביט, אשר דגימות כל 150ms.

Discussion

פרוטוקול זה פותח כשינוי העבודה הזרע של גארי בנקאי וקים Goslin 1. ספר זה הוא משאב חיוני עבור מי שמעוניין תאים culturing - לא רק נוירון מועשר תרבויות המתואר בפרוטוקול הנוכחי.

שלושת הגורמים הקריטיים ביותר culturing התא הם: עקרות מהירות, הבחירה של שימוש בינוני.

Acknowledgements

JLN נתמכה על ידי MH 68347.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Antibiotic antimitoticInvitrogen15240062
B-27 SupplementInvitrogen17504044Serum free
Boric AcidSigma-AldrichB6768
Dnase ISigma-AldrichDN25
Fura-2, AM cell permeantMolecular Probes, Life TechnologiesF1221
GlucoseSigma-AldrichG7528
HBSS (10X)Invitrogen14185052
HEPESInvitrogen15630080
L-GlutamineSigma-AldrichG7513
MEMInvitrogen51200038
NeurobasalInvitrogen12348017Without phenol red
Poly-L-Lysine HydrobromideSigma-AldrichP6282
Pyruvic AcidSigma-AldrichP2256
Sodium PyruvateSigma-AldrichP2256
Sodium TetraborateSigma-Aldrich
Trypsin, 2.5% (10X)Invitrogen15090046

References

  1. Banker, G., Goslin, K. . Culturing Nerve Cells, 2nd Edition. , (1998).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

Neuroscience19

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved