המחברים מודים פסקל Paschenda ומרייק ולץ לסיוע הטכני שלהם.

<ol>
	<li>Puhl, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Low+viscosity+histidine-tryptophan-ketoglutarate+graft+flush+improves+subsequent+extended+cold+storage+in+University+of+Wisconsin+solution+in+an+extracorporeal+rat+liver+perfusion+and+rat+liver+transplantation+model.">Low viscosity histidine-tryptophan-ketoglutarate graft flush improves subsequent extended cold storage in University of Wisconsin solution in an extracorporeal rat liver perfusion and rat liver transplantation model.</a> Liver Transpl. 12, 1841-1849 (2006).</li><li>Yagi, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improved+Preservation+and+Microcirculation+with+POLYSOL+After+Partial+Liver+Transplantation+in+Rats.">Improved Preservation and Microcirculation with POLYSOL After Partial Liver Transplantation in Rats.</a> J Surg Res. 167, e375-e383 (2011).</li><li>Engemann, R., Ulrichs, K., Thiede, A., Muller-Ruchholtz, W., Hamelmann, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Value+of+a+physiological+liver+transplant+model+in+rats.+Induction+of+specific+graft+tolerance+in+a+fully+allogeneic+strain+combination.">Value of a physiological liver transplant model in rats. Induction of specific graft tolerance in a fully allogeneic strain combination.</a> Transplantation. 33, 566-568 (1982).</li><li>Sumimoto, R., Shinomiya, T., Yamaguchi, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Influence+of+hepatic+arterial+blood+flow+in+rats+with+liver+transplants.+Examination+of+donor+liver-derived+serum+class+I+MHC+antigen+in+rats+with+liver+transplants+with+or+without+hepatic+arterial+reconstruction.">Influence of hepatic arterial blood flow in rats with liver transplants. Examination of donor liver-derived serum class I MHC antigen in rats with liver transplants with or without hepatic arterial reconstruction.</a> Transplantation. 51, 1138-1139 (1991).</li><li>Chaland, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Orthotopic+liver+transplantation+with+hepatic+artery+anastomoses.+Hemodynamics+and+response+to+hemorrhage+in+conscious+rats.">Orthotopic liver transplantation with hepatic artery anastomoses. Hemodynamics and response to hemorrhage in conscious rats.</a> Transplantation. 49, 675-678 (1990).</li><li>Imamura, H., Rocheleau, B., Cote, J., Huet, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long-term+consequence+of+rat+orthotopic+liver+transplantation+with+and+without+hepatic+arterial+reconstruction:+a+clinical,+pathological,+and+hemodynamic+study.">Long-term consequence of rat orthotopic liver transplantation with and without hepatic arterial reconstruction: a clinical, pathological, and hemodynamic study.</a> Hepatology. 26, 198-205 (1997).</li><li>Zhong, Z., Theruvath, T. P., Currin, R. T., Waldmeier, P. C., Lemasters, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=NIM811,+a+mitochondrial+permeability+transition+inhibitor,+prevents+mitochondrial+depolarization+in+small-for-size+rat+liver+grafts.">NIM811, a mitochondrial permeability transition inhibitor, prevents mitochondrial depolarization in small-for-size rat liver grafts.</a> Am. J. Transplant. 7, 1103-1111 (2007).</li><li>Spiegel, H. U., Palmes, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surgical+techniques+of+orthotopic+rat+liver+transplantation.">Surgical techniques of orthotopic rat liver transplantation.</a> J. Invest. Surg. 11, 83-96 (1998).</li><li>Lee, S., Charters, A. C., Chandler, J. G., Orloff, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+technique+for+orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat.">A technique for orthotopic liver transplantation in the rat.</a> Transplantation. 16, 664-669 (1973).</li><li>Lee, S., Charters, A. C., Orloff, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Simplified+technic+for+orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat.">Simplified technic for orthotopic liver transplantation in the rat.</a> Am. J. Surg. 130, 38-40 (1975).</li><li>Kamada, N., Calne, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat.+Technique+using+cuff+for+portal+vein+anastomosis+and+biliary+drainage.">Orthotopic liver transplantation in the rat. Technique using cuff for portal vein anastomosis and biliary drainage.</a> Transplantation. 28, 47-50 (1979).</li><li>Howden, B., Jablonski, P., Grossman, H., Marshall, V. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+importance+of+the+hepatic+artery+in+rat+liver+transplantation.">The importance of the hepatic artery in rat liver transplantation.</a> Transplantation. 47, 428-431 (1989).</li><li>Gao, W., Lemasters, J. J., Thurman, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+a+new+method+for+hepatic+rearterialization+in+rat+orthotopic+liver+transplantation.+Reduction+of+liver+injury+and+improvement+of+surgical+outcome+by+arterialization.">Development of a new method for hepatic rearterialization in rat orthotopic liver transplantation. Reduction of liver injury and improvement of surgical outcome by arterialization.</a> Transplantation. 56, 19-24 (1993).</li><li>Zhao, D., Zimmermann, A., Wheatley, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Morphometry+of+the+liver+after+liver+transplantation+in+the+rat:+significance+of+an+intact+arterial+supply.">Morphometry of the liver after liver transplantation in the rat: significance of an intact arterial supply.</a> Hepatology. 17, 310-317 (1993).</li><li>Omura, T., Ascher, N. L., Emond, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fifty-percent+partial+liver+transplantation+in+the+rat.">Fifty-percent partial liver transplantation in the rat.</a> Transplantation. 62, 292-293 (1996).</li><li>Lehmann, T. G., Bunzendahl, H., Langrehr, J. M., Neuhaus, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Arterial+reconstruction+in+rat+liver+transplantation--development+of+a+new+tubing+technique+of+the+common+hepatic+artery.">Arterial reconstruction in rat liver transplantation--development of a new tubing technique of the common hepatic artery.</a> Transpl. Int. 18, 56-64 (2005).</li><li>Reck, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impact+of+arterialization+on+hepatic+oxygen+supply,+tissue+energy+phosphates,+and+outcome+after+liver+transplantation+in+the+rat.">Impact of arterialization on hepatic oxygen supply, tissue energy phosphates, and outcome after liver transplantation in the rat.</a> Transplantation. 62, 582-587 (1996).</li><li>Hasuike, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+simple+method+for+orthotopic+liver+transplantation+with+arterial+reconstruction+in+rats.">A simple method for orthotopic liver transplantation with arterial reconstruction in rats.</a> Transplantation. 45, 830-832 (1988).</li><li>Steffen, R., Ferguson, D. M., Krom, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+method+for+orthotopic+rat+liver+transplantation+with+arterial+cuff+anastomosis+to+the+recipient+common+hepatic+artery.">A new method for orthotopic rat liver transplantation with arterial cuff anastomosis to the recipient common hepatic artery.</a> Transplantation. 48, 166-168 (1989).</li><li>Knoop, M., Bachmann, S., Keck, H., Steffen, R., Neuhaus, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experience+with+cuff+rearterialization+in+600+orthotopic+liver+grafts+in+the+rat.">Experience with cuff rearterialization in 600 orthotopic liver grafts in the rat.</a> Am. J. Surg. 167, 360-363 (1994).</li><li>Hickman, R., Engelbrecht, G. H., Duminy, F. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+technique+for+liver+transplantation+in+the+rat.">A technique for liver transplantation in the rat.</a> Transplantation. 48, 1080 (1989).</li><li>Liu, T., Freise, C. E., Ferrell, L., Ascher, N. L., Roberts, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+modified+vascular+"sleeve"+anastomosis+for+rearterialization+in+orthotopic+liver+transplantation+in+rats.">A modified vascular "sleeve" anastomosis for rearterialization in orthotopic liver transplantation in rats.</a> Transplantation. 54, 179-180 (1992).</li><li>Li, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modified+sleeve+anastomosis+for+reconstruction+of+the+hepatic+artery+in+rat+liver+transplantation.">Modified sleeve anastomosis for reconstruction of the hepatic artery in rat liver transplantation.</a> Microsurgery. 22, 62-68 (2002).</li><li>Martins, P. N., Theruvath, T. P., Neuhaus, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rodent+models+of+partial+hepatectomies.">Rodent models of partial hepatectomies.</a> Liver Int. 28, 3-11 (2008).</li><li>Russell, W. M. S., Burch, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Principles of Humane Experimental Technique. , (1992).</li></ol>

אין לנו אינטרסים מנוגדים לגילוי. החולדות הם שוכנו בתנאים ספציפיים לפתוגן חופשיים על פי ההנחיות של הפדרציה לעמותות בעלי חי מדע המעבדה (FELASA). כל הניסויים שנערכו בהתאם לחוק הפדרלי הגרמני בנוגע להגנה על בעלי חיים ו&quot; מדריך לטיפול ושימוש בחיות מעבדה &quot;(המכון הלאומי לבריאות פרסום המס &#39;86-23, מתוקן 1985).

הדגם הראשון של OLT החולדה נמסר על ידי Lee et al. ב -1973 9, שבו כל הכולים כולל העורק הכבד שוחזרו על ידי שיטה נתפרה ביד ומחלף portosystemic extracorporeal היה בשימוש. מודל זה היה טכני מסובך וקשה לביצוע. המודל הבא היה אחד בלי שחזור עורק כבד ומחלף extracorporeal, שפותח על ידי אותם סופרים 10 בשנת 1975. בשינה 1979, קמהדע et al. הציג טכניקת השקת השרוול למודל ללא rearterialization כבד 11. עם השינויים הללו, OLT בחולדות היה פשוט יותר עם זמן anhepatic קצר בפעולות נמען וכבר בשימוש נרחב כמודל ניסיוני מקובל. עם זאת, יש כבר מחלוקת מאז על המשמעות של arterialization בדיה בחולדת OLT 8 בגלל arterialization היה משימה תובענית אבל דילא משפיע על ד הישרדות לאחר השתלה. מחקרים רבים על arterialization כבד באמצעות טכניקת שחזור שונה כבר דיווחו 8, כגון השקת אאורטלי קטע לאב עורקי 3,9,17, טכניקת שרוול השקה 18,19,20, טכניקה טלסקופית 5, טכניקת סטנט 13, 16, וטכניקת השקת שרוול 12,21-23. בעוד הטכניקה לOLT העכברוש היא עדיין לא טופלה היום, מודל arterialized כבר העדיף יותר ויותר במונחים של עליונותה הפיזיולוגית 8,12,13,14. בין הטכניקות שהוזכרו לעיל, טכניקת סטנט שהיה פשוט ומהיר לביצוע נמסרה על ידי להמן ואח&#39;. 16 בשנת 2005. המחקר הראה תוצאות מצוינות: שיעור לא נצפה חסימה בעורק הכבד המשוחזר ב8 שעות, 24 שעות, ו 6 חודשים לאחר reperfusion. לכן אמצתי את הטכניקה הזאת לarterialization כבד. אנו ביצועיםהשקת ma נתפר ביד לשיקום SHVC וIHVC. שיטה זו מספקת אתר anastomotic עם מצב פיסיולוגי אופטימלי, מה שמוביל לשכיחות המופחתת של פקק 8, והוא הסימולציה ואימון למנתחי מייקרו הטובה ביותר. בנוסף, ההשקה יכולה להיות אפשרית גם עם כלי גדמים קצרים. בנוגע להשקה של IHVC, שיטה זו אינה דורשת זמן רב IHVC בצד השתל לעומת טכניקת השקת השרוול. לכן, כאשר וריד כלית התורם גזור לעשות IHVC השתל ארוך, שיטה זו ישימה להשתלה של שתל קטן שמצריכה זמן רב IHVC, כגון שתל 30% שמורכב מאונות ימין לרוחב וcaudate עם intrahepatic קצר וריד נבוב ללא SHVC 2. לגבי הטכניקות של כריתת כבד בחולדות, עד היום מספר שיטות דווחו; שתי הטכניקות העיקריות הן טכניקת קשירת המסה הקלסיתוטכניקת כלי המכוון 24. אנו מבצעים את טכניקת הקשירה הקלסית לכריתת כבד 50% 15, אבל תחת מיקרוסקופ ניתוחי על מנת להפוך את ההליך העדין יותר, וכדי להימנע מניזק לאונות והמבנים הנותרים. אנחנו תארנו את התוצאות המייצגות מן חולדות הנמען במודל שלנו, החולדות שרדו במהלך תקופת התצפית 7-היום ללא סיבוכים לכאורה. המודל יכול להיות שונה למטרות שונות של ניסויים על ידי בחירה בהגדרות השונות, כגון אחסון ממושך קור, איסכמיה החמה ממושכת הכוללת תרומה לאחר מוות לבבי, ושימוש בשתלים קטנים יותר כבדים או שתלים ממודלי ניסויים של פגיעה בכבד או מחלות. מניסיוננו, יש שלושה גורמים מרכזיים ברחבי ההליכים שיכולים להשפיע על ההישרדות לאחר השתלה, הפרמטר האמין ביותר לתוצאות של OLT חולדה: כמות איבוד דם; זמן המבצע, דוארבמיוחד clamping זמן של הווריד וIHVC הפורטל; והלימות של השחזור של כל כלי, אשר יכולות לגרום להיצרות, פקק, או דימום. בתקופת הכשרה של מודל זה, רוב הכישלונות יכול כנראה להיות קשור לגורמים אלו. במאמר זה וידאו, אנו מציגים הוראות שלב אחר שלב לניתוחים למודל העכברים שלנו OLT החלקי עם שחזור עורק כבד. בעוד מודל עכברים של OLT הוא מסובך ודורש מיומנות מייקרו מתקדמת, מאמר זה מספק שפע של מידע מעשי, שאמור לשמש כמדריך טוב לאימון ולמידה של דגם זה. לימוד מודל זה ביעילות, חשוב במיוחד לקיצור תקופת הלימוד, צמצום מספר בעלי החיים והעלויות הדרושות לאימון, ומאוחר יותר משחזר תוצאות אמינות בניסויים. זה עולה בקנה האחד עם תפיסת 3Rs (החלפה, הפחתה, ועידון) של ניסויים בבעלי חיים, שהניחה על ידי ראסל ורץ&#39; ב1959 25.

<table border="1" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td> שם </td><td> חברה </td><td> מספר קטלוגים </td><td> תגובות </td></tr><tr><td> מיקרוסקופ הניתוחי </td><td> ליקה </td><td> M651 </td><td></td></tr><tr><td> מקור אור </td><td> שוט </td><td> KL1500LCD </td><td></td></tr><tr><td> ספוגיות כותנה </td><td> NOBA Verbandmittel </td><td> 974202 </td><td></td></tr><tr><td> מטליות גזה (5x5 סנטימטר) </td><td> Fuhrmann </td><td> 10002 </td><td></td></tr><tr><td> פתרון povidone-יוד </td><td> Mundipharma </td><td> 6108022.00.01 </td><td></td></tr><tr><td> חימר על בסיס שמן </td><td> Debika תאגיד </td><td> 090148 </td><td></td></tr><tr><td> TachoSil </td><td> טאקדה התרופות הבינלאומי GmbH </td><td> EU/1/04/277/001-004</td><td> מוחל על פני שטח כבד resected </td></tr><tr><td> אזמל להב מס &#39;11 </td><td> PFM רפואי </td><td> 200130011 </td><td> הכנה של שרוול וסטנטים </td></tr><tr><td> קטטר 14-מד </td><td> B. Braun </td><td> 4268210S </td><td> קאף לPV </td></tr><tr><td> קטטר 18-מד </td><td> B. Braun </td><td> 4268130S </td><td> זלוף דרך PV </td></tr><tr><td> קטטר 24 מד </td><td> B. Braun </td><td> 4269071S </td><td> סטנט עבור BD וHA </td></tr><tr><td> תפר משי 4-0 </td><td> Resorba </td><td> H3F </td><td> כריתת כבד </td></tr><tr><td> תפר משי 6-0 </td><td> Resorba </td><td> H1F </td><td></td></tr><tr><td> 7-0 Prolene (פוליפרופילן) תפר </td><td> Ethicon </td><td> 8701H </td><td> SHVC וIHVC </td></tr><tr><td> תפר Vicryl 4-0 </td><td> Ethicon </td><td> V304H </td><td> סגירת בטן </td></tr><tr><td> מזרק 5-מ&quot;ל </td><td> Terumo </td><td> אס + T05ES1 </td><td> גבה כרית </td></tr><tr><td> כרית חימום </td><td> Thermo </td><td> 190 מ&quot;מ x 260 </td><td></td></tr><tr><td> מערכת הכחשה, קיבוע מגנטית </td><td> המדע פיין כלי בע&quot;מ </td><td> 18200-01 18200-02 18200-03 18200-12 </td><td></td></tr><tr><td> אמבט מים קר </td><td> הובר </td><td> 740.000X </td><td> שימור שתל </td></tr><tr><td> דו קוטבי מלקחיים </td><td> Söring </td><td> MBC-200 </td><td></td></tr><tr><td> מלקחי יתושים </td><td> BONIMED </td><td> 451-476-03 </td><td> שני זוגות בשימוש </td></tr><tr><td> Adson מייקר מלקחיים </td><td> Dimeda </td><td> 10.176.12 </td><td></td></tr><tr><td> מייל מעוקלקרה מלקחיים </td><td> Aesculap </td><td> FD281R </td><td></td></tr><tr><td> מלקחי מייקר ישרים </td><td> Bonimed </td><td> 451-476-03 </td><td></td></tr><tr><td> מספרי מייקר מעוקלים </td><td> מדיקון </td><td> 05.15.83 </td><td></td></tr><tr><td> מספרי מייקר ישרים </td><td> Aesculap </td><td> FD12 </td><td> חתך פיין </td></tr><tr><td> מספרים </td><td> Aesculap </td><td> BC211W </td><td></td></tr><tr><td> בעל מחט מייקרו </td><td> Aesculap </td><td> FD241R </td><td> שחזור </td></tr><tr><td> בעל מחט ראש העיר Hegar </td><td> Mizuho Ikakogyo </td><td> 06-798-00 </td><td> סגירת בטן </td></tr><tr><td> DeBakey בולדוג מהדק (ישר) </td><td> אולריך </td><td> CV3054 </td><td></td></tr><tr><td> DeBakey בולדוג מהדק (מעוגל) </td><td> CODMAN </td> &lt;td&gt; 37-1062 </td><td></td></tr><tr><td> Satinsky מהדק </td><td> Mizuhoika </td><td> 09-230-24 </td><td></td></tr><tr><td> מהדק כלי דם היקפי </td><td> Teleflex רפואי </td><td> 353494 </td><td> הנמען SHVC </td></tr><tr><td> מהדק כלי מייקרו (חד פעמי) </td><td> AROSurgical מכשירי חברה </td><td> TKM-1-60 גרם </td><td> PV, IHVC שתל, והנמען HA </td></tr><tr><td> מהדק כלי מייקרו (מתכת) </td><td> המדע פיין כלי בע&quot;מ </td><td> 18052-01 </td><td> הנמען IHVC </td></tr><tr><td> פתרון רינגר לקטט </td><td> Fresenius Kabi </td><td> 6150917.00.00 </td><td></td></tr><tr><td> תמיסת מלח רגילה </td><td> DeltaSelect </td><td> 1299.99.99 </td><td></td></tr><tr><td> פתרון HTK </td><td> ד&quot;ר פרנץ קוהלר Chemie GmbH </td><td> 31268.00.00 </td><td> פתרון שימור </td></tr><tr><td> הפרין נטריום </td><td> רציופארם </td><td> 5394.02.00 </td><td> 500 יחב&quot;ל לפני זלוף שתל </td></tr><tr><td> 8.4% סודיום ביקרבונט </td><td> Fresenius Kabi </td><td> 4399.97.99 </td><td> 0.5 מ&quot;ל לאחר reperfusion </td></tr><tr><td> 5% פתרון גלוקוז </td><td> B. Braun </td><td> 6714567.06.00 </td><td> 1.0 מ&quot;ל לאחר reperfusion </td></tr><tr><td> נתרן Cefuroxim </td><td> Fresenius Kabi </td><td> 38985.01.00 </td><td> אנטיביוטיקה, 16 מ&quot;ג / ק&quot;ג </td></tr><tr><td> עצירות </td><td> תסקס פארמה </td><td> 997.00.00 </td><td> משכך כאבים, 0.1 מ&quot;ג / ק&quot;ג </td></tr><tr><td> קייג&#39; היחיד לטיפול נמרץ </td><td> Brinsea מוצרים צריכים בע&quot;מ </td><td> Vetario S10 </td><td> טיפול לאחר הניתוח </td></tr></tbody></table>

surgical procedures for a rat model of partial orthotopic liver transplantation with hepatic arterial reconstruction

השתלת כבד orthotopic (OLT) בחולדות באמצעות שתל שלם או חלקי היא מודל הכרחי למחקר ניסויי השתלה, כגון מחקרים על שימור שתל ו1,2 פציעה איסכמיה reperfusion, תגובות חיסוניות 3,4, 5,6 פרמטרים המודינמיים, ו תסמונת קטנה לגודל 7. OLT החולדה הוא בין המודלים של בעלי החיים הקשים ביותר בניתוח הניסיון ודורש מיומנויות מתקדמות המייקר שלוקחים זמן ללמוד. כתוצאה מכך, השימוש במודל זה היה מוגבל. מאז האמינות והשחזור של תוצאות הן רכיבי מפתח של הניסויים במודלים של בעלי חיים אשר מורכבים כאלה משמשים, חיוני למנתחים העוסקים בעכברוש OLT להיות מאומנים בסטנדרטיים הליכים היטב ומתוחכמים עבור דגם זה. בעוד טכניקות ושינויים של OLT בחולדות שונות כבר דיווחו 8 מאז המודל הראשון היה describאד על ידי Lee et al. 9 בשנת 1973, לחיסולה של בדית השחזור עורק 10 וכניסתה של טכניקת השקת השרוול ידי קמהדע et al. 11 היו התקדמות גדולה במודל זה, כי הם פשטו את הליכי השיקום במידה רבה . במודל על ידי קמהדע et al., Rearterialization הבדיה גם בוטל. מאז חולדות יכולות לשרוד ללא זרימת עורקי כבד לאחר השתלה כבדה, לא הייתה מחלוקת על השווי של arterialization כבד. עם זאת, העליונות הפיזיולוגית של מודל arterialized כבר הודה יותר ויותר, במיוחד במונחים של שמירה על מערכת מרת צינור 8,12 ויושרת הכבד 8,13,14. במאמר זה, אנו מציגים ניתוחים מפורטים למודל של חולדת OLT עם שחזור עורק כבד באמצעות 50% שתל חלקי לאחר vivo לשעבר כבד resection. הליכי השיקום לכל כלי וצינור המרה מבוצעים על ידי השיטות הבאות: 7-0 תפרי פוליפרופילן רציפים ללעיל וinfrahepatic וריד הנבוב; טכניקת שרוול לוריד השער; וטכניקת תומכן לעורק הכבד ו צינור המרה.

כל חולדות הנמען (n = 20) שרדו ללא סיבוכים נראים לעין עד המתת חסד מתוכננת לדגימת דם ב1, 3, 24, ו 168 שעות (7 ימים) לאחר reperfusion פורטל (n = 5 בכל נקודת זמן). דגימות הדם נאספו מIHVC ידי לנקב ישיר עם מחט 27-מד. בעקבות צנטריפוגה XG ב 5340 למשך 10 דקות, את דגימות הסרום התקבלו ונותחו לרמות אלנין aminotransferase (ALT), המשקפות את מידת ניזק hepatocellular לאחר השתלה. הזמן כמובן שינויים ברמות ALT בסרום מוצג באיור 16. רמות ALT הגיעו לשיא ב 24 שעות (ממוצע ± סטיית תקן: 212.6 ± 67.9 IU / L) ולאחר מכן ירד לגבולות נורמלים ב168 שעות (33.6 ± 6.8 IU / L). <img alt="איור 1" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig1.jpg" /> איור 1. שרוול לוריד הפורטל (PV) מ1קטטר 4-מד, וסטנטים לעורק הכבד (HA) ומרת הצינור (BD) מצנתרים 24 מד. <img alt="איור 2" fo:content-width="4in" fo:src="/files/ftp_upload/4376/4376fig2highres.jpg" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig2.jpg" /> איור 2. סכימה של הסרת הכבד מעכברוש התורם BD, מרת צינור;. HA, עורק כבד; IHVC, infrahepatic וריד נבוב; PV, וריד שער; SHVC, suprahepatic וריד נבוב. <img alt="איור 3" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig3.jpg" /> איור 3. פעולה תורמת. . החולדה מונחת על כרית חימום עם מערכת הכחשה, קיבוע מגנטית. הבטן נפתחה על ידי חתך קו אמצע עם סיומות בין שתי מדינות. ב. החדרת סטנט לתוך צינור המרה. ג. זלוף של הכבד דרך וריד השער. קיצורים הם להסביראד באיור 2. <img alt="איור 4" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig4.jpg" /> איור 4. קובץ מצורף של שרוול לוריד השער. , ב. מהדק DeBakey בולדוג שתופס את תא מטען ורידי הפורטל ממוקם מעל כוס המתכת. הגביע הוא רכוב בקופסא הפלסטיק מלא בקרח כתוש. ג. וריד השער הוא לשים דרך השרוול. ד. הקיר של וריד הפורטל כלפי חוץ על השרוול בגדם וריד הטחול מחוץ לשרוול ב7 שעת מיקום וסיומת של השרוול בכיוון השעה 12. דואר. וריד השער מאובטח באמצעות חוט משי היקפי 6-0 בשרוול. החיצים השחורים מצביעים על הגדם של וריד הטחול. <img alt="איור 5" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig5.jpg" /> איור 5. גופיים<html> החדרת סטנט לעורק הכבד. . הכבד קבוע על ידי כיווץ שני הקצוות של הסרעפת, והעורק הכבד נמשך ישר ידי החזקת חוט גבעול לעורק. ב. הקיר הקדמי של החתך הקטן בעורק הכבד נערך עימו מלקחי מייקר ישרים . ג, ד. הסטנט מוחדר לעורק הכבד ומאובטח עם חוט משי 6-0. <img alt="איור 6" fo:content-width="3.5in" fo:src="/files/ftp_upload/4376/4376fig6highres.jpg" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig6.jpg" /> איור 6. הסכימה של vivo לשעבר 50% כריתת כבד. אונות בצבע אפור יוסרו. ACL, קדמית caudate אונה; PCL, אונת caudate אחורית; LLL, אונה שמאלית רוחב; LML, חלק שמאלי של האונה החציוני; חלק RML, זכות של האונה החציוני; SRL, אונה ימנית רוחב מעולה; אונת IRL, נחותה זכות לרוחב. = Fo &quot;jove_content&quot;: לשמור-together.within עמודים = &quot;תמיד&quot;&gt; <img alt="איור 7" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig7.jpg" /> איור 7. גופיים 50% כריתת כבד. . קשירת pedicle של אונת caudate האחורית. ב. קשירת pedicle של החלק השמאלי של האונה החציוני. ג. כבד לפני הכריתה 50%. ד. הכבד לאחר כריתת 50%. <img alt="איור 8" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig8.jpg" /> איור 8. גופיים plasty של suprahepatic הווריד הנבוב. . הכבד קבוע על ידי כיווץ שני הקצוות של הסרעפת עם מלקחי יתושים. ב. תפרים להישאר עם 7-0 פוליפרופילן מצורפים בשתי הפינות. <img alt="איור 9" fo:content-width="4in" fo:src="/files/ftp_upload/4376/4376fig9highres.jpg" srג = &quot;/ files/ftp_upload/4376/4376fig9.jpg&quot; /&gt; איור 9. סכימה של השתלת השתל בחולדת הנמען. הליכי השיקום מבוצעת ללעיל וinfrahepatic וריד נבוב (SHVC וIHVC) עם תפר 7-0 רציפים, וריד הפורטל (PV) על ידי טכניקת שרוול, וכבד עורק (HA) ומרת צינור (BD) על ידי טכניקת תומכן. <img alt="איור 10" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig10.jpg" /> איור 10. פעולת נמען עד לסילוקו של כבד הילידים. . הבטן נפתחה על ידי חתך קו אמצע. ב. וריד הכליה הימנית הגבעול. ג. כבד היליד הוא נכרת. קיצורים מוסברים באיור 2. <img alt="איור 11" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig11.jpg" /> איור 11. השקה של suprahepatic וריד נבוב. , ב. מהדק כלי הדם ההיקפי לsuprahepatic וריד הנבוב קבוע בגוש חימר על בסיס שמן. התפרים להישאר בשתי הפינות נשמרים עם מתיחה עדינה superiolaterally להרחיב את ההשקה. ג. תפר intraluminal רציף של השורה האחורית בהתקדמות. ד. תפר רציף של השורה הקדמית בהתקדמות. <img alt="איור 12" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig12.jpg" /> איור 12. שיקום של וריד השער. , ב. מלקחי יתושי clamping וריד השער קבוע בחימר מבוסס נפט ומשך לעבר hilum הכבד. CF. החדרת השרוול לתוך וריד הפורטל. <img alt="איור 13" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig13.jpg" /> איור 13. בנייה מחדש של העורק הכבד. , ב. </stron<html> ז&gt; החדרת סטנט לעורק הכבד הנפוץ הנמען (CHA) בהסתעפות של עורק הכבד התקין (PHA) ועורק gastroduodenal (GDA). <img alt="איור 14" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig14.jpg" /> איור 14. השקה של infrahepatic הווריד הנבוב. . התפרים להישאר בשתי הפינות. ב. תפר רציף של השורה האחורית. ג. תפר רציף של השורה הקדמית. ד. Reperfusion של infrahepatic הווריד הנבוב. קיצורים מוסברים באיור 2. <img alt="איור 15" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig15.jpg" /> איור 15. כל הליכי השיקום שיסיימו. קיצורים מוסברים באיור 2. <img alt="&lt;/ Html">&quot;איור 16&quot; src = &quot;/ files/ftp_upload/4376/4376fig16.jpg&quot; /&gt; איור 16 זמן כמובן לאחר ניתוח של שינויים ברמות סרום aminotransferase אלאנין (ALT) (n = 20, n = 5 בכל נקודת זמן).. נתונים באים לידי ביטוי כאמצעי עם ברי שגיאה המצביעים על סטיות תקן. רמות ALT הגיעו לשיא ב 24 שעות (212.6 ± 67.9 IU / L) ולאחר מכן ירד לגבולות נורמלים ב168 שעות (33.6 ± 6.8 IU / L).

Watch this Scientific Journal Video about Surgical Procedures for a Rat Model of Partial Orthotopic Liver Transplantation with Hepatic Arterial Reconstruction at JoVE.com

Surgical Procedures for a Rat Model of Partial Orthotopic Liver Transplantation with Hepatic Arterial Reconstruction

השתלת הכבד orthotopic בחולדות היא מודל ניסיון הכרחי למחקר ביו. כאן אנו מציגים הניתוחים שלנו להשתלת כבד חולדת orthotopic עם שחזור עורק כבד באמצעות 50% שתל חלקי.

ניתוחים למודל חולדה של השתלה כבדה orthotopic חלקית עם שחזור עורקית כבדיה

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats using a whole or partial graft is an indispensable experimental model for transplantation research, such as ...

surgical-procedures-for-rat-model-partial-orthotopic-liver

Research

JoVE Journal

Medicine

36.1K Views.  RWTH-Aachen University. השתלת הכבד orthotopic בחולדות היא מודל ניסיון הכרחי למחקר ביו. כאן אנו מציגים הניתוחים שלנו להשתלת כבד חולדת orthotopic עם שחזור עורק כבד באמצעות 50% שתל חלקי.

Video: Surgical Procedures for a Rat Model of Partial Orthotopic Liver Transplantation with Hepatic Arterial Reconstruction

Orthotopic Aortic Transplantation: A Rat Model to Study the Development of Chronic Vasculopathy

Research models of chronic rejection are essential to investigate pathobiological and pathophysiological processes during the development of transplant vasculopathy (TVP).
The commonly used animal model for cardiovascular chronic rejection studies is the heterotopic heart transplant model performed in laboratory rodents. This model is used widely in experiments since Ono and Lindsey (3) published their technique. To analyze the findings in the blood vessels, the heart has to be sectioned and all vessels have to be measured.
Another method to investigate chronic rejection in cardiovascular questionings is the aortic transplant model (1, 2). In the orthotopic aortic transplant model, the aorta can easily be histologically evaluated (2). The PVG-to-ACI model is especially useful for CAV studies, since acute vascular rejection is not a major confounding factor and Cyclosporin A (CsA) treatment does not prevent the development of CAV, similar to what we find in the clinical setting (4). A7-day period of CsA is required in this model to prevent acute rejection and to achieve long-term survival with the development of TVP.
This model can also be used to investigate acute cellular rejection and media necrosis in xenogeneic models (5).

This video demonstrates the orthotopic aortic transplant model as a simple model to study the development of transplant vasculopathy (TVP) in rats.

Orthotopic אבי העורקים להשתלות: מודל עכברוש לחקר התפתחות vasculopathy כרונית

Research models of chronic rejection are essential to investigate pathobiological and pathophysiological processes during the development of transplant ...

Orthotopic Liver Transplantation in Rats

Clinical progress in the field of liver transplantation has been largely supported by animal models1,2. Since the publication of the first orthotopic rat liver transplantation in 1979 by Kamada et al.3, this model has remained the gold standard despite various proposed alternative techniques4. Nevertheless, its broader use is limited by its steep learning curve5.
In this video paper, we show a simple and easy-to-establish revision of Kamada's two-cuff technique. The suprahepatic vena cava anastomosis is performed manually with a running suture, and the vena porta and infrahepatic vena cava anastomoses are performed utilizing a quick-linker cuff system6. Manufacturing the quick-linker kit is shown in a separate video paper.

We present an easy-to-establish revision of the classical two-cuff technique for orthotopic liver transplantation in rat.

השתלת כבד Orthotopic בחולדות

Clinical progress in the field of liver transplantation has been largely supported by animal models1,2. Since the publication of the first orthotopic rat ...

Heterotopic Auxiliary Rat Liver Transplantation With Flow-regulated Portal Vein Arterialization in Acute Hepatic Failure

In acute hepatic failure auxiliary liver transplantation is an interesting alternative approach. The aim is to provide a temporary support until the failing native liver has regenerated.1-3 The APOLT-method, the orthotopic implantation of auxiliary segments- averts most of the technical problems. However this method necessitates extensive resections of both the native liver and the graft.4 In 1998, Erhard developed the heterotopic auxiliary liver transplantation (HALT) utilizing portal vein arterialization (PVA) (Figure 1). This technique showed promising initial clinical results.5-6 We developed a HALT-technique with flow-regulated PVA in the rat to examine the influence of flow-regulated PVA on graft morphology and function (Figure 2).
A liver graft reduced to 30 % of its original size, was heterotopically implanted in the right renal region of the recipient after explantation of the right kidney.&#160; The infra-hepatic caval vein of the graft was anastomosed with the infrahepatic caval vein of the recipient. The arterialization of the donor&#8217;s portal vein was carried out via the recipient&#8217;s right renal artery with the stent technique. The blood-flow regulation of the arterialized portal vein was achieved with the use of a stent with an internal diameter of 0.3 mm. The celiac trunk of the graft was end-to-side anastomosed with the recipient&#8217;s aorta and the bile duct was implanted into the duodenum. A subtotal resection of the native liver was performed to induce acute hepatic failure. 7
In this manner 112 transplantations were performed. The perioperative survival rate was 90% and the 6-week survival rate was 80%. Six weeks after operation, the native liver regenerated, showing an increase in weight from 2.3&#177;0.8 g to 9.8&#177;1 g. At this time, the graft&#8217;s weight decreased from 3.3&#177;0.8 g to 2.3&#177;0.8 g.
We were able to obtain promising long-term results in terms of graft morphology and function. HALT with flow-regulated PVA reliably bridges acute hepatic failure until the native liver regenerates.

Auxiliary liver transplantation provides a temporary support in acute hepatic failure, until regeneration of the failing liver. The heterotopic auxiliary liver transplantation (HALT) with portal vein arterialization (PVA) renders sufficient liver function. We developed an analogous technique in the rat, to examine the influence of the portal vein arterialization on the morphology and function of the graft.

Heterotopic עזר עכברוש כבד השתלה עם זרימה מוסדר פורטל וריד Arterialization בכישלון חריף כבדית

In acute hepatic failure auxiliary liver transplantation is an interesting alternative approach. The aim is to provide a temporary support until the ...

Generation of a Humanized Mouse Liver Using Human Hepatic Stem Cells

A novel animal model involving chimeric mice with humanized livers established via human hepatocyte transplantation has been developed. These mice, in which the liver has been repopulated with functional human hepatocytes, could serve as a useful tool for investigating human hepatic cell biology, drug metabolism, and other preclinical applications. One of the key factors required for successful transplantation of human hepatocytes into mice is the elimination of the endogenous hepatocytes to prevent competition with the human cells and provide a suitable space and microenvironment for promoting human donor cell expansion and differentiation. To date, two major liver injury mouse models utilizing fumarylacetoacetate hydrolase (Fah) and uroplasminogen activator (uPA) mice have been established. However, Fah mice are used mainly with mature hepatocytes and the application of the uPA model is limited by decreased breeding. To overcome these limitations, Alb-toxin receptor mediated cell knockout (TRECK)/SCID mice were used for in vivo differentiation of immature human hepatocytes and humanized liver generation. Human hepatic stem cells (HpSCs) successfully repopulated the livers of Alb-TRECK/SCID mice that had developed lethal fulminant hepatic failure following diphtheria toxin (DT) treatment. This model of a humanized liver in Alb-TRECK/SCID mice will have functional applications in studies involving drug metabolism and drug-drug interactions and will promote other in vivo and in vitro studies.

Here, we present a novel humanized mouse liver model generated in Alb-toxin receptor mediated cell knockout (TRECK)/SCID mice following the transplantation of immature and expandable human hepatic stem cells.

דור של כבד עכבר אנושי באמצעות תאי גזע אנושי כבדיה

A novel animal model involving chimeric mice with humanized livers established via human hepatocyte transplantation has been developed. These mice, in ...

Method of Direct Segmental Intra-hepatic Delivery Using a Rat Liver Hilar Clamp Model

Major hepatic surgery with inflow occlusion, and liver transplantation, necessitate a period of warm ischemia, and a period of reperfusion leading to ischemia/reperfusion (I/R) injury with myriad negative consequences. Potential I/R injury in marginal organs destined for liver transplantation contributes to the current donor shortage secondary to a decreased organ utilization rate. A significant need exists to explore hepatic I/R injury in order to mediate its impact on graft function in transplantation. Rat liver hilar clamp models are used to investigate the impact of different molecules on hepatic I/R injury. Depending on the model, these molecules have been delivered using inhalation, epidural infusion, intraperitoneal injection, intravenous administration or injection into the peripheral superior mesenteric vein. A rat liver hilar clamp model has been developed for use in studying the impact of pharmacologic molecules in ameliorating I/R injury. The described model for rat liver hilar clamp includes direct cannulation of the portal supply to the ischemic hepatic segment via a side branch of the portal vein, allowing for direct segmental hepatic delivery. Our approach is to induce ischemia in the left lateral and median lobes for 60 min, during which time the substance under study is infused. In this case, pegylated-superoxide dismutase (PEG-SOD), a free radical scavenger, is infused directly into the ischemic segment. This series of experiments demonstrates that infusion of PEG-SOD is protective against hepatic I/R injury. Advantages of this approach include direct injection of the molecule into the ischemic segment with consequent decrease in volume of distribution and reduction in systemic side effects.

A unique rat liver hilar clamp model was developed for studying the impact of pharmacologic molecules in ameliorating ischemia-reperfusion injury. This model includes direct cannulation of the portal supply to the ischemic liver segment via a branch of the portal vein, allowing for direct hepatic delivery.

שיטה של ​​המגזרים הישירים Intra-כבדית משלוח באמצעות מודל קלאמפ עכברוש הכבד hilar

Major hepatic surgery with inflow occlusion, and liver transplantation, necessitate a period of warm ischemia, and a period of reperfusion leading to ...

Re-Arterialized Rat Partial Liver Transplantation with an in vivo Vessel-Oriented 70% Hepatectomy

Split liver transplantation and living liver donor liver transplantation were developed in the clinic to utilize liver organs in a more efficient manner. To better understand the mechanism behind these surgical procedures, a rat partial liver transplantation (PLTx) model was established for relevant surgical studies. Because of the complexity of the rat PLTx model, a protocol with detailed descriptions is required. An article published previously reported a protocol in which ex vivo hepatectomy was used to achieve 50% rat PLTx. In contrast to this protocol, we introduced a re-arterialized PLTx with an in vivo 70% hepatectomy. An updated vessel-oriented hepatectomy was incorporated into the rat PLTx to refine the microsurgical procedure. The portal veins and hepatic arteries of the left lateral lobe and the median lobe were individually dissected and ligated before removal of the liver parenchyma, thereby decreasing the probability of bleeding in the remnant liver stump. Furthermore, an end-to-side vessel anastomosis between the common hepatic artery and the enlarged proper hepatic artery was introduced to re-arterialize the hepatic artery. By using this end-to-side vessel anastomosis technique, the diameter of the anastomosis was enlarged, thereby decreasing the difficulty of hand suture and maintaining a high rate of anastomotic patency. Moreover, the cuff anastomosis of the infrahepatic vena cava was slightly modified. A section of circumferential liver parenchyma around the vena cava of a recipient was preserved during cuff anastomosis to maintain the three-dimensional shape of the vascular lumen. This section of liver parenchyma was removed after completing the anastomosis. With this modification, the step involving placement of stay sutures was omitted, thereby further shortening the cuff anastomosis time. By using this protocol of rat PLTx, a low liver enzyme level, an intact liver lobular architecture and a high survival rate were achieved after microsurgery.

Re-Arterialized Rat Partial Liver Transplantation with an in vivo Vessel-Oriented 70% Hepatectomy

Here, a protocol involving re-arterialized rat partial liver transplantation is presented. Specifically, 70% liver was resected in vivo by using an updated technique of vessel-oriented hepatectomy. The hepatic artery was reconstructed in an end-to-side manner. The cuff technique was modified to shorten the anastomosis time of the infrahepatic vena cava.

מחדש Arterialized השתלת הכבד חלקית עכברוש עם ויוו מונחה כלי 70% Hepatectomy

Split liver transplantation and living liver donor liver transplantation were developed in the clinic to utilize liver organs in a more efficient manner. ...

A Rat Model of Orthotopic Liver Transplantation Using a Novel Magnetic Anastomosis Technique for Suprahepatic Vena Cava Reconstruction

The rat model of orthotopic liver transplantation (OLT) is essential for transplant research. It is a very sophisticated animal model and requires a steep learning curve. The introduction of the cuff technique for anastomosis of the portal vein (PV) and infrahepatic vena cava (IHVC) has significantly simplified the transplant procedure in rats. However, due to the short anterior wall of the recipients' suprahepatic vena cava (SHVC), the cuff technique is very difficult to use for the reconstruction of the SHVC. Most researchers in this field still use the hand-suture technique for SHVC reconstruction, which makes it the bottleneck step in rat orthotopic liver transplantation. The magnetic anastomosis technique (i.e., magnamosis) is a method of connecting two vessels using the attractive force between two magnets. Our recent study has shown that the magnetic anastomosis technique is superior to the hand-suture technique for SHVC reconstruction in rats. In this article, we show a step-by-step protocol for SHVC reconstruction in rats using the novel magnetic anastomosis technique. In this model, the reconstruction of the PV and IHVC was performed by the standard cuff technique, while the reconstruction of the bile duct (BD) was performed by a stent technique. The hepatic re-arterialization was not performed. The magnetic anastomosis technique made SHVC reconstruction much easier and significantly shortened the anphepatic phase. After a reasonable learning curve, even researchers without advanced microsurgical skills can produce reliable and reproducible results using this rat model of OLT.

The reconstruction of the suprahepatic vena cava (SHVC) remains a difficult step in rat orthotopic liver transplantation. In this article, we show a step-by-step protocol for SHVC reconstruction in rats using a novel magnetic anastomosis technique.

מודל עכברוש של Orthotopic השתלת כבד בטכניקה השקה מגנטיים חדשניים עבור שחזור הנבוב Suprahepatic

The rat model of orthotopic liver transplantation (OLT) is essential for transplant research. It is a very sophisticated animal model and requires a steep ...

A Pre-Clinical Porcine Model of Orthotopic Heart Transplantation

Fifty-years following the first successful report, cardiac transplantation remains the gold-standard treatment for eligible patients with advanced heart failure. Multiple small-animal models of heart transplantation have been used to study the acute and long-term effects of novel therapies. However, few are tested and demonstrated success in clinical trials. It is of critical importance to evaluate new therapies in a clinically relevant large-animal model for efficient and reliable translation of basic studies&#39;&#160;findings. Here, we describe a pre-clinical large-animal (porcine) model of orthotopic heart transplantation that has been firmly established and previously used to investigate novel cardioprotective strategies. This procedure focuses on acute ischemia-reperfusion injury and is a reliable method to investigate novel interventions which have been tested and validated in smaller experimental models, such as the murine model. We demonstrate its usefulness in assessing cardiac performance during the early post-transplantation period and other potential possibilities enabled by the model.

Here, we describe a pre-clinical large-animal (porcine) model of orthotopic heart transplantation that has been firmly established and utilized to investigate novel cardioprotective strategies.

מודל הפרה-קליני של השתלת לב אורתוטופית

Fifty-years following the first successful report, cardiac transplantation remains the gold-standard treatment for eligible patients with advanced heart ...

Orthotopic Rat Kidney Transplantation: A Novel and Simplified Surgical Approach

Kidney transplantation offers increased survival rates and improved quality of life for patients with end-stage renal disease, as compared to any type of renal replacement therapy. Over the past few decades, the rat kidney transplantation model has been used to study the immunological phenomena of rejection and tolerance. This model has become an indispensable tool to test new immunomodulatory pharmaceuticals and regimens prior to proceeding with expensive preclinical large animal studies.
This protocol provides a detailed overview of how to reliably perform orthotopic kidney transplantation in rats. This protocol includes three distinctive steps that increase the probability of success: perfusion of the donor kidney by flushing through the portal vein and the use of a cuff system to anastomose the renal veins and ureters, thereby decreasing cold and warm ischemia times. Using this technique, we have achieved survival rates beyond 6 months with normal serum creatinine in animals with syngeneic or tolerant kidney transplants. Depending on the aim of the study, this model can be modified by pre- or posttransplant treatments to study the acute, chronic, cellular, or antibody-mediated rejection. It is a reproducible, reliable, and cost-effective animal model to study different aspects of kidney transplantation.

The purpose of this manuscript and protocol is to explain and demonstrate in detail the surgical procedure of orthotopic kidney transplantation in rats. This method is simplified to achieve the correct perfusion of the donor kidney and shorten the reperfusion time by using the venous and ureteral cuff anastomosis technique.

אורתובנושא חולדה השתלת כליה: מגישת רומן וכירורגית פשוטה

Kidney transplantation offers increased survival rates and improved quality of life for patients with end-stage renal disease, as compared to any type of ...

Generation of a Rat Model of Acute Liver Failure by Combining 70% Partial Hepatectomy and Acetaminophen

Acute liver failure (ALF) is a clinical condition caused by various etiologies resulting in the loss of metabolic, biochemical, synthesizing, and detoxifying functions of the liver. In most irreversible liver damage cases, orthotropic liver transplant (OLT) remains the only available treatment. To study the therapeutic potential of a treatment for ALF, its prior testing in an animal model of ALF is essential. In the current study, an ALF model in rats was developed by combining 70% partial hepatectomy (PHx) and injections of acetaminophen (APAP) that provides a therapeutic window of 48 h. The median and left lateral lobes of the liver were removed to excise 70% of the liver mass and APAP was given 24 h postsurgically for 2 days. Survival in ALF-induced animals was found to be severely decreased. The development of ALF was confirmed by altered serum levels of the enzymes alanine amino transferase (ALT), aspartate amino transferase (AST), alkaline phosphatase (ALP); changes in prothrombin time (PT); and assessment of the international normalized ratio (INR). Study of the gene expression profile by qPCR revealed an increase in expression levels of genes involved in apoptosis, inflammation, and in the progression of liver injury. Diffused degeneration of hepatocytes and infiltration of immune cells was observed by histological evaluation. The reversibility of ALF was confirmed by the restoration of survival and serum levels of ALT, AST, and ALP after intrasplenic transplantation of syngeneic healthy rat hepatocytes. This model presents a reliable alternative to the available ALF animal models to study the pathophysiology of ALF as well as to evaluate the potential of a novel therapy for ALF. The use of two different approaches also makes it possible to study the combined effect of physical and drug-induced liver injury. The reproducibility and feasibility of current procedure is an added benefit of the model.

The acute liver failure animal model developed in the current study presents a feasible alternative for the study of potential therapies. The current model employs the combined effect of physical and drug-induced hepatic injury and provides a suitable time window to study the potential of novel therapies.