CT נתמך על ידי השוויצרי הקרן הלאומית למדע (דירוג מענק 3,232,230-126233). המחקר נתמך על ידי קרן Artères, קרן Astellas אירופה וקרן Boninchi.

1. התורם מבצע <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרדים חולדות זכרים במשקל של 200 ± 20 גרם עם isoflurane חרוט על המסכה (3% לזירוז, 2% במהלך המבצע, 1 ליטר / דקה זרימת אוויר, FiO2 70%). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בצע laparotomy חציון רוחבי גדול לצרוב את כלי הבטן העליונים בשני הצדדים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חותכים רצועה falciform, ולהפריד את הווריד סרעפתי שמאל מ suprehepatic הווריד הנבוב. בסופו של דבר, לחלק את הווריד סרעפתי בין שני 7-0 ליגטורות משי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חותכים את המשולש השמאלי הכבד הקיבה הרצועות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחלק את הרצועה hepato-הוושט ואת העורק בין 7-0 ליגטורות (קרישה היא אלטרנטיבה חוקית). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לבודד את infrahepatic הווריד הנבוב עד וריד הכליה השמאלית. הפרד את הווריד כליות כבר מן הרקמות הסובבות ולחלק אותו בין 10-0 ו 7-0 ליגטורה, על קצות הפרוקסימלית ומ הדיסטלי שלה, בהתאמה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מחלקים את הווריד הנכון בין suprarenal ligatur 7-0es ללא תשלום כבד מן הרצועות האחוריים שלה על ידי חיתוך עדין תחת תאוצה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לבודד את הווריד gastrosplenic ולחלק אותו בין 10-0 ו 7-0 ליגטורה, על קצות הפרוקסימלית ומ הדיסטלי שלה, בהתאמה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מחלקים את עורק הכבד ראוי בין 7-0 קשרים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לבודד את הווריד duodeno-הלבלב לחלק אותו בין 10-0 ו 7-0 ליגטורה, בצד הפרוקסימלי ו הדיסטלי שלה, בהתאמה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנס 22g, 3.5 סטנט מ&quot;מ לתוך צינור המרה המשותף על ידי תרגול חתך קטן במרחק 1 ס&quot;מ מן hilum הכבד. להבטיח את סטנט בעמדה עם הקשירה 7-0. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להזריק 10 UI של הפרין, בדילול אל מ&quot;ל 1 של מלח רגיל, דרך וריד הגב של הפין. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Cannulate פורטה הנבוב (במידת האפשר מן hilum) עם מחט 21G בעדינות לשטוף את הכבד עם 20 מ&quot;ל של חומצת חלב קר הצלצול (או פתרונות שימור אחרים). יחד עם זאת, לחתוך את הווריד הנבוב מתחת ורידים כליות לאפשר outfl הולםאיי. זלוף כבד קר צריך להימשך בין שעה 2 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חותכים את פורטה הנבוב וריד מתחת duodeno-הלבלב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חותכים את צינור המרה המשותף distally כדי התלייה סביב הסטנט. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השלם את החתך של infrahepatic הווריד הנבוב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חותכים את הווריד הנבוב suprahepatic רזה כדי הסרעפת ולהסיר את הכבד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את הכבד לתוך הכיור מלא לקטט הצלצול קר להניח את הכיור על משטח קרח. </li></ol> 2. שתל הכנה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנס את פורטה הנבוב לתוך השרוול שלה, אז אוורט כלי מסביב לקצה לחשוף את אינטימה. להבטיח את קטע everted על השרוול עם הקשירה 7-0. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחזור על אותה פעולה על infrahepatic הווריד הנבוב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מקם מהדק מיקרו (4-6 מ&quot;מ אורך) מצד הפרוקסימלי של infrahepatic הווריד הנבוב. פעולה זו נמנע איבוד דם לאחר reperfusion הפורטל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להפוך את הכבד להוסיף שני prolene 8-0 תפריםבקצוות מנוגדים של לרוחב suprahepatic הווריד הנבוב, מהחוץ אל הפנים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אחסן את השתל (שקוע בפתרון לקטט הצלצול) במקרר ב 0-4 ° C. </li></ol> 3. המקבל מבצע <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרדים חולדות זכרים במשקל של 200 ± 20 גרם עם isoflurane חרוט על המסכה (3% לזירוז, 2% במהלך המבצע, 1 ליטר / דקה זרימת אוויר, FiO2 70%) ולשמור על משטח חם. ראוי לציין, משקולות הנמען התורם צריך להתאים (± 40 גרם). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להזריק 10 מ&quot;ל של תמיסת מלח רגיל תת עורית ו 0.03 גרם של piperacillin / tazobactam שרירית לפני laparotomy. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ביצוע פיום בטן קו האמצע xipho-הערווה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להפוך את התהליך עם xiphoid אוטומטי סטטי מלקחיים כדי להיטיב לחשוף את הכבד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חותכים את הרצועות הקדמי ולחלק את הווריד סרעפתי השמאלי בין שני 7-0 קשרים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחלק את הרצועה hepato-הוושט ואת העורק בין 7-0 ליגטורות (coagulation היא אלטרנטיבה חוקית). לא רואים בסרט (זהה לפעולת התורם). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לבודד את infrahepatic הווריד הנבוב עד וריד הכליה הימנית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מחלקים את הווריד suprarenal הנכון בין 7-0 ליגטורות והכבד חינם מן הרצועות האחוריים שלה על ידי חיתוך עדין תחת תאוצה (לא רואים בסרט (זהה לפעולת התורם)). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים תחבושת סביב 7-0 בצינור המרה המשותף, ממש מתחת וחלוקתו. במילים אחרות ליגטורה מילימטר אחד מתחת וחותכים באמצע. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לבודד את עורק הכבד על hilum ולחלק אותו בין 7-0 ליגטורות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעדינות להפריד סניפים פורטל על ימין ועל שמאל. שימו לב לא לפגוע בעורק הכבד הנפוצה או וריד הטחול הקיבה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מקם את טבעת caval סביב הווריד הנבוב, cranially אל וריד הכליה הימנית. ואז להבטיח את הקיר כלי לזירה על ידי הצבת ארבעה היסוד 9-0 תפרים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחזור על הפעולה גם עם טבעת על הפורטל פורטה הנבוב. </li&gt; <li style=";text-align:right;direction:rtl"> להזריק 10 UI של הפרין, בדילול אל מ&quot;ל 1 של מלח רגיל, דרך וריד הגב של הפין. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הגדר את ההרדמה על 0.25% ו FiO2 על 100%. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הצמד infrahepatic הווריד הנבוב בדיוק מעל עורק הכליה הימנית, ואז לצבוט פורטה הנבוב בדיוק מעל עורק הקיבה הטחול. לבסוף לצבוט suprahepatic הווריד הנבוב להיות בטוח לכלול לפחות 2 מ&quot;מ של הסרעפת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חותכים את suprahepatic הנבוב קאווה קרוב ל parenchyma. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חותכים שמאלה הענפים פורטל הנכונות לחלק את מחיצת באמצע. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חותכים את infrahepatic הנבוב קאווה קרוב ל parenchyma, לשים לב שלא לחתוך כל אחד התפרים ממוקמים בעבר. הסר את הכבד ומניחים שתל לתוך חלל הבטן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ביצוע השקה קצה לקצה בין קאווה suprahepatic הנבוב של השתל לבין הנמען. התחל עם תפר את ניהול הקיר האחורי משמאל לימין, ואז להמשיך על הקיר הקדמי מימין להמטר שמור תפר הקדמי רופף עד תום על מנת לאפשר שטיפה נדיבה של לומן הפנים לפני הידוק הקצוות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנס את הסניף הזנב של approximator לתוך ידית טבעת פורטל, ואז להכניס את פורטה הנבוב של השתל לתוך החריץ של הסניף הגולגולת של approximator, עם השרוול פורטל למצוא את מעמדה לחריץ. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סגור את approximator בזמן השטיפה הנבוב של הנמען פורטה עם מלח רגיל ולאפשר השרוול כדי להכניס לתוך כלי. אבטחת הנבוב של הנמען פורטה סביב השרוול שלה עם עניבה 7-0 ההיקפי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את approximator. פתח את מהדק על suprahepatic הווריד הנבוב ו פורטה הנבוב על מנת: זרימת פורטל כעת מחדש. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את הטבעת הפורטל על ידי חיתוך של 9-0 ליגטורות עם תוספת עדין מספריים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנס את הסניף הזנב של approximator לתוך ידית טבעת caval, ואז להכניס את infrahepatic הווריד הנבוב של השתל לתוך החריץ של הגולגולת<html> סניף של approximator, עם השרוול caval למצוא את מעמדה לחריץ. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סגור את approximator בזמן השטיפה infrahepatic הנבוב של הנמען קאווה עם מלח רגיל ולאפשר השרוול כדי להכניס לתוך כלי. אבטחת הנבוב של הנמען קאווה סביב השרוול שלה עם עניבה 7-0 ההיקפי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את approximator. פתח את microclamps על infrahepatic הווריד הנבוב של השתל לבין הנמען על מנת: זרימה ורידית כעת מחדש. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מבצעים חתך חלקי של צינור המרה המשותף של הנמען, חל המתיחה עדינה כלפי הראש, להכניס את הצד ללא סטנט מוכנס לתוך בעבר בצינור המרה של השתל. להבטיח את סטנט עם עניבה 7-0 ההיקפי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סגור את בעלי החיים על ידי שכבות עם 5-0 תפרים. אפשר מים אוכל חופשי מ התעוררות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ניהול כאבים יעיל פי פרוטוקולים מוסדיים מקומיים. תקופת מינימום של 24 שעות מומלץ. </li></ol>&quot;_content&gt; שים לב: מקצה לקצה עורק השקה כבד יכול להתבצע, כאשר נדרש על ידי עיצוב ניסיוני (עורק אינה נדרשת להישרדות ארוכת טווח על הכבד השתלת חולדה). 4. נציג תוצאות הטכניקה המתוארת ניתן לשלוט בהצלחה לאחר כ -10 ניתוחים על ידי צוות ההדרכה שלנו. זה מותר 100% לטווח ארוך (&gt; 21 יום) על הישרדות 36 ברציפות לואיס אל לואיס כהים agouti אל לואיס השתלות, לאחר תקופת אימונים קצרה (מספר מקבלי שוחד syngeneic כבד נשמרו בחיים במשך 12 חודשים). לאחר syngeneic יום השתלת כבד 1 בדיקות תפקוד הראה טרנסאמינזות aspartate החציוני (AST): 84 U / L (51.7-92.7) ו החציוני טרנסאמינזות אלאנין (ALT): 172.5 U / L (127.5-240.2). בשלב anhepatic ממוצע (מ הנבוב פורטה מהדק את השתל מחדש זלוף) היה 14 ± 2 דקות, בצעד הארוך ביותר להיות suprahepatic הווריד הנבוב השקה (ריצה שלuture) הזמן 9 ± 2 דקות. המערכת מהירה מקשר מותר המיקום של 1.55 מ&quot;מ, נשא האזיקים על הנבוב פורטה ו 2.40 מ&quot;מ, נשא האזיקים על הווריד הנבוב (מקבלי במשקל 200 ± 20 גרם). לעומת זאת, כאשר ניסינו השתלה באמצעות טכניקה של קמהדע, הם לא יכלו לעלות על 1.40 מ&quot;מ ו 2.16 מ&quot;מ, בהתאמה (חולדות תואמים עבור מתח ומשקל). כפי שניתן לראות בתרשים 7, מהיר מקשר הטבעות נועדו לשמור על כלי המקבל על מתיחה אופטימלית, המאפשרת קליפר מינימום בזבוז אורך, שתוצאתה קרוב יותר אל פיזיולוגיים תוצאות המודינמים. <img src="/files/ftp_upload/4143/4143fig1.jpg" alt="איור 1" /> באיור 1. אמצעים טבעות. <img src="/files/ftp_upload/4143/4143fig2.jpg" alt="איור 2" /> איור 2. אמצעים Microclamps. <img src="/files/ftp_upload/4143/4143fig3.jpg" alt="איור 3" /> באיור 3. מהיר מקשר קיט. <img src="/files/ftp_upload/4143/4143fig4.jpg" alt="איור 4" /> איור 4. מהיר מקשר מזוין. <img src="/files/ftp_upload/4143/4143fig5.jpg" alt="איור 5" /> איור 5. מהיר מקשר סגור. <img src="/files/ftp_upload/4143/4143fig6.jpg" alt="איור 6" /> איור 6. מהדק SHVC. <img src="/files/ftp_upload/4143/4143fig7.jpg" alt="איור 7" /> איור 7. קלאסיקה לעומת מהיר מקשר בסיוע השרוול, השקה ופרמטרים המודינמיים. <img src="/files/ftp_upload/4143/4143fig8.jpg" alt="איור 8" /> איור 8. תורמים והכנת העור של הנמען ואת החתך.

<ol>
	<li>Starzl, T. E., Marchioro, T. L., Porter, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experimental+and+clinical+observation+after+homotransplantation+of+the+whole+liver.">Experimental and clinical observation after homotransplantation of the whole liver.</a> Revue internationale d'hepatologie. 15, 1447 (1965).</li><li>Starzl, T. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evolution+of+liver+transplantation.">Evolution of liver transplantation.</a> Hepatology. 2, 614S-636S (1982).</li><li>Kamada, N., Calne, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat.+Technique+using+cuff+for+portal+vein+anastomosis+and+biliary+drainage.">Orthotopic liver transplantation in the rat. Technique using cuff for portal vein anastomosis and biliary drainage.</a> Transplantation. 28, 47 (1979).</li><li>Kashfi, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+review+of+various+techniques+of+orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat.">A review of various techniques of orthotopic liver transplantation in the rat.</a> Transplantation proceedings. 37, 185-188 (2005).</li><li>Hori, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comprehensive+and+innovative+techniques+for+liver+transplantation+in+rats:+A+surgical+guide.">Comprehensive and innovative techniques for liver transplantation in rats: A surgical guide.</a> World Journal of Gastroenterology: WJG. 16, 3120 (2010).</li><li>Oldani, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+technique+for+rat+liver+transplantation+using+Quick+Linker+system:+a+preliminary+result.">A novel technique for rat liver transplantation using Quick Linker system: a preliminary result.</a> Journal of Surgical Research. 149, 303-309 (2008).</li><li>Nosaka, T., Bowers, J. L., Cay, O., Clouse, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biliary+complications+after+orthotopic+liver+transplantation+in+rats.">Biliary complications after orthotopic liver transplantation in rats.</a> Surg. Today. 29, 963-965 (1999).</li><li>Li, G. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High+incidence+of+biliary+complications+in+rat+liver+transplantation:+can+we+avoid+it.">High incidence of biliary complications in rat liver transplantation: can we avoid it.</a> World J. Gastroenterol. 17, 3140-3144 (2011).</li><li>Peng, Y., Gong, J. P., Yan, L. N., Li, S. B., Li, X. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improved+two-cuff+technique+for+orthotopic+liver+transplantation+in+rat.">Improved two-cuff technique for orthotopic liver transplantation in rat.</a> Hepatobiliary Pancreat. Dis. Int. 3, 33-37 (2004).</li><li>Urata, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Decreased+survival+in+rat+liver+transplantation+with+extended+cold+preservation:+role+of+portal+vein+clamping+time.">Decreased survival in rat liver transplantation with extended cold preservation: role of portal vein clamping time.</a> Hepatology. 28, 366-373 (1998).</li></ol>

אין ניגוד עניינים הצהיר.

עכברוש הנוכחי הכבד השתלת המודל ניתן לקבוע בקלות. מניסיוננו, כמה נקודות מפתח למזער את הסיכון למוות (≤ 20%). מקרי המוות הראשונים, המתרחשים בתוך שלוש השעות הראשונות של reperfusion, הם בדרך כלל עקב אוטם שריר המעי, כתוצאה של פורטל לחיצה ארוכה. לכן מומלץ לשמור את השלב anhepatic בתוך מגבלת האידיאלי של 15 דקות (20 דקות עדיין מקובל). תסחיף אוויר מרכזי יכול להיות גם הגורם למוות פתאומי וזה חובה לשטוף את כל הוורידים לפני השקה. מקרי מוות שאירעו בין יום לאחר הניתוח 1 ו 3 הם בדרך כלל בשל אי ספיקת כבד או פקקת של הווריד הנבוב. יש אפוא להימנע מכל שתל אגרסיבי שטיפה לפני explantation של התורם (אנחנו שטוף עם 20 מ&quot;ל במשך כ 60 שניות) ולהבטיח שמירה קר המתאים (טבילה מלאה תוך 0-4 מעלות צלזיוס פתרון הצלצול לקטט). הסיכון של פקקתניתן לצמצם על ידי צמצום מניפולציה של אינטימה ושמירה על שלמותו. אנחנו לא ממליצים להשתמש קרישה לאחר הניתוח. מקרי המוות בין יום לאחר הניתוח 4 ו 9 קשורות לעיתים קרובות cholangitis חיידקי 7. בהתבסס על הניסיון שלנו, מנה בודדת של piperacilline / tazobactam (0.03 גר &#39;) ניתן לפני laparotomy מספיקה כדי למזער את הסיכון לזיהום צינור המרה המשותף. המוות הוא אירוע נדיר אחרי יום 10. עם זאת, בשל היעדר זרימת עורקים, הדביק כמה בעיות המרה ניתן לראות עם cholastasis 8. בהתאם לצרכים של החוקר arterialization ניתן לשקול 9. ראוי לציין, זמן איסכמיה קר עד 24 שעות יכול להיחשב 10 מקובלת. המערכת מהירה מקשר תוכנן במקור כדי לבצע השתלת כבד עם שלושה anastomoses השרוול (שלב anhepatic קצר מאוד). עם זאת, שלושה השרוול technique מחייב שימוש מחוגה קטנים מאוד השרוול suprahepatic הנבוב (SHVC) קאווה ואת זה לא היה מקובל בשל הסיכון של זרם בעיות בכבד 11-14. לפיכך, אנו מעדיפים מהיר מקשר טכניקה בסיוע שלושה השרוול רק כאשר לעתים איסכמיה חמים קצר יותר מעשר דקות נדרשים. במרבית המחקרים לעומת זאת, שלבי ההשתלה עד 15-18 דקות מקובלים, המאפשר את השימוש בטכניקה של שתי השרוול, ואת ניקוז SHVC פיזיולוגי יותר. כפי שניתן לראות במאמר זה וידאו, אנחנו משתמשים באופן שגרתי מערכת מהיר מקשר בחלק השני של ההשתלה בלבד. בעוד זמן כירורגית נוספת נדרש למקם את מהיר מקשר ידיות, בחלק זה של ההליך קשורה סיכונים מינימליים ומאפשר קיצור של השלב תודה קריטיים anhepatic ל הוספות חפתים קל. יתרונות נוספים של המערכת מהיר מקשר הם טובים יותר שתל הנמען יישור כלי ושימוש באזיקים רחב יותר עם תוצאות טובות יותר בהשוואה המודינמיםהטכניקות המתוארות לעיל (כולל אחד שתואר על ידי קמהדע et al.) 6 (איור 7).

<table border="1" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td> כלי / מגיב </td><td> חברה </td><td> קטלוג n. </td><td> הערה </td></tr><tr><td> פורטל השרוול </td><td> <a href="http://altecweb.com" target="_blank">altecweb.com</a> או <a href="http://smiths-medical.com" target="_blank">Smiths-medical.com</a> </td><td> קויל 01-96-1729 800/100/420 </td><td> משעמם: 1.55mm הכותל: 0.30mm אורך: 3.5 מ&quot;מ </td></tr><tr><td> Infrahepatic נ &#39;קאווה השרוול </td><td> <a href="http://altecweb.com" target="_blank">altecweb.com</a> או <a href="http://smiths-medical.com" target="_blank">Smiths-medical.com</a> </td><td> קויל 01-96-1733 800/100/540 </td><td> משעמם: 2.40mm הכותל: 0.30mm <br/&gt; אורך: 3.5 מ&quot;מ </td></tr><tr><td> סטנט המרה המשותף צינור </td><td> המשותף 22g venflon </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 7-0 משי קשרים </td><td> <a href="http://georgetiemann.com" target="_blank">georgetiemann.com</a> </td><td> 160-1226-7 / 0 </td><td></td></tr><tr><td> 10-0 prolene </td><td> <a href="http://ethicon.com" target="_blank">ethicon.com</a> </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 9-0 prolene </td><td> <a href="http://ethicon.com" target="_blank">ethicon.com</a> </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 8-0 prolene </td><td> <a href="http://ethicon.com" target="_blank">ethicon.com</a> </td><td></td><td></td></tr><tr><td> מלקחיים מיקרו ישרים </td><td> <a href="http://s-and-t.net" target="_blank">S-ו-T</a>NET. </td><td> FRC-15RM-8 </td><td></td></tr><tr><td> מלקחיים מיקרו מעוקלים </td><td> <a href="http://s-and-t.net" target="_blank">s-and-t.net</a> </td><td> FRS-15-RM-8 </td><td></td></tr><tr><td> דיסקציה מחט בעל </td><td> <a href="http://s-and-t.net" target="_blank">s-and-t.net</a> </td><td> B-15-8.2 </td><td></td></tr><tr><td> השקה מחט בעל </td><td> <a href="http://rumex.net" target="_blank">rumex.net</a> </td><td> 8-021T </td><td></td></tr><tr><td> מיקרו מלחציים </td><td> <a href="http://finescience.com" target="_blank">finescience.com</a> </td><td> 18055-03 </td><td> 6 x 1mm </td></tr><tr><td> המוליך מהדק Micro </td><td> <a href="http://finescience.com" target="_blank">finescience.com</a> </td><td> 18057-14 </td><td></td></tr&gt; <tr><td> Suprahepatic נ &#39;קאווה מהדק </td><td> <a href="http://pharmap.ch" target="_blank">pharmap.ch</a> </td><td> 13.349.14 </td><td></td></tr><tr><td> מהיר מקשר טבעות </td><td> <a href="http://dltchiropody.co.uk" target="_blank">dltchiropody.co.uk</a> </td><td> PAR 10 </td><td> להבי אזמל הניתוחים שונה </td></tr><tr><td> Quick-Linker approximator </td><td> <a href="http://pharmap.ch" target="_blank">pharmap.ch</a> </td><td> א.ד.-04-275 </td><td> שונה Kocher של המלקחיים </td></tr></tbody></table>

orthotopic liver transplantation in rats

התקדמות קלינית בתחום השתלת כבד נתמכה בעיקר על ידי 1,2 חיה מודלים. מאז פרסום השתלת כבד 1 orthotopic חולדה בשנת 1979 על ידי קמהדע et al. 3, מודל זה נותר תקן הזהב למרות שונים טכניקות חלופיות המוצעות 4. אף על פי כן, השימוש הרחב בו מוגבל על ידי עקומת למידה תלולה שלו 5. במאמר זה וידאו, אנחנו מצביעים על גרסה פשוטה וקלה ליצור בטכניקה של קמהדע שתי השרוול. Suprahepatic הווריד הנבוב השקה מתבצעת באופן ידני עם תפר רץ, פורטה הווריד הנבוב ו infrahepatic anastomoses הנבוב מבוצעות תוך שימוש במערכת מהיר מקשר השרוול 6. ייצור ערכת מהיר מקשר מוצג במאמר וידאו נפרד.

Watch this Scientific Journal Video about Orthotopic Liver Transplantation in Rats at JoVE.com

Orthotopic Liver Transplantation in Rats

אנו מציגים גרסה לא קל ליצור בטכניקה של שתי השרוול קלאסית השתלת כבד orthotopic בחולדה.

השתלת כבד Orthotopic בחולדות

Clinical progress in the field of liver transplantation has been largely supported by animal models1,2. Since the publication of the first orthotopic rat ...

Research

JoVE Journal

Medicine

29.6K Views.  University of Geneva Hospitals. אנו מציגים גרסה לא קל ליצור בטכניקה של שתי השרוול קלאסית השתלת כבד orthotopic בחולדה.

Video: Orthotopic Liver Transplantation in Rats

Development of Obliterative Bronchiolitis in a Murine Model of Orthotopic Lung Transplantation

Orthotopic lung transplantation in rats was first reported by Asimacopoulos and colleagues in 1971 1. Currently, this method is well accepted and standardized not only for the study of allo-rejection but also between syngeneic strains for examining mechanisms of ischemia-reperfusion injury after lung transplantation. Although the application of the rat and other large animal model 2 contributed significantly to the elucidation of these studies, the scope of those investigations is limited by the scarcity of knockout and transgenic rats. Due to no effective therapies for obliterative bronchiolitis, the leading cause of death in lung transplant patients, there has been an intensive search for pre-clinical models that replicate obliterative bronchiolitis. The tracheal allograft model is the most widely used and may reproduce some of the histopathologic features of obliterative bronchiolitis 3. However, the lack of an intact vasculature with no connection to the recipient's conducting airways, and incomplete pathologic features of obliterative bronchiolitis limit the utility of this model 4. Unlike transplantation of other solid organs, vascularized mouse lung transplants have only recently been reported by Okazaki and colleagues for the first time in 2007 5. Applying the basic principles of the rat lung transplant, our lab initiated the obliterative bronchiolitis model using minor histoincompatible antigen murine orthotopic single-left lung transplants which allows the further study of obliterative bronchiolitis immunopathogenesis6.

Obliterative bronchiolitis is the key impediment to the long-term survival of lung transplant recipients and the lack of a robust preclinical model precludes examining obliterative bronchiolitis immunopathogenesis. Unlike other solid organ transplants, vascularized mouse lung transplantation has only recently been developed. Here we show our independently developed obliterative bronchiolitis model after murine orthotopic single-lung transplantation.

פיתוח Bronchiolitis סותם במודל Murine של השתלת ריאות Orthotopic

Orthotopic lung transplantation in rats was first reported by Asimacopoulos and colleagues in 1971 1. Currently, this method is well accepted and ...

Orthotopic Small Bowel Transplantation in Rats

Small bowel transplantation has become an accepted clinical option for patients with short gut syndrome and failure of parenteral nutrition (irreversible intestinal failure). In specialized centers improved operative and managing strategies have led to excellent short- and intermediate term patient and graft survival while providing high quality of life 1,3. Unlike in the more common transplantation of other solid organs (i.e. heart, liver) many underlying mechanisms of graft function and immunologic alterations induced by intestinal transplantation are not entirely known6,7. Episodes of acute rejection, sepsis and chronic graft failure are the main obstacles still contributing to less favorable long term outcome and hindering a more widespread employment of the procedure despite a growing number of patients on home parenteral nutrition who would potentially benefit from such a transplant. The small intestine contains a large number of passenger leucocytes commonly referred to as part of the gut associated lymphoid system (GALT) this being part of the reason for the high immunogenity of the intestinal graft. The presence and close proximity of many commensals and pathogens in the gut explains the severity of sepsis episodes once graft mucosal integrity is compromised (for example by rejection). To advance the field of intestinal- and multiorgan transplantation more data generated from reliable and feasible animal models is needed. The model provided herein combines both reliability and feasibility once established in a standardized manner and can provide valuable insight in the underlying complex molecular, cellular and functional mechanisms that are triggered by intestinal transplantation. We have successfully used and refined the described procedure over more than 5 years in our laboratory 8-11. The JoVE video-based format is especially useful to demonstrate the complex procedure and avoid initial pitfalls for groups planning to establish an orthotopic rodent model investigating intestinal transplantation.

Small bowel transplantation has become an accepted treatment option for patients with irreversible intestinal failure. Our experimental model of orthotopic small bowel transplantation in rats serves as a reliable tool to address underlying immunologic and inflammatory processes that complicate intestinal transplantation.

השתלות מעי דק orthotopic בחולדות

Small  bowel transplantation has become an accepted clinical option for patients with  short gut syndrome and failure of parenteral nutrition ...

Orthotopic Aortic Transplantation in Mice for the Study of Vascular Disease

Vascular procedures involving anastomoses in the mouse are generally thought to be difficult and highly dependent on the skill of the individual surgeon. This is largely true, but there are a number of important principles that can reduce the difficulty of these procedures and enhance reproducibility. Orthotopic aortic transplantation is an excellent procedure in which to learn these principles because it involves only two end-to-end anastomoses, but requires good suturing technique and handling of the vessels for consistent success. This procedure begins with the procurement of a length of abdominal aorta from a donor animal, followed by division of the native aorta in the recipient. The procured aorta is then placed between the divided ends of the recipient aorta and sutured into place using end-to-end anastomoses. To accomplish this objective successfully requires a high degree of concentration, good tools, a steady hand, and an appreciation of how easily the vasculature of a mouse can be damaged, resulting in thrombosis. Learning these important principles is what occupies most of the beginner's time when learning microsurgery in small rodents. Throughout this protocol, we refer to these important points. This model can be used to study vascular disease in a variety of different experimental systems1-8. In the context shown here, it is most often used for the study of post-transplant vascular disease, a common long-term complication of solid organ transplantation in which intimal hyperplasia occurs within the allograft. The primary advantage of the model is that it facilitates quantitative morphometric analyses and the transplanted vessel lies contiguous to the endogenous vessel, which can serve as an additional control9. The technique shown here is most often used for mice weighing 18-25 grams. We have accumulated most of our experience using the C57BL/6J, BALB/cJ, and C3H/HeJ strains.

We describe a technique in which a section of the abdominal aorta from a mouse is transplanted orthotopically to just below the renal arteries in an allogeneic or syngeneic recipient. This technique can be useful in studies in which transplantation of large arteries of uniform size is deemed advantageous.

השתלת אב עורקים בעכברי orthotopic לחקר מחלת כלי דם

Vascular procedures involving anastomoses in the mouse are generally thought to be difficult and highly dependent on the skill of the individual surgeon. ...

Surgical Procedures for a Rat Model of Partial Orthotopic Liver Transplantation with Hepatic Arterial Reconstruction

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats using a whole or partial graft is an indispensable experimental model for transplantation research, such as studies on graft preservation and ischemia-reperfusion injury 1,2, immunological responses 3,4, hemodynamics 5,6, and small-for-size syndrome 7. The rat OLT is among the most difficult animal models in experimental surgery and demands advanced microsurgical skills that take a long time to learn. Consequently, the use of this model has been limited. Since the reliability and reproducibility of results are key components of the experiments in which such complex animal models are used, it is essential for surgeons who are involved in rat OLT to be trained in well-standardized and sophisticated procedures for this model.
While various techniques and modifications of OLT in rats have been reported 8 since the first model was described by Lee et al. 9 in 1973, the elimination of the hepatic arterial reconstruction 10 and the introduction of the cuff anastomosis technique by Kamada et al. 11 were a major advancement in this model, because they simplified the reconstruction procedures to a great degree. In the model by Kamada et al., the hepatic rearterialization was also eliminated. Since rats could survive without hepatic arterial flow after liver transplantation, there was considerable controversy over the value of hepatic arterialization. However, the physiological superiority of the arterialized model has been increasingly acknowledged, especially in terms of preserving the bile duct system 8,12 and the liver integrity 8,13,14.
In this article, we present detailed surgical procedures for a rat model of OLT with hepatic arterial reconstruction using a 50% partial graft after ex vivo liver resection. The reconstruction procedures for each vessel and the bile duct are performed by the following methods: a 7-0 polypropylene continuous suture for the supra- and infrahepatic vena cava; a cuff technique for the portal vein; and a stent technique for the hepatic artery and the bile duct.

Orthotopic liver transplantation in rats is an indispensable experimental model for biomedical research. Here we present our surgical procedures for orthotopic rat liver transplantation with hepatic arterial reconstruction using a 50% partial graft.

ניתוחים למודל חולדה של השתלה כבדה orthotopic חלקית עם שחזור עורקית כבדיה

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats using a whole or partial graft is an indispensable experimental model for transplantation research, such as ...

Technique of Porcine Liver Procurement and Orthotopic Transplantation using an Active Porto-Caval Shunt

The success of liver transplantation has resulted in a dramatic organ shortage. Each year, a considerable number of patients on the liver transplantation waiting list die without receiving an organ transplant or are delisted due to disease progression. Even after a successful transplantation, rejection and side effects of immunosuppression remain major concerns for graft survival and patient morbidity. 
Experimental animal research has been essential to the success of liver transplantation and still plays a pivotal role in the development of clinical transplantation practice. In particular, the porcine orthotopic liver transplantation model (OLTx) is optimal for clinically oriented research for its close resemblance to human size, anatomy, and physiology. 
Decompression of intestinal congestion during the anhepatic phase of porcine OLTx is important to guarantee reliable animal survival. The use of an active porto-caval-jugular shunt achieves excellent intestinal decompression. The system can be used for short-term as well as long-term survival experiments. The following protocol contains all technical information for a stable and reproducible liver transplantation model in pigs including post-operative animal care.

Experimental animal research plays a pivotal role in the development of clinical transplantation practice. The porcine orthotopic liver transplantation model (OLTx) closely resembles human conditions and is frequently used in clinically oriented research. The following protocol contains all information for a reliable porcine OLTx model using an active porto-caval-jugular shunt.

טכניקה של רכש כבד בשר חזירים והשתלות Orthotopic באמצעות פורטו-caval אנט פעיל

The success of liver transplantation has resulted in a dramatic organ shortage. Each year, a considerable number of patients on the liver transplantation ...

Orthotopic Hind Limb Transplantation in the Mouse

In vivo animal model systems, and in particular mouse models, have evolved into powerful and versatile scientific tools indispensable to basic and translational research in the field of transplantation medicine. A vast array of reagents is available exclusively in this setting, including mono- and polyclonal antibodies for both diagnostic and interventional applications. In addition, a vast number of genotyped, inbred, transgenic, and knock out strains allow detailed investigation of the individual contributions of humoral and cellular components to the complex interplay of an immune response and make the mouse the gold standard for immunological research. 
Vascularized Composite Allotransplantation (VCA) delineates a novel field of transplantation using allografts to replace "like with like" in patients suffering traumatic or congenital tissue loss. This surgical methodological protocol shows the use of a non-suture cuff technique for super-microvascular anastomosis in an orthotopic mouse hind limb transplantation model. The model specifically allows for comparison between established paradigms in solid organ transplantation with a novel form of transplants consisting of various different tissue components. Uniquely, this model allows for the transplantation of a viable vascularized bone marrow compartment and niche that have the potential to exert a beneficial effect on the balance of immune acceptance and rejection. This technique provides a tool to investigate alloantigen recognition and allograft rejection and acceptance, as well as enables the pursuit of functional nerve regeneration studies to further advance this novel field of transplantation.

This novel model for orthotopic hind limb transplantation in the mouse, applying a non-suture cuff technique for super-microvascular anastomosis, provides a powerful tool for in&#160;vivo mechanistic immunological research related to vascularized composite allotransplantation (VCA).

Orthotopic הינד לימב השתלה בבית העכבר

In vivo animal model systems, and in particular mouse models, have evolved into powerful and versatile scientific tools indispensable to basic and ...

A Rat Model of Orthotopic Liver Transplantation Using a Novel Magnetic Anastomosis Technique for Suprahepatic Vena Cava Reconstruction

The rat model of orthotopic liver transplantation (OLT) is essential for transplant research. It is a very sophisticated animal model and requires a steep learning curve. The introduction of the cuff technique for anastomosis of the portal vein (PV) and infrahepatic vena cava (IHVC) has significantly simplified the transplant procedure in rats. However, due to the short anterior wall of the recipients' suprahepatic vena cava (SHVC), the cuff technique is very difficult to use for the reconstruction of the SHVC. Most researchers in this field still use the hand-suture technique for SHVC reconstruction, which makes it the bottleneck step in rat orthotopic liver transplantation. The magnetic anastomosis technique (i.e., magnamosis) is a method of connecting two vessels using the attractive force between two magnets. Our recent study has shown that the magnetic anastomosis technique is superior to the hand-suture technique for SHVC reconstruction in rats. In this article, we show a step-by-step protocol for SHVC reconstruction in rats using the novel magnetic anastomosis technique. In this model, the reconstruction of the PV and IHVC was performed by the standard cuff technique, while the reconstruction of the bile duct (BD) was performed by a stent technique. The hepatic re-arterialization was not performed. The magnetic anastomosis technique made SHVC reconstruction much easier and significantly shortened the anphepatic phase. After a reasonable learning curve, even researchers without advanced microsurgical skills can produce reliable and reproducible results using this rat model of OLT.

The reconstruction of the suprahepatic vena cava (SHVC) remains a difficult step in rat orthotopic liver transplantation. In this article, we show a step-by-step protocol for SHVC reconstruction in rats using a novel magnetic anastomosis technique.

מודל עכברוש של Orthotopic השתלת כבד בטכניקה השקה מגנטיים חדשניים עבור שחזור הנבוב Suprahepatic

The rat model of orthotopic liver transplantation (OLT) is essential for transplant research. It is a very sophisticated animal model and requires a steep ...

A Pre-Clinical Porcine Model of Orthotopic Heart Transplantation

Fifty-years following the first successful report, cardiac transplantation remains the gold-standard treatment for eligible patients with advanced heart failure. Multiple small-animal models of heart transplantation have been used to study the acute and long-term effects of novel therapies. However, few are tested and demonstrated success in clinical trials. It is of critical importance to evaluate new therapies in a clinically relevant large-animal model for efficient and reliable translation of basic studies&#39;&#160;findings. Here, we describe a pre-clinical large-animal (porcine) model of orthotopic heart transplantation that has been firmly established and previously used to investigate novel cardioprotective strategies. This procedure focuses on acute ischemia-reperfusion injury and is a reliable method to investigate novel interventions which have been tested and validated in smaller experimental models, such as the murine model. We demonstrate its usefulness in assessing cardiac performance during the early post-transplantation period and other potential possibilities enabled by the model.

Here, we describe a pre-clinical large-animal (porcine) model of orthotopic heart transplantation that has been firmly established and utilized to investigate novel cardioprotective strategies.

מודל הפרה-קליני של השתלת לב אורתוטופית

Fifty-years following the first successful report, cardiac transplantation remains the gold-standard treatment for eligible patients with advanced heart ...

Reduced Complications after Arterial Reconnection in a Rat Model of Orthotopic Liver Transplantation

The rat orthotopic liver transplantation (OLT) model is a powerful tool to study acute and chronic rejection. However, it is not a complete representation of human liver transplantation due to the absence of arterial reconnection. Described here is a modified transplantation procedure that includes the incorporation of hepatic artery (HA) reconnection, leading to a marked improvement in transplant outcomes. With a mean anhepatic time of 12 min and 14 s, HA reconnection results in improved perfusion of the transplanted liver and an increase in long-term recipient survival from 37.5% to 88.2%. This protocol includes the use of 3D-printed cuffs and holders to connect the portal vein and infrahepatic inferior vena cava. It can be implemented for studying multiple aspects of liver transplantation, from immune response and infection to technical aspects of the procedure. By incorporating a simple and practical method for arterial reconnection using a microvascular technique, this modified rat OLT protocol closely mimics aspects of human liver transplantation and will serve as a valuable and clinically relevant research model.

The goal of this study is to modify the rat orthotopic liver transplant model to better represent human liver transplantation and improve recipient survival. The presented method reestablishes hepatic arterial inflow by connecting the donor liver&#39;s common hepatic artery to the recipient liver&#39;s proper hepatic artery.

סיבוכים מופחתים לאחר חיבור מחדש עורקי במודל חולדה של השתלת כבד אורתוטופית

The rat orthotopic liver transplantation (OLT) model is a powerful tool to study acute and chronic rejection. However, it is not a complete representation ...

Left Lung Orthotopic Transplantation in a Juvenile Porcine Model for ESLP

Lung transplantation is the gold-standard treatment for end-stage lung disease, with over 4,600 lung transplantations performed worldwide annually. However, lung transplantation is limited by a shortage of available donor organs. As such, there is high waitlist mortality. Ex situ lung perfusion (ESLP) has increased donor lung utilization rates in some centers by 15%-20%. ESLP has been applied as a method to assess and recondition marginal donor lungs and has demonstrated acceptable short- and long-term outcomes following transplantation of extended criteria donor (ECD) lungs. Large animal (in vivo) transplantation models are required to validate ongoing in vitro research findings. Anatomic and physiologic differences between humans and pigs pose significant technical and anesthetic challenges. An easily reproducible transplant model would permit the&#160;in vivo&#160;validation of current ESLP strategies and the preclinical evaluation of various interventions designed to improve donor lung function. This protocol describes a porcine model of orthotopic left lung allotransplantation. This includes anesthetic and surgical techniques, a customized surgical checklist, troubleshooting, modifications, and the benefits and limitations of the approach.

This protocol describes a juvenile porcine model of orthotopic left lung allotransplantation designed for use with ESLP research. Focus is made on anesthetic and surgical techniques, as well as critical steps and troubleshooting.

השתלה אורתוטופית ריאה שמאלית במודל חזיר צעיר עבור ESLP

Lung transplantation is the gold-standard treatment for end-stage lung disease, with over 4,600 lung transplantations performed worldwide annually. ...