אנו מודים למתקן StemCore באוניברסיטת מונאש על אספקת קווי hESC ומתקן FlowCore באוניברסיטת מונאש עבור שירותי FACS. עבודה זו נתמכה על ידי מענקי מחקר ממרכז תאי הגזע האוסטרלי, ניו סאות' ויילס ותוכנית המענקים לחקר תאי הגזע של ממשלת ויקטוריה לכולם. ALL היא חוקרת שותפה של יוזמת המחקר המיוחדת של מועצת המחקר האוסטרלית (ARC) במדע תאי גזע, תאי גזע באוסטרליה.

הפרוטוקול הבא בוצע באמצעות hESC-MEL111 תרבויות בתפזורת סטנדרטיות המסופקות על ידי מתקן StemCore באוניברסיטת מונאש (מלבורן). קו תאים זה מתורבת באופן שגרתי על שכבה של פיברובלסטים עובריים של עכבר מומתים מיטוטיים (MEFs) ב- bFGF בתוספת hESC / KOSR מדיה7 ומתוחזק עם דיסוציאציה אנזימטית (Collagenase) כל 5-7 ימים8. hESC תרבויות גדל ~ 80% מפגש ב 75 ס"מ2 (T75) בקבוקונים משמשים אוכלוסיות קלט עבור פרוטוקול זה. כל הליכי מניפולציה התא המתוארים להלן צריך להתבצע בתנאים אספטיים בארון HEPA מסונן מחלקה II ביו בטיחות.
יומיים לפני ביצוע בדיקה של FACS TG30/GCTM-2, הכינו את לוחות התרבות T75 (המתוארים בסעיף 1) שישמשו להתרבות מחדש של תאים שנמצאו לאחר FACS (המתוארים בסעיף 4).
1. זריעת MEFs והכנת בינוני מותנה MEF
1.1 יום -2: ציפוי של MEFs לתוך בקבוקים T75
<ol><li>פיפטה 10 מ"ל של 0.1% w / v ג'לטין לתוך כל בקבוק T75 להטות את פני השטח באופן שווה.</li>
	<li>דגירה במשך 30 דקות בטמפרטורת החדר בארון biosafety.</li>
	<li>תמיסת ג'לטין שאיפה.</li>
	<li>הוסף 20 מ"ל MEF-בינוני לבקבוק טרום שיווי משקל ל 37 °C/5% CO2 במשך 30 דקות באינקובטור תרבות התא.</li>
	<li>Plate הפעיל באופן מיתוטלי קבצי MEFs על גבי בקבוקונים מוכנים בצפיפויות הבאות. עבור 1/3 זרעי צפיפות MEF 1.4 x 104 תאים / ס"מ2 (T75 = 1 x 106 MEFs). עבור זרעי MEF בצפיפות מלאה 5.3 x 104 תאים / ס"מ2 (T75 = 4 x 106 MEFs).</li>
</ol>הערה: אנו משתמשים באופן שגרתי ב- MEFs שהושבתו באופן מיטוטי על-ידי הקרנת γ. פרוטוקול להכנת MEFs מוקרן γ ניתן למצוא מיכלסקה12.
<ol start="6"><li>דגירה מוקרנת MEF תרבויות ב 37 °C /5% CO2 לילה. 1/3 צלושי ניתן לדגר במשך 1-4 ימים ללא שינוי MEF-בינוני. בקבוקונים אלה משמשים להזרמת תאים שלאחר FACS (כמו בפרוטוקול 4). צלושי MEF מלאים הם דגירה לילה כדי ליצור CM לפי להלן בשלב 1.2.</li>
</ol>1.2 יום -1: הכנת מדיום ממוזג MEF (CM)
<ol><li>לשאוף MEF-בינוני מבקבוקים מלאים MEF T75.</li>
	<li>הוסף בינוני 25 מ"ל hESC/KOSR 25 מ"ל בתוספת 5 ננוגרם/מיליליטר FGF-2 אנושי לכל בקבוק T75. דגירה ב 37 °C/5% CO2 עבור 24 שעות.</li>
	<li>לאסוף בינוני מותנה MEF (CM) לתוך צינור תרבית רקמה סטרילית, תוספת טרייה CM עם 10 ng/ml אדם FGF-2 ומסנן באמצעות מסנן פוליאתרסולפונה 0.22 מיקרומטר.</li>
	<li>כדי להפיק CM נוסף, חזור על שלבים 1.2.2 ו- 1.2.3 מדי יום באותה תרבות MEF למשך שבוע.</li>
</ol>ביום ביצוע בדיקה TG30/GCTM-2, להחליף MEF-בינוני ב 1/3 MEF T75 בקבוקונים עם CM ו pre-equilibrate לפחות 30 דקות לפני זריעת כל hESCs או תאים נגזרים hESC התאושש מההליך כמתואר להלן. CM משמש טרי או מאוחסן ב 4 מעלות צלזיוס עד 2 שבועות. CM משמש בפרוטוקול זה כמו בידיים שלנו זה מגביר את הכדאיות של התאים שלאחר FACS לעומת מדיה ללא תנאים (תוצאות לא מוצגות).
2. ביצוע TG30/GCTM-2 FACS Assay: ניתוק של תרביות בתפזורת hESC לתאים בודדים
הערה: Prechill 20% FBS / DMEM-F12 בינוני ב 4 °C (69 °F).
<ol><li>שאפתן את התקשורת hESC / KOSR משני בקבוקוני T75 עם קו hESC מתורבת.</li>
	<li>לשטוף את התאים בכל T75 עם 10 מיליליטר DPBS לשאוף להסיר.</li>
	<li>הוסף פתרון ניתוק של 3 מ"ל של TrypLE Express לכל בקבוק T75. דגירה ב 37 °C/5% CO2 במשך 5 דקות.</li>
	<li>להקפיץ את הצד של הבקבוקים כדי לקבל עקום מוחלט של התאים. בדוק תחת מיקרוסקופ. אם התאים אינם מתפזרים בקלות, דגירה למשך 2-3 דקות נוספות ב- 37 °C/5% CO2.</li>
	<li>הוסף 10 מ"ל 20% FBS / DMEM-F12 (נשמר ב 4 מעלות צלזיוס) לכל בקבוק T75. באמצעות פיפטה סטרילית 10 מיליליטר בעדינות triturate התאים מנותקים מספר פעמים על הקיר בקבוק כדי להשיג השעיה תא יחיד בעיקר.</li>
	<li>מניחים מסננת תאים 70 מיקרומטר על צינור פוליפרופילן סטרילי 50 מ"ל. השתמש פיפטה סטרילית 10 מיליליטר כדי לכפות את השעיות תא יחיד hESC במאגר משני צלושי T75 דרך מסננת.</li>
	<li>השלך מסננת תאים, החלף את מכסה הצינור וצנטריפוגה השעיית hESC במאגר ב 1,000 x g במשך 2 דקות.</li>
	<li>להשליך supernatant ולשטוף את התאים על ידי שימוש חוזר בעדינות גלולה ב 10 מיליליטר 20% FBS / DMEM-F12 (prechilled ב 4 מעלות צלזיוס).</li>
	<li>בצע צנטריפוגה שנייה ב- 1,000 x g במשך 2 דקות.</li>
	<li>השלך על-טבעי, הוסף 10 מ"ל 20% FBS/DMEM-F12 (מראש ב 4 °C (4 °C)) בעדינות triturate כדי resuspend תאים. מניחים את הצינור 50 מ"ל על קרח. צינור זה ישמש עבור הליך חיסון מדגם מיון המתואר להלן.</li>
	<li>קח 20 μl של השעיית תא יחיד hESC (שלב 2.10) לספירת מספר תא באמצעות hemotocytometer. אתה צריך לצפות לתשואה של 10-15 מיליון תאים לכל בקבוק T75.</li>
</ol>הערה: FBS משמש בחלק זה של הפרוטוקול כדי להגביר את הכדאיות של תאים לאחר FACS.
3. כתמים אימונופלואורסצנטיים של אנטיגנים משטח התא TG30 ו- GCTM-2
<ol><li>Aliquot 150 μl (~ 100,000 תאים) של השעיית תא יחיד hESC (משלב 2.11) לתוך כל אחד משישה צינורות microcentrifuge של 1.5 מ"ל. ששת aliquots אלה ישמשו עבור פקדי הכתם הנדרשים כדי לכייל את ההסתערות על מכונת FACS. הנותר ~ 9 מיליליטר השעיית תא יהיה מדגם המיון שלך שבו התרבות מנותק יהיה costained לגילוי של TG30 ו GCTM-2, על פי טבלאות 1 ו 2.</li>
	<li>בצע תגובות מחייבות של נוגדנים ראשוניים ב 20% FBS / DMEM-F12. אמצעי אחסון לתגובה סופית צריכים להיות ~ 9 מ"ל עבור מדגם המיון ו- 200 μl עבור הפקדים. כלול פקדי isotype כנוגדנים עיקריים. מניחים צינורות אופקית על קרח ומערבבים בעדינות במשך 30 דקות על פלטפורמת נדנדה.</li>
	<li>תגובות נוגדנים ראשוניות צנטריפוגה ב 1,000 x g במשך 2 דקות.</li>
	<li>השלך supernatant ולשטוף את התאים על ידי שימוש חוזר גלולה ב 20 מיליליטר 20% FBS / DMEM-F12 (prechilled ב 4 °C (4 °C (69 °F) עבור מדגם מיון ו 200 μl עבור הפקדים.</li>
	<li>בצע סיבוב שני ב- 1,000 x g למשך 2 דקות.</li>
	<li>בצע תגובות מחייבות של נוגדנים משניים ב 20% FBS / DMEM-F12. אמצעי אחסון לתגובה סופית צריכים להיות 2.5 מ"ל עבור מדגם המיון ו- 200 μl עבור הפקדים. הכן את צינור התגובה PE נגד עכבר CD90.2 בשלב זה. מניחים צינורות אופקית על קרח ומערבבים בעדינות במשך 30 דקות על פלטפורמת נדנדה.</li>
</ol>הערה: במהלך זמן דגירה זה, נוח לאסוף CM ולהכין 1/3 בקבוקונים MEF T75 עם CM כמו בסעיף 1.2.
<ol start="7"><li>תגובות נוגדנים משניות צנטריפוגה ב 1,000 x g במשך 2 דקות.</li>
	<li>השלך supernatant ולשטוף את התאים פעמיים על ידי שימוש חוזר גלולה ב 20 מיליליטר 20% FBS / DMEM-F12 (prechilled ב 4 °C (4 °C )) עבור מדגם מיון ו 200 μl עבור הפקדים.</li>
	<li>בצע סיבוב ב 1,000 x g במשך 2 דקות בעקבות כל לשטוף ומניחים צינורות על הקרח.</li>
	<li>השלך supernatants וכדורי תא resuspend ב 20% FBS / DMEM-F12 בתוספת יודיד propidium (PI) ב 0.3 מיקרוגרם / מיליליטר. השתמש 2-3 מיליליטר עבור מדגם מיון ו 300 μl עבור הפקדים.</li>
</ol>הערה: אין להוסיף PI לצינור הבקרה עם תאים לא מוכתמים.
<ol start="11"><li>השתמש במיקרופיפט P1000 כדי לכפות על כל תא בודד השעיה באמצעות מסננת תא מכסה 35 מיקרומטר, יחד עם 5 מ"ל צינור פוליסטירן מבחנות עגולות התחתון.</li>
	<li>צנטריפוגה ב 50 גרם / דקה לכפות דרך השעיית תא שיורית על מכסי מסננת.</li>
	<li>התחדשו בכל השעיה של תא בודד על ידי הקשה על דפנות הצינורות, והניחו על הקרח. התאים שלך מוכנים כעת עבור FACS. אנא המשיכו מיד.</li>
</ol>4. תרבות פוסט-FACS של תאי תת-שבר TG30/GCTM-2 ב-75 ס"מ2 (T75) בקבוקונים
<ol><li>דיווחנו בעבר כיצד להקים מכונת FACS עבור TG30/GCTM-2 immunoprofiling7. ההליך מאפשר התאוששות של hESCs יחיד קיימא, ללא MEFs, ובתוך השערים של P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg),P5 (TG30נמוך-GCTM-2נמוך),P6 (TG30אמצע-GCTM-2Mid)ו P7 (TG30היי-GCTM-2היי)- ראה איור 1E. הגדר את מכונת FACS עבור FACS TG30/GCTM-2 כמו בדוח הקודם שלנו כדי לשחזר את תתי-fractions התא שישמשו הבא.</li>
	<li>הוסף 1 מיליליטר CM, מוכן כמו בשלב 1.2, לכל אחד משני מבחנות 5 מיליליטר עגול התחתון לפני איסוף תאים ממכונת FACS. מניחים על קרח.</li>
	<li>שחזר 400,000 תאים כל אחד מ- P4 מובחן (TG30Neg-GCTM-2Neg)ו- P7 פלוריפוטנטי (TG30Hi-GCTM-2Hi)תתי-פרקי תאים באמצעות TG30/GCTM-2 FACS.</li>
	<li>צנטריפוגה צינורות האיסוף ב 1,000 x g במשך 5 דקות.</li>
	<li>לשאוף את הנתנים העל-טבעיים. הוסף 1 מ"ל מראש 37 °C/5% CO2 CM לשימוש חוזר כל גלולה תא באמצעות מיקרופיפטור P1000. זרע את התאים עבור כל שבר על בקבוק 1/3 MEF T75 שווה מראש עם CM (מוכן לפי שלב 1.2)</li>
	<li>תרבות ב 37 °C/5% CO2 עבור 24 שעות באינקובטור תרבות התא.</li>
	<li>שאפת CM מדי יום ולהחליף עם CM מוכן טרי (כמו בשלב 1.2) במשך כשבועיים. תרבויות של תאים P7 pluripotent (TG30היי-GCTM-2Hi)להראות מושבות דמויי גזע אנושי לאחר שבוע אחד ולהגיע ~ 80% מפגש ב 9-11 ימים. תרבויות של P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg)תאים גדלים בעיקר כמדשאה של תאים דמויי פיברובלסט שמגיע לעיסוק ב 11-13 ימים. בשלב זה, במידת הצורך, ניתן להשתמש בתרביות תאים P4 ו- P7 עבור FACS TG30/GCTM-2 בתיווך תיקון רצוף של תתי-שברי P4 או P7 (ראה איורים 2 ו- 3).</li>
</ol>

<ol>
	<li>Pera, M. F., Tam, P. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Extrinsic+regulation+of+pluripotent+stem+cells.">Extrinsic regulation of pluripotent stem cells.</a> Nature. 10 (7299), 713-720 (2010).</li><li>Pistollato, F., Bremer-Hoffmann, S., Healy, L., Young, L., Stacey, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Standardization+of+pluripotent+stem+cell+cultures+for+toxicity+testing.">Standardization of pluripotent stem cell cultures for toxicity testing.</a> Expert Opin. Drug Metab. Toxicol. 8 (2), 239-257 (2012).</li><li>Miura, K., Okada, Y., Aoi, T., Okada, A., Takahashi, K., Okita, K., Nakagawa, M., Koyanagi, M., Tanabe, K., Ohnuki, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Variation+in+the+safety+of+induced+pluripotent+stem+cell+lines.">Variation in the safety of induced pluripotent stem cell lines.</a> Nat. Biotechnol. 27 (8), 743-745 (2009).</li><li>Polanco, J. C., Laslett, A. L., Lenka, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Safety+Assessment+of+Reprogrammed+Cells+Prior+to+Clinical+Applications:+Potential+Approaches+to+Eliminate+Teratoma+Formation.">Safety Assessment of Reprogrammed Cells Prior to Clinical Applications: Potential Approaches to Eliminate Teratoma Formation.</a> Pluripotent Stem Cells. , (2013).</li><li>Laslett, A. L., Grimmond, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transcriptional+analysis+of+early+lineage+commitment+in+human+embryonic+stem+cells.">Transcriptional analysis of early lineage commitment in human embryonic stem cells.</a> BMC Dev. Biol. 7, 12 (2007).</li><li>Kolle, G., Ho, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+human+embryonic+stem+cell+surface+markers+by+combined+membrane-polysome+translation+state+array+analysis+and+immunotranscriptional+profiling.">Identification of human embryonic stem cell surface markers by combined membrane-polysome translation state array analysis and immunotranscriptional profiling.</a> Stem Cells. 27, 2446-2456 (2009).</li><li>Zhou, Q., Chy, H., Laslett, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preparation+of+defined+human+embryonic+stem+cell+populations+for+transcriptional+profiling.">Preparation of defined human embryonic stem cell populations for transcriptional profiling.</a> Current protocols in stem cell biology. Chapter 1, Unit1B 7 (2010).</li><li>Fong, C. Y., Peh, G. S., Gauthaman, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Separation+of+SSEA-4+and+TRA-1-60+labelled+undifferentiated+human+embryonic+stem+cells+from+a+heterogeneous+cell+population+using+magnetic-activated+cell+sorting+(MACS)+and+fluorescence-activated+cell+sorting+(FACS).">Separation of SSEA-4 and TRA-1-60 labelled undifferentiated human embryonic stem cells from a heterogeneous cell population using magnetic-activated cell sorting (MACS) and fluorescence-activated cell sorting (FACS).</a> Stem Cell Rev. 5, 72-80 (2009).</li><li>Schriebl, K., Satianegara, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Selective+removal+of+undifferentiated+human+embryonic+stem+cells+using+magnetic+activated+cell+sorting+followed+by+a+cytotoxic+antibody.">Selective removal of undifferentiated human embryonic stem cells using magnetic activated cell sorting followed by a cytotoxic antibody.</a> Tissue Eng. Part A. 18, 899-909 (2012).</li><li>Adewumi, O., Aflatoonian, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+human+embryonic+stem+cell+lines+by+the+International+Stem+Cell+Initiative.">Characterization of human embryonic stem cell lines by the International Stem Cell Initiative.</a> Nat. Biotechnol. 25, 803-816 (2007).</li><li>Michalska, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+and+propagation+of+mouse+embryonic+fibroblasts+and+preparation+of+mouse+embryonic+feeder+layer+cells.">Isolation and propagation of mouse embryonic fibroblasts and preparation of mouse embryonic feeder layer cells.</a> Current protocols in stem cell biology. Chapter 1, Unit1C 3 (2007).</li><li>Hough, S. R., Laslett, A. L., Grimmond, S. B., Kolle, G., Pera, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+continuum+of+cell+states+spans+pluripotency+and+lineage+commitment+in+human+embryonic+stem+cells.">A continuum of cell states spans pluripotency and lineage commitment in human embryonic stem cells.</a> PLoS One. 4, e7708 (2009).</li><li>Filipczyk, A. A., Laslett, A. L., Mummery, C., Pera, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differentiation+is+coupled+to+changes+in+the+cell+cycle+regulatory+apparatus+of+human+embryonic+stem+cells.">Differentiation is coupled to changes in the cell cycle regulatory apparatus of human embryonic stem cells.</a> Stem Cell Res. 1, 45-60 (2007).</li><li>Polanco, J. C., Ho, M. S. H., Wang, B., Zhou, Q., Wolvetang, E., Mason, E., Wells, C., Kolle, G., Grimmond, S. M., Bertoncello, I., O'Brien, C., Laslett, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+unsafe+human+IPSC+lines+using+a+robust+surrogate+assay+for+pluripotency.">Identification of unsafe human IPSC lines using a robust surrogate assay for pluripotency.</a> Stem Cells. 31 (8), 1498-1510 (2013).</li><li>Sharpe, M. E., Morton, D., Rossi, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nonclinical+safety+strategies+for+stem+cell+therapies.">Nonclinical safety strategies for stem cell therapies.</a> Toxicol. Appl. Pharmacol. 262 (3), 223-231 (2012).</li></ol>

אין מה לחשוף.

בהקשר הקליני, סוגי תאים סומטיים מובחנים הם המוצר הרצוי הסופי להשתלה ויישומים טיפוליים, ו- hPSC הם מקור לחידוש עצמי ומדרגי ליצירת אותם תאים סומטיים או אבותיהם במעבדה. נוכחותם של שאריות hESCs מובחנות עם פוטנציאל אינהרנטי להיווצרות טרטומה היא סיכון בטיחותי כאשר בוחנים תאים סומטיים שמקורם ב- hESC להשתלה בחולים. לסקירה של זה וסיכונים אחרים הקשורים לטיפול בתאים אנא ראה שארפ ואח '. 16 לכן, כדי לממש יישומים כאלה, זה הכרחי כי החוקרים שואפים ליצור אוכלוסיות תא היעד כי הם גם פלוריפוטנטי תאי גזע חינם. לקראת מטרה זו, אנו מראים כאן כי באמצעות מתודולוגיית TG30/GCTM-2 FACS שלנו ניתן לפקח על נוכחותם של תאים פלוריפוטנטיים (TG30Hi-GCTM-2Hi)באוכלוסיית תאים מבדילה ולקבל נגזרות מובנות hESC קיימא שניתן להעשיר ולשקול מחדש לאחר FACS. למרות שלא ניתן להשיג 100% דגימות ללא תאי גזע פלוריפוטנטיים עם מעבר אחד של הפרוטוקול שלנו, נגזרות hESC מועשר ניתן לחשב מחדש ולאחר מעבר רצוף 100% טוהר תא סומטי מושגת. הכדאיות המוכחה של תאים סומטיים להתרחבות שלאחר FACS גם מאפשרת ייצור של מספר מספיק של תאים המתאימים לטיפולי השתלה פוטנציאליים.
התוצאות המעודדות של מחקר פיילוט זה גרמו לנו לבצע חקירה מקיפה יותר באמצעות פרוטוקול TG30/GCTM-2 שלנו במחקר השוואתי עם מספר תאי גזע פלוריפוטנטיים המושרים על ידי בני אדם (hiPSC) קווים15. במחקר זה, מצאנו כי דגימות ללא תאי גזע פלוריפוטנטיים שהושגו באמצעות פרוטוקול FACS TG30/GCTM-2 שלנו לא יצרו טרטומות כאשר הושתלו בעכברים ללא חיסון. לכן, אנו יכולים לציין בביטחון כי עם השימוש בפרוטוקול זה במבחנה, בשלב מוקדם בידול תרביות התא נקבע להיות חופשי של תאי pluripotent TG30 Hi-GCTM-2 Hi אינם מפתחים טרטומות vivo. זה תומך מאוד את החוסן של ההסתערות שלנו, מתן גישה פוטנציאלית כדי למנוע את הסיכון של היווצרות טרטומה לפני השימוש בתאים שמקורם hPSC ביישומים קליניים.
לעומת זאת, אנו גם מראים כי TG30 / GCTM-2 FACS assay ניתן להשתמש כדי לאחזר אוכלוסיית תאים pluripotent עם רמה גבוהה של ביטוי של שני אנטיגנים אלה פני השטח (TG30היי-GCTM-2היי). מחקרים קודמים הראו כיתאי Hi-GCTM-2Hi של TG30 מציגים את המתאם הגבוה ביותר עם ביטויHI OCT4 ויוצרים את המספר הגבוה ביותר של מושבות דמויי hESC5,6,13,15. לכן אנו סיבה כי רשת pluripotency מופעלת ברמות המרביות שלה TG30היי-GCTM-2היי הבעת תאים. אנו רואים כי באמצעות פרוטוקול TG30/GCTM-2 FACS שלנו ואחזור תאי P7 (TG30Hi-GCTM-2Hi)עלולים לאפשר טיהור בקנה מידה גדול של תרבויות hESC חיות מועשרות, כמו תשומות למבחני בידול.
לסיכום, אנו מדגימים כאן את הפוטנציאל של מבחני FACS שלנו המבוססים על הביטוי המשולב של אנטיגנים משטח TG30 ו- GCTM-2 הן לטיהור והן להעשרה של hESCs. מחקרים עתידיים עם פרוטוקולים לבידול מכוון של hPSCs צפויים גם להיות אינפורמטיבי לגבי פוטנציאל זה. אנו מודעים לכך שבכמה מבחנים שבהם נגזרות hESC מובחנות מבטאות זמנית TG30 (CD9) או GCTM-2, שני נוגדנים אלה עשויים שלא להיות מתאימים או מספיקים כדי לטהר תאים פלוריפוטנטיים מאוכלוסייה מובחנת בנקודת זמן מסוימת ב- assay6. לכן, יש צורך מתמשך למצוא נוגדנים חדשניים המזהים במיוחד hESCs חיים כדי להתגבר על המגבלה האפשרית של תגובה צולבת עם כמה סוגי תאים מובחנים.

HPSC (hPSC) כוללים תאי גזע עובריים אנושיים (hESC) ותאי גזע פלוריפוטנטיים הנגרמים על ידי בני אדם (hIPSC). HPSC יכול לחדש את עצמו ללא הגבלת זמן בתנאי תרבות מתאימים מבלי לאבד את יכולתם המכונה "pluripotency". Pluripotency מוגדר כפוטנציאל לתא להבדיל לתוך כל שושלת תאים סומטית כולל תאים המייצגים כל אחת משלוש שכבות תא נבט עוברי. הפוטנציאל המדהים של hPSC מספק אמצעי למגוון רחב של יישומים מבוססי תאים כולל אפשרויות טיפוליות. לדוגמה, ישנן הפרעות הכרוכות במוות תאי ונ ניוון, שבהן פונקציונליות תקינה של תאים בגוף האדם נפגעת, כמו באי ספיקת לב, פציעות בעמוד השדרה, סוכרת, מחלת פרקינסון, כמה סוגי סרטן ופתולוגיות קליניות אחרות. חולים הסובלים מתנאים אלה עלולים להיות מטופלים על ידי השתלת תאים סומטיים בריאים ותפקודיים שנגזרו מ- hPSC במעבדה. עם זאת, פרוטוקולי הבידול הנוכחיים של hPSC אינם יעילים ב -100% ומניבים תערובת של סוגי תאים מובחנים של יעדים וסוגי תאים מחוץ ליעד, כמו גם שאריות hPSCs שלא עברו בידול, במקום זאת ממשיכים לחדש את עצמם1-3. הנוכחות של אפילו מספר קטן של hPSC במדגם של תאים סומטיים שמקורם hPSC המיועד להשתלה לחולים מהווה סיכון קליני רציני כמו תאים אלה מטבעם הטבעי כדי ליצור רקמות של כל שלוש שכבות נבט עוברי, יכול להיווצר vivo סוג של גידול המכונה טרטומה. לכן, רק אוכלוסיות תאי יעד שנקבעו כנקיות מתאי גזע פלוריפוטנטיים יכולות להיחשב בטוחות להשתלה בחולים. ישנן מספר גישות שדווחו כדי להשיג פוטנציאל טיהור של hPSCs שיורית בעקבות בידול, (לסקירה ראה פולנקו ולאסלט4). דיווחנו בעבר על השימוש בנוגדנים חד שבטיים TG30 (CD9) ו- GCTM-2 יחד עם מיון תאים המופעל על ידי פלואורסצנטיות (FACS) כדי לזהות תאי גזע פלוריפוטנטיים ולהפלות אותם מתאים העוברים שלב מוקדם של בידול בתרבויות של קווי hESC5-7.
אחד היתרונות של שימוש בנוגדנים כדי לזהות אנטיגנים משטח התא הוא כי תאי היעד הם בדרך כלל קיימא לאחר איגוד נוגדנים ו / או תיוג. לכן, תאי היעד ניתן לאסוף לאחר תיוג נוגדנים recultured להתרחבות ויישומים נוספים לפני ההשתלה. אזהרה אחת עבור אנטיגנים משטח התא לידי ביטוי על hPSC היא כי הם אינם בלעדיים לשלב pluripotent והם במקרים רבים מחדש לידי ביטוי זמני במהלך הפיתוח ולכן יזוהו בכמה סוגי תאים מובחנים. לכן, אם המטרה היא להשתמש בנוגדנים כדי לזהות תאים פלוריפוטנטיים אנושיים ולנטהר אותם מדגם של תאים שמקורם ב- hPSC, נוגדנים נבחרים לא צריכים להגיב גם עם אנטיגנים על סוגי התאים המבודלים הספציפיים המיועדים להשתלה. למרבה הצער, ישנם מספר מוגבל של נוגדנים המזהים סמני משטח תא על hPSCs חי 4, מה שהופך מוגבל את האפשרויות לבחירה. בנוסף, מספר מחקרים הצביעו על כך שזיהוי של סמן אחד משטח תא יחיד אינו מספיק כדי לחסל את כל hPSC, מה שמרמז כי כל ניסיון לחסל את כל תת-אוכלוסיות ה- hPSC pluripotent צריך להסתמך על שיטות המשתמשות בשני נוגדנים או יותר המזהים אפיטופים שונים המבוטאים על ידי hPSCs 9-10. כפי שהוזכר לעיל, רק תאים שמקורם hPSC שניתן לקבוע כמו אוכלוסיות תאים ללא תאי גזע pluripotent מתאימים להשתלה אנושית. הגעה לרמה זו של ההקפדה לא ניתן להשיג עם מעבר אחד באמצעות טכנולוגיית מיון תאים בתיווך נוגדנים. Reculture של האוכלוסייה המועשרת של תאי יעד מובחנים וסבבים הבאים של מיון תאים עשויים להידרש כדי להשיג באופן סופי דגימות ללא תאי גזע פלוריפוטנטיים.
במעבדה שלנו, אפיינו בהרחבה שני נוגדני פני תא hES, TG30 (CD9) ו- GCTM-2, לגילוי תאים פלוריפוטנטיים חיים. המחקרים שלנו הראו כי זיהוי משולב של TG30 ו- GCTM-2 מאוד בקורלציה עם הביטוי של גנים הקשורים פלוריפוטנציה קנונית בשורות hESC 5-7. TG30/GCTM-2 חיסוני FACS הראה באופן עקבי כי תרבויות hESC מהוות שיפוע רציף כמותי של ביטוי TG30/GCTM-2 5-7. הקמנו באופן שרירותי ארבע אוכלוסיות (P) של תאים בתוך שיפוע TG30/GCTM-2 זה: P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg),P5 (TG30נמוך-GCTM-2נמוך),P6 (TG30Mid-GCTM-2Mid)ו- P7 (TG30Hi-GCTM-2Hi) האפיון שלנו של אוכלוסיות אלה P4, P5, P6 ו- P7 תאים הראה כי P6 ו P7 תתי-שברים להביע מספר רב של גנים הקשורים pluripotency ביעילות ליצור מושבות דמויי גזע כאשר recultured שלאחר FACS 2-3. מצד שני, P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg)תאים להביע מספר רב של סמני בידול ומהווים את סוגי התאים מובחנים באופן ספונטני המתרחשים בדרך כלל בהרחבת תרבויות של קווי hESC 5-6. החלטנו לבדוק את הפוטנציאל של FACS TG30/GCTM-2 שלנו לחיסול סלקטיבי של שאריות hPSCs לאחר בידול בשלב מוקדם, וגם להעשרה של אוכלוסיות תאי גזע פלוריפוטנטיים. הפרוטוקול המתואר להלן מראה כיצד לאסוף ולפתוח מחדש תאים מובחנים P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg)לאחר FACS כדי להשיג טיהור של P7 פלוריפוטנטי (TG30Hi-GCTM-2Hi). יתר על כן, אנו מסבירים גם את האוסף וההתרבות של תאי P7 (TG30Hi-GCTM-2Hi)כדי להשיג תרבות מועשרת של תאים פלוריפוטנטיים, אשר לאחר מכן יכול לשמש כאוכלוסיית קלט מוגדרת כדי להגדיל את היעילות והעקביות של מבחני הבידול.

<table border="1">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Short Name</td>
			<td>Company</td>
			<td>Catalog Number</td>
			<td>Long Name </td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM/F-12</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>11320082</td>
			<td>Long Name: Dulbecco&#39;s Modified Eagle Medium:Nutrient Mixture F-12</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>KOSR</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>10828028</td>
			<td>Long Name: Knockout Serum Replacement</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>GlutaMAX</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>35050061</td>
			<td>Long Name: GlutaMAX supplement</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nonessential Amino Acids</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>11140050</td>
			<td>Long Name: MEM Nonessential Amino Acids Solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mercaptoethanol</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>21985023</td>
			<td>Long Name: 2-Mercaptoethanol</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DPBS</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>14190250</td>
			<td>Long Name: Dulbecco&#39;s Phosphate-Buffered Saline, no calcium, no magnesium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TrypLE Express</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>12604039</td>
			<td>Long Name: TrypLE Express (1x), no Phenol Red</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AF-488</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>A21131</td>
			<td>Long Name: Alexa Fluor 488 goat anti-mouse IgG2a</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AF-647</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>A21238</td>
			<td>Long Name: Alexa Fluor 647 goat anti-mouse IgM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PE-anti IgG2a</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>P21139</td>
			<td>Long Name: R-Phycoerythrin Goat Anti-Mouse IgG2a (&#947;2a) Conjugate</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>11965-092</td>
			<td>Long Name: Dulbecco&#39;s Modified Eagle Medium, high glucose</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pen/Strep</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>15140-122</td>
			<td>Long Name: Penicillin-Streptomycin, Liquid</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Distilled Water</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>15230-089.</td>
			<td>Long Name: Sterile Distilled Water</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PI</td>
			<td>SIGMA</td>
			<td>P4864</td>
			<td>Long Name: Propidium iodide solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FBS</td>
			<td>SIGMA</td>
			<td>12203C</td>
			<td>Long Name: Fetal Bovine Serum</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gelatin</td>
			<td>SIGMA</td>
			<td>G-1890</td>
			<td>Long Name: Gelatin from porcine skin</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human FGF-2</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>GF003AF-100UG</td>
			<td>Long Name: Fibroblast Growth Factor basic, human recombinant, animal-free</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Filter 0.22 &#956;m</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>SCGPU02RE</td>
			<td>Long Name: Stericup-GP, 0.22 &#956;m, polyethersulfone, 250 ml, radio-sterilized</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>70 &#956;m Cell Strainer</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>352350</td>
			<td>Long Name: Cell strainer with 70 &#956;m Nylon mesh</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>35 &#956;m Lid cell strainer, 5 ml tube</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>352235</td>
			<td>Long Name: 5 ml polystyrene round bottom test tube, with a cell strainer cap (35 &#956;m)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5 ml Polystyrene round bottom test tube</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>352054</td>
			<td>Long Name: 5 ml polystyrene round bottom test tube, sterile</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IgG2a Isotype Control</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>554126</td>
			<td>Long Name: Purified Mouse IgG2a, &#954; Isotype Control</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IgM Isotype Control</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>553472</td>
			<td>Long Name: Purified Mouse IgM, &#954; Isotype Control</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PE-CD90.2</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>553014</td>
			<td>Long Name: PE Rat Anti-Mouse CD90.2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>8-peaks calibration</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>559123</td>
			<td>Long Name: Rainbow Calibration Particles (8 peaks)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50 ml sterile Polypropylene tube</td>
			<td>Greiner Bio-One</td>
			<td>227261</td>
			<td>Long Name: 50 ml Polypropylene tube with conical bottom, Sterile</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>T75 flask</td>
			<td>Greiner Bio-One</td>
			<td>658175</td>
			<td>Long Name: CELLSTAR Filter Cap Cell Culture 75 cm2 Flasks</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TG30</td>
			<td>Merck Millipore</td>
			<td>MAB4427</td>
			<td>Long Name: TG30 Antibody, clone TG30</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>GCTM-2</td>
			<td>Merck Millipore</td>
			<td>MAB4346</td>
			<td>Long Name: GCTM-2 is not commercially available but TG343 and equivalent monoclonal antibody is</td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Table 4. List of materials and reagent</td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>[header]</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FACS machine</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td></td>
			<td>FACSVantage SE with FACSDiva option</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Inverted microscope</td>
			<td>Olympus</td>
			<td></td>
			<td>IX71</td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Table 5. List of equipment.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

enrichment and purging of human embryonic stem cells by detection of cell surface antigens using the monoclonal antibodies tg30 and gctm-2

תאי גזע עובריים אנושיים (hESC) יכולים לחדש את עצמם ללא הגבלת זמן במבחנה, ועם הרמזים המתאימים ניתן לגרום להבדיל לתוך פוטנציאל כל שושלת התא סומטי. נגזרות hESC מובחנות יכולות לשמש באופן פוטנציאלי בטיפולי השתלה לטיפול במגוון מחלות ניווניות של תאים. עם זאת, פרוטוקולי בידול hESC בדרך כלל מניבים תערובת של סוגי תאים מובחנים של יעדים ומחוץ ליעד, כמו גם תאים לא מובחנים שיורית. לתרגום נגזרות hESC מובחנות מהמעבדה למרפאה, חשוב להיות מסוגלים להפלות בין תאים לא מובחנים (פלוריפוטנטיים) לבין תאים מובחנים, וליצור שיטות להפרדת אוכלוסיות אלה. יישום בטוח של סוגי תאים סומטיים שמקורם ב- hESC יכול להתבצע רק עם אוכלוסיות נטולות תאי גזע פלוריפוטנטיים, שכן שאריות hESCs יכולות לגרום לגידולים הידועים בשם טרטומות לאחר ההשתלה. לקראת מטרה זו, כאן אנו מתארים מתודולוגיה לגילוי אנטיגנים משטח תא הקשורים pluripotency עם נוגדנים חד שבטיים TG30 (CD9) ו GCTM-2 באמצעות מיון תאים המופעלים פלואורסצנטיות (FACS) לזיהוי של pluripotent TG30היי-GCTM-2היי hESCs באמצעות בחירה חיובית. באמצעות בחירה שלילית עם מתודולוגיית ה- FACS TG30/GCTM-2 שלנו, הצלחנו לזהות ולטהר HESCs לא מובחנים באוכלוסיות שעברו בידול בשלב מוקדם מאוד (TG30Neg-GCTM-2Neg). במחקר נוסף, דגימות ללא תאי גזע פלוריפוטנטיים של תאי TG30Neg-GCTM-2Neg מובחנים שנבחרו באמצעות פרוטוקול FACS TG30/GCTM-2 שלנו לא יצרו טרטומות שהושתלו בעבר בעכברים עם פגיעה במערכת החיסון, התומכים בחוזק הפרוטוקול שלנו. מצד שני, TG30 /GCTM-2 FACS בתיווך פסוקים רצופים של TG30 Hi-GCTM-2Hi hESCs מועשרים לא השפיעו על יכולתם לחדש את עצמם במבחנה או על הפלוריפוטנציה המהותית שלהם. לכן, המאפיינים של מתודולוגיית ה- FACS TG30/GCTM-2 שלנו מספקים מבחנים רגישים להשגת אוכלוסיות מועשרות מאוד של hPSC כתשומות למבחני בידול ולפטור hESC גידולי פוטנציאלי (או שיורית) מאוכלוסיות תאים נגזרים.

h נגזרות של hESC שהן נטולות תאי גזע פלוריפוטנטיים ניתן להשיג על ידי פסיעה רצופה של תאים מתת-השבירה P4 (TG30 Neg-GCTM-2Neg).
דיווחים קודמים קבעו כי בתרבויות תקן hESC תערובת של תתי-אוכלוסיות מתקיימות יחד המציגות שיפוע ביטוי של גנים הקשורים לפלוריפוטנציה5,6,13. זיהוי משולב של אנטיגנים משטח התא כמו TG30 (CD9) ו GCTM-2 מאפשר אפליה של מספר קבוצות משנה של תאים בשלב pluripotent ובשלבים שונים של בידול מוקדם, כפי שצוין על ידי הביטוי שלהם של סמני תאי גזע וגורמי שעתוק ספציפייםשושלת 5,6,13. בהסכמה עם דיווחים קודמים, הצלחנו להפלות P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg),P5 (TG30נמוך-GCTM-2נמוך),P6 (TG30 Mid-GCTM-2Mid),ו P7 (TG30היי-GCTM-2Hi)בקו hESC-MEL1 המשמש למחקר זה (איור 1). עם תוצאה זו, המשכנו לאסוף P4 מובחן (TG30Neg-GCTM-2Neg)תאים P7 פלוריפוטנטי (TG30היי-GCTM-2היי)תאים עבור תרבות נוספת במחקרים המתוארים להלן.
חקרנו אם באמצעות גישת בחירה שלילית אנו יכולים לטהר hESCs מובחנים מאוכלוסיות תאים שעברו בידול בשלב מוקדם מאוד (TG30Neg-GCTM-2Neg). השתמשנו במספר מוגדר של תאי P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg)שהיו מתורבתים ברצף לאחר FACS(איור 2A)במשך כשבועיים, ותיעזרנו מחדש באמצעות FACS TG30/GCTM-2 לפני ההזרמה מחדש בכל קטע. התוצאות הראו כי ה-P4-subfraction מועשר עבור TG30Neg-GCTM-2Neg סוגי תאים מובחנים לאחר מעבר רצוף, ונוכחות מינורית של תאי P7 (TG30Hi-GCTM-2Hi)במעבר הראשוני(איור 2A,מעבר 1) נעלמו בסופו של דבר לאחר מעבר נוסף, והפכו לדגימות נטולות תאי גזע פלוריפוטנטיים(איור 2A, מעבר 3).
העשרה של תאי hESC pluripotent ניתן להשיג על ידי אוסף של תאים TG30היי-GCTM-2 היי תאים.
בהתבסס על תצפיות קודמות באמצעות מבחנים אלה, היינו מצפים להעשרה של hESCs pluripotent על ידי איסוף P7 (TG30Hi-GCTM-2Hi)תאים שאמורים ליצור מושבות hESC. לכן, חקרנו גם TG30 / GCTM-2 FACS בתיווך העברה רצופה של תאים pluripotent P7 (TG30Hi-GCTM-2Hi). בתרבויות P7 אלה, חיסון FACS TG30/GCTM-2 בוצע לפני ריפוד תאים בכל קטע ורק תאיP7 (TG30 Hi-GCTM-2Hi)צולמו מחדש. בדרך זו, הבחנו כי רוב התאים היו ממוקמים בfractions הקשורים pluripotency (P6 ו P7), המציין העשרה של תאים פלוריפוטנטיים כי גם שמרה על היכולת להבדיל וליצור אחוז קטן של P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg) תאים (איור 3A). יתר על כן, תרבויות של תאי P7 הראו מספר רב של מושבות דמויי hESC במהלך ההעברה (איור 3B), גם מצביע על תחזוקה של מצב pluripotency.
<img alt="Figure 1" fo:content-width="5.5in" src="/files/ftp_upload/50856/50856fig1.jpg"> איור 1. אסטרטגיית מיון מייצגת להשגת שברי משנה של FACS TG30/GCTM-2. (A): השעיות תאי hES מנותקות ממוינות כתאים בודדים וגושים או כפילויות פוטנציאליים מגודרים החוצה עם הפיזור הקדמי עבור גובה ואזור (FSC-H ו- FSC-A). (B): פסולת פוטנציאלית מוסרת עם FSC-A ו- SSC-A, ורק תאים שלמים ממוינים עוד יותר. (ג): תאים שאינם ברי קיימא אינם נכללים בהתבסס על פלואורסצנטיות פרופידיום יודיד (PI) (FSC-A ו- FL3-A). (ד): תאי מאכיל MEF היו מגודרים על-ידי בחירה שלילית בהתבסס על ביטוי של העכבר CD90.2-PE (FL2-A ו- SSC-A). (ה): שבר hESC קיימא מבודד, ללא מאכילי MEF, הוא סוף סוף מופרד לתוך P4 (TG30נג-GCTM-2נג),P5 (TG30נמוך-GCTM-2נמוך),P6 (TG30אמצע-GCTM-2אמצע),ו P7 (TG30היי-GCTM-2Hi)תת-אוכלוסיות. השער השלילי (TG30Neg-GCTM-2Neg, בשם P4) נקבע על פי שפעת אוטומטית ברקע עבור התאים מוכתמים וגם לבקרות isotype. (ו): אחוזים של תת-אוכלוסיות מגודרות שונות האופייניות לניתוח ציטומטריית זרימה TG30/GCTM-2. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/50856/50856fig1large.jpg" target="_blank"> לחץ כאן כדי להציג איור גדול יותר</a>.
<img alt="Figure 2" fo:content-width="5.75in" src="/files/ftp_upload/50856/50856fig2.jpg"> איור 2. תרבויות עוקבות מייצגות של תאי P4(TG30 Neg-GCTM-2Neg)המובחנים באופן ספונטני מקו hESC-MEL1. (A): ייצוגי TG30/GCTM-2 FACS התוויות המציגות תת-קבוצות מגודרות של תאים (P4, P5, P6 ו- P7) מופלים על-ידי רמת הביטוי שזוהה של סמני משטח תאים TG30 ו- GCTM-2. אוכלוסייה ראשונית של 400,000 hESC-נגזרות המציג P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg)immunoprofiling נאסף מתרבויות בתפזורת של קו hESC-MEL1. תאים אלה P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg)מועברים ברציפות לאחר FACS בתנאים התומכים בחידוש hESC בבקבוקי T75, עד להגעה לסיכום (11-13 ימים). לפני כל קטע, TG30 / GCTM-2 FACS מבוצע כדי לאסוף ולבת מחדש רק את P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg) סוגי תאים מובחנים. (B): מורפולוגיה אופיינית של הדשא של P4 מובחן (TG30Neg-GCTM-2Neg)תאים לאחר 14 ימים. (ג): מושבות ספורדיות דמויי hESC שנראו לאחר 14 ימים התערבבו עם הדשא של P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg)תאים במעבר 1 בלבד, נוצרים ככל הנראה על ידי מזהם P7 (TG30היי-GCTM-2היי)תאים. סרגל קנה מידה = 200 מיקרומטר. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/50856/50856fig2large.jpg" target="_blank">לחץ כאן כדי להציג איור גדול יותר</a>.
<img alt="Figure 3" fo:content-width="5.75in" src="/files/ftp_upload/50856/50856fig3.jpg"> איור 3. P7 (TG30Hi-GCTM-2Hi)תאים הנגזרים מקווי hESC ניתן להעביר ברציפות שלאחר FACS מבלי לאבד את המאפיינים pluripotent המהותיים שלהם. נציג TG30/GCTM-2 FACS immunoprofiling של קטעים רצופים שונים, מראה את קבוצות משנה מופלות של תאים (P4, P5, P6, ו P7) על פי רמת הביטוי של TG30 ו GCTM-2. (א): אוכלוסייה התחלתית של 400,000 תאים המציגים מאפייני P7 (TG30Hi-GCTM-2Hi)מאוחזרת מתרבויות בתפזורת של קו hESC-MEL1. תאים Pluripotent P7 (TG30Hi-GCTM-2Hi)מועברים ברציפות לאחר FACS בתנאים התומכים בחידוש hESC בבקבוקי T75, עד שהם מגיעים ~ 80% מפגש (9-11 ימים). TG30/GCTM-2 חיסוני FACS מבוצע לפני replating תאים בכל מעבר ורק תאים P7 (TG30Hi-GCTM-2Hi)הם recultured. התוצאות מראות שתאי P7 (TG30 Hi-GCTM-2Hi)משמרים את המאפיינים הפלוריפוטנטיים שלהם עם המעבר הבא, כולל שימור (TG30Hi-GCTM-2Hi)ביטוי, יצירת מושבות דמויי hESC (מוצג ב- B)ושמירה על היכולת להבדיל כפי שניתן להסיק מן הסיכום של חלק קטן של P4 מובחן (TG30Neg-GCTM-2Neg)בכל אחד ממדרגי FACS. סרגל קנה מידה = 200 מיקרומטר. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/50856/50856fig3large.jpg" target="_blank">לחץ כאן כדי להציג איור גדול יותר</a>.
<table border="1"><tbody>
<tr>
<td>דוגמה (אמצעי אחסון לתגובה)</td>
			<td>נוגדן ראשוני</td>
			<td>נוגדן משני</td>
			<td>עכברוש PE נגד עכבר CD90.2 b</td>
			<td>פרופידיום יודיד c</td>
		</tr>
<tr>
<td>דוגמת מיון (~ 9 מ"ל עבור ABS ראשי, 2.5 מ"ל עבור ABS משני)</td>
			<td>(TG30 + GCTM-2) א
</td>
			<td>AF 488 עז נגד עכבר IgG2a + AF 647 עז נגד עכבר IgM</td>
			<td>+</td>
			<td>+</td>
		</tr>
<tr>
<td>בקרה-1: TG30 (200 μl)</td>
			<td>TG30</td>
			<td>AF 488 עז נגד עכבר IgG2a</td>
			<td>-</td>
			<td>+</td>
		</tr>
<tr>
<td>בקרה-2: GCTM-2 (200 μl)</td>
			<td>GCTM-2</td>
			<td>AF 647 עז נגד עכבר IgM</td>
			<td>-</td>
			<td>+</td>
		</tr>
<tr>
<td>Control-3: CD90.2 נגד עכבר (200 μl)</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>+</td>
			<td>+</td>
		</tr>
<tr>
<td>בקרה-4: פיקוריתרין (PE) (200 מיקרול)</td>
			<td>עכבר IgG2a איזוטיפ</td>
			<td>R-פיקוריתרין עז נגד עכבר IgG2a</td>
			<td>-</td>
			<td>+</td>
		</tr>
<tr>
<td>Control-5: איזוטיפ אימונוגלובולין עכבר (200 μl)</td>
			<td>עכבר IgG2a isotype + איזוטיפ IgM</td>
			<td>AF 488 עז נגד עכבר IgG2a + AF 647 עז נגד עכבר IgM</td>
			<td>-</td>
			<td>+</td>
		</tr>
<tr>
<td>Control-6: תאים לא מוכתמים (200 μl)</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
		</tr>
</tbody></table>שולחן 1. מיין דוגמה ופקדים עבור מיון FACS. א דגימת מיון היא immunostained בו זמנית עם נוגדני TG30 ו- GCTM-2. b b CD90.2 נגד עכבר PE משמש לזיהוי תאי עכבר ולהסרת קבצי MEFs מ- HESCs במהלך FACS14. ג תאים שאינם ברי קיימא אינם נכללים באמצעות יודיד propidium בריכוז הסופי של 0.3 מיקרוגרם / מיליליטר. ריאגנט הוסיף (+), לא הוסיף (-) לצינור התגובה.
<table border="1"><tbody>
<tr>
<td>נוגדן </td>
			<td>מארח</td>
			<td>סוג נתונים</td>
			<td>דילול עבודה</td>
		</tr>
<tr>
<td>TG30 (1.4 מ"ג/מ"ל)</td>
			<td>עכבר</td>
			<td>IgG2a</td>
			<td>1:1,000</td>
		</tr>
<tr>
<td>GCTM-2 (היברידיומה על טבעית)</td>
			<td>עכבר</td>
			<td>IgM (IgM)</td>
			<td>1:5 ~ 1:10 a
</td>
		</tr>
<tr>
<td>AF 488 עז נגד עכבר IgG2a</td>
			<td>עז</td>
			<td>פוליקלונאלי</td>
			<td>1:500</td>
		</tr>
<tr>
<td>AF 647 עז נגד עכבר IgM</td>
			<td>עז</td>
			<td>פוליקלונאלי</td>
			<td>1:500</td>
		</tr>
<tr>
<td>R-פיקוריתרין (PE) עז נגד עכבר IgG2a</td>
			<td>עז</td>
			<td>פוליקלונאלי</td>
			<td>1:1,000</td>
		</tr>
<tr>
<td>CD90.2 נגד עכבר</td>
			<td>חולדה</td>
			<td>IgG2b</td>
			<td>1:100</td>
		</tr>
<tr>
<td>עכבר מטוהר IgG2a, κ בקרת איזוטיפ</td>
			<td>עכבר</td>
			<td>IgG2a</td>
			<td>1:200</td>
		</tr>
<tr>
<td>עכבר מטוהר IgM, κ בקרת Isotype</td>
			<td>עכבר</td>
			<td>IgM (IgM)</td>
			<td>1:200</td>
		</tr>
</tbody></table>שולחן 2. פרטי נוגדנים ודילולים למיון FACS. בשל הביטוי הגבוה מאוד של GCTM-2 על פני התא של hESCs לא ניתן להגיע רוויה עם נוגדן זה. כל אצווה של GCTM-2 היברידית supernatant חייב להיות titrated נגד פקד סטנדרטי או אצווה קודמת כדי להשיג תוצאות דומות עם hESCs בקנה מידה כדי למנוע כתמים.
<table border="1"><tbody>
<tr>
<td>שם המדיום</td>
			<td>הרכב</td>
		</tr>
<tr>
<td>hESC/קוסר בינוני</td>
			<td>הנשר שונה של Dulbecco בינוני:תערובת תזונה F-12 (DMEM / F-12) בתוספת 20% החלפת סרום נוקאאוט (KOSR), 2 mM GlutaMAX, 1% חומצות אמינו לא חיוניות MEM, 0.1 מ"מ 2-Mercaptoethanol, 10 ננוגרם/מיליליטר גורם גדילה פיברובלסט אנושי 2 (FGF-2) ועט/סטרפטוקוקוס ב 1x.</td>
		</tr>
<tr>
<td>מדיום MEF</td>
			<td>הנשר שונה בינוני של Dulbecco, גלוקוז גבוה (DMEM) בתוספת 10% סרום שור עוברי (FBS), 2 מ"מ GlutaMAX, ו עט / סטרפטוקוקוס ב 1x.</td>
		</tr>
</tbody></table>שולחן 3. הרכב של מדיה תרבותית.

Watch this Scientific Journal Video about Enrichment and Purging of Human Embryonic Stem Cells by Detection of Cell Surface Antigens Using the Monoclonal Antibodies TG30 and GCTM-2 at JoVE.com

Enrichment and Purging of Human Embryonic Stem Cells by Detection of Cell Surface Antigens Using the Monoclonal Antibodies TG30 and GCTM-2

אנו מתארים את השימוש בנוגדנים חד שבטיים TG30 (CD9) ו- GCTM-2 לגילוי משולב של אנטיגנים משטח התא באמצעות מיון תאים המופעל על ידי פלואורסצנטיות (FACS) לזיהוי והעשרה של תאי גזע עובריים אנושיים חיים (hESC) באמצעות בחירה חיובית וגם שימוש בבחירה שלילית כדי לטהר hESCs מאוכלוסיית תאים מעורבת.

העשרה וטיהור של תאי גזע עובריים אנושיים על ידי זיהוי אנטיגנים משטח התא באמצעות נוגדנים חד שבטיים TG30 ו GCTM-2

Human embryonic stem cells (hESC) can self-renew indefinitely in vitro, and with the appropriate cues can be induced to differentiate into potentially all ...

enrichment-purging-human-embryonic-stem-cells-detection-cell-surface

Research

Education

JoVE Journal

JoVE Core

Cell Biology

Biology

Unit 1

Embryonic and Induced Pluripotent Stem Cells

SCIENTISTS IN ACTION

7.7K Views.  CSIRO. אנו מתארים את השימוש בנוגדנים חד שבטיים TG30 (CD9) ו- GCTM-2 לגילוי משולב של אנטיגנים משטח התא באמצעות מיון תאים המופעל על ידי פלואורסצנטיות (FACS) לזיהוי והעשרה של תאי גזע עובריים אנושיים חיים (hESC) באמצעות בחירה חיובית וגם שימוש בבחירה שלילית כדי לטהר hESCs מאוכלוסיית תאים ?...

Video: Enrichment and Purging of Human Embryonic Stem Cells by Detection of Cell Surface Antigens Using the Monoclonal Antibodies TG30 and GCTM-2

Propagation of Human Embryonic Stem (ES) Cells

Propagation of Human Embryonic Stem ES Cells

רביה של האדם גזע עובריים (ES) תאים

Derivation of Hematopoietic Stem Cells from Murine Embryonic Stem Cells

A stem cell is defined as a cell with the capacity to both self-renew and generate multiple differentiated progeny.  Embryonic stem cells (ESC) are derived from the blastocyst of the early embryo and are pluripotent in differentiative ability.  Their vast differentiative potential has made them the focus of much research centered on deducing how to coax them to generate clinically useful cell types.  The successful derivation of hematopoietic stem cells (HSC) from mouse ESC has recently been accomplished and can be visualized in this video protocol.  HSC, arguably the most clinically exploited cell population, are used to treat a myriad of hematopoietic malignancies and disorders.  However, many patients that might benefit from HSC therapy lack access to suitable donors.  ESC could provide an alternative source of HSC for these patients.  The following protocol establishes a baseline from which ESC-HSC can be studied and inform efforts to isolate HSC from human ESC.  In this protocol, ESC are differentiated as embryoid bodies (EBs) for 6 days in commercially available serum pre-screened for optimal hematopoietic differentiation.  EBs are then dissociated and infected with retroviral HoxB4.  Infected EB-derived cells are plated on OP9 stroma, a bone marrow stromal cell line derived from the calvaria of  M-CSF-/- mice, and co-cultured in the presence of hematopoiesis promoting cytokines for ten days.  During this co-culture, the infected cells expand greatly, resulting in the generation a heterogeneous pool of 100s of millions of cells.  These cells can then be used to rescue and reconstitute lethally irradiated mice.

This protocol details the derivation of transplantable hematopoietic stem cells from mouse embryonic stem cells (ESC) and their subsequent injection into lethally irradiated recipient mice. Briefly, ESC are differentiated as embryoid bodies, which are then infected with retroviral HoxB4 and co-cultured with OP9 stromal cells and hematopoietic cytokines.

גזירת בתאי גזע hematopoietic מ Murine בתאי גזע עובריים

A stem cell is defined as a cell with the capacity to both self-renew and generate multiple differentiated progeny.  Embryonic stem cells (ESC) are ...

Patterning of Embryonic Stem Cells Using the Bio Flip Chip

Cell-cell interactions consisting of diffusible signaling and cell-cell contact (juxtacrine signaling) are important in numerous biological processes such as tumor growth, stem cell differentiation, and stem cell self-renewal. A number of methods currently exist to modulate cell signaling in vitro. One method of modulating the total amount of diffusible signaling is to vary the cell seeding density during culture. Due to the random nature of cell seeding, this results in considerable variation in the actual cell-cell spacing and amount of cell-cell contact, and cannot prescribe the local environment. A more specific approach for modulating cell signaling is to use molecular inhibitors or genetic approaches to knock down specific signaling proteins, but both of these methods are best suited to manipulating small numbers of molecules. Here, we demonstrate a new approach to modulating cell-cell signaling that modulates the local environment of a cluster of cells by placing different numbers of cells at desired locations on a substrate. This method provides a complementary way to control the local diffusible and juxtacrine signaling between cells. Our method makes use of the Bio Flip Chip (BFC), a microfabricated silicone chip containing hundreds-to-thousands of microwells, each sized to hold either a single cell or small numbers of cells. We load the chip with cells simply by pipetting them onto the array of wells and washing unloaded cells off the array. The chip is then flipped onto a substrate, whereby the cells fall out of the wells and onto the substrate, maintaining their patterning. After the cells have attached, the chip can be removed (or left on). This approach to cell patterning is unique in that it: 1) doesn't alter the chemistry of the substrate, thus allowing cells to proliferate and migrate; 2) allows patterning onto any substrate, including tissue-culture polystyrene, glass, matrigel, and even feeder cell layers; and 3) is compatible with traditional microcontact printing, allowing the creation of extracellular matrix islands with cells placed inside those islands. In this video, we demonstrate the patterning of mouse embryonic stem cells onto tissue-culture polystyrene using the BFC.

We demonstrate a simple method for placing cells at desired locations on a substrate. This method patterns cells by flipping a silicone chip containing microwells filled with cells onto the substrate. This method provides a new way to modulate diffusible and juxtacrine signaling between cells.

דפוסים של תאים עובריים באמצעות שבב להעיף ביו

Cell-cell interactions consisting of diffusible signaling and cell-cell contact (juxtacrine signaling) are important in numerous biological processes such ...

Derivation of Human Embryonic Stem Cells by Immunosurgery

The ability of human embryonic stem cells to self-renew and differentiate into all cell types of 
the body suggests that they hold great promise for both medical applications and as a research 
tool for addressing fundamental questions in development and disease. Here, we provide a 
concise, step-by-step protocol for the derivation of human embryonic stem cells from embryos 
by immunosurgical isolation of the inner cell mass. 


The ability of human embryonic stem cells to self-renew and differentiate into all cell types of 
the body suggests that they hold great promise for both medical applications and as a research 
tool for addressing fundamental questions in development and disease. Here, we provide a 
concise, step-by-step protocol for the derivation of human embryonic stem cells from embryos 
by immunosurgical isolation of the inner cell mass.

גזירת בתאי גזע עובריים אנושיים על ידי Immunosurgery

The ability of human embryonic stem cells to self-renew and differentiate into all cell types of 
the body suggests that they hold great promise for both ...

Culture and Maintenance of Human Embryonic Stem Cells  

Human embryonic stem (hES) cells must be monitored and cared for in order to maintain healthy, undifferentiated cultures. At minimum, the cultures must be  fed  every day by performing a complete medium change to replenish lost nutrients and to keep the cultures free of unwanted differentiation factors. Although a small amount of differentiation is normal and expected in stem cell cultures, the culture should be routinely cleaned up by manually removing, or "picking" differentiated areas. Identifying and removing excess differentiation from hES cell cultures are essential techniques in the maintenance of a healthy population of cells.

Culture and Maintenance of Human Embryonic Stem Cells

This protocol demonstrates how to maintain healthy, undifferentiated human embryonic stem (ES) cells.

תרבות ותחזוקה של בתאי גזע עובריים אנושיים

Human embryonic stem (hES) cells must be monitored and cared for in order to maintain healthy, undifferentiated cultures. At minimum, the cultures must be ...

Freezing and Thawing Human Embryonic Stem Cells

Since James Thomson et al developed a technique in 1998 to isolate and grow hES in culture, freezing cells for later use and thawing and expanding cells from a frozen stock have become important procedures performed in routine hES cell culture. Since hES cells are very sensitive to the stresses of freezing and thawing, special care must taken. Here we demonstrate the proper technique for rapidly thawing hES cells from liquid nitrogen stocks, plating them on mouse embryonic feeder cells, and slowly freezing them for long-term storage.

Since James Thomson et al developed a technique in 1998 to isolate and grow hES in culture, freezing cells for later use and thawing and expanding cells from a frozen stock have become important procedures performed in routine hES cell culture. Since hES cells are very sensitive to the stresses of freezing and thawing, special care must taken. Here we demonstrate the proper technique for rapidly thawing hES cells from liquid nitrogen stocks, plating them on mouse embryonic feeder cells, and slowly freezing them for long-term storage.

מקפיא הפשרה בתאי גזע עובריים אנושיים

Since James Thomson et al developed a technique in 1998 to isolate and grow hES in culture, freezing cells for later use and thawing and expanding cells ...

Isolation and Derivation of Mouse Embryonic Germinal Cells

The ability of embryonic germinal cells (EG) to differentiate into primordial germinal cells (PGCs) and later into gametes during early developmental stages is a perfect model to address our hypothesis about cancer and infertility. This protocol shows how to isolate primordial germinal cells from developing gonads in 10.5-11.5 days post coitum (dpc) mouse embryos.  Developing gonadal ridges from mouse embryos (C57BL6J) were dissociated by mechanical disruption with collagenase, then plated in a mouse embryo fibroblast feeder layer (MEF-CF1) that was previously mitotically inactivated with mitomycin C in the presence of knockout media and supplemented with Leukemia Inhibitor Factor (LIF), basic Fibroblast Growth Factor (bFGF), and Stem Cell Factor (SCF).  Using these optimized methods for PCG identification, isolation, and establishment of culture conditions permits long term cultures of EG cells for more than 40 days.  The embryonic germinal cell lines showed embryonic phenotype and expression of common used markers of the pluripotent state.  Isolation and derivation of germinal cells in culture provide a tool to understand their development in vitro and offer the opportunity to monitor cumulative damage at genetic and epigenetic levels after exposure to oxidative stress.

The ability of embryonic germinal cells to differentiate into primordial germinal cells during early development stages is a perfect model to address our hypothesis about cancer and infertility. This protocol shows how to isolate primordial germinal cells from developing gonads in 10.5-11.5 days post coitum mouse embryos.

בידוד גזירת תאים עובריים בעכבר ז&#39;רמינל

The ability of embryonic germinal cells (EG) to differentiate into primordial germinal cells (PGCs) and later into gametes during early developmental ...

Video Bioinformatics Analysis of Human Embryonic Stem Cell Colony Growth

Because video data are complex and are comprised of many images, mining information from video material is difficult to do without the aid of computer software.  Video bioinformatics is a powerful quantitative approach for extracting spatio-temporal data from video images using computer software to perform dating mining and analysis. In this article, we introduce a video bioinformatics method for quantifying the growth of human embryonic stem cells (hESC) by analyzing time-lapse videos collected in a Nikon BioStation CT incubator equipped with a camera for video imaging. In our experiments, hESC colonies that were attached to Matrigel were filmed for 48 hours in the BioStation CT.  To determine the rate of growth of these colonies, recipes were developed using CL-Quant software which enables users to extract various types of data from video images.  To accurately evaluate colony growth, three recipes were created. The first segmented the image into the colony and background, the second enhanced the image to define colonies throughout the video sequence accurately, and the third measured the number of pixels in the colony over time.  The three recipes were run in sequence on video data collected in a BioStation CT to analyze the rate of growth of individual hESC colonies over 48 hours. To verify the truthfulness of the CL-Quant recipes, the same data were analyzed manually using Adobe Photoshop software. When the data obtained using the CL-Quant recipes and Photoshop were compared, results were virtually identical, indicating the CL-Quant recipes were truthful. The method described here could be applied to any video data to measure growth rates of hESC or other cells that grow in colonies. In addition, other video bioinformatics recipes can be developed in the future for other cell processes such as migration, apoptosis, and cell adhesion.  

Video bioinformatics is the automated processing, analysis, understanding, and data mining of biological spatio-temporal data extracted from microscopic videos. The purpose of this article is to demonstrate a method for measuring human embryonic stem cell colony growth using a video bioinformatics method.

וידאו ביואינפורמטיקה ניתוח גדילה אנושי בתאי גזע עובריים קולוני

Because video data are complex and are comprised of many images, mining information from video material is difficult to do without the aid of computer ...

Differentiation of Embryonic Stem Cells into Oligodendrocyte Precursors

Oligodendrocytes are the myelinating cells of the central nervous system. For regenerative cell therapy in demyelinating diseases, there is significant interest in deriving a pure population of lineage-committed oligodendrocyte precursor cells (OPCs) for transplantation. OPCs are characterized by the activity of the transcription factor Olig2 and surface expression of a proteoglycan NG2. Using the GFP-Olig2 (G-Olig2) mouse embryonic stem cell (mESC) reporter line, we optimized conditions for the differentiation of mESCs into GFP+Olig2+NG2+ OPCs. In our protocol, we first describe the generation of embryoid bodies (EBs) from mESCs. Second, we describe treatment of mESC-derived EBs with small molecules: (1) retinoic acid (RA) and (2) a sonic hedgehog (Shh) agonist purmorphamine (Pur) under defined culture conditions to direct EB differentiation into the oligodendroglial lineage. By this approach, OPCs can be obtained with high efficiency (&gt;80%) in a time period of 30 days. Cells derived from mESCs in this protocol are phenotypically similar to OPCs derived from primary tissue culture. The mESC-derived OPCs do not show the spiking property described for a subpopulation of brain OPCs in situ. To study this electrophysiological property, we describe the generation of spiking mESC-derived OPCs by ectopically expressing NaV1.2 subunit. The spiking and nonspiking cells obtained from this protocol will help advance functional studies on the two subpopulations of OPCs.

We describe a small molecule-based protocol for differentiation of mouse embryonic stem cells into oligodendrocyte precursor cells (OPCs). This protocol generates Olig2+NG2+ OPCs with high efficiency by 30 days of differentiation. We also describe a method to generate "spiking" OPCs that can fire action potentials.

התמיינות של תאים עובריים לתוך מבשרי Oligodendrocyte

Oligodendrocytes are the myelinating cells of the central nervous system. For regenerative cell therapy in demyelinating diseases, there is significant ...

Fate Mapping of Human Embryonic Stem Cells by Teratoma Formation

Human embryonic stem cells (hESCs) have an unlimited capacity for self-renewal, and the ability to differentiate into cells derived from all three embryonic germ layers (1). Directed differentiation of hESCs into specific cell types has generated much interest in the field of regenerative medicine (e.g., (2-5)), and methods for determining the in vivo fate of selected or manipulated hESCs are essential to this endeavor. We have adapted a highly efficient teratoma formation assay for this purpose. A small number of specifically selected hESCs is mixed with undifferentiated wild type hESCs and Phaseolus vulgaris lectin to form a cell pellet. This is grafted beneath the kidney capsule in an immunodeficient mouse. As few as 2.5 x 105 hESCs are needed to form a 16 cm3 teratoma within 8-12 weeks. The fate of the originally selected hESCs can then be determined by immunohistochemistry. This method provides a valuable tool for characterizing tissue-specific reagents for cell-based therapy.

Directed differentiation of hESCs into specific cells has generated much interest in regenerative medicine. We provide a concise, step-by-step protocol for determining the in vivo fate of selected hESCs that provides a valuable tool for characterizing tissue-specific reagents for cell-based therapy.