אנו אסירי תודה P. Käse ו T. Schmidt-Wöll לעזרה טכנית מעולה. עבודה זו נתמכה על ידי מענק המחקר המשותף TRR81 ותוכנית הייזנברג (BO 1639 / 5-1) של DFG (קרן המחקר הגרמנית), חברת מקס פלנק ו- EXC 294 בפרייבורג, ואשכול הצטיינות של מערכת ריאתי לב ריאה (ECCPS) ב Giessen כדי שחפת

הערה: כל המאגרים והאמצעים המשמשים בפרוטוקול זה מפורטים בטבלה 1 . ימים 1 ו -2 1. Crosslinking התאים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מעבירים את העכבר תאים T מ צלחת 6-היטב לצינור 50 מ&quot;ל ו צנטריפוגה במשך 5 דקות ב 4 ° C ו ~ 271 x גרם. Resuspend תא גלולה ב 30 מ&quot;ל של תרבות IMDM תא תאים לספור את התאים באמצעות תא Neubauer. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> איסוף aliquots של 20 x 10 6 תאים לתוך צינורות 50 מ&quot;ל חדשים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוספת פורמלדהיד (FMA) לריכוז סופי 1% ישירות בינוני תרבות התא דגירה בטמפרטורת החדר למשך 10 דקות. זהירות: FMA הוא רעיל אם בשאיפה, כך לעבוד תחת מכסה המנוע קטר ללבוש ציוד מגן נאות. כמו כן, אנא לטפל בזבוז FMA על פי הכללים של המוסד המארחת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 1/8 נפח של 1 גליצין M, pH 7.0, ו דגירה בטמפרטורת החדר למשך 5 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> גלולה התאים על ידי צנטריפוגה עבור 5דקות ב 4 ° C ו ~ 271 xg ולשטוף עם 10 מ&quot;ל של פוספט שנאגרו מלוחים (PBS). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשטוף את גלולה תא עם 1 מ&quot;ל של PBS ולהעביר צינורות 1.5 מ&quot;ל. </li></ol> 2. תא תמוגה ו הכרומטין גז <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Resuspend תא גלולה ב 1 מ&quot;ל של חיץ תמוגה SDS ו דגירה על הקרח במשך 10 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> העברת כל מדגם לצינור sonication ולבצע גז באמצעות ultrasonicator ממוקד בהתאם להגדרות המצוין בטבלה 2. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר הגז, להעביר את דגימות צינורות 1.5 מ&quot;ל ו צנטריפוגה במשך 10 דקות ב 4 ° C ~ 18,000 x גרם. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מעבירים את supernatant צינורות חדשים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> איסוף 50 μL כדי לקבוע את יעילות הגז על פי צעד 3 ו הצמד להקפיא lysate גז בחנקן נוזלי. חנות Lysate ב aliquots לשימוש יחיד ב -80 מעלות צלזיוס. </li></ol> 3. קביעת יעילות הגז <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 50 μL של חיץ elution כדי 50 &amp; #181; L של כל lysate גז ו לדגור על 65 מעלות צלזיוס למשך הלילה, עם רועד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 100 μL של חיץ TE ו 4 μL של 10 מ&quot;ג / מ&quot;ל ​​RNase A (0.2 מיקרוגרם / ריכוז סופי μL). מערבבים ו לדגור על 2 שעות ב 37 ° C, עם רועד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 2 μL של 20 מ&quot;ג / מ&quot;ל ​​proteinase K (0.2 מיקרוגרם / ריכוז μL הסופי) לכל מדגם ו דגירה של 2 שעות ב 55 מעלות צלזיוס, עם רעד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> העברת כל מדגם לצינור ג&#39;ל מתאים פנול / כלורופורם / אלכוהול isoamyl החילוץ; ידית בהתאם להוראות היצרן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 200 μL של פנול / chloroform / אלכוהול isoamyl (25: 24: 1) ולנער את צינורות. צנטריפוגה 5 דקות ב 24 ° C ו ~ 16,000 XG ולהעביר את השלב העליון צינורות חדשים. זהירות: פנול, כלורופורם, אלכוהול איזואמי הם רעילים אם הם בשאיפה והם קורוזיביים; לעבוד תחת מכסה המנוע קטר ללבוש ציוד מגן אישי ראוי. כמו כן, לטפל פנול, כלורופורם, וכן אלכוהול isoamyl פסולת acבהתאם לכללי המוסד המארח. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חזור פעם אחת. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> טיהור ה- DNA באמצעות עמודות טיהור על פי הוראות היצרן, עם השינויים הבאים: <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשטוף את הקרום פעמיים. לאחר לשטוף האחרון, להשאיר את הצינור פתוח למשך 2 דקות בטמפרטורת החדר להתאדות אתנול שיורית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עבור elution, להוסיף 50 μL של H 2 O, דגירה בטמפרטורת החדר למשך 1 דקות, לסובב את הצינור עבור 1 s כדי רטוב כראוי את הממברנה, ו דגירה בטמפרטורת החדר למשך 1 דקות לפני eluting DNA על ידי צנטריפוגה דקות 1 ב 24 ° C ו ~ 17,900 x גרם. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לכמת את ה- DNA מטוהרים על פלואורמטר באמצעות ערכת רגישות גבוהה על פי הוראות היצרן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לנתח כ 500 ng של ה- DNA מטוהרים על ג&#39;ל agarose 1.8% ו כ 1 ng על מערכת אלקטרופורזה באמצעות ערכת רגישות גבוהה. הערה: הגודל הצפויE של שברי ה- DNA הוא בין 200 ל 500 bp. </li></ol> ימים 3 ו -4 4. Immunoprecipitation <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מדולל 1 נפח של lysate גז עם 5 כרכים של חיץ דילול. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Preclear עם 30 μL μL / חלבון מ&quot;ל אגרוס agarose (מוכן על פי נספח א ) במשך 30 דקות תוך סיבוב בחדר קר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צנטריפוגה ב 4 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות ב ~ 750 x גרם. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> איסוף 10% קלט קלט את זה ב 4 ° C. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Aliquot את הסכום הרצוי של lysate לתוך צינורות חדשים (ראה טבלה 3 לפרטים). הוסף את הנוגדנים הרצויים לכל צינור (ראה טבלה 3 לפרטים) וסובב בן לילה ב 4 ° C. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 40 μL של חלבון חרוזים לדגור על 1 שעות ב 4 ° C תוך סיבוב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשטוף את החרוזים עם 1 מ&quot;ל של חיץ מלח נמוך, חיץ מלח גבוהה, חיץ LiCl, חיץ TE (עבור כל לשטוף, דגירה של 5 דקות ב 4 ° C תוך סיבוב צנטריפוגהבמשך 3 דקות ב 4 ° C ו ~ 950 xg). ראה טבלה 3 לפרטים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 110 μL של חיץ elution ו דגירה במשך 15 דקות בטמפרטורת החדר, vortexing כל 2 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צנטריפוגה במשך 3 דקות ב 4 ° C ו ~ 950 xg ולהעביר 100 μL של supernatant לצינור 1.5-מ&quot;ל חדש. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חזור על שלבים 4.7-4.8 עם 100 μL של חיץ elution ולשלב eluates. הוסף חיץ אלוטי עד 200 μL כדי להזין את הדגימות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דגירה כל הדגימות לילה ב 65 מעלות צלזיוס, עם רועד. </li></ol> יום 5 5. טיהור דנ&quot;א <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 200 μL למאגר TE כדי eluate כל 8 μL של 10 מ&quot;ג / מ&quot;ל ​​RNase A (0.2 מיקרוגרם / ריכוז סופי μL). מערבבים ו לדגור על 2 שעות ב 37 ° C, עם רועד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 4 μL של 20 מ&quot;ג / מ&quot;ל ​​proteinase K (0.2 מיקרוגרם / ריכוז μL הסופי) כדי כל eluate ו דגירה של 2 שעות ב 55 מעלות צלזיוס, עם רועד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מעבירים כל מדגם לג&#39;לצינור מתאים פנול / כלורופורם / אלכוהול isoamyl החילוץ; ידית בהתאם להוראות היצרן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 400 μL של פנול / כלורופורם / אלכוהול isoamyl (25: 24: 1) ולנער את צינורות. צנטריפוגה 5 דקות ב 24 ° C ו ~ 16,000 x גרם. מעבירים את השלב העליון צינורות חדשים. זהירות: פנול, כלורופורם, אלכוהול איזואמי הם רעילים אם הם בשאיפה והם קורוזיביים; לעבוד תחת מכסה המנוע קטר ללבוש ציוד מגן אישי ראוי. כמו כן, לטפל פנול, כלורופורם, פסולת אלכוהול isoamyl על פי הכללים של המוסד המארחת. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חזור פעם אחת. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> טיהור ה- DNA באמצעות עמודות טיהור על פי הוראות היצרן, עם השינויים הבאים: </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשטוף את הקרום פעמיים. לאחר לשטוף האחרון, להשאיר את צינורות פתוחים במשך 2 דקות בטמפרטורת החדר להתאדות אתנול שיורית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עבור elution, להוסיף 50 μL של H 2 O, דגירה בחדר temperatuמחדש עבור 1 דקות, לסובב את צינורות 1 s כדי רטוב כראוי את הממברנה, ו דגירה בטמפרטורת החדר למשך 1 דקות לפני eluting DNA על ידי צנטריפוגה דקות 1 ב 24 ° C ~ 17,900 x גרם. </li></ol>

<ol>
	<li>Rothenberg, E. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+chromatin+landscape+and+transcription+factors+in+T+cell+programming.">The chromatin landscape and transcription factors in T cell programming.</a> Trends Immunol. 35 (5), 195-204 (2014).</li><li>Zhang, J. A., Mortazavi, A., Williams, B. A., Wold, B. J., Rothenberg, E. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynamic+transformations+of+genome-wide+epigenetic+marking+and+transcriptional+control+establish+T+cell+identity.">Dynamic transformations of genome-wide epigenetic marking and transcriptional control establish T cell identity.</a> Cell. 149 (2), 467-482 (2012).</li><li>Cauchy, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynamic+recruitment+of+Ets1+to+both+nucleosome-occupied+and+-depleted+enhancer+regions+mediates+a+transcriptional+program+switch+during+early+T-cell+differentiation.">Dynamic recruitment of Ets1 to both nucleosome-occupied and -depleted enhancer regions mediates a transcriptional program switch during early T-cell differentiation.</a> Nucl Acids Res. 44 (8), 3567-3585 (2016).</li><li>Koch, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transcription+initiation+platforms+and+GTF+recruitment+at+tissue-specific+enhancers+and+promoters.">Transcription initiation platforms and GTF recruitment at tissue-specific enhancers and promoters.</a> Nat Struct Mol Biol. 18 (8), 956-963 (2011).</li><li>Pekowska, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=H3K4+tri-methylation+provides+an+epigenetic+signature+of+active+enhancers.">H3K4 tri-methylation provides an epigenetic signature of active enhancers.</a> EMBO J. 30 (20), 4198-4210 (2011).</li><li>Vanhille, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-throughput+and+quantitative+assessment+of+enhancer+activity+in+mammals+by+CapStarr-seq.">High-throughput and quantitative assessment of enhancer activity in mammals by CapStarr-seq.</a> Nat Commun. 6, 6905 (2015).</li><li>Barski, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-resolution+profiling+of+histone+methylations+in+the+human+genome.">High-resolution profiling of histone methylations in the human genome.</a> Cell. 129 (4), 823-837 (2007).</li><li>Heintzman, N. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Histone+modifications+at+human+enhancers+reflect+global+cell-type-specific+gene+expression.">Histone modifications at human enhancers reflect global cell-type-specific gene expression.</a> Nature. 459 (7243), 108-112 (2009).</li><li>Ernst, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mapping+and+analysis+of+chromatin+state+dynamics+in+nine+human+cell+types.">Mapping and analysis of chromatin state dynamics in nine human cell types.</a> Nature. 473 (7345), 43-49 (2011).</li><li>Ostuni, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Latent+enhancers+activated+by+stimulation+in+differentiated+cells.">Latent enhancers activated by stimulation in differentiated cells.</a> Cell. 152 (1-2), 157-171 (2013).</li><li>Giaimo, B. D., Oswald, F., Borggrefe, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynamic+chromatin+regulation+at+Notch+target+genes.">Dynamic chromatin regulation at Notch target genes.</a> Transcription. 8 (1), 61-66 (2017).</li><li>Liefke, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Histone+demethylase+KDM5A+is+an+integral+part+of+the+core+Notch-RBP-J+repressor+complex.">Histone demethylase KDM5A is an integral part of the core Notch-RBP-J repressor complex.</a> Genes Dev. 24 (6), 590-601 (2010).</li><li>Jung, C., Mittler, G., Oswald, F., Borggrefe, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=RNA+helicase+Ddx5+and+the+noncoding+RNA+SRA+act+as+coactivators+in+the+Notch+signaling+pathway.">RNA helicase Ddx5 and the noncoding RNA SRA act as coactivators in the Notch signaling pathway.</a> Biochim Biophys Acta. 1833 (5), 1180-1189 (2013).</li><li>Oswald, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+phospho-dependent+mechanism+involving+NCoR+and+KMT2D+controls+a+permissive+chromatin+state+at+Notch+target+genes.">A phospho-dependent mechanism involving NCoR and KMT2D controls a permissive chromatin state at Notch target genes.</a> Nucl Acids Res. 44 (10), 4703-4720 (2016).</li><li>Arrigoni, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Standardizing+chromatin+research:+a+simple+and+universal+method+for+ChIP-seq.">Standardizing chromatin research: a simple and universal method for ChIP-seq.</a> Nucl Acids Res. 44 (7), e67 (2016).</li><li>Essen, D., Dullforce, P., Brocker, T., Gray, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cellular+interactions+involved+in+Th+cell+memory.">Cellular interactions involved in Th cell memory.</a> J Immunol. 165 (7), 3640-3646 (2000).</li><li>White, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Two+better+cell+lines+for+making+hybridomas+expressing+specific+T+cell+receptors.">Two better cell lines for making hybridomas expressing specific T cell receptors.</a> J Immunol. 143 (6), 1822-1825 (1989).</li><li>Ghisletti, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+and+characterization+of+enhancers+controlling+the+inflammatory+gene+expression+program+in+macrophages.">Identification and characterization of enhancers controlling the inflammatory gene expression program in macrophages.</a> Immunity. 32 (3), 317-328 (2010).</li><li>Egelhofer, T. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+assessment+of+histone-modification+antibody+quality.">An assessment of histone-modification antibody quality.</a> Nat Struct Mol Biol. 18 (1), 91-93 (2011).</li><li>Rothbart, S. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+Interactive+Database+for+the+Assessment+of+Histone+Antibody+Specificity.">An Interactive Database for the Assessment of Histone Antibody Specificity.</a> Mol Cell. 59 (3), 502-511 (2015).</li><li>Fenouil, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CpG+islands+and+GC+content+dictate+nucleosome+depletion+in+a+transcription-independent+manner+at+mammalian+promoters.">CpG islands and GC content dictate nucleosome depletion in a transcription-independent manner at mammalian promoters.</a> Genome Res. 22 (12), 2399-2408 (2012).</li><li>Hein, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Site-specific+methylation+of+Notch1+controls+the+amplitude+and+duration+of+the+Notch1+response.">Site-specific methylation of Notch1 controls the amplitude and duration of the Notch1 response.</a> Sci Signal. 8 (369), ra30 (2015).</li></ol>

למחברים אין אינטרסים פיננסיים מתחרים.

שבב הוא טכניקה חוקית כדי לחקור אם חלבונים או PTM שלהם מועשרים באזורים גנומיים ספציפיים. תוצאות שבב assay לעתים קרובות מאתגר לפרש בשל סיבות ביולוגיות או טכניות. הסיבות הביולוגיות הן רבות וכוללות חיבור חלש או עקיף של חלבונים לדנ&quot;א. יש גם מגבלות טכניות, כגון סגוליות נוגדן מוגבל ותאי תא לא יעיל או גז הכרומטין. מדריך לפתרון בעיות ( טבלה 5 ) יכול לסייע לקורא לפתור את הבעיות שעשויות להיתקל בבדיקות צ&#39;יפ. פרוטוקול זה, תוך שימוש במכשיר ultrasonicator הקירור ממוקד, מאפשר אחד לגזז ביעילות את הכרומטין של קו T העכבר התא הבוגר. השלב הקריטי העיקרי של הפרוטוקול מיוצג על ידי גז של הכרומטין, אשר חייב תמיד להיות מותאם לכל סוג תא. מומלץ לשנות את מספר התאים ואת מספר מחזורי sonication. יתר על כן, היא<html> יעילות aring מושפעת לרעה על ידי נוכחות של משקעים SDS בדגימות, אשר עשויים להיווצר במהלך תמוגה של תאים על הקרח עם חיץ תמוגה SDS. במקרה זה, עדיף לדגור את המדגם לאחר תמוגה בטמפרטורת החדר למשך כמה דקות כדי להפחית את נוכחותם של משקעים SDS. מומלץ לייעל את הפרוטוקול כדי להשיג שברי גזעים בין 200 ל 500 BP ו תמיד להעריך את איכות הגז של הדגימות לפני שתמשיך עם immunoprecipitation. בנוסף, זמן קיבוע, כמות נוגדנים ו / או תאים, ואת תנאי כביסה חייב להיות מותאם לכל נוגדנים. צעד אחד קריטי יותר בהפיכת הליך שבב מוצלח הוא הבחירה של הנוגדנים, כמו נוגדנים ספציפיות נמוכה להפחית באופן משמעותי את היעילות של immunoprecipitation. בעבר, הליך מבחן איכות אחיד מותר להעריך את הספציפיות של נוגדנים מספר זמין בשוק<html> Ss = &quot;xref&quot;&gt; 19. צינור ההקרנה התבסס על כתם נקודה, כתם מערבי וצ&#39;יפ, המספק רשימה של ריאגנטים באיכות גבוהה המתאימים ל- CHIP 19 . לאחרונה, הספציפיות של מספר נוגדן זמין מסחרית הוערך באמצעות צפיפות גבוהה היסטון פפטיד microarray פלטפורמות, המאפשר להקמת מסד נתונים על ספציפיות נוגדן 20 . הקורא יכול להשתמש בכלי זה שימושי כדי לזהות את הנוגדנים הספציפיים ביותר שניתן להשתמש בהם עבור ניסויים שבב. פרוטוקול זה לא נבדק עבור תאי T ראשוניים, במקרה זה, הקורא צריך להתייחס פרוטוקולים שפורסמו אחרים בהצלחה לבצע שבב על T- 3 תאים ראשוניים 3 , 4 , 21 . יש לציין, פרוטוקול זה שימש בהצלחה לביצוע שבב על שורה תא העכבר תא, כמו גם על קו תא אנדותל העכבר. Ove_content &quot;&gt; 5 x 10 6 תאים יש להשתמש עבור כל immunoprecipitation לניתוח של סימני היסטון, כי פרוטוקול זה יכול גם להיות מתאים, עם אופטימיזציה כלשהי, לבצע שבב על TFs או cofactors, עדיף להגדיל את מספר התאים המשמשים את immunoprecipitation במקרים אלה.על מנת להגיע למספר הנדרש של תאים עבור כל ניסוי, aliquots יותר של lysate גזרו ניתן להרכיב יחד לפני דילול הכרומטין במאגר דילול. פרוטוקול זה יכול גם להיות שונה כדי לבצע שבב על חלבונים אנדוגניים שאינם קשורים ישירות ל- DNA. במקרה זה, טרום קביעה עם crosslinkers חלבון חלבון ( למשל, dimethyl adipimidate, DMA) עשוי להידרש (ראה נספח B לקבלת מידע נוסף). ביצועים מוצלחים של שבב על cofactors נעשה בעבר על ידי overexpressing חלבונים כי הם התמזגו תג ביוטין. במקרה זה, חלבון היה מטוהרים עם streptavidin-conjugaTed חרוזים מגנטיים, וכן קיבוע מראש עם DMA בוצע 22 .

פיתוח, דיפרנציאציה והומיאוסטזיס תלויים בתכניות ספציפיות לביטוי גנים, אשר נקבעו על ידי אירועים איתותים המווסתים את מבנה הכרומטין, ולכן קובעים אם גן מסוים מופעל או מודחק בצורה תאית וזמנית. במהלך פיתוח תאי T, יש להגדיר תוכניות ספציפיות לביטוי גנים כדי לקבוע כראוי את ההבשלה של מבשרי תא-תא מהמצב הדו-שלילי (DN) למצב החיובי (SP), העובר דרך שלבי ביניים אחדים. כיצד התוכנית ביטוי גנים הוא מוסדר באופן דינמי במהלך התפתחות תא T כבר נחקר בשנים האחרונות על ידי כמה מעבדות 2 , 3 , 4 , 5 , 6 . על ידי שינויים שלאחר טרנסלוציאציה (PTM) של היסטונים, חילופיהיסטונים קנוניים עם גרסאות היסטון, פינוי נוקלאוזום, ומתילציה של דנ&quot;א מסדירים את מתג ה- ON / OFF של הגנים. מספר קבוצות חקרו את התפלגות גנום רחב של PTMs וריאנטים היסטון כדי לקבוע סימנים הקשורים למצבים הכרומטין שונים באזורי פרוקסימלי ו דיסטלי 7 , 8 , 9 , 10 . איתות cascades תזמון דינמי הכרומטין רגולציה באמצעות חילופי של אנזימים חיוביים ושליליים chromatin- שינוי (הידוע גם בשם כרום מחליפים) על אלמנטים משפר ספציפיים. אלה מכפילי הכרומטין לווסת את המבנה הכרומטין ובכך פלט תעתיק על ידי, למשל, מתילציה דינמית היסטון acetylation. זה המקרה ב Notch איתות המסלול 11 , 12 , 13 ,14. דינמי היסטון PTMs; חילופים עם גרסאות היסטון; ואת התפוסה הדינמית של היסטונים, גורמי שעתוק, cofactors ניתן לחקור על ידי מבחני immunoprecipitation הכרומטין (שבב). נוגדנים ספציפיים במיוחד משמשים לטהר מתחמי DNA ייחודיים, ואת ה- DNA מטוהרים מנותח על ידי PCR כמותי (qPCR); עמוק רצף (שבב- Seq); או, בתדירות נמוכה יותר בימינו, הכלאה כדי microarray (שבב שבב). מבחני שבב הם לפעמים מאתגר בשל סיבוכים עם תמוגה של תאים, גז של הכרומטין, ו / או ספציפיות נמוכה של הנוגדנים. מספר אסטרטגיות אומצו כדי לשפר את הפרוטוקול, כמו במקרה של NEXSON 15 . השימוש במקררים קירור מים אמבטיה נמנע חימום המדגם שעלולים לפגוע epitopes הנוכחי על החלבון הנחקר, אבל האנרגיה הדרושה הגז של דגימות מקבל מפוזרים לתוך המים.שיפור נוסף נעשה עם פיתוח של מכשירי ultrasonication ממוקדים המונעים פיזור של האנרגיה. לכן, התקנים ultrasonicator ממוקד לאפשר שיפורים תמוגה התא ואת הכרומטין גז, ביטול וריאציות המושרה על ידי מפעיל ו להגדיל באופן משמעותי את reproducibility. עבודה זו מתארת ​​פרוטוקול (סקירה סכמטית באיור 1 ) ביעילות לבצע את שבב של חלבונים היסטון בקו עכבר T- תא הבוגר שנקרא E2-10HA 16 , 17 . T- תאים הם בדרך כלל קשה lyse, ואת הגז של הכרומטין שלהם התגלה להיות יעיל. בפרוטוקול זה, אשר עושה שימוש ultrasonicator ממוקד קירור, מספר תאים, המאגר תמוגה, והגז ההגדרה היו אופטימיזציה עבור העכבר E2-10HA העכבר תא. פרוטוקול זה מאפשר אחד לבצע שבב עם reproducibility גבוה ובזמן סביר. למעשה, זה requirEs בערך יומיים כדי לגזום את הכרומטין כדי להעריך את איכות הגז, ושלושה ימים לבצע immunoprecipitation, להפוך את crosslink, ולטהר את ה- DNA.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="912">
	<tbody>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:496px;">Agilent High Sensitivity D5000 Reagents</td>
			<td style="width:223px;">Agilent Technologies</td>
			<td style="width:129px;">5067-5593</td>
			<td style="width:64px;"></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Agilent High Sensitivity D5000 ScreenTape</td>
			<td>Agilent Technologies</td>
			<td>5067-5592</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Agilent Tapestation 4200</td>
			<td>Agilent Technologies</td>
			<td>G2991AA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Covaris S220 AFA System</td>
			<td>Covaris</td>
			<td>500217</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">dimethyl adipimidate (DMA)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>20660</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Fetal bovine serum (FBS)</td>
			<td>Pan-Biotech</td>
			<td>1502-P121301</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Formaldehyde (FMA)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>F8775</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Insulin solution human&#160;</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>I9278-5ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Iscove&#39;s modified Dulbecco&#39;s medium (IMDM)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>21980-032</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Minimum essential medium non-essential amino acids (MEM NEAA)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>11140-035</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">nProtein A Sepharose 4 Fast Flow</td>
			<td>GE Healthcare</td>
			<td>17-5280-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15140-122</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Peptone primatone</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P4963-100G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Phase Lock Gel Heavy 2 ml</td>
			<td>5 Prime</td>
			<td>2302830</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Phenol/chloroform/isoamyl alcohol (25:24:1)</td>
			<td>Roth</td>
			<td>A156.2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Phosphate-buffered saline (PBS)</td>
			<td>GIBCO</td>
			<td>14190-094</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Proteinase K Solution (20 mg/mL), RNA grade</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>25530049</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">QIAquick PCR Purification Kit (250)</td>
			<td>Qiagen</td>
			<td>28106</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Qubit 3.0 Fluorometer</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>Q33216</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Qubit assay tubes</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>Q32856</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Qubit dsDNA HS Assay Kit</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>Q32854</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">RNase A, DNase and protease-free (10 mg/mL)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>EN0531</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Tube AFA Fiber &#38; Cap</td>
			<td>Covaris</td>
			<td>520081</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

chromatin immunoprecipitation (chip) in mouse t-cell lines

מסלולי האיתור מסדירים את תוכניות הביטוי של גנים באמצעות אפנון של מבנה הכרומטין ברמות שונות, כגון על ידי שינויים פוסט-טרנסלציוניים (PTM) של זנבות היסטון, החלפת היסטונים קנוניים עם גרסאות היסטוניות ופינוי נוקלאוזום. תקנה כזו דורשת מחייב של גורמים שעתוק אותות רגישים (TF) כי לגייס אנזימים שינוי הכרומטין על אלמנטים רגולטוריים שהוגדרו משפר. ההבנה כיצד איתות איתותים מסדירים פעילות משופרת דורשת ניתוח מקיף של קשירת TFs, אנזימים שינוי הכרומטין, ואת התפוסה של סימני היסטון ספציפיים וריאנטים היסטון. Chromatin immunoprecipitation (שבב) מבחני לנצל נוגדנים ספציפיים במיוחד immunoprecipitate חלבון ספציפי / מתחמי DNA. הניתוח הבא של הדנ&quot;א המטוהרים מאפשר לזהות את האזור הכבוש על ידי חלבון מוכר על ידי הנוגדן. עבודה זו מתארת ​​פרוטוקול ביעילות peRform צ&#39;יפ של חלבונים היסטון בשורת עכבר T-cell בוגרת. הפרוטוקול המוצג מאפשר את הביצועים של מבחני שבב במסגרת זמן סבירה עם reproducibility גבוהה.

בתאי T מורין בוגרים הוכנסו לבדיקת שבב כדי לחקור את העשרה של ההיסטונוס של סמן ההיסטון של ליזין 4 על היסטון 3 (H3K4me1), תלת-מתילציה של ליזין 4 על היסטון 3 (H3K4me3) ואצטילציה של ליזין 27 היסטון 3 (H3K27ac), כמו גם תפוסה nucleosome, כפי שנחשף על ידי שבב panH3. איכות הגז הוערך על ידי ניתוח על ג&#39;ל agarose 1.8% ( איור 2 א ) ועל מערכת אלקטרופורזה ( איור 2 ב ). H3K4me1 ו H3K4me3 משמשים בדרך כלל כדי לזהות אתרים משפר ומקדמים, בהתאמה ( איור 3 א ). למעשה, H3K4me3 בולט אך לא מועשר באופן בלעדי על היזמים 5 , 8 , 14 . מאפיין של משפרי פעיל הוא להיות מועשר מאוד עבור H3K4me1 ו H3K27ac ו מועשר כראוי עבור H3K4me3 (&lt;(איור 3 א &#39;, פאנל עליון), בעוד ששיפורים לא פעילים מציגים רמות נמוכות של H3K4me3 ו- H3K27ac, אך רמות גבוהות של H3K4me1 ( איור 3 א&#39; , לוח תחתון). כפי שמוצג באיור 3 ב , Glyceraldehyde 3-פוספט dehydrogenase ( Gapdh ) הגן הוא נציג של ניתוח של היזמים פעיל גן ( האמרגן Gapdh ). למעשה, זה מראה רמות גבוהות של H3K4me3 ו H3K27ac ורמות נמוכות של H3K4me1. באיור 3 ב , Deltex1 ( Dtx1 ) הוא נציג של משפרי פעיל ( Dtx1 משפר ), כפי שהוא מועשר מאוד עבור H3K4me1 מועשר היטב עבור H3K4me3 ו H3K27ac. המדבר הגנטי הוא נציג של אזור חסר גנים קידוד והוא נתבע בדרך כלל כביקורת שלילית עבור סימני הכרומטין פעיל. התצפית כי H3K4me1, מקובל היטב סימן משפר 4 , 5 , </sup&gt; 7 , 14 , 18 , אינו מועשר במדבר ג &#39;ין עולה כי באזור זה חסרים משפרי. <img alt="איור 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55907/55907fig1.jpg" /> איור 1: סקירה סכמטית של פרוטוקול שבב שהוצג. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55907/55907fig1large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55907/55907fig2.jpg" /> איור 2: בקרת איכות הגז של בשורת עכבר T- התא הבוגר. ( A ) שני aliquots שונים של העכבר הבוגר T-Cell תא E2-10HA היו גזוז, כ 500 ng של DNA מטוהרים נותחו על ג &#39;ל agarose 1.8% כדי להעריך את הגזירה שלהםהאיכות. ( ב ) 1 ng של DNA מטוהרים מדגם 2 נותח על ידי אלקטרופורזה כדי להעריך את איכות הגז שלה. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55907/55907fig2large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55907/55907fig3.jpg" /> איור 3: סימני הכרומטין המאפיינים משפרי ומקדמי. ( A ) משפרי פעיל (פאנל עליון) מאופיינים H3K4me1 גבוהה, נמוך H3K4me3, גבוה H3K27ac, בעוד משפרי לא פעיל (פאנל התחתון) הנוכחי גבוה H3K4me1, נמוך H3K4me3, ו H3K27ac נמוך. ( ב ) הדגימות שהוצגו בתרשים 2 א היו משולבים יחד המשמשים ניתוח שבב לעומת סימני היסטון H3K4me1, H3K4me3, ו H3K27ac תפוסה היסטון, כפי שנחשף על ידי שבב panH3. ניתוח זה מראה כי thE מקדם של Ghyceraldehyde Geneceraldehyde גופרלדהיד 3-פוספט ( Gapdh האמרגן ) מועשר מאוד עבור H3K4me3 ו H3K27ac מועשר נמוך עבור H3K4me1. מצד שני, משפר את הגן הלא פעיל Deltex1 ( Dtx1 משפר ) מועשר מאוד עבור H3K4me1 אבל מועשר היטב עבור H3K4me3 ו H3K27ac. שבב באמצעות נוגדן panH3 שימש לבדיקת תפוסה של נוקלאוזום. המדבר הגנטי שימש כבקרה שלילית. ניסוי נציג אחד מוצג. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55907/55907fig3large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td> שם המאגר </td><td> מֵגִיב </td><td> ריכוז סופי </td></tr><tr><td rowspan="5"> חיץ דילול </td><td> נתרן dodecייל סולפט (SDS) </td><td> 0.01% (w / v) </td></tr><tr><td> טריטון X-100 </td><td> 1.1% (v / v) </td></tr><tr><td> חומצה ethylenediaminetetraetic (EDTA) pH 8.0 </td><td> 1.2 מ&quot;מ </td></tr><tr><td> Tris-HCl pH 8.1 </td><td> 16.7 מ&quot;מ </td></tr><tr><td> סודיום כלורי (NaCl) </td><td> 167 מ&quot;מ </td></tr><tr><td rowspan="2"> פתרון DMA </td><td> דימתיל אדיפימיט (DMA) </td><td> 10 מ&quot;מ </td></tr><tr><td> פוספט שנאגרו מלוחים (PBS) </td><td> 1x </td></tr><tr><td rowspan="3"> חיץ אלוטי </td><td> סודיום dodecyl סולפט (SDS) </td><td> 1% (w / v) </td></tr><tr><td> חומצה ethylenediaminetetraetic (EDTA) pH 8.0 </td><td> 10 מ&quot;מ </td></tr><tr><td> Tris-HCl pH 8.0 </td><td> 50 מ&quot;מ </td></tr><tr><td rowspan="5"> חיץ מלח גבוה </td><td> סודיום dodecyl סולפט (SDS) </td><td> 0.1% (w / v) </td></tr><tr><td> טריטון X-100 </td><td> 1% (v / v) </td></tr><tr><td> Ethylenediamiחומצה Netetraacetic (EDTA) pH 8.0 </td><td> 2 מ&quot;מ </td></tr><tr><td> Tris-HCl pH 8.1 </td><td> 20 מ&quot;מ </td></tr><tr><td> סודיום כלורי (NaCl) </td><td> 500 מ&quot;מ </td></tr><tr><td rowspan="6"> IMDM בינוני </td><td> IScove שונה של Dulbecco בינוני (IMDM) </td><td> 1x </td></tr><tr><td> בסרום שור עוברית (FBS) </td><td> 2% (v / v) </td></tr><tr><td> פניצילין / סטרפטומיצין </td><td> 1x </td></tr><tr><td> פפטון פרימטון </td><td> 0.3 מ&quot;ג / מ&quot;ל </td></tr><tr><td> תמיסת אינסולין אנושית </td><td> 4.8 mg / mL </td></tr><tr><td> חומצות אמינו חיוניות בינוניות לא חיוניות (MEM NEAA) </td><td> 1x </td></tr><tr><td rowspan="4"> חיץ מלח LiCl </td><td> ליתיום כלורי (LiCl) </td><td> 0.25 M </td></tr><tr><td> IGEPAL-CA630 </td><td> 1% (v / v) </td></tr><tr><td> חומצה ethylenediaminetetraetic (EDTA) pH 8.0 </td><td> 1 מ&quot;מ </td></tr><tr><td> Tris-HCl pH 8.1 </td><td> 10 מ&quot;מ </td></tr><tr><td rowspan="5"> חיץ מלח נמוך </td><td> סודיום dodecyl סולפט (SDS) </td><td> 0.1% (w / v) </td></tr><tr><td> טריטון X-100 </td><td> 1% (v / v) </td></tr><tr><td> חומצה ethylenediaminetetraetic (EDTA) pH 8.0 </td><td> 2 מ&quot;מ </td></tr><tr><td> Tris-HCl pH 8.1 </td><td> 20 מ&quot;מ </td></tr><tr><td> סודיום כלורי (NaCl) </td><td> 150 מ&quot;מ </td></tr><tr><td rowspan="5"> פרוטאין חרוזי ספרוס מכבסים חיץ </td><td> Tris-HCl pH 8.0 </td><td> 20 מ&quot;מ </td></tr><tr><td> סודיום כלורי (NaCl) </td><td> 500 מ&quot;מ </td></tr><tr><td> חומצה ethylenediaminetetraetic (EDTA) pH 8.0 </td><td> 2 מ&quot;מ </td></tr><tr><td> סודיום dodecyl סולפט (SDS) </td><td> 0.1% (w / v) </td></tr><tr><td> IGEPAL-CA630 </td><td> 1% (v / v) </td></tr><tr><td rowspan="3"> SDS חיץ תמוגה </td><td> סודיום dodecyl סולפט (SDS) </td><td> 1% (w / v) </td></tr><tr><td> אתילנדי<html> חומצה אמינטראצטית (EDTA) pH 8.0 </td><td> 10 מ&quot;מ </td></tr><tr><td> Tris-HCl pH 8.1 </td><td> 50 מ&quot;מ </td></tr><tr><td rowspan="2"> חיץ TE </td><td> Tris-HCl pH 8.0 </td><td> 10 מ&quot;מ </td></tr><tr><td> חומצה ethylenediaminetetraetic (EDTA) pH 8.0 </td><td> 1 מ&quot;מ </td></tr></tbody></table> טבלה 1: רשימת המאגרים והמדיום המשמש בפרוטוקול זה. <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td></td><td> עַל </td><td> כבוי </td></tr><tr><td> כוח שיא </td><td> 150.0 </td><td> 2.5 </td></tr><tr><td> גורם חובה </td><td> 15.0 </td><td> 15.0 </td></tr><tr><td> מחזורים / התפוצצות </td><td> 500 </td><td> 500 </td></tr><tr><td> מס &#39;מחזורי </td><td colspan="2"> 28 </td></tr></tbody></table>: Keep-together.within-page = &quot;1&quot;&gt; טבלה 2: הגדרות הגז המשמשות בפרוטוקול זה. תנאים אלה כבר מותאם במיוחד עבור T-T העכבר התא הבוגר. <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td> נוֹגְדָן </td><td> ספק </td><td> כמות נוגדנים / immunoprecipitation </td><td> כמות של תאים / immunoprecipitation </td><td> תנאי כביסה </td></tr><tr><td> H3 </td><td> Abcam (ab1791) </td><td> 2.5 מ&quot;ג </td><td> 5 x 10 6 </td><td> פעם למאגר מלח נמוך, פעמיים למאגר מלח גבוהה, פעמיים למאגר מלח LiCl ושלוש פעמים TE חיץ </td></tr><tr><td> H3K4me1 </td><td> Abcam (ab8895) </td><td> 2.5 מ&quot;ג </td><td> 5 x 10 6 </td><td> פעם למאגר מלח נמוך, פעמיים למאגר מלח גבוהה, פעמיים למאגר מלח LiCl ושלוש פעמים TE חיץ </td></tr><html><tr><td> H3K4me3 </td><td> Diagnode (pAb-003-050) </td><td> 2.5 מ&quot;ג </td><td> 5 x 10 6 </td><td> פעם למאגר מלח נמוך, פעמיים למאגר מלח גבוהה, פעמיים למאגר מלח LiCl ושלוש פעמים TE חיץ </td></tr><tr><td> H3K27ac </td><td> Diagnode (pAb-174-050) </td><td> 2.5 מ&quot;ג </td><td> 5 x 10 6 </td><td> Oce במאגר מלח נמוך, פעמיים למאגר מלח גבוהה, פעמיים למאגר מלח LiCl ושלוש פעמים TE חיץ </td></tr><tr><td> IgG </td><td> Diagnode (C15410206) </td><td> מִשְׁתַנֶה* </td><td> מִשְׁתַנֶה* </td><td> מִשְׁתַנֶה* </td></tr><tr><td colspan="5"> * במקרה של שליטה IgG, כמות הנוגדנים הן תאים, כמו גם את השלבים כביסה, יש לשקף את התנאים של immunoprecipitations אחרים. </td></tr></tbody></table> טבלה 3: נוגדנים ותנאי כביסה המשמשים במחקר זה. <table border="1" fo:ke</html style=";text-align:right;direction:rtl"><html> Ep-together.within-page = &quot;1&quot; עבור: Keep-with-next.within-page = &quot;always&quot;&gt; <tbody><tr><td> גֵן </td><td> קדימה </td><td> פריימר הפוך </td><td> בְּדִיקָה </td></tr><tr><td> מקדם Gapdh (0 kb) </td><td> 5-GGG TTC CTA TAA ATA CGG ACT GC-3 &#39; </td><td> 5-CTG GCA CTG CAC AAG AAG A-3 &#39; </td><td> 68 </td></tr><tr><td> משפר Dtx1 (+26 kb) </td><td> 5-CTC GGG GGG GAC AG-3 &#39; </td><td> 5-GCA TGG GAA CTG TGT TAC AGA A-3 &#39; </td><td> 27 </td></tr><tr><td> מדבר ג &#39;ין </td><td> 5-CAA TGC ATG GGT CCA GAT TT-3 &#39; </td><td> 5-ATG GGC ACG GAA GTA GTG CT-3 &#39; </td><td> 94 </td></tr></tbody></table> טבלה 4: פריימרים וחיישנים המשמשים את QPCR במחקר זה. <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with</html style=";text-align:right;direction:rtl">-next.within-page = &quot;always&quot;&gt; <tbody><tr><td> בְּעָיָה </td><td> גורם ל </td><td> פִּתָרוֹן </td></tr><tr><td rowspan="3"> הכרומטין נמצא מתחת לגזעים ושברים גדולים מדי. </td><td> נעשה שימוש בתאים רבים מדי. </td><td> הפחת את מספר התאים. </td></tr><tr><td rowspan="2"> הגז הוא נמוך מדי. </td><td> הגדל את מספר מחזורי הגז. </td></tr><tr><td> להגדיל את כוח שיא הגז, את גורם החובה ו / או מחזורים / פרץ. </td></tr><tr><td rowspan="3"> הכרומטין נגמר ושברים קטנים מדי. </td><td> נעשה שימוש במספר קטן מדי של תאים. </td><td> הגדל את מספר התאים. </td></tr><tr><td rowspan="2"> הגז גבוה מדי. </td><td> הפחת את מספר מחזורי הגז. </td></tr><tr><td> להפחית את כוח שיא גז, גורם חובה ו / או מחזורים / פרץ. </td></tr><tr><td rowspan="11"> התאוששות נמוכה מדיGG שליטה ו / או שליטה שלילית (רקע גבוה). </td><td> לא מספיק הכרומטין המשמש לניסוי. </td><td> להגדיל את כמות הכרומטין. </td></tr><tr><td> כמות הנוגדן נמוכה מדי. </td><td> הגדל את כמות הנוגדן. </td></tr><tr><td> כמות הנוגדן גבוהה מדי. </td><td> צמצום כמות הנוגדן. </td></tr><tr><td> לנוגדן יש סגוליות נמוכה. </td><td> לשנות את הנוגדן. </td></tr><tr><td rowspan="2"> תנאי כביסה מחמירים מדי. </td><td> צמצום מספר הכביסה. </td></tr><tr><td> צמצום החומרה של מאגרי הכביסה. </td></tr><tr><td rowspan="2"> תנאי כביסה אינם מחמירים מספיק. </td><td> הגדל את מספר הכביסה. </td></tr><tr><td> להגביר את החומרה של מאגרים כביסה. </td></tr><tr><td> יותר מדי DNA היה pipetted ב qPCR. </td><td> להקטין את כמות DNA pipetted ב qPCR. </td></tr><tr><td rowspan="2"> QPCR התנאים אינם אופטימליים. </td><td> מטב את התנאים qPCR. </td></tr><tr><td> הפחת את מספר המחזורים. </td></tr><tr><td rowspan="4"> אין מוצר או מוצר נמוך מדי בתגובה qPCR של מדגם קלט. </td><td> לא מספיק DNA היה pipetted ב qPCR. </td><td> להגדיל את כמות DNA pipetted ב qPCR. </td></tr><tr><td rowspan="2"> QPCR התנאים אינם אופטימליים. </td><td> מטב את התנאים qPCR. </td></tr><tr><td> הגדל את מספר המחזורים. </td></tr><tr><td> לא מספיק הכרומטין המשמש לניסוי. </td><td> להגדיל את כמות הכרומטין. </td></tr><tr><td rowspan="4"> אין אות שליטה חיובית ו / או panh3 שבב. </td><td> לא מספיק הכרומטין המשמש לניסוי. </td><td> להגדיל את כמות הכרומטין. </td></tr><tr><td> כמות הנוגדן נמוכה מדי. </td><td> הגדל את כמות הנוגדן. </td></tr><tr><td> האנטילגוף יש סגוליות נמוכה. </td><td> לשנות את הנוגדן. </td></tr><tr><td> אלוטיון הוא תת אופטימלי. </td><td> הקפד לעתים קרובות מערבולת דגימות כדי לשמור על חרוזים בפתרון. </td></tr></tbody></table> טבלה 5: פתרון בעיות.

Watch this Scientific Journal Video about Chromatin Immunoprecipitation ChIP in Mouse T-cell Lines at JoVE.com

Chromatin Immunoprecipitation ChIP in Mouse T-cell Lines

עבודה זו מתארת ​​פרוטוקול לכרומטין immunoprecipitation (שבב) באמצעות קו עכבר T- התא הבוגר. פרוטוקול זה מתאים לחקור את ההפצה של סימני היסטון ספציפיים באתרי מקדם ספציפי או גנום רחב.

הכרומטין Immunoprecipitation (שבב) ב עכבר T-cell שורות

Signaling pathways regulate gene expression programs via the modulation of the chromatin structure at different levels, such as by post-translational ...

chromatin-immunoprecipitation-chip-in-mouse-t-cell-lines

Research

JoVE Journal

Genetics

Chromatin Immunoprecipitation (ChIP) in Mouse T-cell Lines

18.2K Views.  University of Giessen.  עבודה זו מתארת ​​פרוטוקול לכרומטין immunoprecipitation (שבב) באמצעות קו עכבר T- התא הבוגר. פרוטוקול זה מתאים לחקור את ההפצה של סימני היסטון ספציפיים באתרי מקדם ספציפי או גנום רחב. 

Video: Chromatin Immunoprecipitation ChIP in Mouse T-cell Lines

Sequential Salt Extractions for the Analysis of Bulk Chromatin Binding Properties of Chromatin Modifying Complexes

Elucidation of the binding properties of chromatin-targeting proteins can be very challenging due to the complex nature of chromatin and the heterogeneous nature of most mammalian chromatin-modifying complexes. In order to overcome these hurdles, we have adapted a sequential salt extraction (SSE) assay for evaluating the relative binding affinities of chromatin-bound complexes. This easy and straightforward assay can be used by non-experts to evaluate the relative difference in binding affinity of two related complexes, the changes in affinity of a complex when a subunit is lost or an individual domain is inactivated, and the change in binding affinity after alterations to the chromatin landscape. By sequentially re-suspending bulk chromatin in increasing amounts of salt, we are able to profile the elution of a particular protein from chromatin. Using these profiles, we are able to determine how alterations in a chromatin-modifying complex or alterations to the chromatin environment affect binding interactions. Coupling SSE with other in vitro and in vivo assays, we can determine the roles of individual domains and proteins on the functionality of a complex in a variety of chromatin environments.

Sequential salt extraction of chromatin bound proteins is a useful tool for determining the binding properties of large protein complexes. This method can be employed to evaluate the role of individual subunits or domains in the overall affinity of a protein complex to bulk chromatin.

עקירות מלח רציפים לניתוח של כרומטין בצובר מחייב מאפיינים של כרומטין שינוי מתחמי

Elucidation of the binding properties of chromatin-targeting proteins can be very challenging due to the complex nature of chromatin and the heterogeneous ...

Analysis of the c-KIT Ligand Promoter Using Chromatin Immunoprecipitation

Multiple cellular processes, including DNA replication and repair, DNA recombination, and gene expression, require interactions between proteins and DNA. Therefore, DNA-protein interactions regulate multiple physiological, pathophysiological, and biological functions, such as cell differentiation, cell proliferation, cell cycle control, chromosome stability, epigenetic gene regulation, and cell transformation. In eukaryotic cells, the DNA interacts with histone and nonhistone proteins and is condensed into chromatin. Several technical tools can be used to analyze DNA-protein interactions, such as the Electrophoresis (gel) Mobility Shift Assay (EMSA) and DNase I footprinting. However, these techniques analyze the protein-DNA interaction in vitro, not within the cellular context. Chromatin immunoprecipitation (ChIP) is a technique that captures proteins at their specific DNA binding sites, thereby allowing for the identification of DNA-protein interactions within their chromatin context. It is done by fixation&#160;of the DNA-protein interaction, followed by&#160;immunoprecipitation of the protein of interest. Subsequently, the genomic site that the protein was bound to is characterized. Here, we describe and discuss ChIP and demonstrate its analytical value for the identification of the Transforming Growth Factor-&#946; (TGF-&#946;)-induced binding of the transcription factor SMAD2 to SMAD Binding Elements (SBE) within the promoter region of the tyrosine-protein kinase Kit (c-KIT) receptor ligand Stem Cell Factor (SCF).

DNA-protein interactions are essential for multiple biological processes. During the evaluation of cellular functions, the analysis of DNA-protein interactions is indispensable for understanding gene regulation. Chromatin immunoprecipitation (ChIP) is a powerful tool to analyze such interactions in vivo.

ניתוח של C-KIT ליגנד האמרגן באמצעות Immunoprecipitation הכרומטין

Multiple cellular processes, including DNA replication and repair, DNA recombination, and gene expression, require interactions between proteins and DNA. ...

Generation of Native Chromatin Immunoprecipitation Sequencing Libraries for Nucleosome Density Analysis

We present a modified native chromatin immunoprecipitation sequencing (ChIP-seq) experimental protocol compatible with a Gaussian mixture distribution based analysis methodology (nucleosome density ChIP-seq; ndChIP-seq) that enables the generation of combined measurements of micrococcal nuclease (MNase) accessibility with histone modification genome-wide. Nucleosome position and local density, and the posttranslational modification of their histone subunits, act in concert to regulate local transcription states. Combinatorial measurements of nucleosome accessibility with histone modification generated by ndChIP-seq allows for the simultaneous interrogation of these features. The ndChIP-seq methodology is applicable to small numbers of primary cells inaccessible to cross-linking based ChIP-seq protocols. Taken together, ndChIP-seq enables the measurement of histone modification in combination with local nucleosome density to obtain new insights into shared mechanisms that regulate RNA transcription within rare primary cell populations.

We present a modified native chromatin immunoprecipitation sequencing (ChIP-seq) methodology for the generation of sequence datasets suitable for a nucleosome density ChIP-seq analytical framework integrating micrococcal nuclease (MNase) accessibility with histone modification measurements.

דור של כרומטין יליד Immunoprecipitation רצף ספריות לניתוח צפיפות נוקלאוזום

We present a modified native chromatin immunoprecipitation sequencing (ChIP-seq) experimental protocol compatible with a Gaussian mixture distribution ...

Chromatin Immunoprecipitation (ChIP) Protocol for Low-abundance Embryonic Samples

Chromatin immunoprecipitation (ChIP) is a widely-used technique for mapping the localization of post-translationally modified histones, histone variants, transcription factors, or chromatin-modifying enzymes at a given locus or on a genome-wide scale. The combination of ChIP assays with next-generation sequencing (i.e., ChIP-Seq) is a powerful approach to globally uncover gene regulatory networks and to improve the functional annotation of genomes, especially of non-coding regulatory sequences. ChIP protocols normally require large amounts of cellular material, thus precluding the applicability of this method to investigating rare cell types or small tissue biopsies. In order to make the ChIP assay compatible with the amount of biological material that can typically be obtained in vivo during early vertebrate embryogenesis, we describe here a simplified ChIP protocol in which the number of steps required to complete the assay were reduced to minimize sample loss. This ChIP protocol has been successfully used to investigate different histone modifications in various embryonic chicken and adult mouse tissues using low to medium cell numbers (5 x 104 - 5 x 105 cells). Importantly, this protocol is compatible with ChIP-seq technology using standard library preparation methods, thus providing global epigenomic maps in highly relevant embryonic tissues.

Chromatin Immunoprecipitation ChIP Protocol for Low-abundance Embryonic Samples

Here, we describe a chromatin immunoprecipitation (ChIP) and ChIP-seq library preparation protocol to generate global epigenomic profiles from low-abundance chicken embryonic samples.

כרומטין פרוטוקול Immunoprecipitation (ChIP) עבור דגימות עובריים נמוך-שפע

Chromatin immunoprecipitation (ChIP) is a widely-used technique for mapping the localization of post-translationally modified histones, histone variants, ...

Chromatin Spread Preparations for the Analysis of Mouse Oocyte Progression from Prophase to Metaphase II

Chromatin spread techniques have been widely used to assess the dynamic localization of various proteins during gametogenesis, particularly for spermatogenesis. These techniques allow for visualization of protein and DNA localization patterns during meiotic events such as homologous chromosome pairing, synapsis and DNA repair. While a few protocols have been described in the literature, general chromatin spread techniques using mammalian prophase oocytes are limited and difficult due to the timing of meiosis initiation in fetal ovaries. In comparison, prophase spermatocytes can be collected from juvenile male mice with higher yields without the need for microdissection. However, it is difficult to obtain a pure synchronized population of cells at specific stages due to the heterogeneity of meiotic and post-meiotic germ cell populations in the juvenile and adult testis. For later stages of meiosis, it is advantageous to assess oocytes undergoing meiosis I (MI) or meiosis II (MII), because groups of mature oocytes can be collected from adult female mice and stimulated to resume meiosis in culture. Here, methods for meiotic chromatin spread preparations using oocytes dissected from fetal, neonatal and adult ovaries are described with accompanying video demonstrations. Chromosome missegregation events in mammalian oocytes are frequent, particularly during MI. These techniques can be used to assess and characterize the effects of different mutations or environmental exposures during various stages of oogenesis. As there are distinct differences between oogenesis and spermatogenesis, the techniques described within are invaluable to increase our understanding of mammalian oogenesis and the sexually dimorphic features of chromosome and protein dynamics during meiosis.

Oogenesis in mammals is known to be error-prone, particularly due to chromosome missegregation. This manuscript describes chromatin spread preparation methods for mouse prophase, metaphase I and II-staged oocytes. These fundamental techniques allow for the study of chromatin-bound proteins and chromosome morphology throughout mammalian oogenesis.

כרומטין להפיץ את ההכנות לניתוח של העכבר Oocyte התקדמות מן Prophase כדי מפה של השני

Chromatin spread techniques have been widely used to assess the dynamic localization of various proteins during gametogenesis, particularly for ...

Chromatin Immunoprecipitation (ChIP) of Histone Modifications from Saccharomyces cerevisiae

Histone post-translational modifications (PTMs), such as acetylation, methylation and phosphorylation, are dynamically regulated by a series of enzymes that add or remove these marks in response to signals received by the cell. These PTMS are key contributors to the regulation of processes such as gene expression control and DNA repair. Chromatin immunoprecipitation (chIP) has been an instrumental approach for dissecting the abundance and localization of many histone PTMs throughout the genome in response to diverse perturbations to the cell. Here, a versatile method for performing chIP of post-translationally modified histones from the budding yeast Saccharomyces cerevisiae (S. cerevisiae) is described. This method relies on crosslinking of proteins and DNA using formaldehyde treatment of yeast cultures, generation of yeast lysates by bead beating, solubilization of chromatin fragments by micrococcal nuclease, and immunoprecipitation of histone-DNA complexes. DNA associated with the histone mark of interest is purified and subjected to quantitative PCR analysis to evaluate its enrichment at multiple loci throughout the genome. Representative experiments probing the localization of the histone marks H3K4me2 and H4K16ac in wildtype and mutant yeast are discussed to demonstrate data analysis and interpretation. This method is suitable for a variety of histone PTMs and can be performed with different mutant strains or in the presence of diverse environmental stresses, making it an excellent tool for investigating changes in chromatin dynamics under different conditions.

Chromatin Immunoprecipitation ChIP of Histone Modifications from Saccharomyces cerevisiae

Here, we describe a protocol for chromatin immunoprecipitation of modified histones from the budding yeast Saccharomyces cerevisiae. Immunoprecipitated DNA is subsequently used for quantitative PCR to interrogate the abundance and localization of histone post-translational modifications throughout the genome.

Immunoprecipitation כרומטין (ChIP) של היסטון שינויים של האפייה

Histone post-translational modifications (PTMs), such as acetylation, methylation and phosphorylation, are dynamically regulated by a series of enzymes ...

CRISPR-Mediated Reorganization of Chromatin Loop Structure

Recent studies have clearly shown that long-range, three-dimensional chromatin looping interactions play a significant role in the regulation of gene expression, but whether looping is responsible for or a result of alterations in gene expression is still unknown. Until recently, how chromatin looping affects the regulation of gene activity and cellular function has been relatively ambiguous, and limitations in existing methods to manipulate these structures prevented in-depth exploration of these interactions. To resolve this uncertainty, we engineered a method for selective and reversible chromatin loop re-organization using CRISPR-dCas9 (CLOuD9). The dynamism of the CLOuD9 system has been demonstrated by successful localization of CLOuD9 constructs to target genomic loci to modulate local chromatin conformation. Importantly, the ability to reverse the induced contact and restore the endogenous chromatin conformation has also been confirmed. Modulation of gene expression with this method establishes the capacity to regulate cellular gene expression and underscores the great potential for applications of this technology in creating stable de novo chromatin loops that markedly affect gene expression in the contexts of cancer and development.

Chromatin looping plays a significant role in gene regulation; however, there have been no technological advances that allow for selective and reversible modification of chromatin loops. Here we describe a powerful system for chromatin loop re-organization using CRISPR-dCas9 (CLOuD9), demonstrated to selectively and reversibly modulate gene expression at targeted loci.

CRISPR בתיווך ארגון מחדש של הכרומטין לולאה

Recent studies have clearly shown that long-range, three-dimensional chromatin looping interactions play a significant role in the regulation of gene ...

Chromatin Immunoprecipitation of Murine Brown Adipose Tissue

Most cellular processes are regulated by transcriptional modulation of specific gene programs. Such modulation is achieved through the combined actions of a wide range of transcription factors (TFs) and cofactors mediating transcriptional activation or repression via changes in chromatin structure. Chromatin immunoprecipitation (ChIP) is a useful molecular biology approach for mapping histone modifications and profiling transcription factors/cofactors binding to DNA, thus providing a snapshot of the dynamic nuclear changes occurring during different biological processes.
To study transcriptional regulation in adipose tissue, samples derived from in vitro cell cultures of immortalized or primary cell lines are often favored in ChIP assays because of the abundance of starting material and reduced biological variability. However, these models represent a limited snapshot of the actual chromatin state in living organisms. Thus, there is a critical need for optimized protocols to perform ChIP on adipose tissue samples derived from animal models.
Here we describe a protocol for efficient ChIP-seq of both histone modifications and non-histone proteins in brown adipose tissue (BAT) isolated from a mouse. The protocol is optimized for investigating genome-wide localization of proteins of interest and epigenetic markers in the BAT, which is a morphologically and physiologically distinct tissue amongst fat depots.

Here we describe a protocol for efficient chromatin immunoprecipitation (ChIP) followed by high-throughput DNA sequencing (ChIP-seq) of brown adipose tissue (BAT) isolated from a mouse. This protocol is suitable for both mapping histone modifications and investigating genome-wide localization of non-histone proteins of interest in vivo.

כרומטין Immunoprecipitation של רקמת שומן חום מאתר

Most cellular processes are regulated by transcriptional modulation of specific gene programs. Such modulation is achieved through the combined actions of ...

Genome Editing in Mammalian Cell Lines using CRISPR-Cas

The clustered regularly interspaced short palindromic repeats (CRISPR) system functions naturally in bacterial adaptive immunity, but has been successfully repurposed for genome engineering in many different living organisms. Most commonly, the wildtype CRISPR associated 9 (Cas9) or Cas12a endonuclease is used to cleave specific sites in the genome, after which the DNA double-stranded break is repaired via the non-homologous end joining (NHEJ) pathway or the homology-directed repair (HDR) pathway depending on whether a donor template is absent or present respectively. To date, CRISPR systems from different bacterial species have been shown to be capable of performing genome editing in mammalian cells. However, despite the apparent simplicity of the technology, multiple design parameters need to be considered, which often leave users perplexed about how best to carry out their genome editing experiments. Here, we describe a complete workflow from experimental design to identification of cell clones that carry desired DNA modifications, with the goal of facilitating successful execution of genome editing experiments in mammalian cell lines. We highlight key considerations for users to take note of, including the choice of CRISPR system, the spacer length, and the design of a single-stranded oligodeoxynucleotide (ssODN) donor template. We envision that this workflow will be useful for gene knockout studies, disease modeling efforts, or the generation of reporter cell lines.

CRISPR-Cas is a powerful technology to engineer the complex genomes of plants and animals. Here, we detail a protocol to efficiently edit the human genome using different Cas endonucleases. We highlight important considerations and design parameters to optimize editing efficiency.

הגנום עריכה בשורות תאים בתרבית של שימוש CRISPR-Cas

The clustered regularly interspaced short palindromic repeats (CRISPR) system functions naturally in bacterial adaptive immunity, but has been ...

Chromatin Immunoprecipitation Assay Using Micrococcal Nucleases in Mammalian Cells

To express cellular phenotypes in organisms, living cells execute gene expression accordingly, and transcriptional programs play a central role in gene expression. The cellular transcriptional machinery and its chromatin modification proteins coordinate to regulate transcription. To analyze transcriptional regulation at the molecular level, several experimental methods such as electrophoretic mobility shift, transient reporter and chromatin immunoprecipitation (ChIP) assays are available. We describe a modified ChIP assay in detail in this article because of its advantages in directly showing histone modifications and the interactions between proteins and DNA in cells. One of the key steps in a successful ChIP assay is chromatin shearing. Although sonication is commonly used for shearing chromatin, it is difficult to identify reproducible conditions. Instead of shearing chromatin by sonication, we utilized enzymatic digestion with micrococcal nuclease (MNase) to obtain more reproducible results. In this article, we provide a straightforward ChIP assay protocol using MNase.

Chromatin immunoprecipitation (ChIP) is a powerful tool for understanding the molecular mechanisms of gene regulation. However, the method involves difficulties in obtaining reproducible chromatin fragmentation by mechanical shearing. Here, we provide an improved protocol for a ChIP assay using enzymatic digestion.

כרומטין Immunoprecipitation שימוש בנוקלאוסים מיקרוקוקל בתאי מיונקים

To express cellular phenotypes in organisms, living cells execute gene expression accordingly, and transcriptional programs play a central role in gene ...