Modellazione 3D del laterale ventricoli e istologica Caratterizzazione del Tissue periventricolare di esseri umani e il mouse

Riepilogo

Using MRI scans (human), 3D imaging software, and immunohistological analysis, we document changes to the brain’s lateral ventricles. Longitudinal 3D mapping of lateral ventricle volume changes and characterization of periventricular cellular changes that occur in the human brain due to aging or disease are then modeled in mice.

Abstract

The ventricular system carries and circulates cerebral spinal fluid (CSF) and facilitates clearance of solutes and toxins from the brain. The functional units of the ventricles are ciliated epithelial cells termed ependymal cells, which line the ventricles and through ciliary action are capable of generating laminar flow of CSF at the ventricle surface. This monolayer of ependymal cells also provides barrier and filtration functions that promote exchange between brain interstitial fluids (ISF) and circulating CSF. Biochemical changes in the brain are thereby reflected in the composition of the CSF and destruction of the ependyma can disrupt the delicate balance of CSF and ISF exchange. In humans there is a strong correlation between lateral ventricle expansion and aging. Age-associated ventriculomegaly can occur even in the absence of dementia or obstruction of CSF flow. The exact cause and progression of ventriculomegaly is often unknown; however, enlarged ventricles can show regional and, often, extensive loss of ependymal cell coverage with ventricle surface astrogliosis and associated periventricular edema replacing the functional ependymal cell monolayer. Using MRI scans together with postmortem human brain tissue, we describe how to prepare, image and compile 3D renderings of lateral ventricle volumes, calculate lateral ventricle volumes, and characterize periventricular tissue through immunohistochemical analysis of en face lateral ventricle wall tissue preparations. Corresponding analyses of mouse brain tissue are also presented supporting the use of mouse models as a means to evaluate changes to the lateral ventricles and periventricular tissue found in human aging and disease. Together, these protocols allow investigations into the cause and effect of ventriculomegaly and highlight techniques to study ventricular system health and its important barrier and filtration functions within the brain.

Introduzione

Un ependimali linee monostrato cellulare il sistema ventricolare del cervello fornire funzioni bidirezionali di barriera e di trasporto tra il fluido cerebrale spinale (CSF) e liquido interstiziale (ISF) ^1-3. Queste funzioni aiutano a mantenere in equilibrio fisiologico ^2,3 libero da agenti tossici nel cervello. Negli esseri umani la perdita di porzioni di questo rivestimento per infortunio o malattia non sembra tradursi in sostituzione rigenerativa come si trova in altri rivestimenti epiteliali; piuttosto la perdita di copertura cellulare ependimale sembra comportare astrogliosis periventricolare con un reticolo di astrociti che coprono regioni spoglie di cellule ependimali in superficie ventricolo. Gravi ripercussioni ai meccanismi importanti CSF / cambio ISF e di liquidazione sarebbero previsti come conseguenza la perdita di questo strato epiteliale ^1,2,4-7.

Una caratteristica comune di invecchiamento umano è allargata ventricoli laterali (ventricolomegalia) ed edema periventricolare associati come observcato da MRI e fluido attenuato inversion recovery MRI (risonanza magnetica / FLAIR) ^8-14. Per indagare il rapporto tra ventricolomegalia e l'organizzazione cellulare del rivestimento ventricolo, post-mortem sequenze MRI umani sono stati abbinati con preparati istologici di ventricolo laterale del tessuto periventricolare. Nei casi di ventricolomegalia, aree consistenti di gliosi avevano sostituito copertura cellulare ependimale lungo la parete del ventricolo laterale. Quando l'espansione ventricolo non è stato rilevato da analisi del volume basato su risonanza magnetica, il rivestimento delle cellule ependimale era intatto e gliosi non è stato rilevato lungo il rivestimento ventricolo ^6. Questo approccio combinatorio rappresenta la prima documentazione dettaglio cambiamenti globali in integrità cellulare del rivestimento ventricolo laterale utilizzando preparazioni wholemount di porzioni o l'intera parete del ventricolo laterale e modellazione 3D di volumi ventricolo ^6. Molte malattie (malattia di Alzheimer, la schizofrenia) e le lesioni (lesioni cerebrali traumatiche)mostrano ventricolomegalia come funzionalità neuropathological presto. Denudation delle aree del rivestimento delle cellule ependimale quindi sarebbe previsto per interferire con la normale funzione delle cellule ependimali e compromettere l'equilibrio omeostatico tra CSF / fluido ISF e scambio soluto. Così, un esame più approfondito delle modifiche apportate al sistema ventricolare, la sua composizione cellulare, e la conseguenza di strutture cerebrali sottostanti o vicine alla fine inizierà a rivelare di più sulla neuropatologia associata con l'allargamento del ventricolo.

La mancanza di dati di imaging multimodali, in particolare sequenze di dati longitudinali, con accesso limitato ai corrispondenti campioni istologici rende l'analisi di patologie cerebrali umane difficile. Fenotipi modellazione trovano in invecchiamento umano o malattia può spesso essere realizzato con modelli di topo e modelli animali diventano uno dei nostri migliori mezzi per esplorare le domande circa l'inizio e la progressione delle malattie umane. Diversi studi insani giovani topi hanno descritto la citoarchitettura delle pareti ventricolo laterale e la nicchia di cellule staminali sottostante ^4,7-15. Questi studi sono stati estesi per includere la modellazione 3D e analisi cellulare delle pareti del ventricolo attraverso invecchiamento ^6,15. Né gliosi periventricolare né ventricolomegalia sono osservati in topi anziani, piuttosto topi mostrano una zona subventicular relativamente robusta (SVZ) staminali nicchia di cellule soggiacente ad una cella ependimale intatto fodera ^6,15. Così, esistono notevoli differenze specie-specifiche sia nella manutenzione e l'integrità del rivestimento ventricolo laterale generale durante il processo di invecchiamento ^6,15. Pertanto, per migliori topi uso di interrogare le condizioni presenti negli esseri umani, le differenze tra le due specie hanno bisogno di essere caratterizzato e adeguatamente considerati in qualsiasi paradigma di modellazione. Qui vi presentiamo le procedure per valutare le variazioni longitudinali ai ventricoli laterali e tessuto periventricolare associati in esseri umani e mouse. Le nostre procedure comprendono Rendering 3D e volumetria del mouse e ventricoli umani, e l'uso di analisi immunoistochimica di interi preparati montaggio di tessuto periventricolare per caratterizzare sia di organizzazione e struttura cellulare. Insieme, questi procedimenti forniscono un mezzo per caratterizzare cambiamenti nel sistema ventricolare e tessuto periventricular associato.

Protocollo

NOTA: le procedure di animali sono stati approvati dalla University of Connecticut IACUC e sono conformi alle linee guida NIH. Il tessuto umano e l'analisi dei dati e le procedure fossero conformi e approvati dalla University of Connecticut IRB e sono conformi alle linee guida NIH.

1. Mouse: Analisi di periventricolare Cellular Integrità e modellazione 3D del ventricolo laterale

1.1) Preparazione del mouse ventricolo laterale intera parete Monti

1. Preparare il mouse ventricolo laterale interi supporti per immunoistochimica (IHC) come descritto in precedenza ^16,17.

1.2) immunoistochimica per ventricolo Analisi laterale

1. Fissare e tessuto cerebrale sezione del mouse come descritto in precedenza ^18,19.
   1. In breve, i topi a filo transcardiaca con normale, soluzione fisiologica a temperatura ambiente, fino a quando gli organi hanno eliminato (indicato da una colorazione pallida), seguiti da temperatura ambiente paraformaldeide al 4%(PFA) in 0,1 M tampone fosfato salino (PBS) finché il tessuto è irrigidito.
   2. Togliere il cervello dal cranio. Usare le forbici dissezione iris per tagliare dalla base del cranio, lungo la sutura sagittale.
   3. Esporre cranio e rimuovere il cervello con le pinze. Immergere il cervello nel 4% PFA fissativo notte a 4 ° C. Quindi lavare 3 volte per 20 minuti con PBS.
2. Preparare sezioni seriali per l'immunoistochimica e l'analisi del volume.
   1. Usando un bisturi microchirurgico, fare una piccola incisione longitudinalmente lungo la corteccia dell'emisfero sinistro per consentire l'identificazione dell'emisfero sinistro dall'emisfero destro quando sezioni galleggianti sono immunostained.
   2. Encase cervelli in 3% agarosio per una maggiore sostegno strutturale fisso durante vibratome sezionamento. Warm 3% agarosio in acqua distillata (w / v) fino a completa dissoluzione utilizzando un forno a microonde o piastra calda.
   3. Con una lametta, rimuovere la sezione caudale del cervello al cervelletto contaglio coronale, lasciando una superficie piana e perfettamente. Applicare la colla super per la fase di tessuti e posizionare il cervello sulla superficie appena tagliato con i bulbi olfattivi rivolti verso l'alto.
   4. Quando la soluzione di agarosio liquido è raffreddato ad una temperatura appena caldo al tatto, applicare uniformemente sul cervello per racchiudere completamente l'intero cervello. Lasciare che il agarosio solidificare.
   5. Sezione agarosio racchiuso cervello coronale su un vibratome in 50 sezioni micron, con sezioni disposte in serie in una piastra da 24 pozzetti contenenti PBS per preservare ordine sequenziale.
      NOTA: Generalmente 12 pozzi sono utilizzati per un cervello, con la raccolta di tessuto che inizia 5 sezioni prima di vedere l'emergere dei ventricoli laterali che iniziano con ben A1, passando numericamente fino al B6 e in bicicletta torna a A1. Ciò consente a più sezioni distinguibili dallo stesso cervello di essere trattati nello stesso pozzo. Per l'analisi del volume del ventricolo laterale, la raccolta dei tessuti cessò quando il ventricolo laterales e la terza si fondono ventricolo, causando circa 3 sezioni per ben 36 sezioni o totale.
   6. Aspirare il PBS utilizzando una pipetta di trasferimento apposto con una punta micropipetta 20-200 microlitri per garantire che le sezioni galleggianti non sono accidentalmente aspirati. Block e permeabilize sezioni galleggianti in siero 10%, 0,1% Triton X-100 (TX) in PBS (PBS-TX) per 1 ora a temperatura ambiente. Utilizzare 300 ml di soluzione per bene per coprire sezioni di tessuto libero di fluttuare in una piastra da 24 pozzetti e di eseguire tutte le incubazioni delle sezioni su un piatto oscillante.
   7. Aspirare la soluzione di saturazione, e incubare sezioni con anticorpi primari in PBS-TX notturno (almeno 12 ore) a 4 ° C. Per ventricolo tracce di volume utilizzando sezioni coronali, utilizzare anticorpo anti-S100β per etichettare le cellule ependimali.
   8. Soluzione anticorpo primario Aspirare e lavare le sezioni 3 volte per 10 minuti ciascuno con PBS-TX.
   9. Incubare sezioni in buio per 1 ora a temperatura ambienteture con anticorpi secondari fluorescenti, a concentrazioni di 1: 1.000 in 10% di siero, PBS-TX. Mantenere le sezioni al buio per tutte le fasi di incubazione rimanenti.
   10. Soluzione di anticorpo secondario Aspirare e incubare sezioni con 4 ', 6-diamidino-2-fenilindolo in PBS (DAPI, 10 mg / ml) per 5 minuti a Controcolorare nuclei cellulari. Aspirare la soluzione DAPI e risciacquare le sezioni 3 volte per 10 minuti ciascuno con PBS.
   11. Mount sezioni serialmente sul diapositive utilizzando il marchio corticale di preservare sinistra contro orientamento emisfero destro. Aria Sezioni secco nel vetrino scuro e poi applicando uno strato sottile di mezzi di montaggio al vetrino e delicatamente posto un vetrino coprioggetto sopra. Lasciare i vetrini coprioggetto per asciugare durante la notte a temperatura ambiente.

1.3) La segmentazione del ventricolo laterale per ricostruzioni 3D

NOTA: Eseguire il tracciamento dei ventricoli laterali utilizzando il software di mappatura su un epifluorescenza microsco rettoPE con una fase automatizzata e una fotocamera CCD digitale per il rilevamento della fluorescenza.

1. Accendere l'apparecchio microscopio a fluorescenza e lanciare il software di mappatura in modalità fluorescenza. Aperte "Opzioni di visualizzazione" per caricare le barre degli strumenti adeguati e pannelli attracco degli strumenti necessari per il tracciamento. Opzioni> Opzioni di visualizzazione> Accessori, e selezionare il 'principale' e le barre degli strumenti 'Marker'. Nello stesso menu, selezionate 'Camera Istogramma', 'Multicanale controllo', 'impostazioni della fotocamera', e 'Image Acquisition' sotto 'Pannelli Docking strumenti.'
2. Osservare inizi dei ventricoli a base di forte fluorescenza S-100β che etichette cellule ependimali che rivestono il ventricolo laterale. Identificare il primo pezzo di tessuto che contiene i ventricoli laterali.
3. Creare un nuovo file di dati e designare un punto di riferimento per il movimento stage facendo clic sulla finestra dell'immagine sopra il ventricolo laterale sinistro. Cercare il piccoloincisione per orientare sinistra dalla dell'emisfero destro. Tenere il punto di riferimento in una posizione coerente rispetto ai ventricoli laterali attraverso il tracciamento dei file per aiutare durante l'importazione di profili per la ricostruzione di serie.
4. Selezionate il corretto tipo di contorno predefinito dal contorno menu a discesa, ad esempio, 'Sinistra Ventricolo laterale.' Utilizzare un colore unico per ciascuno dei tracciati ventricolo laterale sinistro e destro. Se sono necessari cambiamenti nel nome del profilo e il colore, andare su Opzioni> Preferenze di visualizzazione> contorni, quindi modificare i nomi dei colori di contorno o selezionare 'Aggiungi Tipo Contour'.
5. Con contorno la 'sinistra Ventricolo laterale' selezionata, fare clic lungo la superficie apicale del rivestimento ependimale per iniziare il contorno traccia. Tracciare il ventricolo continuando a fare clic in successione lungo la superficie apicale.
   1. Per le aree irregolari che richiedono maggiore finezza, cliccare e tenere premuto il tasto sinistro del mouse per tracciare a mano libera. Premere Ctrl + Z, o andare to Opzioni> Annulla per annullare il punto del profilo precedente. Spostare la finestra tracciando con i tasti freccia o facendo lettera a contorno fuori dallo schermo e permettendo la finestra per centrare automaticamente. Per finire il ventricolo tracciamento destro del mouse e selezionare 'Chiudi Contour'.
6. Selezionare un nuovo colore di contorno (tipo di contorno) per il ventricolo laterale destro utilizzando il menu a discesa. Tracciare il ventricolo destro come al punto 1.3.4 per la sinistra.
7. Se sono necessari cambiamenti nel nome del profilo e il colore, fare clic destro sul contorno e selezionare Cambia Contorno Type per selezionare il colore appropriato.
8. Aggiungere marcatori lungo la linea mediana di aiutare ad allineare i contorni di serie per la ricostruzione in 3D. Per aggiungere i marcatori, selezionare il marcatore adeguato (utilizzare la 'X') dalla barra degli strumenti Markers a sinistra e fare clic per farli cadere sullo schermo tracciato. Marcatori Importare insieme con i profili di ciascuna traccia sezione di tessuto.
9. Per salvare la tracce di tessuto, selezionare File> SalvaFile Dati e creare un nuovo nome di cartella e di file. Numero tracciati [diapositiva #] - [#] tessuto per una facile identificazione di tracce di sezioni seriali. Ad esempio, la terza sezione di tessuto sulla seconda slitta ha il nome file '2-3' all'interno della directory per ogni cervello.
10. Ripetere i punti 1.3.4 a 1.3.9 per ciascuna sezione di serie del tessuto cerebrale a tracciare i ventricoli attraverso l'intero cervello, escludendo le regioni di adesione parete del ventricolo.
11. Se il ventricolo ha una regione di adesione, sotto-segmento regione anteriore da quelli dorsale e ventrale al sito adesione. Creare due nuovi tipi di profilo per ciascun ventricolo (per esempio, 'dorsale del ventricolo sinistro' e 'ventrale del ventricolo sinistro'). Sulla fetta primo tessuto con adesione, tracciare il ventricolo laterale sia con il profilo originale ventricolo laterale e la nuova dorsale e ventrale contorni per garantire una completa ricostruzione ventricolo può essere creato.
12. Nelle sezioni posterior a un ventricle adesione muro, creare una serie di nuovi colori di contorno per la parte posteriore del ventricolo ogni (ad esempio, 'posteriore del ventricolo sinistro'). Doppio tracciare questa prima sezione della nuova unita sia con l'adesione in corso e nuovi tipi posteriori di contorno.

1.4) Ricostruzione Ventricolo laterale 3D

1. Allineare e compilare tracciati di contorno di serie dei ventricoli laterali del mouse per generare ricostruzioni 3D e dati volumetrici.
2. Aperto programma di ricostruzione 3D. Fare clic su File> Apri e selezionare il file di contorno della sezione di serie prima tracciato. Importare i tracciati di contorno del ventricolo sinistro e destro nonché eventuali marcatori aggiunti.
3. Per selezionare i contorni, fare clic sul pulsante "Seleziona oggetti" (icona del cursore) e selezionare i due ventricoli e gli indicatori tenendo 'Ctrl'. Per stabilire la posizione Z dei contorni, fare clic destro e selezionare 'modifica Z Posizione'. Impostare la prima fetta del tessuto a 0 micron.
4. Per salvare la ricostruzione, selezionare File> Salva File Dati. Salva dopo ogni file di importazione, così recupero se si commette un errore è facile come ricaricare il file precedente.
5. Per aggiungere la fetta del tessuto accanto alla ricostruzione, fare clic su File> Append da visualizzare. Selezionare il file .DAT da aggiungere, e selezionare la casella 'Merge'.
6. Seguire passo 1.4.3 per regolare nuovamente la posizione Z del file di traccia appena importato. Selezionare solo i contorni appena aggiunti a destra ea sinistra nella finestra principale per evitare di spostare le altre tracce. Impostare ogni file di traccia successivi a 50 micron dalla posizione Z del contorno precedente per 50 sezioni micron. (Prima contorno: z = 0, secondo contorno: z = 50, terzo contorno: z = 100, etc.)
7. Per regolare la X, Y posizione dei contorni e indicatori selezionati, fare clic su 'Attiva Translation con il mouse' pulsante e trascinare i contorni per allinearsi con i contorni del tessuto precedenti. Tenere entrambi i contorni destro e sinistro della traccia corrente selezionataper permettere il movimento sincrono.
8. Per ruotare le tracce in senso orario o antiorario per allineare i marcatori della linea mediana, selezionare il pulsante 'Z. Rotazione'. Per capovolgere contorni attraverso l'asse Y (se il contorno sinistra è a destra) per selezionare sia i contorni e marcatori importati, fare clic destro, selezionare 'Set angolo di rotazione', e immettere '180' in 'di rotazione Y'.
9. Assicurarsi che i marcatori ventricoli e della linea mediana sono meglio allineati prima di salvare il file di ricostruzione, come nel passaggio 1.4.4.
10. Ripetere passaggi 1.4.5 a 1.4.9 per ogni sezione di tessuto successivo fino a quando tutti sono stati importati e correttamente allineati.
11. Per visualizzare i dati del volume della ricostruzione di serie, fare clic su Analisi> 'Marcatori e Regione Analysis' e selezionare '3D Contour Riepilogo'. Selezionare tutti i contorni nel pannello a sinistra e fare clic sul pulsante 'Visualizzazione 3D' per visualizzare la ricostruzione 3D finale.

2. umana: Analisi di periventricolare Cellular Integrità e modellazione 3D del ventricolo laterale

2.1) Analisi umana MRI dati

NOTA: I protocolli sono elencati per creare ricostruzioni di immagini 3D e quantificazione volumetrica dei ventricoli laterali e valutare variazioni volumetriche nel tempo utilizzando l'analisi di sovrapposizione longitudinale. È importante notare che la coerenza della rilevazione MR dati (ad esempio, la macchina e la forza del magnete, spessore della sezione, l'orientamento e la risoluzione) e l'elaborazione post-acquisizione sono criteri estremamente importanti per l'inclusione di insiemi di dati ^20.

1. Segmentazione ventricolare
   NOTA: ITK / Snap è utilizzato per segmentare i ventricoli da immagini ad alta risoluzione MR T1 pesate. In alternativa, può essere utilizzato altri software freeware come freesurfer.
   1. Aperto ITK / Snap, File> Apri in scala di grigi Immagine. Selezionare il file desiderato e aprire come file .nii (file NITFI).
   2. Scorrere ogni anataereo omical, rilevando anomalie ventricolare (regioni stenotiche, grandi o piccole corna temporali, ecc). Nel pannello degli strumenti fare clic su 'Snake ROI Tool'. Fare clic su 'Segment 3D'. Selezionare l'opzione 'Intensity Regione'.
   3. Fare clic su 'preprocessing immagine'. Seleziona 'Above', per includere le regioni al di sotto di una certa soglia di intensità al fine di evidenziare il ROI in bianco. Registra intensità massima usando la barra di scorrimento. Impostare la soglia al 15% della massima intensità (record di tale valore). Impostare il parametro morbidezza a 10. Fare clic su 'OK', quindi 'Avanti'.
   4. Aggiungere 10-12 piccola (misura 2) 'bolle' ad ogni ventricolo: due nel corno frontale anteriore, sette uniformemente distanziati lungo la superficie superiore del corpo ventricolo laterale, uno nel corno occipitale e uno nel corno temporale del ventricolo laterale. 'Selezionare Parametri' e impostare la forza di curvatura a 0,4. Clicca Play Simbolo per iniziare evoluzione contorno attivo.
   5. Fare clic su 'Aggiorna Mesh' di visualizzare la superficie; controllare 'aggiornamento automatico'. Arrestare segmentazione quando tutte le aree del ventricolo laterale sono inclusi nella regione di interesse (ROI). Evitare l'inserimento del terzo ventricolo. Fare clic su 'Fine'.
   6. Modificare manualmente l'immagine, se necessario, eliminare aree indesiderate con i seguenti metodi (in genere bisogno di cancellare terzo ventricolo perdite). Utilizzare manualmente lo strumento '3D Bisturi' per rimuovere le regioni in eccesso o manualmente utilizzare lo strumento 'Pennello' con 'Clear Etichetta' come l'etichetta di disegno attiva per cancellare l'eventuale inclusione di là di ROI.
   7. Salvare i risultati di segmentazione come immagini .nii (formato file 'NIfTI').
   8. Per ottenere il volume totale ventricolo, selezionare 'Segmentazione> Volume' e Statistica; ottenere il volume totale del ventricolo utilizzando set di etichette colore.
2. Rappresentazione longitudinale laterale ventricoli Da MRIScans
   NOTA: l'utilizzoSoftware Mango, ROI longitudinali sono sovrapposti a dimostrare qualitativamente e quantitativamente le variazioni di volume del ventricolo entro soggetti nel corso del tempo.
   1. Aprire Mango. Fare clic su File> Carica ROI del punto di tempo prima ROI (baseline) come GREEN. File> Carica ROI del secondo punto di volta ROI a RED. Salva sovrapposizione longitudinale selezionando File> Salva con nome; assegnare ad ogni immagine come 'name_ file [prima età punto temporale] - [età punto seconda volta] .nii'.
   2. Aprire ITK-SNAP. Riaprire il ROI combinato come 'immagine in scala di grigi', selezionando Segmentazione> Carica da Immagine> file ROI combinato. Per ottenere dati sui volumi longitudinali eseguire il seguente: Segmentazione> Volume e statistiche> Etichetta 1 (rosso) = volume di espansione; Etichetta 2 (verde) = volume di stenosi; Etichetta Volume 3 (blu) = base.

2.2) periventricolare umana del tessuto Preparazione e analisi

1. Norme di sicurezza per lavorare con i tessuti umani
   1. Ottenere appropformazione sulla sicurezza riate (ad es., per via ematica corso patogeni).
   2. Osservare (universale) misure di sicurezza standard. Indossare guanti. Cambiare i guanti prima di toccare qualsiasi apparecchiatura comune o superfici che non sono usa e getta. Etichettare tutti gli elementi normalmente trattati quando si lavora con i tessuti umani con denominazioni «uso di tessuti umani.
   3. Seguire le pratiche di decontaminazione per tutti gli articoli a contatto con i tessuti umani. Bleach tutti i liquidi contaminati per un minimo di 24 ore prima dello smaltimento, il trattamento di superfici contaminate con un asciugamano imbevuto di candeggina (per esempio, da banco) o mettendo oggetto direttamente in candeggina (ad esempio una pinza).
   4. Preparare piano di emergenza per il contatto con i tessuti umani direttamente sulla pelle, che possono includere ammollo un tovagliolo di carta in candeggina e tenendo premuto sulla zona interessata (5-10 minuti).
   5. Usare un appropriato smaltimento dei rifiuti per tutti gli articoli che entrano in contatto con i tessuti umani.
2. Ventricolo laterale Monte Preparazione tutto
   1. Beginning con un emisfero intatto (fissato in formalina al 10% e sciacquati accuratamente con 0,1 M PBS), tagliare 1,5 centimetri di spessore sezioni coronali attraverso tutto l'emisfero mezzo di grande lama.
      NOTA: Tutti i protocolli di fissaggio richiedono la verifica degli anticorpi prima.
   2. Sezioni Label davanti a dietro a cominciare dalla prima sezione contenente il ventricolo laterale. Utilizzare un sistema di etichettatura alfanumerico, etichettatura le fette con le lettere (anteriore a posteriore) e il paragrafo con i numeri (top-down). Evitare di interrompere la superficie ependimale.
   3. Utilizzando bisturi microchirurgico, sezionare parete del ventricolo 1 centimetro di profondità, mantenendo una sezione continua per tutta la parete laterale. Suddividere parete come necessario per creare sezioni di dimensioni appropriate per la colorazione bene. Sezione Notch sul lato opposto della parete del ventricolo per identificare l'orientamento superiore / inferiore.
   4. Eseguire recupero dell'antigene incubando sezioni di tessuto in 10 mM tampone citrato di sodio (pH 6.0) a 100 ° C per 10-20 minuti usando una doppia boiler (tempo ottimale di incubazione è determinato empiricamente). Lavare 3 volte in PBS / 0,1% Triton X-100 (PBS-TX).
   5. Block in siero di cavallo 10% utilizzando PBS / PBS-TX per 1 ora a temperatura ambiente.
   6. Incubare con anticorpi primari per 48 ore a 4 ° C. Per visualizzare rivestimento della parete del ventricolo, immunostain monta intere con le seguenti combinazioni di anticorpi: topo anti-β-catenina (1: 250); capra anti-GFAP (1: 250); coniglio anti-AQP4 (1: 400).
   7. Eseguire tutti i passaggi successivi al buio. Risciacquare tessuto 3 volte in PBS, incubate con anticorpi secondari (1: 500) per 24 ore a 4 ° C o 2 ore a temperatura ambiente, e risciacquare altre 3 volte in PBS. Incubare il tessuto con DAPI per 7 minuti a temperatura ambiente seguita con altri 3 lavaggi in PBS.
   8. Preparare il tessuto per la dissezione finale coprendo un piatto fondo di cera con parafilm. Riempire piatto con PBS, posizionare il tessuto in un piatto con una pinza sottile, evitando di entrare in contatto con la parete ependimale.
   9. Sotto il microscopio da dissezione, fermamente secure tessuto sui suoi perni laterali utilizzando. Con un microchirurgico coltello pugnalata 22,5 °, creare sezioni sottili omogenei (spessore circa 300 micron) di parete del ventricolo laterale. Per le grandi sezioni o sezioni con curvatura difficile, tagliata a cubetti piccoli prima di tagliare in sezioni finali per il montaggio e la posizione nota.
   10. Posizionare con cura la sezione sezionato lato ependima su sopra presentazione utilizzando una pinza sottile, prendendo atto della posizione e l'orientamento regionale sulla diapositiva. Ricoprire il tessuto con uno strato sottile di aquapolymount, avendo cura di evitare bolle. Posizionare vetrino su tessuto, aggiungere aquapolymount supplementare se necessario per colmare le eventuali lacune sotto coprioggetto.
   11. Inserire sezioni montate in buio e asciutto per 2-3 giorni a temperatura ambiente. Conservare in slidebox a 4 ° C.
3. Immunoistochimica e analisi istologica
   1. Utilizzando la microscopia confocale per visualizzare immunoistochimica fluorescente, impostare il piano focale di imaging in superficie ventricolo, come determinato mediante l'uso of β-catenina (marcatore per adherens apicali giunzione proteine ​​delle cellule ependimali). Delineare le regioni di copertura cellulare ependimale e astrogliosis superficie (GFAP macchie sulla superficie del ventricolo).
   2. Per documentare e montage l'intera superficie ventricolo, utilizzare le immagini sovrapposte per coprire tutta la superficie. Per creare montaggio di immagini seriali, aprire Adobe Photoshop. Utilizzare File> Automatizza> Photomerge disposizione> Interattivo per selezionare le immagini da sovrapporre, le regolazioni manuali, se necessario.
   3. Crea un nuovo livello di tracciare montaggio per generare la rappresentazione a fumetti di copertura cellulare ependima intatto o gliosi superficie ventricolo. Ripetere l'operazione per ogni diapositiva o ROI. Compilare tutte le sezioni di ricostruire la mappa di parete del ventricolo e link alla corrispondente regione alla MRI ricostruzione.

Risultati

Contour tracciamento dei ventricoli laterali del mouse sulla base immunostained 50 micron sezioni coronali e ricostruzioni 3D (Figura 3) consente ai dati del volume per essere raccolti in diversi paradigmi sperimentali utilizzando il mouse come sistema modello per la malattia o infortunio. Fondamentale per questa procedura è l'esclusione delle regioni in cui le pareti laterali ventricolo aderiscono l'uno all'altro. Con subsegmenting regioni dei ventricoli e la designazione di un colore dive...

Discussione

Presentiamo strumenti e protocolli che possono essere utilizzati per valutare l'integrità del sistema ventricolare del cervello in topi e negli esseri umani. Questi strumenti, tuttavia, possono essere applicati anche ad altre strutture cerebrali o sistemi di organi che subiscono variazioni dovute a lesioni, malattie, o durante il processo di invecchiamento ^14,21,22. Le strategie presentate approfittare di software che permette l'allineamento di sequenze MRI trasversali e longitudinali per generare ra...

Materiali

Name	Company	Catalog Number	Comments
Phosphate buffered saline (PBS)	Life Technologies	21600-069
Paraformaldehyde (PFA)	Electron Microscopy Sciences	19210	Use at 4% in PBS, 4 °C
Normal Horse Serum	Life Technologies	16050	10% in PBS-TX (v/v)
Normal Goat Serum	Life Technologies	16210	10% in PBS-TX (v/v)
Triton X-100 (TX)	Sigma-Aldrich	T8787	0.1% in PBS (v/v)
Vibratome	Leica	VT1000S
Fluorescence Microscope	Zeiss	Imager.M2
Camera	Hamamatsu	ORCA R2
Microscope Stage Controller	Ludl Electronic Products	MAC 6000
Stereology software	MBF Bioscience	Stereo Investigator 11
Stereology software	ImageJ/NIH	NIH freeware
3D Reconstruction software	MBF Bioscience	Neurolucida Explorer
Confocal Microscope	Leica	TCS SP2
MRI Software
Freesurfer	https://surfer.nmr.mgh.harvard.edu/fswiki/DownloadAndInstall	Segmentation and Volume
ITK-Snap	http://www.itksnap.org/pmwiki/pmwiki.php		Segmentation and Volume
Multi-image Analysis GUI (Mango)	http://ric.uthscsa.edu/mango/		Longitudinal overlay
Whole Mount Equipment
22.5° microsurgical straight stab knife	Fisher Scientific	NC9854830
parafilm
wax bottom dissecting dish
pins
fine forceps
aquapolymount
Dissecting Microscope	Leica	MZ95
Whole Mount Antibodies
mouse anti-b-catenin	BD Bioschiences, San Jose, CA, USA		1:250
goat anti-GFAP	Santa Cruz Biotechnology		1:250
rabbit anti-AQP4 (aquaporin-4)	Sigma-Aldrich		1:400
Coronal Antibodies
Anti-S100β antibody	Sigma-Aldrich		1:500
4’,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI)	Life Technologies	D-1306	10 µg/ml in PBS