JoVE Logo
Autori
Contattaci

Accedi

È necessario avere un abbonamento a JoVE per visualizzare questo. Accedi o inizia la tua prova gratuita.

In questo articolo

  • Riepilogo
  • Abstract
  • Introduzione
  • Protocollo
  • Risultati
  • Discussione
  • Divulgazioni
  • Riconoscimenti
  • Materiali
  • Riferimenti
  • Ristampe e Autorizzazioni

Riepilogo

Identificare gli obiettivi diretti di molecole-genoma di mira resta una sfida importante. Per capire come le molecole che legano il DNA impegnano il genoma, abbiamo sviluppato un metodo che si basa sulla reticolazione di piccole molecole per isolare cromatina (COSMIC).

Abstract

Il genoma è il bersaglio di alcuni dei chemioterapici più efficaci, ma la maggior parte di questi farmaci mancano DNA specificità di sequenza, che porta a dose-limitante tossicità e molti effetti collaterali negativi. Targeting il genoma con piccole molecole sequenza-specifiche può consentire molecole con maggiore indice terapeutico e minori effetti fuori bersaglio. N -methylpyrrole / N poliammidi -methylimidazole sono molecole che possono essere razionalmente progettati per indirizzare specifiche sequenze di DNA con squisita precisione. E a differenza di molti fattori di trascrizione naturali, poliammidi possono legarsi al DNA metilato e chromatinized senza perdita di affinità. La specificità sequenza di poliammidi è stata ampiamente studiata in vitro con l'identificazione del sito cognate (CSI) e con approcci tradizionali biochimici e biofisici, ma lo studio di poliammide vincolanti agli obiettivi genomici nelle celle rimane inafferrabile. Qui riportiamo un metodo, la reticolazione di piccole molecole per Isolate cromatina (COSMIC), che identifica i siti di legame di poliammide in tutto il genoma. COSMIC è simile a immunoprecipitazione della cromatina (ChIP), ma differisce in due modi importanti: (1) un photocrosslinker viene impiegato per consentire selettiva, cattura temporalmente controllata di poliammide eventi di legame, e (2) la maniglia affinità biotina è usato per purificare poliammide coniugati -DNA in condizioni di semi-denaturazione per diminuire DNA che non è legato covalentemente. COSMIC è una strategia generale che può essere utilizzato per rivelare gli eventi di legame genoma di poliammidi e di altri agenti chemioterapici genome-targeting.

Introduzione

Le informazioni da rendere ogni cellula del corpo umano è codificato nel DNA. L'uso selettivo di tali informazioni governa il destino di una cellula. I fattori di trascrizione (TFS) sono proteine ​​che si legano a specifiche sequenze di DNA di esprimere un particolare sottoinsieme dei geni nel genoma, e il malfunzionamento del TF è legata alla comparsa di una vasta gamma di malattie, tra cui difetti di sviluppo, il cancro e il diabete . 1,2 Siamo stati interessati a sviluppare molecole in grado di legare selettivamente al genoma e modulare reti di regolazione genica.

Poliammidi composto da N e N -methylimidazole -methylpyrrole sono molecole in grado di indirizzare il DNA con specificità e affinità che rivali fattori di trascrizione naturali. 3-6 Queste molecole si legano a sequenze specifiche nella solco minore del DNA razionalmente progettati. 4,5,7 -11 Poliammidi sono stati impiegati sia repress e attivare l'espressione di specifici gEnes. 4,12-19 Essi hanno anche interessanti antivirali e antitumorali 20-24 12,13,25-30 proprietà. Una caratteristica interessante di poliammidi è la loro capacità di accedere a sequenze di DNA che sono metilati 31,32 e avvolti intorno proteine ​​istoniche 9,10,33.

Per misurare le specificità completi vincolanti di molecole che legano il DNA, il nostro laboratorio ha creato il metodo di identificatore del sito affine (CSI). 34-39 La presenza prevista di siti di legame sulla base di specificità in vitro (genomescapes) possono essere visualizzati sul genoma, perché la in vitro intensità vincolanti sono direttamente proporzionali alla costanti di associazione (K a). 34,35,37 Queste genomescapes permettono di percepire occupazione poliammide in tutto il genoma, ma misurare poliammide legame in cellule vive è stata una sfida. DNA è strettamente impaccato nel nucleo, che potrebbe influenzare l'accessibilità dei siti di legame. L'accessibility di queste sequenze di DNA chromatinized a poliammidi rimane un mistero.

Recentemente, molti metodi per studiare le interazioni tra piccole molecole e acidi nucleici sono emersi. 40-48 La cattura affinità chimica e sequenziamento del DNA massicciamente paralleli (chem-SEQ) è una tale tecnica. Chem-ss utilizza formaldeide per reticolare piccole molecole ad un target genomica di interesse e di un derivato biotinilato di una piccola molecola di interesse per catturare l'interazione ligando-bersaglio. 48,49

Formaldeide reticolazione porta a interazioni indirette che possono produrre dei falsi positivi. 50 Abbiamo sviluppato un nuovo metodo, la reticolazione di piccole molecole per isolare cromatina (COSMIC), 51 con un photocrosslinker per eliminare questi cosiddetti picchi "fantasma". 50 Per iniziare, abbiamo progettato e sintetizzato derivati ​​trifunzionali di poliammidi. Queste molecole contenevano una pol-legame al DNAyamide, un photocrosslinker (psoralen), e una maniglia di affinità (biotina, Figura 1). Con poliammidi trifunzionali, possiamo covalente di catturare le interazioni in poliammide-DNA con irradiazione UV 365 nm, una lunghezza d'onda che non danneggia il DNA o indurre non psoraleni a base di reticolazione. 51 Successivamente, frammentare il genoma e purificare il DNA catturato sotto severe, semi condizioni -denaturing per diminuire DNA che non è legato covalentemente. Quindi noi consideriamo COSMIC come metodo correlate a chem-seq, ma con una lettura più diretta di DNA targeting. È importante sottolineare che i deboli (K 10 3 -10 4 M -1) affinità di psoraleni per il DNA non rilevabile poliammide impatto specificità. 51,52 I frammenti di DNA arricchito possono essere analizzati da una delle polimerasi quantitativa reazione a catena 51 (COSMIC-qPCR) o per sequenziamento di prossima generazione 53 (COSMIC-ss). Questi dati consentono un design imparziale genoma-guidata di ligandi che l'Interagire con loro loci genomici desiderato e minimizzare gli effetti fuori bersaglio.

figure-introduction-4486
Figura 1. poliammidi bioattivi e schema cosmico. (A) Hairpin poliammidi 1-2 bersaglio la sequenza del DNA 5'-WACGTW-3 '. Poliammidi lineari 3-4 bersaglio 5'-AAGAAGAAG-3 '. Anelli di N-metilimidazolo sono in grassetto per chiarezza. Cerchi aperti e pieni rappresentano N -methylpyrrole e N -methylimidazole rispettivamente. Square rappresenta 3 clorotiofene, e diamanti rappresentano β-alanina. Psoraleni e biotina sono indicati con P e B, rispettivamente. (B) schema cosmico. Le cellule vengono trattate con derivati ​​trifunzionali di poliammidi. Dopo la reticolazione con irradiazione UV 365 nm, le cellule sono lDNA genomico ysed e viene tagliata. Sfere magnetiche rivestite di streptavidina vengono aggiunti per catturare addotti poliammide-DNA. Il DNA viene rilasciato e può essere analizzato mediante PCR quantitativa (qPCR) o sequenziamento di prossima generazione (NGS). Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.

Protocollo

1. La reticolazione in cellule vive

  1. Inizia con ~ 2.5x10 7 celle H1, o altre cellule in coltura.
    NOTA: Il numero di celle H1 corrisponde a cinque piatti da 10 cm (circa il 40% di confluenza).
  2. Crescere cellule in E8 media su piatti ricoperti su una superficie in grado di supportare le cellule staminali pluripotenti (vedi Materiali List), e incubare a 37 ° C in atmosfera umidificata al 5% di CO 2. Celle di raccolta enzimatica (vedi Materiali List). Nota: Non lasciare le celle H1 di superare il 90% di confluenza; confluenza induce la differenziazione spontanea delle cellule H1. Per contare le cellule, crescere un 10 cm piatto extra di cellule, sollevare le cellule enzimaticamente come descritti nelle sezioni 1.8-1.10, e le considero con un emocitometro.
    1. Preparare E8 coltura come descritto in Chen et al. 54
  3. Prima di aggiungere poliammide, rimuovere il mezzo di coltura trascorso con una pipetta Pasteur collegato a una trappola di vuoto. Aggiungere mezzi freschi con comepipetta erological e distributore pipetta (8 ml per 10 cm piatto).
    NOTA: Aggiungere il supporto al lato del piatto per evitare di perturbare le cellule. Da questo punto in poi proteggere le cellule dalla luce per evitare premature foto-reticolazione.
  4. Aggiungere poliammide con una pipetta (8 ml di 400 mM in DMSO, poliammide 400 nM concentrazione finale) direttamente al mezzo di coltura di ogni piatto. Agitare il piatto per disperdere la poliammide in modo uniforme nei media.
    NOTA: La concentrazione può essere variata, ma assicura che nessuna tossicità cellulare si osserva per il trattamento selezionato.
  5. Incubare le cellule 24 ore 37 ° C in atmosfera umidificata al 5% di CO 2, e garantire che siano protetti dalla luce.
    NOTA: Il tempo di incubazione può essere variata per misurare il legame attraverso il tempo in poliammide.
  6. Lavare ogni piatto 10 cm con 4 ml di PBS (1.05 mM fosfato monobasico di potassio, 155,17 mM cloruro di sodio, 2.97 mM sodio fosfato bibasico) utilizzando una pipetta e pipette sierologiche dispenser. Aspirare PBS e aggiungere 3 ml di E8 coltura.
  7. Con le luci abbassate, rimuovere il coperchio 5 piastre di coltura e posizionare le celle su una superficie piana esterna della cappa. Mettere un filtro di vetro sopra i 5 piatti della cultura per filtrare la luce con λ <300 nm. Posizionare la sorgente UV in cima filtro. Campioni Crosslink 30 min con 365 irradiazione UV nm (2,4 mW / cm 2).
    NOTA: tempo di reticolazione deve essere determinato empiricamente.
  8. Trasferimento piatti della cultura torna alla cappa. Aspirare i media con una pipetta Pasteur collegato a una trappola a vuoto. Lavare ogni piatto 10 cm con 4 ml di PBS. Aspirare il PBS. Aggiungere 3 ml di enzima per la dissociazione delle cellule (vedi Materiali List) per 10 cm piatto dissociare le cellule. Incubare 5 minuti a 37 ° C.
    NOTA: Non pre-riscaldare l'enzima.
  9. Placare l'enzima con 3 ml E8 supporti per ogni piatto. Trasferimento dissociato cellule in un tubo da 15 ml.
    NOTA: Cellule posto su ghiaccio da questo punto in avanti.
  10. Centrifuge dissociato cellule 5 min, 500 xg a 4 ° C. Aspirare il surnatante per rimuovere enzima e dei media.
    NOTA: il punto di pausa. Le cellule possono essere congelati rapidamente in azoto liquido, conservati a -80 ° C per la successiva elaborazione in un secondo momento.

2. Isolamento di cromatina

  1. Aggiungere 1,2 ml di tampone COSMIC (20 mM Tris-HCl [pH 8,1], 2 mM EDTA, NaCl 150 mm, 1% Triton-X100, 0,1% SDS) e pipetta su e giù più volte per risospendere il pellet cellulare per ogni campione 1,2 ml di tampone COSMIC.
    1. Aggiungere 133 microlitri ciascuno di 100 mM phenylmethylsulfonyl fluoruro (PMSF), benzamidine 100 mM e 150 mM, pepstatina inibitori della proteasi freschi ad una concentrazione finale di 1 mM PMSF e per benzamidine e 1,5 mM per pepstatina. Soluzione scissione di lisato cellulare in due ambra 1,7 ml microprovette.
  2. Sonicare con sonicatore 35 min (10 sec a 10 sec spento, il potere il 60%) per frammentare il genoma di 100 tra unND 500 bp.
    1. Mantenere il livello della soluzione cromatina nella provetta parallelo al livello dell'acqua nel serbatoio. Confermare questo livello mediante ispezione visiva.
      NOTA:. Verificare che il DNA è stato tranciato con un gel di agarosio 1,5% 55
    2. Ottimizzare il tempo di sonicazione empiricamente. Utilizzare una quantità minima di ghiaccio nel serbatoio per refrigerare i campioni, e garantire il ghiaccio non interferisca tra i campioni e il corno tazza.
  3. Centrifugare il campione di 12.000 xg 10 min. Salvare la soluzione acquosa che contiene cromatina solubile trasferendola in una nuova provetta per microcentrifuga ambra con una pipetta. Eliminare il pellet.
  4. Trasferire 110 microlitri (10%) di campione in una nuova provetta ed etichettarlo DNA di ingresso. Conservare a -80 ° C. Salvare il resto del campione cromatina in ghiaccio per uso nel passo 3.3.

3. Acquisizione di ligando-DNA legami crociati

  1. Utilizzare una pipetta per erogare 60 microlitri streptavidin-rivestito sfere magnetiche in una provetta. Aggiungere 1 ml di tampone COSMIC e mescolare in una nutator 5 minuti a temperatura ambiente. Inserite sfere magnetiche sulla separazione magnetica cremagliera 2 minuti per catturare perline. Rimuovere tampone COSMIC con una pipetta.
    NOTA: Non lasciare che le perline si asciughino. Procedere immediatamente alla fase successiva.
  2. Aggiungi campione cromatina (~ 1 ml) di perline (60 mL) e risospendere le sfere. Incubare cromatina con streptavidina rivestite sfere magnetiche almeno 4 ore su una rotazione, mixer a dondolo a 4 ° C. Incubare i campioni O / N se lo si desidera.

4. Isolamento del DNA purificato per affinità

  1. Lavare perline con 7 min intervallo con RT con le seguenti tamponi di lavaggio per rimuovere le interazioni non specifiche. Utilizzare un rack di separazione magnetica per catturare perline dopo ogni lavaggio. Risospendere le sfere dopo ogni cambio di tampone di lavaggio.
  2. Preparare tamponi di lavaggio in acqua deionizzata distillata e filtro (0,2 micron) prima dell'uso. Tamponi di lavaggio Conservare 1 e 2 a 4 ° C per several mesi. Preparare tampone di lavaggio 3 fresco ogni giorno. Aggiungere e rimuovere tamponi di lavaggio dal campione con una pipetta. Per 2 e 4, aggiungere 1 e 3 (5 mM), rispettivamente, nei lavaggi. I campioni possono inoltre essere lavate due volte con tampone COSMIC (una volta 12 ore, una volta 4 ore) prima dei lavaggi elencati di seguito.
    1. Lavare una volta con tampone di lavaggio 1 (10 mM Tris-Cl [pH 8.0], 1 mM EDTA, 3% SDS). Risciacquare una volta con tampone di lavaggio 2 (10 mM Tris-Cl [pH 8,0], 250 mM LiCl, 1 mM EDTA, 0,5% NP40, 1% sodio desossicolato). Lavare due volte con tampone di lavaggio 3 (4 M urea, 10 mM Tris-Cl [pH 7,5], 1 mM EDTA, 0,1% NP-40). Lavare due volte con Tris EDTA (TE) di buffer (10 mM Tris-Cl [pH 8,0], 1 mM EDTA).
  3. Risospendere le sfere in 200 microlitri di buffer TE con una pipetta. Questo campione di DNA catturato è indicato come purificato per affinità (AP) DNA.
  4. Supplemento Input e AP DNA con 10x Crosslink Reversal Buffer (100 mM Tris-Cl [pH 8.0], 1 M KOH, 4 mMEDTA) per 1x concentrazione finale. 56,57 Incubare 30 minuti a 90 ° C.
    NOTA: 254 nm irradiazione UV può anche essere utilizzato per invertire la reticolazione psoralen, 58 ma dimeri di pirimidina ciclobutile possono essere formati da irradiazione a questa lunghezza d'onda e interferire con l'elaborazione a valle del DNA.
  5. Per il DNA AP, mettere la provetta contenente il campione sulla separazione magnetica cremagliera 2 minuti a temperatura ambiente e liquido di (DNA) con una pipetta. Trasferire il DNA AP (che è stato rilasciato dalle perline) in una nuova provetta per microcentrifuga ambra.
    NOTA: Il DNA AP desiderato è nel liquido, non è più attaccato ai talloni.
  6. Neutralizzare ingresso e il DNA di AP con HCl concentrato a pH 7 con l'aggiunta di circa 1 ml 6 N HCl per 100 microlitri del campione con una pipetta. Confermare i campioni vengono neutralizzati con l'aggiunta di ~ 0,5 microlitri su carta pH con una pipetta. ATTENZIONE: concentrato HCl è un forte acido corrosivo. Maneggiare secondo il vostro istituto217; s linee guida per l'equipaggiamento di protezione personale appropriato.
  7. Aggiungere RNasi A (100 mg / ml) e 0,2 mg / mL concentrazione finale sia all'ingresso e DNA AP. Incubare 1 ora a 37 ° C. Aggiungere proteinasi K (20 mg / ml) e 0,2 mg / mL concentrazione finale sia all'ingresso e DNA AP, aggiungere. Incubare 1 ora a 55 ° C.
  8. Purificare il DNA con un kit di colonna DNA cancellazione (vedi Lista dei materiali). 55 Elute DNA in 58 microlitri DNA-grade H 2 O. Conservare i campioni di ingresso e di AP a -20 o -80 ° C
  9. Analizzare il DNA AP mediante la reazione a catena della polimerasi quantitativa (qPCR) con primer specifici per locus, e / o di sequenziamento di prossima generazione. Per qPCR, utilizzare 2 microlitri DNA AP per locus con i seguenti parametri: 1 ciclo di 95 ° C 10 min e 40 cicli di 95 ° C 20 sec, 54 ° C o 56 ° C 20 sec, 72 ° C 40 sec.
    NOTA: La temperatura di ricottura dovrebbe essere modificata in funzione della temperatura di fusione delle coppie di primer utilizzati. Selezionare una tempera di ricotturare che riduce al minimo il ciclo di quantizzazione con nessuna amplificazione non specifica.
    NOTA: Per l'analisi da sequenziamento di prossima generazione, obiettivo per almeno 10 milioni mappato legge. Il numero di letture mappato può essere aumentata aumentando la quantità di DNA AP e combinando il numero di campioni in una corsa per il sequenziamento. Ulteriori letture migliorare la sensibilità. Pacchetti standard per l'analisi ChIP-seq (ad esempio, Omero, 59 MACS, 60 e 61), SPP lavorano con dati COSMIC-ss. Come nel caso di altri metodi che si basano su sequenziamento di prossima generazione, tra cui il sequenziamento del genoma e Chip-Seq, regioni ripetitivi creano ambiguità in allineamento e il montaggio, e quindi rimangono una sfida tecnica.

Risultati

Per tenere conto di non uniforme genoma frammentazione e altre variabili, il DNA purificato deve sempre essere normalizzato contro un riferimento di DNA Input. Primer specifici di un luogo di interesse possono essere utilizzati. È utile analizzare anche un locus qualora non si preveda la molecola di legare, come controllo negativo. Vediamo un aumento> 100 volte in occupazione poliammide upon irraggiamento con luce di 365 nm (Figura 2).

Arricchito DNA può essere analizza...

Discussione

One of the primary challenges with conventional ChIP is the identification of suitable antibodies. ChIP depends heavily upon the quality of the antibody, and most commercial antibodies are unacceptable for ChIP. In fact, the Encyclopedia of DNA Elements (ENCODE) consortium found only 20% of commercial antibodies to be suitable for ChIP assays.50 With COSMIC, antibodies are replaced by streptavidin. Because polyamides are functionalized with biotin, streptavidin is used in place of an antibody to capture polyam...

Divulgazioni

A.Z.A. is the sole proprietor of Vista Motif, LLC and WINStep Forward.

Riconoscimenti

We thank members of the Ansari lab and Prof. Parameswaran Ramanathan for helpful discussions. This work was supported by NIH grants CA133508 and HL099773, the H. I. Romnes faculty fellowship, and the W. M. Keck Medical Research Award to A.Z.A. G.S.E. was supported by a Peterson Fellowship from the Department of Biochemistry and Molecular Biosciences Training Grant NIH T32 GM07215. A.E. was supported by the Morgridge Graduate Fellowship and the Stem Cell and Regenerative Medicine Center Fellowship, and D.B. was supported by the NSEC grant from NSF.

Materiali

NameCompanyCatalog NumberComments
Phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF)any source
Benzamidineany source
Pepstatinany source
Proteinase Kany source
Dynabeads MyOne Streptavidin C1Life Technologies65001
PBS, pH 7.4Life Technologies10010-023Other sources can be used
StemPro Accutase Cell Dissociation ReagentLife TechnologiesA1110501
QIAquick PCR Purification KitQiagen28104We have tried other manufacturers of DNA columns with success.
TruSeq ChIP Sample Prep KitIlluminaIP-202-1012This Kit can be used to prepare COSMIC DNA for next-generation sequencing
Matrigel Basement Membrane MatrixBD Biosciences356231Used to coat plates in order to grow H1 ESCs
pH paperany source
amber microcentrifuge tubesany source
microcentrifuge tubesany source
pyrex filterany sourcePyrex baking dishes are suitable
qPCR master mixany source
RNaseany source
HCl (6 N)any source
10-cm tissue culture dishesany source
Serological pipettesany source
Pasteur pipettesany source
Pipette tipsany source
15-ml conical tubesany source
centrifugeany source
microcentrifugeany source
nutatorany source
Magnetic separation rackany source
UV sourceCalSunB001BH0A1AOther UV sources can be used, but crosslinking time must be optimized empirically
Misonix SonicatorQsonicaS4000 with 431C1 cup hornOther sonicators can be used, but sonication conditions must be optimized empirically
Humidified CO2 incubatorany source
Biological safety cabinet with vacuum outletany source

Riferimenti

  1. Lee, T. I., Young, R. A. Transcriptional Regulation and Its Misregulation in Disease. Cell. 152, 1237-1251 (2013).
  2. Vaquerizas, J. M., Kummerfeld, S. K., Teichmann, S. A., Luscombe, N. M. A census of human transcription factors: function, expression and evolution. Nat Rev Genet. 10, 252-263 (2009).
  3. Meier, J. L., Yu, A. S., Korf, I., Segal, D. J., Dervan, P. B. Guiding the Design of Synthetic DNA-Binding Molecules with Massively Parallel Sequencing. J. Am. Chem. Soc. 134, 17814-17822 (2012).
  4. Dervan, P. B. Molecular recognition of DNA by small molecules. Bioorg. Med. Chem. 9, 2215-2235 (2001).
  5. Wemmer, D. E., Dervan, P. B. Targeting the minor groove of DNA. Curr. Opin. Struct. Biol. 7, 355-361 (1997).
  6. Eguchi, A., Lee, G. O., Wan, F., Erwin, G. S., Ansari, A. Z. Controlling gene networks and cell fate with precision-targeted DNA-binding proteins and small-molecule-based genome readers. Biochem. J. 462, 397-413 (2014).
  7. Mrksich, M., et al. Antiparallel side-by-side dimeric motif for sequence-specific recognition in the minor groove of DNA by the designed peptide 1-methylimidazole-2-carboxamide netropsin. Proc Natl Acad Sci U S A. 89, 7586-7590 (1992).
  8. Edayathumangalam, R. S., Weyermann, P., Gottesfeld, J. M., Dervan, P. B., Luger, K. Molecular recognition of the nucleosomal "supergroove". Proc Natl Acad Sci U S A. 101, 6864-6869 (2004).
  9. Suto, R. K., et al. Crystal structures of nucleosome core particles in complex with minor groove DNA-binding ligands. J. Mol. Biol. 326, 371-380 (2003).
  10. Gottesfeld, J. M., et al. Sequence-specific Recognition of DNA in the Nucleosome by Pyrrole-Imidazole Polyamides. J. Mol. Biol. 309, 615-629 (2001).
  11. Chenoweth, D. M., Dervan, P. B. Structural Basis for Cyclic Py-Im Polyamide Allosteric Inhibition of Nuclear Receptor Binding. J. Am. Chem. Soc. 132, 14521-14529 (2010).
  12. Raskatov, J. A., et al. Modulation of NF-κB-dependent gene transcription using programmable DNA minor groove binders. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 109, 1023-1028 (2012).
  13. Yang, F., et al. Antitumor activity of a pyrrole-imidazole polyamide. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 110, 1863-1868 (2013).
  14. Mapp, A. K., Ansari, A. Z., Ptashne, M., Dervan, P. B. Activation of gene expression by small molecule transcription factors. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 97, 3930-3935 (2000).
  15. Ansari, A. Z., Mapp, A. K., Nguyen, D. H., Dervan, P. B., Ptashne, M. Towards a minimal motif for artificial transcriptional activators. Chem. Biol. 8, 583-592 (2001).
  16. Arora, P. S., Ansari, A. Z., Best, T. P., Ptashne, M., Dervan, P. B. Design of artificial transcriptional activators with rigid poly-L-proline linkers. J. Am. Chem. Soc. 124, 13067-13071 (2002).
  17. Nickols, N. G., Jacobs, C. S., Farkas, M. E., Dervan, P. B. Modulating Hypoxia-Inducible Transcription by Disrupting the HIF-1–DNA Interface. ACS Chemical Biology. 2, 561-571 (2007).
  18. Pandian, G. N., et al. A synthetic small molecule for rapid induction of multiple pluripotency genes in mouse embryonic fibroblasts. Sci. Rep. 2, 544 (2012).
  19. Pandian, G. N., et al. Synthetic Small Molecules for Epigenetic Activation of Pluripotency Genes in Mouse Embryonic Fibroblasts. Chem Bio Chem. 12, 2822-2828 (2011).
  20. He, G., et al. Binding studies of a large antiviral polyamide to a natural HPV sequence. Biochimie. 102, 83-91 (2014).
  21. Edwards, T. G., Vidmar, T. J., Koeller, K., Bashkin, J. K., Fisher, C. DNA Damage Repair Genes Controlling Human Papillomavirus (HPV) Episome Levels under Conditions of Stability and Extreme Instability. PLoS ONE. 8, e75406 (2013).
  22. Edwards, T. G., Helmus, M. J., Koeller, K., Bashkin, J. K., Fisher, C. HPV Episome Stability is Reduced by Aphidicolin and Controlled by DNA Damage Response Pathways. Journal of Virology. , (2013).
  23. Edwards, T. G., et al. HPV episome levels are potently decreased by pyrrole-imidazole polyamides. Antiviral Res. 91, 177-186 (2011).
  24. Dickinson, L. A., et al. Inhibition of RNA polymerase II transcription in human cells by synthetic DNA-binding ligands. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 95, 12890-12895 (1998).
  25. Dickinson, L. A., et al. Arresting Cancer Proliferation by Small-Molecule Gene Regulation. Chem. Biol. 11, 1583-1594 (2004).
  26. Nickols, N. G., et al. Activity of a Py–Im Polyamide Targeted to the Estrogen Response Element. Molecular Cancer Therapeutics. 12, 675-684 (2013).
  27. Raskatov, J. A., Puckett, J. W., Dervan, P. B. A C-14 labeled Py–Im polyamide localizes to a subcutaneous prostate cancer tumor. Bioorg. Med. Chem. 22, 4371-4375 (2014).
  28. Jespersen, C., et al. Chromatin structure determines accessibility of a hairpin polyamide–chlorambucil conjugate at histone H4 genes in pancreatic cancer cells. Bioorg. Med. Chem. Lett. 22, 4068-4071 (2012).
  29. Chou, C. J., et al. Small molecules targeting histone H4 as potential therapeutics for chronic myelogenous leukemia. Molecular Cancer Therapeutics. 7, 769-778 (2008).
  30. Nickols, N. G., Dervan, P. B. Suppression of androgen receptor-mediated gene expression by a sequence-specific DNA-binding polyamide. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 104, 10418-10423 (2007).
  31. Minoshima, M., Bando, T., Sasaki, S., Fujimoto, J., Sugiyama, H. Pyrrole-imidazole hairpin polyamides with high affinity at 5CGCG3 DNA sequence; influence of cytosine methylation on binding. Nucleic Acids Res. 36, 2889-2894 (2008).
  32. Warren, C. L., et al. Fabrication of duplex DNA microarrays incorporating methyl-5-cytosine. Lab on a Chip. 12, 376-380 (2012).
  33. Dudouet, B., et al. Accessibility of nuclear chromatin by DNA binding polyamides. Chem. Biol. 10, 859-867 (2003).
  34. Carlson, C. D., et al. Specificity landscapes of DNA binding molecules elucidate biological function. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 4544-4549 (2010).
  35. Warren, C. L., et al. Defining the sequence-recognition profile of DNA-binding molecules. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 103, 867-872 (2006).
  36. Tietjen, J. R., Donato, L. J., Bhimisaria, D., Ansari, A. Z., Voigt, C. Chapter One - Sequence-Specificity and Energy Landscapes of DNA-Binding Molecules. Methods Enzymol. 497, 3-30 (2011).
  37. Puckett, J. W., et al. Quantitative microarray profiling of DNA-binding molecules. J. Am. Chem. Soc. 129, 12310-12319 (2007).
  38. Keles, S., Warren, C. L., Carlson, C. D., Ansari, A. Z. CSI-Tree: a regression tree approach for modeling binding properties of DNA-binding molecules based on cognate site identification (CSI) data. Nucleic Acids Res. 36, 3171-3184 (2008).
  39. Hauschild, K. E., Stover, J. S., Boger, D. L., Ansari, A. Z. CSI-FID: High throughput label-free detection of DNA binding molecules. Bioorg. Med. Chem. Lett. 19, 3779-3782 (2009).
  40. Lee, M., Roldan, M. C., Haskell, M. K., McAdam, S. R., Hartley, J. A. . In vitro Photoinduced Cytotoxicity and DNA Binding Properties of Psoralen and Coumarin Conjugates of Netropsin Analogs: DNA Sequence-Directed Alkylation and Cross-Link. 37, 1208-1213 (1994).
  41. Wurtz, N. R., Dervan, P. B. Sequence specific alkylation of DNA by hairpin pyrrole–imidazole polyamide conjugates. Chem. Biol. 7, 153-161 (2000).
  42. Tung, S. -. Y., Hong, J. -. Y., Walz, T., Moazed, D., Liou, G. -. G. Chromatin affinity-precipitation using a small metabolic molecule: its application to analysis of O-acetyl-ADP-ribose. Cell. Mol. Life Sci. 69, 641-650 (2012).
  43. Rodriguez, R., Miller, K. M. Unravelling the genomic targets of small molecules using high-throughput sequencing. Nat Rev Genet. 15, 783-796 (2014).
  44. Guan, L., Disney, M. D. Covalent Small-Molecule–RNA Complex Formation Enables Cellular Profiling of Small-Molecule–RNA Interactions. Angew. Chem. Int. Ed. 52, 10010-10013 (2013).
  45. White, J. D., et al. Picazoplatin, an Azide-Containing Platinum(II) Derivative for Target Analysis by Click Chemistry. J. Am. Chem. Soc. 135, 11680-11683 (2013).
  46. Rodriguez, R., et al. Small-molecule–induced DNA damage identifies alternative DNA structures in human genes. Nat Chem Biol. 8, 301-310 (2012).
  47. Bando, T., Sugiyama, H. Synthesis and Biological Properties of Sequence-Specific DNA-Alkylating Pyrrole−Imidazole Polyamides. Acc. Chem. Res. 39, 935-944 (2006).
  48. Anders, L., et al. Genome-wide localization of small molecules. Nat. Biotechnol. 32, 92-96 (2014).
  49. Jin, C., et al. Chem-seq permits identification of genomic targets of drugs against androgen receptor regulation selected by functional phenotypic screens. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 111, 9235-9240 (2014).
  50. Landt, S. G., et al. ChIP-seq guidelines and practices of the ENCODE and modENCODE consortia. Genome Research. 22, 1813-1831 (2012).
  51. Erwin, G. S., Bhimsaria, D., Eguchi, A., Ansari, A. Z. Mapping Polyamide–DNA Interactions in Human Cells Reveals a New Design Strategy for Effective Targeting of Genomic Sites. Angew. Chem. Int. Ed. 53, 10124-10128 (2014).
  52. Hyde, J. E., Hearst, J. E. Binding of psoralen derivatives to DNA and chromatin: influence of the ionic environment on dark binding and photoreactivity. Biochemistry. 17, 1251-1257 (1978).
  53. Erwin, G. S., Bhimsaria, D., Rodríguez-Martínez, J. A., Grieshop, M. P., Ansari, A. Z. Genome-wide localization of polyamide-based genome readers reveals sequence-based binding to repressive heterochromatin. In preparation. , (2015).
  54. Chen, G., et al. Chemically defined conditions for human iPSC derivation and culture. Nat Meth. 8, 424-429 (2011).
  55. Deliard, S., Zhao, J., Xia, Q., Grant, S. F. A. Generation of High Quality Chromatin Immunoprecipitation DNA Template for High-throughput Sequencing (ChIP-seq). J Vis Exp. (74), e50286 (2013).
  56. Shi, Y. B., Spielmann, H. P., Hearst, J. E. Base-catalyzed reversal of a psoralen-DNA cross-link. Biochemistry. 27, 5174-5178 (1988).
  57. Kumaresan, K. R., Hang, B., Lambert, M. W. Human Endonucleolytic Incision of DNA 3′ and 5′ to a Site-directed Psoralen Monoadduct and Interstrand. J. Biol. Chem. 270, 30709-30716 (1995).
  58. Cimino, G. D., Shi, Y. B., Hearst, J. E. Wavelength dependence for the photoreversal of a psoralen-DNA crosslink. Biochemistry. 25, 3013-3020 (1986).
  59. Heinz, S., et al. Simple Combinations of Lineage-Determining Transcription Factors Prime cis-Regulatory Elements Required for Macrophage and B Cell Identities. Mol. Cell. 38, 576-589 (2010).
  60. Zhang, Y., et al. Model-based analysis of ChIP-Seq (MACS). Genome Biol. 9, R137 (2008).
  61. Kharchenko, P. V., Tolstorukov, M. Y., Park, P. J. Design and analysis of ChIP-seq experiments for DNA-binding proteins. Nat Biotech. 26, 1351-1359 (2008).
  62. Diamandis, E. P., Christopoulos, T. K. The biotin-(strept)avidin system: principles and applications in biotechnology. Clin. Chem. 37, 625-636 (1991).
  63. Martinson, H. G., True, R. J. On the mechanism of nucleosome unfolding. Biochemistry. 18, 1089-1094 (1979).
  64. Gloss, L. M., Placek, B. J. The Effect of Salts on the Stability of the H2A−H2B Histone Dimer. Biochemistry. 41, 14951-14959 (2002).
  65. Jackson, V. Formaldehyde Cross-Linking for Studying Nucleosomal Dynamics. Methods. 17, 125-139 (1999).
  66. Kasinathan, S., Orsi, G. A., Zentner, G. E., Ahmad, K., Henikoff, S. High-resolution mapping of transcription factor binding sites on native chromatin. Nat Meth. 11, 203-209 (2014).
  67. Teytelman, L., Thurtle, D. M., Rine, J., van Oudenaarden, A. Highly expressed loci are vulnerable to misleading ChIP localization of multiple unrelated proteins. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 110, 18602-18607 (2013).
  68. . Phantompeakqualtools home page Available from: https://www.encodeproject.org/software/phantompeakqualtools/ (2010)
  69. Wang, D., Lippard, S. J. Cellular processing of platinum anticancer drugs. Nature Reviews Drug Discovery. 4, 307-320 (2005).
  70. Hurley, L. H. DNA and its associated processes as targets for cancer therapy. Nat. Rev. Cancer. 2, 188-200 (2002).

Ristampe e Autorizzazioni

Richiedi autorizzazione per utilizzare il testo o le figure di questo articolo JoVE

Richiedi Autorizzazione

Esplora altri articoli

Biologia MolecolareNumero 107COSMICCSIriconoscimento molecolarecheminformaticsgenomica chimicapoliammidegenoma targetingla medicina di precisioneil DNAimmunoprecipitazione della cromatinasequenziamento di prossima generazione

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Riservatezza

Condizioni di utilizzo

Politiche

Contattaci

SUGGERISCI JOVE ALLA BIBLIOTECA

Newsletter di JoVE

Ricerca

Didattica

Autori

Personale delle biblioteche

CHI SIAMO

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. Tutti i diritti riservati