Assemblaggio e caratterizzazione biomolecolare Memristors costituito da membrane lipidiche drogato con scanalatura dello ione

Riepilogo

Morbido, bassa potenza, biomolecolari memristors sfruttare simile composizione, struttura e meccanismi di bio-sinapsi di commutazione. Presentato qui è un protocollo da assemblare e caratterizzazione biomolecolare memristors ottenuto da isolante lipidici formate tra le goccioline di acqua in olio. L'incorporazione di tensione-attivato alameticina risultati di peptidi in memristive conduttanza ionica attraverso la membrana.

Abstract

La capacità di ricreare la funzionalità sinaptica in elementi del circuito sintetico è essenziale per focalizzeranno informatica sistemi che cercano di emulare le competenze cognitive del cervello con densità ed efficienza paragonabile. Ad oggi, basata sul silicio transistori con tre terminali e due terminali memristors sono stati ampiamente utilizzati nei circuiti di neuromorphic, in gran parte dovuto la loro capacità di co-localizzare la memoria e l'elaborazione delle informazioni. Eppure questi dispositivi non possono raggiungere l'interconnettività e la complessità del cervello perché sono affamati di potere, non riescono a imitare chiave funzionalità sinaptica e soffrono di rumore elevati e alte tensioni di comando. Per superare queste limitazioni, abbiamo sviluppato e caratterizzato un memristor biomolecolari che simula la composizione, struttura e caratteristiche di commutazione delle sinapsi biologiche. Qui, descriviamo il processo di assemblaggio e caratterizzazione biomolecolare memristors costituito da un doppio strato di 5 nm di spessore lipidico formano tra le goccioline di acqua del lipido-funzionalizzati in olio e drogato con peptidi alameticina tensione-attivato. Mentre simili protocolli di assemblaggio sono stati utilizzati per indagare le proprietà biofisiche delle membrane lipidiche gocciolina-sostenuto e canali ionici di membrana-limita, in questo articolo si concentra sulle modifiche chiave del metodo gocciolina interfaccia doppio strato essenziale per ottenere prestazioni coerenti memristor. In particolare, descriviamo il processo di preparazione dei liposomi e l'incorporazione dei peptidi alameticina in membrane bilayer del lipido e le concentrazioni adeguate di ciascun costituente, nonché il loro impatto sulla risposta globale della memristors. Abbiamo inoltre dettagliatamente il processo di caratterizzazione di memristors biomolecolari, compresa la misurazione e analisi delle relazioni di tensione-corrente memristive ottenuta mediante voltammetria ciclica, come pure la plasticità a breve termine e l'apprendimento graduale in risposta a treni di impulsi di tensione.

Introduzione

È ampiamente riconosciuto che le sinapsi biologiche sono responsabili per l'elevata efficienza ed enorme parallelismo del cervello dovuto la loro capacità di imparare ed elaborare le informazioni in modi altamente adattabili. Questa funzionalità coordinata emerge da multipli, altamente complessi meccanismi molecolari che guidano entrambi plasticità sinaptica a breve termine e a lungo termine^1,2,3,4,5. Sistemi di calcolo focalizzeranno mirano a emulare le funzionalità sinaptiche a livelli prossimi alla densità, complessità e l'efficienza energetica del cervello, che sono necessari per la prossima generazione di computer cervello-come^{6,7 , 8}. Tuttavia, riproduce la funzionalità sinaptica utilizzando elementi del tradizionale circuito elettronico è praticamente impossibile⁹, invece che richiedono la progettazione e la fabbricazione di nuovi elementi di hardware che può adattarsi ai segnali in ingresso e ricordare informazioni storie⁹. Questi tipi di sinapsi-ispirato hardware sono conosciuti come mem-elements^9,10,11 (elementi di abbreviazione di memoria), che, secondo Di Ventra et al.^9,11, sono passivo, due terminali dispositivi cui resistenza, capacitanza o induttanza possa essere riconfigurato in risposta agli stimoli esterni, e che può ricordare stati precedenti¹¹. Per raggiungere livelli di consumo di energia si avvicina a quelli nel cervello, questi elementi dovrebbero impiegare materiali e meccanismi di plasticità sinaptica¹²simili.

Fin qui, due terminali memristors^13,14,15 principalmente sono state costruite utilizzando tecnologia di (CMOS) metallo-ossido-semiconduttore complementare, caratterizzata da tensioni di commutazione ad alta e alta rumore. Questa tecnologia non si adatta bene a causa di alto consumo energetico e bassa densità. Per risolvere queste limitazioni, più organici e polimerici memristors sono state costruite recentemente. Tuttavia, questi dispositivi presentano significativamente più lento commutazione dinamica a causa della diffusione di ioni richiede molto tempo attraverso un polimero conduttivo matrice^16,17. Di conseguenza, i meccanismi con cui entrambi i dispositivi basati su CMOS e organici memristive emulano sinapsi-ispirato funzionalità sono altamente fenomenologici, che comprende solo alcune funzionalità sinaptica come plasticità dipendente Timing (STDP) Spike per il ¹⁸, mentre con vista altro tasto funzioni che svolgono anche un ruolo essenziale nel rendere il cervello un computer potente ed efficiente, come plasticità a breve termine, pre-sinaptica¹⁹.

Recentemente, abbiamo introdotto una nuova classe di memristive dispositivi¹² con peptidi attivati tensione incorporati nelle membrane lipidiche biomimetici che simula la composizione biomolecolare, struttura della membrana e ione canale attivato commutazione meccanismi biologici sinapsi²⁰.  Qui, descriviamo come assemblare ed elettricamente interrogare questi dispositivi di due terminali, con focus specifico su come valutare la plasticità a breve termine per l'attuazione nella linea di apprendimento applicazioni¹². Montaggio del dispositivo si basa sul metodo della gocciolina interfaccia doppio strato (DIB)²¹ , che è stato usato estesamente negli ultimi anni per studiare la biofisica delle membrane modello²¹ e membrana-limitano agli ioni canali^{22,23, 24}e come blocchetti di costruzione per lo sviluppo di materiali stimoli-sensible a reagire^25,26. Descriviamo il processo di assemblaggio e interrogatorio di membrana in dettaglio per coloro che sono interessati nelle applicazioni focalizzeranno ma hanno limitato l'esperienza in biomateriali o membrana biologia. Il protocollo comprende anche una descrizione completa della procedura di caratterizzazione, che è importante quanto il processo di assemblaggio, dato il dinamica e riconfigurabile proprietà elettriche del dispositivo²⁷. La procedura e rappresentante risultati descritti qui sono fondamenti per una nuova classe di basso costo, basso consumo, mem-elementi morbidi basati su interfacce del lipido e altre biomolecole per le applicazioni in focalizzeranno computing, strutture autonome e sistemi, e anche interfacce cervello-computer adattivo.

Protocollo

1. precauzioni e istruzioni generali

1. Selezionare adatto, intatto di misurazione/miscelazione cristalleria (beute, bicchieri, ecc.) e altri articoli da laboratorio (spatole, cucchiai, ecc.) per l'uso.
2. Gestire la cristalleria con attenzione per evitare di danneggiare e indossare guanti in lattice o nitrile per evitare di contaminare la cristalleria/labware con residui dalla punta delle dita e per proteggere la pelle.
3. Selezionate cristalleria/labware pulito accuratamente con acqua e soluzione detergente di lavaggio con un pennello morbido bottiglia fino a quando è pulito e tutti i residui vengono rimossi.
4. Sciacquare abbondantemente con acqua di rubinetto e poi con acqua deionizzata (DI). Posto su stendino per aria a secco.
5. Opzionale: Sciacquare la cristalleria/labware puliti con isopropilico (IPA, 99,5%) e posto sotto vuoto per evaporare tutti IPA residua per assicurarsi che siano esenti da eventuali contaminanti (~ 2 h). Rimuovere dalla camera a vuoto e posto in ambiente pulito.
   Nota: Utilizzare salviette panno per pulire la vetreria di laboratorio. Acquistare e utilizzare fiale di vetro sterili e sicuro-blocco tubi per conservazione di preparazione e dei campioni di materiali. Per maggiori dettagli su cristalleria di pulizia e altre procedure operative standard di laboratorio, rimanda al Giove Science Education Database²⁸.

2. preparazione della soluzione tampone acquoso

1. Indossando guanti di lattice o nitrile, selezionare un contenitore di vetro pulito e adeguato per preparare 50 mL di tampone acquoso (500 mM di cloruro di sodio (KCl), 10 mM 3-(N-morfolino) acido propansulfonico (MOPS), pH 7.0).
2. Con un bilancio di massa digitale di alta precisione e una spatola, dispensare 1,86378 g di KCl sulla carta pesatura pulita e quindi aggiungere il contenitore di vetro.
   Nota: Le quantità di KCl e MOPS dovrebbero variare a seconda del volume desiderato e voluto concentrazioni finali.
3. Pesare 0,10463 g di MOPS e aggiungere al contenitore di vetro. Quindi, aggiungere 50 mL di acqua deionizzata al contenitore di vetro e vortice accuratamente fino al KCl e MOPS non sia completamente disciolto.
4. Conservare la soluzione tampone a temperatura ambiente e utilizzare quando necessario.
   Nota: Mentre soluzioni tampone possono essere conservati per periodi di tempo relativamente lunghi, si consiglia di utilizzare soluzioni tampone preparata per risultati migliori e più coerenti.

3. preparazione dei liposomi

Nota: Passaggio 3.1 si applica solo se i fosfolipidi vengono acquisiti come polveri liofilizzate e di conseguenza, possono essere ignorati se i fosfolipidi vengono acquistati in cloroformio.

1. Sciogliere 5 mg di 1,2-diphytanoyl-sn-glycero-3-phosphocholine (DPhPC) o lipidi del cervello totale lipidi estratti (bottiglia) in 1 mL di cloroformio in un flaconcino di vetro sterili da 5 mL.
2. Mentre delicatamente vorticoso, evaporare il cloroformio sotto una leggera corrente di azoto secco fino a quando un film lipidico rimane sul fondo del flaconcino.
3. Collocare il flaconcino contenente il film lipidico sotto vuoto per 10-12 h consentire la rimozione completa di cloroformio residua.
4. Estrarre la cuvetta dal camera del vuoto e reidratare il film lipidico aggiungendo 10 mL di soluzione tampone acquoso preparata nel passaggio 2 per ottenere una concentrazione finale del lipido di 2 mg/mL.
5. (-20 °C) di congelare e scongelare completamente la sospensione del lipido sei volte per facilitare l'assemblaggio dei liposomi multilamellari.
   Nota: Lasciare che la miscela scongelare a temperatura ambiente, mai in un ambiente riscaldato.
6. Utilizzando un estrusore commercialmente disponibile, estrudere la soluzione liposoma forzando la sospensione lipidica completa attraverso una membrana di pista-inciso diametro 0,1 μm poro. Estrudere la sospensione 11 volte in successione immediata per ottenere liposomi unilamellari con diametro di c.a. 100 nm necessarie per una formazione adeguata dei lipidi dello strato monomolecolare. Conservare la sospensione di liposomi a 4 °C e consumare entro 1 settimana di preparazione. Per semplicità, consultare la soluzione risultante di liposomi come "A".
   Nota: Per l'estrusione di liposomi a bottiglia, il ricercatore è incoraggiato a scaldare l'estrusore a 45-50 °C, superiore alla transizione di fase temperatura dei lipidi a bottiglia (~ 37 °C)^23,29, per consentire più facile estrusione. Idratato liposoma a bottiglia sospensioni possono anche essere preparate direttamente (al posto di gelo-disgelo ed estrusione) ponendo il flacone di sospensione chiusa in un sonicatore bagno a 55 °C per circa 15 min.

4. la ricostituzione di alameticina peptidi

Nota: Questa procedura viene descritto il processo di alameticina ricostituzione in liposomi ad una concentrazione finale di 1 μM. Questa concentrazione è sufficiente per indurre le correnti nA-livello sono simili a quelli precedentemente pubblicati¹². Aumentando la concentrazione di peptide riduce la soglia di commutazione e aumentare le ampiezze delle correnti indotte dalla tensione applicata²⁹.

1. Sciogliere alameticina peptidi in etanolo ad una concentrazione finale di 2,5 mg/mL, vortice brevemente per mescolare bene e conservare la soluzione stock in congelatore (-20 °C).
   Nota: Alameticina peptidi sono comprati solitamente in forma di polvere.
2. In un tubo di sicurezza bloccaggio 1,5 mL, mescolare 99 μL di soluzione "A" con 1 μL di soluzione di riserva alameticina per ottenere una concentrazione finale alameticina 13 μm la sospensione del liposoma.  Vortice per mescolare bene. Fare riferimento alla soluzione del peptide-liposoma risultante come "B".
3. 117 di mix μL di soluzione "A" con 10 μL di soluzione B per ottenere una concentrazione finale alameticina di 1 mM e poi vortice per mescolare bene. Fare riferimento alla soluzione risultante come "C".
4. Memorizzare le soluzioni "B" e "" C a 4 °C e uso, se necessario.

5. preparazione del gel dell'agarosi

1. Con un bilancio di massa digitale di alta precisione e una spatola, aggiungere 0,5 g di agarosio in polvere per una pesatura carta pulita.
2. Trasferimento pesava agarosio in un recipiente di vetro pulito 100 mL e aggiungere 50 mL di acqua DI agarosio.
   Nota: Questo consente di ottenere una soluzione di gel di agarosio 1% (wt/vol).
3. Mettere un magnete agitazione pulito dentro il bicchiere di vetro e porre il becher su un piatto caldo mescolando.
4. Continuando a mescolare, portare la miscela a ebollizione fino alla completa dissoluzione dell'agarosi.
5. Rimuovere il recipiente dalla piastra calda a lasciate raffreddare a temperatura ambiente. Conservare a 4 °C e utilizzare quando necessario.
6. Prima di utilizzare nuovamente, rifondere l'agarosio di riscaldamento con una piastra riscaldante o forno a microonde.

6. fabbricazione del serbatoio olio

Nota: La procedura descritta di seguito è solo uno dei molti modi che un serbatoio di olio possa essere fabbricato. Il lettore è incoraggiato a progettare e fabbricare un serbatoio basato su materiali disponibili, funzionalità e specifiche esigenze di lavorazione.

1. Utilizzando una sega a nastro, tagliare un 12 x 12 x 12 cubo acrilico mm da un foglio di acrilico spessore 12 mm più grande.
2. Laminatoio di un foro di diametro di 12 mm per una profondità di 8-12 mm di tubo acrilico (Figura 1a).

7. preparazione di elettrodi

1. Utilizzando le forbici, tagliare due pezzi (75 mm) di fili d'argento (125 μm di diametro).
2. Utilizzando una fiamma accendino, sciogliere un'estremità di ogni filo d'argento per formare piccole palline sferiche (circa 250 μm di diametro).
3. Immergere il pallone termina in candeggina per 1-2 h creare un rivestimento d'argento cloruro di argento (Ag/AgCl). Un colore grigio scuro indica che il rivestimento di Ag/AgCl ha formato (Figura 2a).
4. Rimuovere entrambi i fili da candeggina, risciacquare accuratamente con acqua deionizzata e mettere da parte su un panno pulito privo di lanugine.
5. Immergere le estremità di palla in gel di agarosio fuso per creare uno strato sottile. Questo rivestimento in gel consente di ancorare le goccioline acquose su fili sotto olio.
6. Utilizzando un tagliavetro, dividere una lunga 10 cm, 1/0,58 OD/ID mm in vetro borosilicato capillare in due capillari di 5 cm.
7. Inserire uno dei capillari di vetro in un portaelettrodo (Figura 2b, c) e quindi alimentare uno del filo Ag/AgCl nel vaso capillare di vetro (figura 2d). Nutrire l'altro filo di Ag/AgCl nel secondo bicchiere capillare.
8. Montare la seconda capillare di vetro a un supporto di una micropipetta di vetro (Figura 2e, f).

8. impostare l'esperimento

1. Collocare una lastra di vetro 1 mm 25 x 75 mm di spessore, sul palco di un microscopio invertito (Figura 1a).
2. Dispensare alcune gocce di olio di esadecano al centro del vetrino e quindi posizionare il serbatoio dell'olio direttamente sull'olio sul vetrino.
   Nota: L'aggiunta di olio tra il serbatoio di vetro scorrevole e olio viene utilizzato per abbinare l'indice di rifrazione del substrato per fornire immagini nitide e dettagliate.
3. Riempire completamente il serbatoio dell'olio con olio esadecano. Assicurarsi che il serbatoio è posizionato sopra la lente dell'obiettivo.
   Nota: Altri oli idrofobici possono essere usati pure.
4. Collegare il pinza porta elettrodo per l'headstage di un amplificatore di corrente. L'headstage deve essere montato su un micromanipolatore (Figura 1a) per ridurre al minimo la lunghezza dell'elettrodo e rumore elettrico.
5. Montare il supporto di una micropipetta di vetro con il secondo cavo di Ag/AgCl su un altro micromanipolatore (Figura 1a).
6. Utilizzando i manipolatori, posizione gli elettrodi tale che l'agarosio rivestito suggerimenti dei fili Ag/AgCl sono completamente sommerse nel serbatoio dell'olio a un simile piano verticale.
7. Allineare i due elettrodi e separarli da pochi millimetri (Figura 1a, b).
   Nota: Dopo aver aggiunto le goccioline (descritte nel passo 13), i cavi devono essere portati fino in fondo fino a quando le punte dell'elettrodo sono toccare il fondo del serbatoio dell'olio. Questo passaggio farà in modo che i fili non oscillano e così, ridurrà al minimo inutili fluttuazioni della corrente da misurare.

9. corretta messa a terra per ridurre il rumore elettrico

1. Creare un bus di terra con filettatura di una vite nella tabella anti-vibrazione sul quale il microscopio è collocato (Figura 3a).
   Nota: Utilizzando una tabella di anti-vibrazione è necessaria per minimizzare le vibrazioni dall'ambiente circostante, che potrebbero causare indesiderate fluttuazioni di corrente misurata.
2. Utilizzando un filo conduttore, collegare la vite a una terra (Figura 3a) e quindi collegare il tavolino del microscopio al bus di terra.
3. Posizionare una gabbia di Faraday sull'apparato sperimentale per ridurre rumore e poi collegarlo elettricamente al bus di terra (Figura 3b).
   Nota: Si consiglia sempre di evitare inutili loop di terra, come si possono portare ad un aumento nel livello di rumore di misura.

10. feedback controllato riscaldamento

1. Un alluminio shell in cui il serbatoio di olio può adattarsi comodamente²⁹di riscaldamento della macchina.
2. Assicurarsi di lasciare un'apertura nella parte inferiore del guscio per essere in grado di vedere attraverso il guscio tramite il microscopio invertito.
3. Inserire un elemento di riscaldamento flessibili di polyimide resistivo 30x30 mm sotto il guscio di alluminio.
4. Posizionare un wafer di polidimetilsilossano (PDMS) isolante sotto la stufa per ridurre le dispersioni termiche verso il basso e proteggere il tavolino del microscopio.
5. Inserire una termocoppia in fase oleosa. Dopo assicurandosi che la termocoppia non toccare o legare di Ag/AgCl, collegare i fili della termocoppia per una scheda di acquisizione dati di termocoppia e temperatura record utilizzando il software di programmazione personalizzato.
   Nota: Scrivere un On-Off, proporzionale integrale (PI) feedback controllo della temperatura per attivare il riscaldamento e raffreddamento passivo della temperatura dell'olio un valore desiderato. I codici possono essere forniti ai lettori su richiesta.

11. impostazione del Software e attrezzature

1. Preparare il software di acquisizione dati di accensione del computer, microscopio, generatore di funzioni, amplificatore di corrente e sistemi di acquisizione dati a basso rumore.
   Nota: Mentre qualsiasi apparecchiatura di rilevamento corrente può essere utilizzato, le seguenti istruzioni sono specificamente per quello elencato nella Tabella materiali. I ricercatori che desiderano costruire il proprio amplificatore di corrente possono riferirsi a Shlyonsky et al.³⁰.
2. Sul pannello frontale del morsetto patch amplificatore di corrente, impostare il display del pannello anteriore e fonte-misurazione modalità quadranti VHOLD/IHOLD e V-CLAMP, rispettivamente.
3. Sul pannello frontale, impostare il passa-basso Filtro di Bessel a 1 kHz e Guadagno di Output a 0,5.
   Nota: Scegliendo un guadagno di uscita bassa consente la registrazione più grandi ampiezze superiori attuali, mentre aumentando la gamma di misurazione guadagno sacrifici per ridurre il rumore di misura.
4. Impostare la configurazione per intera cellula β = 1. Questo valore può essere più successivamente commutato a 0.1 per consentire la registrazione di correnti elevate di ampiezza.
5. Impostare tutti gli altri quadranti di controllo a zero o in posizione neutra.
6. Inizializzare il software facendo doppio clic sull'icona del desktop.
7. Fare clic su configurazione di | Convertitore analogico/digitale per aprire la finestra di dialogo di digitalizzatore e quindi scegliere il pulsante Cambia .
8. Nella finestra di dialogo Modifica digitalizzatore , selezionare il digitalizzatore appropriato dall'elenco Tipo di digitalizzatore .
9. Fare clic sul pulsante Scan per rilevare il digitalizzatore.
10. Fare clic su OK per chiudere la finestra di dialogo del Digitalizzatore di cambiamento e quindi fare clic su OK per chiudere la finestra di dialogo del digitalizzatore .
11. Fare clic su ConFigura | Banco di laboratorio.
12. Nella scheda Input segnali del Banco di laboratorio, impostare il fattore di scala per 0,0005 V/PA.
    Nota: Questo valore deve essere aggiornato se vengono modificati i valori di guadagno o β.

12. pipetta Offset

Nota: La procedura descritta di seguito si applica solo a amplificatore di corrente menzionati nella Tabella materiali.

1. Usando una micropipetta, deposita 200 nL della soluzione acquosa del lipido "A" sulle estremità di ogni filo di Ag/AgCl sott'olio.
2. Portare le goccioline in contatto e premere il tasto di ZAP sul pannello frontale dell'amplificatore a fondersi le goccioline in un unico volume che attraversa entrambi gli elettrodi. Ciò dovrebbe indurre una risposta di cortocircuito.
3. Selettore di modalità di impostare origine-misurazione su pista.
4. Modificare il pannello frontale display quadrante V_traccia.
5. Disabilita il PIPETTATRICI OFFSET comporre (in senso orario o antiorario) fino al contatore letture 0 mV ed è stabile.
6. Restituire il selettore di modalità di origine-misurazione a V-CLAMP e pannello frontale Visualizza quadrante a V /I_teneretenere.

13. formazione di Bilayer del lipido

1. Rilasciare le goccioline che precedentemente sono state depositate spostando gli elettrodi verticalmente fuori fase oleosa. In questo modo le goccioline cadere dagli elettrodi nell'olio. Ri-immergere e posizionare gli elettrodi in olio.
2. Utilizzare la micropipetta per deposito 200 nL di soluzione lipidica "A" su ciascuno dei fili.
3. Attendere 3-5 min consentire montaggio monostrato lipidico spontanea si verificano a ogni interfaccia acqua/olio.
   Nota: come le forme di monostrato lipidico, le diminuzioni di tensione superficiale interfaccia olio/acqua/lipidica, che possono causare le goccioline a incurvarsi se l'olio circostante è sufficientemente meno denso²¹.
4. Abbassare gli elettrodi (e goccioline) fino a quando le estremità di entrambi gli elettrodi a malapena a toccare il fondo del serbatoio dell'olio (Figura 1b) e quindi spostarli orizzontalmente per portare le goccioline in contatto.
   Nota: Il doppio strato lipidico spontaneamente sarà sottile escludendo l'olio in eccesso tra il contatto con goccioline. In genere, questo processo si verifica entro 1 min.

14. elettrici caratterizzazione del Memristor biomolecolari

1. Formazione di Bilayer del lipido
   1. Per registrare la formazione di bilayer del lipido, che corrisponde a un aumento della capacitanza elettrica tra gocce, applicare un 10 Hz, tensione di forma d'onda triangolare mV 10 utilizzando un generatore di funzione (Figura 4) collegato all'ingresso esterno del morsetto patch amplificatore.
      Nota: A causa della natura capacitiva della membrana del lipido, la risposta corrente risultante dovrebbe essere una forma d'onda quadra (Figura 4). Durante la formazione di bilayer del lipido, passo 11.6, il ricercatore dovrebbe vedere una crescita dell'ampiezza di corrente di picco-picco e anche osservare un cambiamento visivo tra gocce collegati (Figura 4).
2. Misure di corrente-tensione
   Nota: Il memristor biomolecolari è modellato come un resistore e un condensatore in parallelo^12,21. Di conseguenza, la risposta corrente del dispositivo può contenere componenti sia resistive e capacitive a seconda della frequenza della tensione applicata. Per studiare la natura memristive del dispositivo e per ottenere il rapporto di corrente-tensione con isteresi pizzicato¹², può essere necessario sottrarre corrente capacitiva dalla corrente totale. Il protocollo qui sotto descrive questa procedura.
   1. Utilizzando un generatore di funzione, applicare una forma d'onda di tensione (triangolare o sinusoidale) ad una membrana lipidica privo di alameticina assemblata con le goccioline di soluzione "A".
   2. Registrare la risposta corrente indotta attraverso frequenze multiple.
      Nota: Correnti Capacitive sono ridotti al minimo a frequenze inferiori a 10 mHz.
   3. Registrare le dimensioni del bilayer del lipido interfacciale misurando il diametro della membrana lipidica sul computer, o registrando l'ampiezza di picco-picco corrente risultante da 10 Hz, onda triangolare di 10 mV. L'ampiezza corrente è proporzionale alla capacità di membrana, che a sua volta è proporzionale all'area della membrana.
   4. Rimuovere le goccioline che non contengono nessun alameticina.
   5. Aggiungere nuove goccioline acquose utilizzando la soluzione "C" e formare un doppio strato lipidico.
   6. Utilizzare i micromanipolatori per regolare contatto tra goccioline in modo che il bilayer ha un'area simile (diametro o onda quadra di ampiezza corrente) come quella formata all'inizio.
   7. Ripetere i passaggi 14.2.1 e 14.2.2.
   8. Sottrarre corrente registrato nel passaggio 14.2.2 da corrente registrato nel passaggio 14.2.7.
   9. Tracciare la corrente indotta contro tensione applicata per ogni frequenza e forma d'onda per ottenere la risposta di memristive "pizzicato isteresi".
3. Esperimenti di impulso
   1. Utilizzando un software di programmazione personalizzato e fonte di tensione analogica, generare impulsi di tensione con specifiche ampiezze di alte e basse, il tempo e fuori tempo.
      Nota: Questo non è necessario se gli impulsi di tensione potrebbero essere generati utilizzando un generatore di funzione commerciale.
   2. Registrare la corrente in risposta agli impulsi applicati.
   3. A causa della natura capacitiva del memristor, saranno registrati picchi capacitivi. Rimuovere punte applicando un filtro passa-basso con adeguata banda passante.

Risultati

Figura 1 Visualizza la configurazione sperimentale utilizzata per assemblare e caratterizzare il memristor biomolecolari. Abbassare le estremità libere degli elettrodi alla parte inferiore del serbatoio dell'olio, come mostrato in Figura 1b, è stato trovato utile per minimizzare le vibrazioni degli elettrodi e le goccioline che possono provocare variazioni nella zona misurata corrente e doppio strato, specialmente nei casi in dove l'olio da riscaldamento può ...

Discussione

Questa carta presenta un protocollo per l'assemblaggio e caratterizzazione biomolecolare memristors basato su ione drogato con canale sintetico biomembrane formata tra due gocce d'acqua in olio. Il dispositivo materia soffice, due terminali è stato progettato e studiato per: 1) superare i vincoli che sono associati con tecnologia a stato solido, come rumore elevato, elevato consumo di energia e alta commutazione tensioni, imitare 2) più molto attentamente la composizione, struttura commutazione meccanismi biologiche si...

Materiali

Name	Company	Catalog Number	Comments
1,2-diphytanoy-sn-glycero-3-phosphocholine (DPhPC)	Avanti Polar Lipids	850356P/850356C	Purchased as lyophilized powder (P) or in chloroform (C)
Agarose	Sigma-Aldrich	A9539
Agarose (0.5g Agarose Tablets)	Benchmark	A2501	You can either use the powder form or the tablets
Alamethicin	AG Scientific	A-1286
Analytical balance	Mettler Toledo	ME204TE/00
Axopatch 200B Amplifier	Molecular Devices	-
BK Precision 4017B 10 MHz DDs Sweep/Function Generator	Digi-Key	BK4017B-ND
Borosilicate Glass Capillaries	World Precision Instruments	1B100F-4
Brain Total Lipid Extracts (Porcine)	Avanti Polar Lipids	131101
DigiData 1440A system	Molecular Devices	-
Extruder Set With Holder/Heating Block	Avanti Polar Lipids	610000	This includes a mini-extruder, 2 syringes, 100 PC membranes, 100 filter supports, and 1 holder/heating block
Freezer (-20 °C)	VWR International	SCUCBI0420AD
Glassware	VWR International	-
Hexadecane, 99%	Sigma-Aldrich	544-76-3
Isopropyl Alcohol	VWR International	BDH1133-4LP
Microelectrode Holder	World Precision Instruments	MEH1S
MOPS	Sigma-Aldrich	M1254
Nitrogen (N2) Gas	Airgas	UN1066
Parafilm M All-Purpose Laboratory Film	Parafilm	PM999
Powder Free Soft Nitrile Examination Gloves	VWR International	CA89-38-272
Precleaned Microscope Sildes	Fisher Scientific	22-267-013
Refrigirator (4 °C)	VWR International	SCUCFS-0504G
Silver wire	GoodFellow	147-346-94	Different diameters could be used depending on the application
Sodium Chloride (KCl)	Sigma-Aldrich	P3911
Stirring Hot Plate	Thermo Scientific	SP131325
VWR Light-Duty Tissue Wipers	VWR International	82003-820
VWR Scientific 50D Ultrasonic Cleaner	VWR International	13089