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In questo articolo

  • Riepilogo
  • Abstract
  • Introduzione
  • Protocollo
  • Risultati
  • Discussione
  • Divulgazioni
  • Riconoscimenti
  • Materiali
  • Riferimenti
  • Ristampe e Autorizzazioni

Riepilogo

Le risposte pupillary (riflesso di luce) sono state misurate per la valutazione dell'induzione di sequestro adeguata terapia elettroconvulsiva utilizzando un pupillometer a raggi infrarossi automatico subito dopo stimolazione elettrica. Rapporto di riduzione era calcolato e confrontato con qualità di sequestro.

Abstract

Terapia di electroconvulsive (ECT) è segnalata per essere efficace per gravi disturbi neuropsichiatrici. In ECT, stimolazione elettrica viene applicata al cervello, indurre l'attività di sequestro. Induzione di sequestro adeguata con ECT è associato con durata di sequestro, forme d'onda simmetrica alta ampiezza durante attività di onde lente, postictal soppressione e attivazione del sistema nervoso simpatico. Attivazione del sistema nervoso simpatico è influenzata da agenti anestetici o farmaci cardiovascolari durante il ECT. Le risposte pupillary possono riflettere attività nervosa simpatica o il grado di danno cerebrale. Misura di risposta pupillare può essere condotta in modo semplice, preciso e modo obiettivo utilizzando un pupillometer a raggi infrarossi automatizzata, consentendo la misurazione del diametro pupillare (mm) con due decimali. La luce bianca utilizzata per misurare i riflessi di luce non è troppo luminosa, e i pazienti in genere non segnalare disagio. Riflessi di luce pupillary sono stati misurati prima di induzione di anestesia e subito dopo stimolazione elettrica usando quest'apparecchiatura. Diametro della pupilla è tipicamente allargata dopo danno cerebrale o attivazione nervosa simpatica. Induzione di sequestro adeguata utilizzando ECT potrebbe indurre stimolazione elettrica subito dopo l'allargamento pupillary. Nel metodo corrente, il rapporto di riduzione delle dimensioni della pupilla era calcolato automaticamente e rispetto con qualità di sequestro. Le risposte pupillary immediatamente dopo stimolazione elettrica possono fornire un'utile valutazione dell'efficacia di induzione di sequestro con ECT.

Introduzione

Terapia di electroconvulsive (ECT) è considerata un efficace trattamento per gravi disturbi neuropsichiatrici, tra cui psicosi refrattarie, disturbo bipolare e depressione1. In ECT, una corrente elettrica viene applicata al cervello per indurre un grippaggio sotto anestesia generale2. Sebbene i meccanismi che sottendono ECT rimangono poco chiari, suoi effetti antidepressivi sono stati attribuiti ai cambiamenti indotti sul sequestro nei livelli del neurotrasmettitore, neuroplasticità migliorata, una maggiore connettività funzionale e un aumento nel plasmatico produzione di fattore neurotrophic cervello-derivato di3. Inoltre è stato segnalato che ECT facilita la neurotrasmissione glutamatergica dopamina4, norepinefrina e serotonina. Questi risultati suggeriscono che ECT potrebbe causare l'attivazione del sistema nervoso simpatico. Precedenti studi hanno valutato l'induzione adeguata sequestro da ECT usando durata del sequestro, sequestro simmetrica ampiezza, soppressione postictal e attivazione del sistema nervoso simpatico4,5. Tra questi fattori, una maggiore attivazione del sistema nervoso simpatico non può essere misurata mediante l'elettroencefalografia. Rilevamento dell'attivazione del sistema nervoso simpatico dipende dall'aumento della pressione sanguigna (BP) e frequenza cardiaca (HR). Tuttavia, questi parametri emodinamici non riflettono sempre simpatiche risposte a causa della somministrazione dei farmaci dell'ipotensivo per impedire eventi cardiaci durante ECT e agenti anestetici, che interessano la funzione nervosa simpatica.

Le risposte pupillary possono riflettere il grado di danno cerebrale6. Quindi, mydriasis pupillary è indicato per gravi danni cerebrali6. Artificiale convulsioni indotte da stimolazione elettrica costituiscono uno stato anomalo dell'attività cerebrale. Quindi, valutando la risposta pupillare immediatamente dopo ECT può essere utile per valutare l'efficacia di ECT perché ECT possono anche influenzare le risposte pupillary7. Tuttavia, misurare le risposte pupillary in situazioni cliniche occupati, come nel caso attuale, è spesso difficile. Per risolvere questo problema, un metodo di misurazione usando un pupillometer quantitativa a infrarossi potrebbe contribuire a misurare le risposte pupillary facilmente, con precisione, obiettivamente e riproducibile. Metodi di valutazione quantitativa pupillary sono superiori a quelli ottenuti manualmente al capezzale, anche da infermieri e medici8. Il metodo proposto per misurare la reattività pupillary utilizzando un pupillometer automatico a infrarossi potrebbe essere utile per la rilevazione del grado di sequestro o attivazione nervosa simpatica. In uno studio precedente, abbiamo riferito che il riflesso pupillare alla luce è stato collegato all'efficacia del sequestro di ECT9. In particolare, abbiamo trovato che quel diametro pupillare non è stata cambiata dopo stimolazione luminosa, rimanendo allargata quando sequestro adeguata è stata indotta. Così, lo scopo del metodo proposto è di misurare il riflesso di luce utilizzando un pupillometer a raggi infrarossi automatico subito dopo stimolazione elettrica. Il metodo proposto è facile da eseguire, consentendo qualsiasi medico, non solo psichiatri valutare l'efficacia dell'induzione di sequestro utilizzando ECT.

Protocollo

Il protocollo di studio è stato approvato dal comitato etico di ricerca clinica istituzionale dell'Università di Kyushu, Fukuoka, Giappone (IRB: ricerca clinica numero #28-77). Anche se la misurazione della reazione pupillare è una procedura clinica essenziale e standard durante l'anestesia, il consenso informato è stato ottenuto per questa ricerca. I pazienti con cataratta, glaucoma, lenti intraoculari o mellito di diabete insulina - dipendente sono esclusi perché loro le risposte pupillary possono essere anormale.

1. preparazione per la terapia di Electroconvulsive

  1. Pulire il fronte destra e sinistra e la zona dietro le orecchie con un batuffolo di cotone di alcool e quindi collegare monitor dell'elettroencefalogramma (EEG) in quattro punti simmetrici.
  2. Pulire templi bilaterale con soluzione salina e quindi fissare pad adesivo stimolazione elettrica (circa 4 x 5 cm) ai templi bilaterali per evitare interferenze nella stimolazione a causa dei capelli. L'intensità di stimolazione viene modificato ogni volta, secondo il precedente grado di convulsione inserito.
  3. Collegare monitor l'elettrocardiogramma (ECG) in due punti sul petto (base dell'apice del cuore e cardiaco) e monitor frequenza cardiaca.
  4. Preparare un laccio emostatico e cintura alla coscia sinistra.
    Nota: Il laccio emostatico è Cinturato fino a 200 mmHg dopo che il paziente è addormentato. Convulsioni indotte da ECT possono essere osservato nella parte inferiore della gamba anche dopo somministrazione sistemica di rilassante muscolare.
  5. Collegare due sensori di elettromiografia per il muscolo tibia anteriore di sinistro, con una distanza di 5 cm, su misura generalizzata volta sequestro nella parte inferiore della gamba.

2. preparazione per l'anestesia

Nota: Tutti i pazienti hanno subito ECT nella stessa stanza, allo stesso tempo del giorno.

  1. Dopo la fronte è pulita con un tampone di cotone di alcol, è possibile collegare un dispositivo di misurazione di bispectral index (BIS) a fronte del paziente. BIS viene utilizzato per monitorare la profondità dell'anestesia.
  2. Non-invasivo misurare pressione al braccio ogni 1 min durante la terapia ECT.
  3. Monitorare costantemente la saturazione di ossigeno e pulsazioni di una clip collegata al dito.
  4. Tenere un pupillometer (Vedi la Tabella materiali) su uno degli occhi del paziente. Dopo che il paziente apre i loro occhi, premere un pulsante (Figura 1A) il pupillometer, e la misurazione inizia automaticamente. Massimo (iniziale) riposo dimensioni della pupilla (MAX) e dimensioni della pupilla minimo dopo stimolazione luminosa (MIN) vengono misurate automaticamente e il rapporto di dimensioni di costrizione pupilla (costrizione % = [MAX – MIN] / MAX espressa in percentuale) viene calcolato automaticamente.
    Nota: La durata dell'emissione luminosa è 800 ms, e i dati richiesti possono essere ottenuti entro 1 secondo. Se il paziente è in grado di tenere gli occhi aperti, l'esaminatore assiste tenendo aperta la palpebra. Sebbene anestesisti in genere misurano il diametro pupillare o riflesso di luce dei pazienti prima dell'intervento in sala operatoria, cooperazione con i pazienti è necessaria prima di induzione di anestesia.

3. anestesia

  1. Fornitura di ossigeno (6 L/min) tramite una maschera.
  2. Somministrare propofol (sedativo: 3 µ g/mL, infusione controllata mirata) tramite linea endovenosa fino a perdita di coscienza.
  3. Stringere il laccio emostatico con Cinturato alla coscia a 200 mmHg.
  4. Amministrare la succinilcolina (rilassante muscolare: 1 mg/kg) tramite la linea endovenosa.
  5. Dopo pazienti che respirano spontaneamente cessa, avere l'anestesista eseguire ventilazione controllata usando una maschera con ossigeno al 100% senza intubazione. Eseguire ventilazione dal punto in cui anidride carbonica fine-di marea è 30 mmHg fino a stimolazione elettrica10.
  6. Dopo il valore BIS comincia ad aumentare, l'anestesista smette di ventilazione e psichiatri avviare la procedura di ECT.

4. terapia di Electroconvulsive procedura

  1. Condurre ECT tramite stimolazione elettrodo bitemporal utilizzando uno strumento di ECT. Impostare la dose iniziale stimolo elettrico (%) a metà del valore di età di ogni individuo.
    Nota: Dose massima stimolo è 100%. Il tempo di stimolazione elettrica è circa 7-8 s.
  2. Subito dopo stimolazione elettrica, tenere thr automatizzato a infrarossi pupillometer sopra uno degli occhi del paziente. In questo momento, se il paziente chiude gli occhi, tenere aperto della palpebra del paziente. Premere il pulsante del dispositivo, come descritto al punto 2.4 e misurare la massima dimensione della pupilla riposo (iniziale) (MAX) o dimensione minima pupilla dopo stimolazione (MIN).
  3. Eseguire la ventilazione controllata usando una maschera con ossigeno al 100%, fino a quando il paziente comincia a respirare spontaneamente.
  4. Misurare con EEG ictal regolarità, sequestro tempo e maggior soppressione postictal (dallo psichiatra [Figura 2, Figura 3]).

Risultati

Dispositivi portatili pupillometer sono prodotti da diverse aziende. Questi dispositivi in genere siano convenientemente dimensionati e possono essere azionati con una sola mano (Figura 1A), consentendo agli esaminatori di rilevare con precisione le risposte pupillary premendo un pulsante. Luce infrarossa viene utilizzato per rilevare il pupillary bordo automaticamente (Figura 1B), con precisione rappresentano i dati pupillari (...

Discussione

Dispositivi automatizzati pupillometer a raggi infrarossi sono stati utilizzati per misurare le reazioni pupillary in situazione clinica12. Tuttavia, a nostra conoscenza, nessuno studio precedente ha usato questa apparecchiatura per la rilevazione dell'efficacia di induzione di sequestro da ECT. Dimensioni diametro della pupilla di riposo differisce tra i pazienti, ma rapporto di costrizione fornisce una misura oggettiva. Così, abbiamo scelto il cambiamento del rapporto di costrizione, non il cam...

Divulgazioni

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Riconoscimenti

nessuno

Materiali

NameCompanyCatalog NumberComments
Npi-100/automated infrared pupillometer NeurOptics
Thymatron IV systemSomatics Inc.
Thymapads™Somatics Inc.EPAD-C
BIS Quatro sensormedtronic
Non invasive blood pressure cuffNihon KodenYP-713T
VBM tourniquet9000Medizintechnik GmbH
EEGSomatics Inc.ECEF-4
ECGSomatics Inc.ELDSC-9
EMG monitoring leadSomatics Inc.ELDS-BR
Finger probeNihon KodenTL-201T
Npi-200/automated infrared pupillometer NeurOptics

Riferimenti

  1. Saito, S. Anesthesia management for electroconvulsive therapy: hemodynamic and respiratory management. Journal of Anesthesia. 19 (2), 142-149 (2005).
  2. Ward, H. B., Szabo, S. T., Rakesh, G. Maintenance ECT in schizophrenia: A systematic review. Psychiatry Research. 264, 131-142 (2018).
  3. Milev, R. V., et al. Canadian Network for Mood and Anxiety Treatments (CANMAT) 2016 Clinical Guidelines for the Management of Adults with Major Depressive Disorder: Section 4. Neurostimulation Treatments. Canadian Journal of Psychiatry. 61 (9), 561-575 (2016).
  4. Vutskits, L. General Anesthetics to Treat Major Depressive Disorder: Clinical Relevance and Underlying Mechanisms. Anesthesia & Analgesia. 126 (1), 208-216 (2018).
  5. Nishikawa, K., Yamakage, M. Effects of the concurrent use of a reduced dose of propofol with divided supplemental remifentanil and moderate hyperventilation on duration and morphology of electroconvulsive therapy-induced electroencephalographic seizure activity: A randomized controlled trial. Journal of Clinical Anesthesia. 37, 63-68 (2017).
  6. Ritter, A. M., et al. Brain stem blood flow, pupillary response, and outcome in patients with severe head injuries. Neurosurgery. 44 (5), 941-948 (1999).
  7. Kobayashi, K., et al. Rapid and lasting enhancement of dopaminergic modulation at the hippocampal mossy fiber synapse by electroconvulsive treatment. Journal of Neurophysiology. 117 (1), 284-289 (2017).
  8. Meeker, M., et al. Pupil examination: validity and clinical utility of an automated pupillometer. Journal of Neuroscience Nursing. 37 (1), 34-40 (2005).
  9. Shirozu, K., et al. The relationship between seizure in electroconvulsive therapy and pupillary response using an automated pupilometer. Journal of Anesthesia. , (2018).
  10. Sawayama, E., et al. Moderate hyperventilation prolongs electroencephalogram seizure duration of the first electroconvulsive therapy. JOURNAL OF ECT. 24 (3), 195-198 (2008).
  11. Rollins, M. D., Feiner, J. R., Lee, J. M., Shah, S., Larson, M. Pupillary effects of high-dose opioid quantified with infrared pupillometry. Anesthesiology. 121 (5), 1037-1044 (2014).
  12. McNett, M., Moran, C., Janki, C., Gianakis, A. Correlations Between Hourly Pupillometer Readings and Intracranial Pressure Values. Journal of Neuroscience Nursing. 49 (4), 229-234 (2017).
  13. Shirozu, K., et al. The effects of anesthetic agents on pupillary function during general anesthesia using the automated infrared quantitative pupillometer. Journal of Clinical Monitoring and Computing. 31 (2), 291-296 (2017).

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