Questo protocollo è stato approvato dalla cura degli animali e utilizzo Comitato Istituzionale (IACUC) presso l&#39;Università della Florida ed è conforme con il &quot;Principio di prodotti per animali da laboratorio&quot; (NIH pubblicazione n ° 86-23, riveduta 1985). 1. Materiale <ol><li> Animali: maschio topi C57BL / 6 (Laboratori di Harlan, Indianapolis, IN, USA) pesa 20-26 grammi al momento della chirurgia. </li><li> Anestesia: <ol><li> Anestesia macchina: sistema di inalazione VetEquip anestesia (VetEquip Inc., Pleasanton, CA, USA). </li><li> Inalazione anestetico: isoflurano (Farmaceutica Baxter, Deerfield, IL). </li></ol></li><li> Strumenti chirurgici: SuperCut forbici Iris, diritto (Strumenti di precisione del Mondo, Inc., Sarasota, FL, USA); Vännäs micro-forbici, diritto (Strumenti di precisione del Mondo, Inc., Sarasota, FL, USA); Dumont pinze (punta fine, 45 ° punte piegate, strumenti di precisione del Mondo, Inc., Sarasota, FL, USA), unità di coagulazione bipolare (Essiccatore ad alta frequenza 900, Strumenti di precisione del Mondo, Inc., Sarasota, FL, USA), clip nave micro (Strumenti di precisione mondiale, Inc., Sarasota, FL, USA) </li><li> Attrezzature chirurgiche: punte sterili di cotone; Panni, spugne garza; sutura (7-0 sutura Seta, Ethicon, Inc., Somerville, NJ, USA); adesivo tissutale (Vetbond, 3M Company, St. Paul, MN, USA); scrub chirurgico : Bethadine, 70% di etanolo, e sterile, soluzione fisiologica allo 0,9%; unguento oculare (Unguento Vet Puralube, Pharmaderm, Melville, NY, USA). </li><li> Occlusione sutura preparazione MCAO: <ol><li> Filamento per la MCA occlusione: 7-0 chirurgica sutura monofilo di nylon (Ethicon, Inc., Somerville, NJ, USA). </li><li> Fonte di calore per ottundimento punta sutura (Unità Cauterio termica, World Precision Instruments, Inc., Sarasota, FL). </li><li> Gomma siliconica liquida (silicone RTV adesivo, World Precision Instruments, Inc., Sarasota, FL, USA). </li></ol></li><li> Chirurgico / dissezione microscopio (Microscopio stereo Leica MZ6). <ol><li> Illuminatore in fibra ottica (Fiber Optic illuminatore FO1-150, TechniQuip Corp., Livermore, CA, USA). </li></ol></li><li> Flussimetria laser Doppler (PeriFlux System 5000, Perimed, Stoccolma, Svezia). <ol><li> Flessibile microtip (MT Microtip B500-0 Etero, Perimed, Stoccolma, Svezia) </li></ol></li><li> Temperatura di parametri: <ol><li> Rettale temperature monitor (BAT-12, strumenti di precisione del Mondo, Inc., Sarasota, FL). </li><li> Coperta termica (T / POMPA, TP600, Gaymar, NY, USA). </li></ol></li><li> Colorazione e la misurazione quantitativa di infarto del volume: <ol><li> Soluzione al 2% 2,3,5-trifeniltetrazolio cloruro (2% TTC, Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA). </li><li> I topi cervello matrice affettatrice (Zivic Miller-Lab. Inc., Allison Park, PA, USA). </li><li> Fotocamera digitale (V1253, Kodak Co., Rochester, NY, USA). </li><li> Immagine J software (ImageJ 1.42q software, US National Institutes of Health, Bethesda, MA, USA). </li></ol></li></ol> 2. Pre-chirurgica passi <ol><li> Prima dell&#39;intervento, i topi sono alloggiati sotto una 12:12 ciclo luce / buio con libero accesso all&#39;acqua e roditori chow. </li><li> Punti di sutura per MCAO sono preparati da ottundimento 1-2mm della punta sutura con il calore e rivestimento 3-4mm dell&#39;albero sutura dalla sua punta in gomma silicone liquido, che permette ad asciugare (7-0, diametro punta, 0,20, 0,25 millimetri, rivestimento lunghezza, 3-4mm, lunghezza sutura 11-13mm). Sterilità devono essere conservati in tutte le fasi di cui sopra. </li><li> Dopo aver soppesato il mouse, l&#39;anestesia viene indotta con il 4% isoflurano in una camera di induzione e mantenuta durante la procedura con 1,5-2% isoflurano nel 30% O 2 e 70% N 2 O miscela di gas tramite una maschera facciale. </li><li> Il mouse è posto in posizione prona su un tampone di garza disteso su una superficie a temperatura controllata operativa (coperta termica), la pelliccia testa rasata. </li><li> Pomata oftalmica lubrificante viene applicato in entrambi gli occhi, e le palpebre sono chiuse per prevenire l&#39;essiccamento occhio durante il processo chirurgico. </li><li> Una linea mediana incisione (1 cm) è effettuata sulla cute sovrastante la calotta cranica dalla linea nucale superiore al nasion e la pelle è tirata lateralmente di apporre un microtip flessibile (MT B500-0 Microtip Etero, diametro 0,5 mm). Il microtip è posto perpendicolarmente alla superficie del cranio parietale destra (1 mm posteriormente e 5 mm lateralmente al bregma) per monitorare il flusso di sangue nel territorio MCA flussimetria laser Doppler. </li><li> Assicurarsi che il microtip flessibile è collegato al cranio saldamente prima che l&#39;animale è rivolto a una posizione supina. Collo dell&#39;animale è posto su un tappetino morbido e il suo naso è tenuto a cono dei sistemi per anestesia. Questo sarà il risultato di avere spazio sufficiente per il microtip flessibile. </li><li> Una sonda di temperatura rettale è inserito per mantenere costante la temperatura interna degli animali di 37 ± 0,5 ° C. </li><li> Entrambe le zampe anteriori e hindpaws sono nastrate per la superficie di piattaforma operativa, e la coda è registrato al tubo rettale. </li> &lt;/ Ol&gt; 3. MCA occlusione chirurgia: <ol><li> Sotto il microscopio operatorio, una incisione del collo linea mediana è fatto con le forbici tra il manubrio e la mascella sollevando delicatamente la pelle flaccida. </li><li> La coppia ghiandole sottomandibolari sono alla base senza mezzi termini divisi, con la ghiandola sinistra lasciato in situ. La ghiandola sottomandibolare destra è ritratto cranialmente e fissato con il muscolo sternocleidomastoideo. </li><li> La divisione esposto del muscolo omo-ioideo che copre la guaina carotidea è accuratamente diviso con pickup. </li><li> Il diritto arteria carotide comune (CCA) è accuratamente separati e isolati dal nervo vago e la sua guaina (situato lateralmente al CCA). </li><li> D&#39;ora in poi, i 2 metodi chirurgici che sono stati utilizzati di frequente per eseguire MCA occlusione divergono: </li></ol> Koizumi 4 Metodo <ol class="lroman" type="i"><li> Tre punti di sutura collare sciolti (7-0 seta) sono disposte intorno alla destra CCA. </li><li> L&#39;arteria carotide esterna (ECA) è identificato, isolato e cauterizzato (2-3mm distale di biforcazione). Essa può essere successivamente suddiviso con micro-forbici. Per evitare involontari danni periferici nel sito cauterizzazione, la potenza dovrebbe essere impostato a 1 con la manopola di alimentazione. Ciò è coerente per tutti i cauterizzazioni. </li><li> Tensione sufficiente è applicata al collare di sutura più prossimale del CCA per occludere il flusso di sangue (legatura permanente). L&#39;occlusione del flusso sia verificata da un calo ~ 50% dei valori basali perfusione corticale. </li><li> Poi una clip nave si trova appena prima della biforcazione CCA per evitare il flusso retrogrado al momento della arteriotomia. </li><li> Un arteriotomia viene eseguita tra la sutura prossimale legati e la clip sulla nave CCA con micro-forbici (più vicino alla legatura). </li><li> Il calore smussato e siliconato 7-0 sutura in nylon viene introdotto attraverso il arteriotomia e avanzate fino a raggiungere la clip nave. I 2 punti di sutura rimanenti collare sciolti sono delicatamente serrate intorno al CCA tra il arteriotomia e il clip nave per evitare perdite di nuovo il flusso attraverso CCA, con attenzione a non traumatizzare la parete arteriosa, poi la clip nave è ritirata. </li></ol> Longa di 3 Metodo <ol class="lalpha" type="a"><li> L&#39;ECA è identificato, si disgregano per quanto possibile (nei pressi della sua biforcazione nelle arterie linguale e mascellare), cauterizzato (con potenza impostata a 1), e diviso con micro-forbici. </li><li> Due punti di sutura collare sciolti (7-0 seta) sono disposte intorno alla ICA prossimale appena sopra la biforcazione CCA. </li><li> Il CCA è temporaneamente chiuso con una clip nave. L&#39;occlusione del flusso sia verificata da un calo ~ 50% dei valori basali perfusione corticale. </li><li> Poi l&#39;ICA è temporaneamente chiuso con una clip nave al di sopra dei due punti di sutura perdere collare per evitare il flusso retrogrado al momento della arteriotomia. </li><li> Un arteriotomia viene eseguita utilizzando micro-forbici nella vicina Corte dei conti riflette al moncone. </li><li> Il calore smussato e siliconato 7-0 sutura in nylon viene introdotto attraverso il arteriotomia in Corte dei conti e avanzate fino a raggiungere la clip nave applicata in ICA. I 2 punti di sutura collare sciolto in prossimale ICA sono delicatamente serrate intorno al prossimale ICA per evitare il flusso riflusso sanguigno attraverso ICA, con sufficiente attenzione a non traumatizzare la parete arteriosa, poi la clip nave è ritirata. </li></ol> Il resto della procedura è ampiamente convergenti: <ol><li> La sutura occlusione è avanzato lentamente attraverso l&#39;arteria carotide interna (ICA) verso la base cranica fino alla resistenza mite si fa sentire. Una goccia concorrenti in termini di valore del flusso ematico cerebrale in percentuale (= 80%) rispetto al basale è confermato dalla flussimetria laser Doppler. I 2 punti di sutura collare sono stretti attorno al filamento inseriti. </li><li> Per esperimenti di ischemia cerebrale transitoria, la sutura occlusione viene ritirata delicatamente dopo 45 minuti. Questo punto di tempo può essere modificato per vari scopi sperimentali. </li><li> Dopo aver estratto il filo di sutura, il sito arteriotomia è chiuso per evitare di sanguinamento post-operatorio. Nel metodo di Koizumi, si tratta di serraggio in modo sicuro le suture collare intorno al CCA. Nella tecnica Longa, il sito arteriotomia alla base della ECA è cauterizzato, poi i punti di sutura al colletto prossimale ICA sono allentati e rimossi per ripristinare il flusso carotideo. </li><li> Per chiudere l&#39;incisione, la ghiandola sottomandibolare e SCM sono disposti sopra il campo operatorio. I bordi della ferita sono poi approssimato con l&#39;adesivo in tessuto cervicale e nelle aree del cuoio capelluto. In alternativa, una graffetta sutura assorbibile o metallo potrebbe essere usato per chiudere la ferita soprattutto quando sopravvivenza a lungo termine degli animali è destinato. </li><li> Dopo la chiusura incisione, l&#39;animale riceve 1 salina calda ml per via sottocutanea come riempimento del volume. Una dose di analgesici appropriati (cioè Buprenorfina a 0,05-0,1 mg / kg) deve essere utilizzato per minimizzare il dolore dell&#39;animale e il disagio durante il periodo di recupero. L&#39;animal è rimosso dalla sala operatoria e messo in una gabbia di recupero zona calda / per prevenire l&#39;ipotermia, con libero e facile accesso al cibo e di acqua dolce. </li></ol> 4. Post-Op valutazione neurologica Dopo che l&#39;animale riprenda coscienza totale, deficit neurologici possono essere valutati da una scala semplice (scala a cinque punti) come segue 3: <ol start="0"><li> nessun deficit osservabili </li><li> mancata estensione zampa controlaterale (lieve deficit neurologico focale) </li><li> girando in una direzione controlaterale per infarto (moderato deficit neurologici focali) </li><li> cadendo in una direzione controlaterale a infarto (grave deficit neurologici focali) </li><li> depressione del livello di coscienza senza movimento spontaneo </li></ol> 5. Colorazione e la misurazione quantitativa del volume cerebrale infarto <ol><li> Dopo 24 ore di riperfusione MCA, il topo sopravvissuto viene pesato, profondamente anestetizzati con il 4% isoflorane, e sacrificato secondo il protocollo approvato. </li><li> Il cervello è accuratamente rimosso e collocato in una affettatrice cervello di topo matrice, e il cervello intero coronale sezionati a intervalli di 2 mm. </li><li> Le sezioni sono immersi nel 2% TTC in tampone fosfato (PBS) a 37 ° C per 20 minuti. Dopo la colorazione TTC, zona infracted viene mostrato come (non colorate) tessuto bianco adiacente al rosso mattone (vitali) del tessuto (Figura 1). </li><li> Sezioni seriali vengono fotografati con una macchina fotografica digitale e la zona di infarto viene misurata con il programma J immagine. </li><li> L&#39;area di infarto (bianco, senza macchia), la zona dell&#39;emisfero ipsilaterale (bianco e rosso mattone, macchiato), e la zona dell&#39;emisfero controlaterale (rosso mattone, macchiato) sono misurati per ogni sezione. Il volume è calcolato sommando le aree di rappresentanza in tutte le sezioni e moltiplicando per lo spessore della fetta. Dopo aver corretto per l&#39;edema, il volume di infarto è calcolato come segue 9: Volume dell&#39;infarto corretta (CIV),% = [volume nell&#39;emisfero controlaterale - (volume emisfero ipsilaterale - volume dell&#39;infarto)] volume emisfero / controlaterale x 100 </li></ol> 6. Rappresentante Risultati Dopo l&#39;occlusione e riperfusione del MCA tramite sinistra CCA per stabilire transitoria ischemia cerebrale, gli animali sono sacrificati ed i loro cervelli sezionati coronale sono colorati con TTC per valutare il volume di infarto (Figura 1). <img src="files/ftp_upload/2879/2879fig1.jpg" alt="Figura 1" /> Figura 1. Sezioni di serie TTC-macchiato cervello coronale (2 mm) di topi sottoposti a MCA occlusione.

<ol>
	<li>. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recommendations+on+stroke+prevention,+diagnosis,+and+therapy.+Report+of+the+WHO+Task+Force+on+Stroke+and+other+Cerebrovascular+Disorders.">Recommendations on stroke prevention, diagnosis, and therapy. Report of the WHO Task Force on Stroke and other Cerebrovascular Disorders.</a> Stroke; a journal of cerebral circulation. 20, 1407-1431 (1989).</li><li>Lloyd-Jones, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heart+disease+and+stroke+statistics--2009+update:+a+report+from+the+American+Heart+Association+Statistics+Committee+and+Stroke+Statistics+Subcommittee.">Heart disease and stroke statistics--2009 update: a report from the American Heart Association Statistics Committee and Stroke Statistics Subcommittee.</a> Circulation. 119, e21-e181 (2009).</li><li>Longa, E. Z., Weinstein, P. R., Carlson, S., Cummins, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reversible+middle+cerebral+artery+occlusion+without+craniectomy+in+rats.">Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats.</a> Stroke; a journal of cerebral circulation. 20, 84-91 (1989).</li><li>Koizumi, J., Yoshida, Y., Nakazawa, T., Ooneda, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experimental+studies+of+ischemic+brain+edema.+I.+A+new+experimental+model+of+cerebral+embolism+in+rats+in+which+recirculation+can+be+introduced+in+the+ischemic+area.">Experimental studies of ischemic brain edema. I. A new experimental model of cerebral embolism in rats in which recirculation can be introduced in the ischemic area.</a> Jpn J Stroke. 8, 1-8 (1986).</li><li>Clark, W. M., Lessov, N. S., Dixon, M. P., Eckenstein, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Monofilament+intraluminal+middle+cerebral+artery+occlusion+in+the+mouse.">Monofilament intraluminal middle cerebral artery occlusion in the mouse.</a> Neurol Res. 19, 641-648 (1997).</li><li>Fujii, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Strain-related+differences+in+susceptibility+to+transient+forebrain+ischemia+in+SV-129+and+C57black/6+mice.+.">Strain-related differences in susceptibility to transient forebrain ischemia in SV-129 and C57black/6 mice. .</a> Stroke; a journal of cerebral circulation. 28, 1805-1810 (1997).</li><li>Bederson, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluation+of+2,3,5-triphenyltetrazolium+chloride+as+a+stain+for+detection+and+quantification+of+experimental+cerebral+infarction+in+rats.">Evaluation of 2,3,5-triphenyltetrazolium chloride as a stain for detection and quantification of experimental cerebral infarction in rats.</a> Stroke; a journal of cerebral circulation. 17, 1304-1308 (1986).</li><li>Qi, X., Hosoi, T., Okuma, Y., Kaneko, M., Nomura, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sodium+4-phenylbutyrate+protects+against+cerebral+ischemic+injury.">Sodium 4-phenylbutyrate protects against cerebral ischemic injury.</a> Mol Pharmacol. 66, 899-908 (2004).</li><li>Barone, F. C., Knudsen, D. J., Nelson, A. H., Feuerstein, G. Z., Willette, R. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+strain+differences+in+susceptibility+to+cerebral+ischemia+are+related+to+cerebral+vascular+anatomy.">Mouse strain differences in susceptibility to cerebral ischemia are related to cerebral vascular anatomy.</a> J Cereb Blood Flow Metab. 13, 683-692 (1993).</li><li>Tureyen, K., Vemuganti, R., Sailor, K. A., Dempsey, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ideal+suture+diameter+is+critical+for+consistent+middle+cerebral+artery+occlusion+in+mice.">Ideal suture diameter is critical for consistent middle cerebral artery occlusion in mice.</a> Neurosurgery. 56, 196-200 (2005).</li><li>Barber, P. A., Hoyte, L., Colbourne, F., Buchan, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Temperature-regulated+model+of+focal+ischemia+in+the+mouse:+a+study+with+histopathological+and+behavioral+outcomes.">Temperature-regulated model of focal ischemia in the mouse: a study with histopathological and behavioral outcomes.</a> Stroke; a journal of cerebral circulation. 35, 1720-1725 (2004).</li><li>Kapinya, K. J., Prass, K., Dirnagl, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isoflurane+induced+prolonged+protection+against+cerebral+ischemia+in+mice:+a+redox+sensitive+mechanism?.">Isoflurane induced prolonged protection against cerebral ischemia in mice: a redox sensitive mechanism?.</a> Neuroreport. 13, 1431-1435 (2002).</li></ol>

Gli autori dichiarano di non avere alcun conflitto di interessi.

Il modello MCAO è un modello stabilito che replica ischemia cerebrale in specie murina. Questo modello è stato utilizzato nel ratto e successivamente adattato alle topi. Evitare craniectomia per eliminare l&#39;influenza di manipolazione chirurgica sulla permeabilità della barriera emato-encefalica e della pressione intracranica è un vantaggio di questa tecnica. Tuttavia, molte variabili, come il ceppo differenze legate al 10, dimensioni della punta di sutura 11, durata dell&#39;occlusione <sup...

<table border="1"><tbody><tr><th> Nome del reagente </th><th> Tipo </th><th> Azienda </th><th> Numero di catalogo </th><th> Commenti (opzionale) </th></tr><tr><td> Maschio C57BL / 6 topi </td><td> Animale </td><td> Laboratori di Harlan, Indianapolis, IN, USA </td><td></td><td> 20-26 gr </td></tr><tr><td> Dissezione microscopio </td><td> Microscopio </td><td> Leica stereo microscopio MZ6 </td><td></td><td> 6.3:1 zoom </td></tr><tr><td> Illuminatore in fibra ottica </td><td> Illuminatore </td><td> TechniQuip Corp., Livermore, CA, USA </td><td></td><td> FO1-150 </td></tr><tr><td> Isoflurano </td><td> Anestesia </td><td> Farmaceutica Baxter, Deerfield, IL </td><td> 1001936060 </td><td></td></tr><tr><td> SuperCut Iris forbice, diritto </td><td> Strumento chirurgico </td><td> Mondo Precision Instruments, Inc., Sarasota, FL, USA </td><td> 14218 </td><td></td></tr><tr><td> Vännäs micro-forbice, diritto </td><td> Strumento chirurgico </td><td> Mondo Precision Instruments, Inc., Sarasota, FL, USA </td><td> 14003 </td><td></td></tr><tr><td> Pinze punta Dumont multa </td><td> Strumento chirurgico </td><td> Mondo Precision Instruments, Inc., Sarasota, FL, USA </td><td> 503290 </td><td></td></tr><tr><td> Clip nave </td><td> Strumento chirurgico </td><td> Mondo Precision Instruments, Inc., Sarasota, FL, USA </td><td> 14120 </td><td></td></tr><tr><td> Essiccatore ad alta frequenza 900 </td><td> Strumento chirurgico </td><td> Mondo Precision Instruments, Inc., Sarasota, FL, USA </td><td> 500397 </td><td></td></tr><tr><td> 7-0 sutura chirurgica nylon monofilamento </td><td> Sutura </td><td> Ethicon, Inc., Somerville, NJ, USA </td><td> 1647G </td><td> Sutura per l&#39;occlusione </td></tr><tr><td> 7-0 sutura chirurgica della Seta </td><td> Sutura </td><td> Ethicon, Inc., Somerville, NJ, USA </td><td> 7733G </td><td> Sutura di legatura </td></tr><tr><td> Silicone RTV adesivo </td><td> Gomma siliconica </td><td> Mondo Precision Instruments, Inc., Sarasota, FL, USA </td><td> 1571 </td><td></td></tr><tr><td> Vetbond </td><td> Tessuto adesivo </td><td> 3M Company, St. Paul, MN, USA </td><td> 70200746587 </td><td></td></tr><tr><td> Puralube Vet Unguento </td><td> Occhio unguento </td><td> Pharmaderm, Melville, NY, USA </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Buprenorfina hydrochlorode </td><td> Analgesici </td><td> Hospira Inc., Lake Forest, Illinois, USA </td><td> NDC 0409-2012-32 </td><td></td></tr><tr><td> Cauterio unità termica </td><td></td><td> Mondo Precision Instruments, Inc., Sarasota, FL, USA </td><td> 501292 </td><td></td></tr><tr><td> PeriFlux System 5000 </td><td> TCD flussimetria </td><td> Perimed, Stoccolma, Svezia </td><td></td><td></td></tr><tr><td> BAT-12 </td><td> Termometro rettale </td><td> Mondo Precision Instruments, Inc., Sarasota, FL, USA </td><td> BAT-12R </td><td></td></tr><tr><td> T / POMPA, TP600 </td><td> Coperta termica </td><td> Gaymar, NY, USA </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 2,3,5-trifeniltetrazolio cloruro </td><td> Reagente </td><td> Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA </td><td> T8877 </td><td></td></tr><tr><td> I topi cervello matrice affettatrice </td><td> Cervello affettatrice </td><td> Zivic Miller-Lab. Inc., Allison Park, PA, USA </td><td> BSMAS001-1 </td><td></td></tr></tbody></table>

intraluminal middle cerebral artery occlusion (mcao) model for ischemic stroke with laser doppler flowmetry guidance in mice

L&#39;ictus è la terza causa di morte e la principale causa di disabilità nel mondo, con un costo stimato di quasi 70 miliardi dollari negli Stati Uniti nel 2009 1,2. Il intraluminale occlusione dell&#39;arteria cerebrale media (MCAO) il modello è stato sviluppato da Koizumi 4 nel 1986 per simulare questa patologia di forte impatto umano nel ratto. Una modifica del metodo di MCAO è stato poi presentato dalla Longa 3. Entrambe le tecniche sono stati ampiamente utilizzati per identificare i meccanismi molecolari delle lesioni cerebrali da ictus ischemico e potenziali modalità terapeutiche 5. Questo metodo relativamente non invasivo nei ratti è stata estesa da utilizzare nei topi per sfruttare ceppi transgenici e knockout 6,7. Per modello di ischemia cerebrale focale, una sutura intraluminale è avanzato attraverso l&#39;arteria carotide interna per occludere la base del MCA. Ritraendo la sutura dopo un determinato periodo di tempo imita riperfusione spontanea, ma la sutura può essere mantenuto in permanenza. Questo video sarà dimostrare i due principali approcci per l&#39;esecuzione di intraluminale procedura MCAO nei topi in modo graduale, oltre a fornire spunti per potenziali svantaggi e le insidie. Il tessuto cerebrale ischemico sarà successivamente colorate con 2,3,5-trifeniltetrazolio cloruro (TTC) per valutare il grado di infarto cerebrale 8.

Watch this Scientific Journal Video about Intraluminal Middle Cerebral Artery Occlusion MCAO Model for Ischemic Stroke with Laser Doppler Flowmetry Guidance in Mice at JoVE.com

Intraluminal Middle Cerebral Artery Occlusion MCAO Model for Ischemic Stroke with Laser Doppler Flowmetry Guidance in Mice

Il intraluminale occlusione dell&#39;arteria cerebrale media (MCAO) modello è il modello più frequente tra i modelli sperimentali utilizzati ictus ischemico. Qui dimostrerà tutto il modello in dettaglio con la guida di flussimetria laser Doppler, ed i suoi risultati rappresentativi.

Intraluminali occlusione dell&#39;arteria cerebrale media (MCAO) Modello per l&#39;ictus ischemico con la guida flussimetria laser Doppler in topi

Stroke is the third leading cause of death and the leading cause of disability in the world, with an estimated cost of near $70 billion 
in the United ...

intraluminal-middle-cerebral-artery-occlusion-mcao-model-for-ischemic

Research

JoVE Journal

Medicine

Intraluminal Middle Cerebral Artery Occlusion (MCAO) Model for Ischemic Stroke with Laser Doppler Flowmetry Guidance in Mice

49.5K Views.  University of Florida. Il intraluminale occlusione dell'arteria cerebrale media (MCAO) modello è il modello più frequente tra i modelli sperimentali utilizzati ictus ischemico. Qui dimostrerà tutto il modello in dettaglio con la guida di flussimetria laser Doppler, ed i suoi risultati rappresentativi.