AR, XH e PE sono stati sostenuti da una sovvenzione NIH R01HL140398 e da una sovvenzione della Gilson Longenbaugh Foundation. DEMM e KK sono stati sostenuti dalle sovvenzioni NIH R01HL136333 e R01HL134880 (KYK), e da una sovvenzione della Helis Medical Research Foundation. Demm è anche supportato dalla Howard Hughes Medical Institute (HHMI) Gilliam Fellowship for Advanced Study. PE è anche supportato da Training in Precision Environmental Health Sciences NIEHS T32 ES027801 Fellowship Program. JC e MF sono supportati da Fondi di ricerca sul tabacco del Dipartimento di Epigenetica e Carcinogenesi Molecolare e dal Center for Epigenetics (Scholar Award to MF) di MD Anderson. FK e YZ sono supportati da sovvenzioni NIH R01 ES029442-01 e R01 AI135803-01 e dalla sovvenzione VA Merit CX000104. Questo progetto è stato sostenuto dal Nucleo di citometria e smistamento cellulare del Baylor College of Medicine con il finanziamento del CPRIT Core Facility Support Award (CPRIT-RP180672), del NIH (CA125123 e RR024574) e dell'assistenza di Joel M. Sederstrom.

Tutti gli animali coinvolti negli esperimenti e nello sviluppo di questa tecnica sono stati sotto il nostro protocollo sull'uso animale approvato dall'Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) e dalle istituzioni del Baylor College of Medicine e MD Anderson accreditate dall'Associazione per la valutazione e l'accreditamento della cura degli animali di laboratorio (AAALAC).
1. Costruzione dell'apparecchio
<ol><li>Assemblaggio del compressore d'aria con il sistema di valvole.
	<ol>
<li>Collegare i misuratori di portata (due 15 L/min con barra Y e 2 decolli di potenza) al regolatore di pressione in miniatura utilizzando un raccordo per capezzoli maschi filettato da 1/8 pollice. Assicurarsi di utilizzare il nastro di tenuta del filo in tutte le estremità filettate.</li>
		<li>Collegare il regolatore di pressione assemblato con il flussometro allo strumento del compressore d'aria medicale utilizzando quanto segue: un capezzolo esagonale da 1/8 pollice sulla presa d'aria del compressore, un raccordo di accoppiamento filettato da 1/8 pollice e un raccordo per capezzoli maschi filettato da 1/8 pollice che si collega al regolatore di pressione.</li>
		<li>Installare il connettore spinato girevole ad ossigeno su ogni (4) flussometro.</li>
		<li>Installare un adattatore maschile sulla presa d'aria superiore del compressore d'aria (parte inclusa con lo strumento del compressore d'aria medico).</li>
	</ol></li>
	<li>Assemblare le camere di esposizione (fare 4 unità)
	<ol>
<li>Tagliare un tubo di cloruro di polivinile clorurato da 3/4 pollici (CPVC) in otto segmenti da 4 pollici.</li>
		<li>Inserire ogni segmento in un raccordo CPVC a gomito da 3/4" da 90° e collegare il lato di raccordo del gomito a un adattatore maschio CPVC di 3/4 di diametro. Dovrebbero esserci otto segmenti CPVC, ognuno collegato a un raccordo a gomito CPVC e un adattatore maschio CPVC.</li>
		<li>Praticare due fori (1 1/4 di diametro) sui lati opposti più distanti l'uno dall'altro di un contenitore ermetico da 8,5 L (11,25 x 7,75 x 6 pollici) con coperchio (vedere figura 1 camera di esposizione). Il posizionamento dei fori deve essere centrato dall'alto verso il basso e da sinistra a destra.</li>
		<li>Inserire i lati filettati dell'adattatore maschio CPVC assemblato prima in ogni foro nei contenitori.</li>
		<li>Dall'interno del contenitore, attaccare un cappuccio CPVC da 3/4 pollici sull'altro lato (ingresso fumo camera) e un adattatore femmina di irrigazione CPVC Drip da 3/4 pollici su un lato (uscita fumo camera).</li>
		<li>Praticare cinque fori da 3 mm sulla parte superiore del cappuccio CPVC dell'uscita del fumo della camera in un motivo quincunx (soffione). Ciò consentirà al fumo di sigaretta di entrare nella camera con una velocità maggiore e assicura che si diffonda uniformemente all'interno della camera in tutte le direzioni.</li>
	</ol></li>
	<li>Assemblaggio camere di sigarette (costituisce fino a 4 unità di esposizione murina)
	<ol>
<li>Prendi un tappo in gomma a un foro (formato produttore 8.5) e inserisci un connettore Y spinato da 1/4 di pollice sul lato più largo e un raccordo spinato dritto (apertura di 8 mm) sul lato più stretto. La sigaretta verrà posta qui durante la procedura di fumo (piedistallo di sigaretta).</li>
		<li>Collegare un'estremità di un tubo in vinile di grado medico lungo 12 pollici a uno dei connettori spinati sul connettore Y collegato al tappo di gomma e l'altra estremità a un raccordo da 1/4 di pollice e inserire il lato opposto di questo raccordo su un tappo di gomma a foro unico (dimensione 1 del produttore).</li>
		<li>Su un altro tappo di gomma (dimensione del produttore 8.5), inserire un connettore di tubi dritti da 1/4 di pollice sul lato più largo del tappo e collegare l'estremità esterna del raccordo a un tubo in vinile di grado medico da 7 piedi.</li>
		<li>Collegare le due strutture del tappo in gomma assemblate prima nei passaggi da 1.3.1 a 1.3.3 a un cilindro di vetro da 8 pollici x 1,75 pollici da un tubo di scarico in vetro da laboratorio.</li>
	</ol></li>
	<li>Sistema di controllo valvole
	<ol>
<li>Il sistema è controllato da un'apertura ritmica e chiusura di valvole solenoidi che simulano l'inalazione (sbuffamento) di fumo di sigaretta e aria pulita. Il sistema che controlla le valvole solenoidi è stato progettato commercialmente (vedi Tabella dei materiali).</li>
	</ol></li>
	<li>Assemblaggio di tutti i componenti (vedere figura 1)
	<ol>
<li>Montare quattro valvole solenoidi ai lati del sistema di controllo della valvola utilizzando elementi di fissaggio da 1 pollice.</li>
		<li>Collegare le valvole solenoidi al sistema di controllo della valvola seguendo le istruzioni del produttore.</li>
		<li>Collegare un connettore dritto filettato 10-32 (M) alla connessione di scarico ("EXH") sulla valvola solenoide e un adattatore di porta filettato sulle connessioni "IN" e "OUT" della stessa valvola solenoide.</li>
		<li>Collegare il flussometro collegato al compressore alla valvola solenoide attraverso la connessione "OUT" utilizzando un tubo in vinile di grado medico da 7 piedi.</li>
		<li>Collegare il tubo in vinile da 7 piedi assemblato con il tappo di gomma nel passaggio 1.3.3. sul connettore "IN" sulla valvola solenoide.</li>
		<li>Inserire il piccolo tappo di gomma della camera di sigaretta sull'ingresso di fumo della camera.</li>
		<li>Collegare la valvola solenoide al secondo collegamento del connettore Y spinato sul piedistallo delle sigarette assemblato nel passaggio 1.3.1.</li>
	</ol></li>
</ol><img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61793/61793fig01.jpg"> Figura 1: Schema delle connessioni del nostro WBIS per l'esposizione a CS. Questa figura dimostra come tutti i componenti vengono assemblati per formare un apparato funzionante. La figura mostra solo una camera di fumo assemblata dei quattro che la macchina è in grado di funzionare. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61793/61793fig01large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
2. Esposizione al fumo di sigaretta
ATTENZIONE: Evitare l'esposizione di seconda e terza mano al fumo di sigaretta. Le camere di sigarette e di esposizione devono essere utilizzate all'interno di un armadio di sicurezza biologica a flusso laminare di classe II B2. I DPI appropriati devono essere indossati durante lo svolgimento degli esperimenti di esposizione al fumo (ad esempio, maschere, guanti, retine per capelli, abito).
<ol><li>
Impostazione della pressione e del flusso d'aria
	<ol>
<li>Una volta assemblati tutti i componenti, come mostrato nella figura 1, accendere il compressore d'aria e attendere che l'allarme di sicurezza si s spenta da solo.</li>
		<li>Regolare la pressione del compressore d'aria a 40-50 psi ruotando la manopola sul regolatore di pressione.</li>
		<li>Regolare il flusso d'aria dal compressore d'aria a 5 L utilizzando il flussometro.</li>
		<li>Accendere il regolatore della valvola.</li>
		<li>Regolare il timer digitale sul controller della valvola sulla modalità operativa PULSE-C (visualizzata nel display come "Pu-c") premendo il tasto SET/LOCK tenendo premuto il tasto UP alla prima cifra del timer. Quindi, premere il tasto UP fino a raggiungere la modalità Pu-c. Premere IL TASTO RESET per impostare la modalità operativa visualizzata (ad esempio Pu-C) come modalità di lavoro.</li>
		<li>Premere IL SET/LOCK per cambiare timer 1 (visualizzato nel display come "T1").</li>
		<li>Premere i tasti SU o GIÙ per impostare T1 su 20 s.</li>
		<li>Premere IL SET/LOCK per cambiare timer 2 (visualizzato nel display come "T2").</li>
		<li>Premere i tasti SU o GIÙ per impostare T2 su 3 s. NOTA: I passaggi da 2.1.5 a 2.1.9 sono personalizzati per essere utilizzati con il timer specifico (vedi Tabella dei materiali). Per ulteriori istruzioni su altri usi per questo prodotto, vedere il relativo manuale d'uso.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Trattamento del fumo di sigaretta NOTA: Questo sistema consente l'uso di 1-4 camere di esposizione murina allo stesso tempo.<ol>
<li>Accendere il compressore d'aria e attendere che l'allarme di sicurezza si sfugni da solo.</li>
		<li>Accendere il regolatore della valvola.</li>
		<li>Trasferire 5 topi in ciascuna delle quattro camere di esposizione con coperchi rimovibili ermetici con un volume di 8,5 L. Posizionare le quattro camere di esposizione con topi all'interno di un armadio di sicurezza biologica a flusso laminare di classe II tipo B2.</li>
		<li>All'interno dell'armadio di sicurezza biologico laminare flow, accendere una sigaretta e inserire la sigaretta all'interno della camera di sigaretta. Utilizzare sigarette disponibili in commercio che contengono 15 mg/catrame cig e 1,1 mg/cig nicotina8 rispetto alle sigarette di ricerca Kentucky 3RF4 (9,5 mg/catrame cig e 0,73 mg/cig nicotina)9.</li>
		<li>Accendere le valvole sul controller della valvola che corrispondono alle camere attualmente in uso. L'esposizione è divisa in 2 fasi: (T1) l'aria pulita viene pompata nella camera di esposizione per 20 s e (T2) il flusso d'aria fa bruciare la sigaretta e il fumo dalla camera di sigaretta viene pompato nella camera di esposizione per 3 s. Lasciare bruciare completamente la sigaretta fino a raggiungere il filtro.<ol>
<li>Regola le impostazioni del timer per eseguire una media di ~ 10 sbuffi / sigaretta in un periodo di ~ 4 minuti. Si noti che il timer e il sistema sono facilmente personalizzabili per migliorare o abbassare il regime di dosamento CS in base alle esigenze di ricerca degli investigatori.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Rimuovere il filtro per sigarette e smaltirlo mettendo il mozzicone di sigaretta in un bicchiere con acqua per spegnere la fiamma e smorzare l'odore.</li>
		<li>Assicurarsi che la camera di sigaretta sia nuovamente chiusa e senza sigaretta. Lasciare pompare aria pulita alla macchina per 10 minuti. È della massima importanza mantenere un monitoraggio costante degli animali vertebrati esposti a CS. Questo regime di esposizione è ottimizzato per 5 topi femmine di età superiore a 9 settimane per camera di esposizione.</li>
		<li>Ripetere i passaggi da 2.3.4 a 2.3.7 tre volte per un totale di 4 sigarette per camera al giorno. Questa procedura viene ripetuta 5 giorni alla settimana per tutto il tempo di cui il ricercatore ha bisogno per i loro esperimenti.</li>
		<li>Rimuovere i topi dalle camere di esposizione nelle gabbie corrispondenti.</li>
		<li>Spegnere il regolatore della valvola e il compressore d'aria.</li>
		<li>Rimuovere l'esposizione e le camere di sigarette e lavare con acqua e sapone per rimuovere eventuali residui di catrame.</li>
		<li>Lasciare asciugare completamente le camere prima di usarle di nuovo.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol>
	<li>Current Cigarette Smoking Among Adults in the United States. Center for Disease Control and Prevention Available from: <a target="_blank" href="https://www.cdc.gov/tobacco/data_statistics/fact_sheets/adult_data/cig_smoking/index.htm">https://www.cdc.gov/tobacco/data_statistics/fact_sheets/adult_data/cig_smoking/index.htm</a> (2018)</li><li>Salvi, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tobacco+smoking+and+evironmental+risk+factors+for+chronic+obstructive+pulmonary+disease.">Tobacco smoking and evironmental risk factors for chronic obstructive pulmonary disease.</a> Clinics in Chest Medicine. 35, 17-27 (2014).</li><li>Sunyer, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Longitudinal+relation+between+smoking+and+white+blood+cells.">Longitudinal relation between smoking and white blood cells.</a> American Journal of Epidemiology. 144, 734-741 (1996).</li><li>Freedman, D. S., Flanders, D., Barboriak, J. J., Malarcher, A. M., Gates, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cigarette+smoking+and+leukocyte+subpopulations+in+men.">Cigarette smoking and leukocyte subpopulations in men.</a> Annals of Epidemiology. 6, 299-306 (1996).</li><li>Chronic Obstructive Pulmonary Disease (COPD). Center for Disease Control and Prevention Available from: <a target="_blank" href="https://www.cdc.gov/copd/basics-about.html">https://www.cdc.gov/copd/basics-about.html</a> (2019)</li><li>Genovese, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Clonal+hematopoiesis+and+blood-cancer+risk+inferred+from+blood+DNA+sequence.">Clonal hematopoiesis and blood-cancer risk inferred from blood DNA sequence.</a> New England Journal of Medicine. , (2014).</li><li>Steensma, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Clinical+implications+of+clonal+hematopoiesis.">Clinical implications of clonal hematopoiesis.</a> Mayo Clinic Proceedings. 93, 1122-1130 (2018).</li><li>Tobacco. Federal Trade Comission Available from: <a target="_blank" href="https://www.ftc.gov/tips-advice/business-center/selected-industries/tobacco">https://www.ftc.gov/tips-advice/business-center/selected-industries/tobacco</a> (2020)</li><li>3R4F Cigarettes. University of Kentucky - College of Agriculture Food and Environment Available from: <a target="_blank" href="https://ctrp.uky.edu/products/gallery/Reference">https://ctrp.uky.edu/products/gallery/Reference</a> (2020)</li><li>Shan, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cigarette+smoke+induction+of+osteopontin+(SPP1)+mediates+T+H+17+inflammation+in+human+and+experimental+emphysema.">Cigarette smoke induction of osteopontin (SPP1) mediates T H 17 inflammation in human and experimental emphysema.</a> Science Translational Medicine. 4, 1-10 (2012).</li><li>Yuan, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Activation+of+C3a+receptor+is+required+in+cigarette+smoke-mediated+emphysema.">Activation of C3a receptor is required in cigarette smoke-mediated emphysema.</a> Nature Mucosal Immunology. 8, 874-885 (2014).</li><li>Yuan, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cigarette+smoke+-+induced+reduction+of+C1q+promotes+emphysema.">Cigarette smoke - induced reduction of C1q promotes emphysema.</a> JCI Insight. 4, 1-17 (2019).</li><li>Shan, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Agonistic+induction+of+PPAR+g+reverses+cigarette+smoke+-+induced+emphysema+Find+the+latest+version:+Agonistic+induction+of+PPAR+&#947;+reverses+cigarette+smoke+-+induced+emphysema.">Agonistic induction of PPAR g reverses cigarette smoke - induced emphysema Find the latest version: Agonistic induction of PPAR &#947; reverses cigarette smoke - induced emphysema.</a> Journal of Clinical Investigation. 124, 1371-1381 (2014).</li><li>Hong, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protective+role+of+gd+T+cells+in+cigarette+smoke+and+influenza+infection.">Protective role of gd T cells in cigarette smoke and influenza infection.</a> Nature Mucosal Immunology. 11, 834-908 (2018).</li><li>Kim, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cigarette+smoke+induces+intestinal+inflammation+via+a+Th17+cell-neutrophil+axis.">Cigarette smoke induces intestinal inflammation via a Th17 cell-neutrophil axis.</a> Frontiers in Immunology. 10, 1-11 (2019).</li><li>Lu, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+microRNA+miR-22+inhibits+the+histone+deacetylase+HDAC4+to+promote+T+H+17+cell+-+dependent+emphysema.">The microRNA miR-22 inhibits the histone deacetylase HDAC4 to promote T H 17 cell - dependent emphysema.</a> Nature Immunology. 16, 1185-1194 (2015).</li><li>Hendrix, A. Y., Kheradmand, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Role of Matrix Metalloproteinases in Development, Repair, and Destruction of the Lungs. Progress in Molecular Biology and Translational Science. 148, (2017).</li><li>Siggins, R. W., Hossain, F., Rehman, T., Melvan, J. N., Welsh, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cigarette+smoke+alters+the+hematopoietic+stem+cell+niche.">Cigarette smoke alters the hematopoietic stem cell niche.</a> Med Sci. 2, 37-50 (2014).</li><li>Kheradmand, F., You, R., Gu, B. H., Corry, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cigarette+smoke+and+DNA+cleavage+promote+lung+inflammation+and+emphysema.">Cigarette smoke and DNA cleavage promote lung inflammation and emphysema.</a> Transactions of the American Clinical and Climatological Association. 128, 222-233 (2017).</li><li>Ha, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Menthol+attenuates+respiratory+irritation+and+elevates+blood+cotinine+in+cigarette+smoke+exposed+mice.">Menthol attenuates respiratory irritation and elevates blood cotinine in cigarette smoke exposed mice.</a> PLoS ONE. , 1-16 (2015).</li><li>Moreno-Gonzalez, I., Estrada, L. D., Sanchez-Mejias, E., Soto, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Smoking+exacerbates+amyloid+pathology+in+a+mouse+model+of+Alzheimer's+disease.">Smoking exacerbates amyloid pathology in a mouse model of Alzheimer's disease.</a> Nature Communications. 4, 1-10 (2013).</li><li>Madison, M. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electronic+cigarettes+disrupt+lung+lipid+homeostasis+and+innate+immunity+independent+of+nicotine.">Electronic cigarettes disrupt lung lipid homeostasis and innate immunity independent of nicotine.</a> Journal of Clinical Investigation. 129, 4290-4304 (2019).</li></ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Qui forniamo le informazioni necessarie per la costruzione di un apparato per WBIS di topi a CS. Dopo l'installazione del sistema, è di fondamentale importanza che gli investigatori calibrino il sistema in base alla dose erogata di nicotina o cotinina negli animali. L'apparecchio contiene un timer e manometri che possono essere utilizzati per regolare il volume del soffio di sigaretta, la frequenza del puff, il periodo combinato di esposizione al fumo e gli intervalli di riposo che gli animali ricevono tra ogni sigarett...

Il fumo di sigaretta rimane una delle principali cause di malattie prevenibili negli Stati Uniti, nonostante il costante calo del numero di adulti che fumano sigarette negli ultimi 50-60 anni1. È ampiamente noto che il fumo è collegato a molteplici malattie dei polmoni e del sangue tra cui la broncopneumopatia cronica ostruttiva (BPCO), un gruppo di malattie che include enfisema e bronchitecronica 2,3,4. Secondo il Center for Disease Control (CDC), nel 2014, la BPCO è stata la terza causa di morte negli Stati Uniti con oltre 15 milioni di americani che soffrono di questa malattia5.
Cs è stato anche recentemente associato a un rischio più elevato di sviluppare ematopoiesi clonale (CH)6,7, una condizione in cui una singola cellula staminale ematopoietica produce in modo sproporzionato una grande percentuale del sangue periferico di una persona. Questa scoperta indica una potenziale connessione tra il fumo e la funzione del midollo osseo. Date le diffuse e altamente significative implicazioni per la salute della CS e dato che i modelli murini di malattie sono una pietra miliare del progresso nella ricerca biomedica, è utile sviluppare sistemi efficienti e convenienti per modellare cs nei topi.
Qui, forniamo una guida passo-passo per la costruzione di un sistema conveniente per il trattamento e lo studio degli effetti in vivo di CS sull'enfisema polmonare e sull'omeostasi del midollo osseo. L'assemblaggio di questa apparecchiatura non richiede all'utente di avere conoscenze specializzate e quindi consente l'assemblaggio fai-da-te.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>1 in fastener</td>
			<td>Lowes</td>
			<td>756990</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1/4 in Barbed Y connector</td>
			<td>VWR</td>
			<td>89093-282</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1/4 in straight tubing connector</td>
			<td>VWR</td>
			<td>62866-378</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1/8 hex nipple</td>
			<td>Lowes</td>
			<td>877221</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1/8 in threaded coupling fitting</td>
			<td>Lowes</td>
			<td>877208</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1/8 in threaded male adapter nipple fitting</td>
			<td>Lowes</td>
			<td>877243</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10/32 (M) threaded straight connector</td>
			<td>Bimba</td>
			<td>EB60</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3/4 in 90-degree elbow CPVC fitting</td>
			<td>Lowes</td>
			<td>22643</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3/4 in chlorinated polyvinyl chloride (CPVC) pipe</td>
			<td>Lowes</td>
			<td>23814</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3/4 in CPVC cap</td>
			<td>Lowes</td>
			<td>23773</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3/4 in CPVC Drip irrigation female adapter</td>
			<td>Lowes</td>
			<td>194629</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3/4 in diameter CPVC male adapter</td>
			<td>Lowes</td>
			<td>23766</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>8.5 L airtight container with lid (11.25in x 7.75in x 6 in)</td>
			<td>Komax</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Listed as &#34;Komax Biokips Large Bread Box | (280-oz) Large Storage Container&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass drain tube (1.75 in diameter x 8 in length)</td>
			<td>KIMAX</td>
			<td>6500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isonic Solenoid Valves</td>
			<td>Bimba</td>
			<td>V2A02-AW1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Marlboro Red 100&#39;s</td>
			<td>Marlboro</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Oxygen swivel barbed connector</td>
			<td>Global Medical Solutions</td>
			<td>RES002</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Panasonic Timer LT4H-W</td>
			<td>Panasonic</td>
			<td>LT4HW</td>
			<td>Item was built-in the valve controller by Shepherd Controls &#38; Associates</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pressure regulator</td>
			<td>Allied Electronics and Automation</td>
			<td>70600552</td>
			<td>Also listed as &#34;Norgren R07-100-RGKA&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rubber stopper # 1 (one hole)</td>
			<td>VWR</td>
			<td>59581-163</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rubber stopper # 8.5 (one hole)</td>
			<td>VWR</td>
			<td>59581-389</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scireq inExpose system</td>
			<td>Scireq and Emka Technologies</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Commercial system used for comparison with our DIY WBIS</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Straight barbed fitting (8mm opening)</td>
			<td>VWR</td>
			<td>10028-872</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thread Sealant tape</td>
			<td>Lowes</td>
			<td>1184243</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Threaded port adaptor</td>
			<td>Bimba</td>
			<td>P1SA1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Timeter Aridyne 2000 Medical Air Compressor</td>
			<td>MFI Medical</td>
			<td>AHC-TE20</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Timeter flowmeter</td>
			<td>Allied Healthcare Products</td>
			<td>15006-03YP2</td>
			<td>Also listed as &#34;Puritan Air Meter&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Valve Control system</td>
			<td>Shepherd Controls and Associates</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Company custom designed the valve control system for this model.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vinyl pipes</td>
			<td>Vitality Medical</td>
			<td>RES3007</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
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cigarette smoke exposure in mice using a whole-body inhalation system

Quasi il 14% degli adulti negli Stati Uniti è stato segnalato per fumare sigarette nel 2018. Gli effetti del fumo di sigaretta (CS) sui polmoni e sulle malattie cardiovascolari sono stati ampiamente studiati, tuttavia, l'impatto della CS su altri tessuti e organi come sangue e midollo osseo rimane incompleto definito. Trovare il sistema appropriato per studiare gli effetti della CS sui roditori può essere proibitivo e richiedere l'acquisto di sistemi disponibili in commercio. Pertanto, abbiamo deciso di costruire un sistema conveniente, affidabile e versatile per studiare gli effetti patologici della CS nei topi. Questo sistema di esposizione all'inalazione per tutto il corpo (WBIS) imita la respirazione e il sbuffamento delle sigarette alternando l'esposizione a CS e aria pulita. Qui mostriamo che questo sistema fai-da-te (fai-da-te) induce infiammazione delle vie aeree ed enfisema polmonare nei topi dopo 4 mesi di esposizione al fumo di sigaretta. Sono inoltre mostrati gli effetti dell'inalazione di CS su tutto il corpo sulle cellule staminali ematopoietiche e progenitrici (HSPC) nel midollo osseo utilizzando questo apparecchio.

Uno dei principali tratti distintivi dell'esposizione al CS è l'enfisema che è caratterizzato dal danno e dalla distruzione delle sacche d'aria (alveoli) nel polmone. Pertanto, gli esperimenti iniziali si concentrarono sulla capacità del sistema fai-da-te di provocare cambiamenti enfisematosi nei polmoni delle femmine topi dopo ripetute esposizioni di tutto il corpo a CS. Il regime di dosamento CS è stato scelto sulla base delle nostre precedenti pubblicazioni in cui abbiamo utilizzato il sistema fai-da-te qui descri...

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Cigarette Smoke Exposure in Mice using a Whole-Body Inhalation System

Questo protocollo dimostra lo studio degli effetti fisiopatologici del fumo di sigaretta (CS) con un sistema di esposizione all'inalazione di tutto il corpo (WBI) (WBIS) costruito internamente. Questo sistema può esporre gli animali a CS in condizioni ripetibili controllate per la ricerca di effetti mediati dalla CS sull'enfisema polmonare e sull'ematopoiesi.

Esposizione al fumo di sigaretta nei topi con un sistema di inalazione per tutto il corpo

Close to 14% of adults in the United States were reported to smoke cigarettes in 2018. The effects of cigarette smoke (CS) on lungs and cardiovascular ...

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

6.1K Views.  Baylor College of Medicine. Questo protocollo dimostra lo studio degli effetti fisiopatologici del fumo di sigaretta (CS) con un sistema di esposizione all'inalazione di tutto il corpo (WBI) (WBIS) costruito internamente. Questo sistema può esporre gli animali a CS in condizioni ripetibili controllate per la ricerca di effetti mediati dalla CS sull'enfisema polmonare e sull'ematopoiesi.

Video: Cigarette Smoke Exposure in Mice using a Whole-Body Inhalation System

Using Bioluminescent Imaging to Investigate Synergism Between Streptococcus pneumoniae and Influenza A Virus in Infant Mice

During the 1918 influenza virus pandemic, which killed approximately 50 million people worldwide, the majority of fatalities were not the result of infection with influenza virus alone. Instead, most individuals are thought to have succumbed to a secondary bacterial infection, predominately caused by the bacterium Streptococcus pneumoniae (the pneumococcus). The synergistic relationship between infections caused by influenza virus and the pneumococcus has subsequently been observed during the 1957 Asian influenza virus pandemic, as well as during seasonal outbreaks of the virus (reviewed in 1, 2). Here, we describe a protocol used to investigate the mechanism(s) that may be involved in increased morbidity as a result of concurrent influenza A virus and S. pneumoniae infection. We have developed an infant murine model to reliably and reproducibly demonstrate the effects of influenza virus infection of mice colonised with S. pneumoniae. Using this protocol, we have provided the first insight into the kinetics of pneumococcal transmission between co-housed, neonatal mice using in vivo imaging 3.

Using Bioluminescent Imaging to Investigate Synergism Between Streptococcus pneumoniae and Influenza A Virus in Infant Mice

A concurrent infection with influenza A virus is one of the factors implicated in the induction of invasive pneumococcal disease during asymptomatic Streptococcus pneumoniae carriage. Here we describe a mixed infection method using infant mice to investigate the synergism between these two respiratory pathogens.

Utilizzando Imaging Bioluminescent per Indagare il sinergismo tra Streptococcus pneumoniae E Influenza A virus in topi neonati

During the 1918 influenza virus pandemic, which killed approximately 50 million people worldwide, the majority of fatalities were not the result of ...

Ricerca

Immunologia e infezioni

Development of a Negative Selectable Marker for Entamoeba histolytica

Entamoeba histolytica is the causative agent of amebiasis and infects up to 10% of the world's population. The molecular techniques that have enabled the up- and down-regulation of gene expression rely on the transfection of stably maintained plasmids. While these have increased our understanding of Entamoeba virulence factors, the capacity to integrate exogenous DNA into genome, which would allow reverse genetics experiments, would be a significant advantage in the study of this parasite. The challenges presented by this organism include inability to select for homologous recombination events and difficulty to cure episomal plasmid DNA from transfected trophozoites. The later results in a high background of exogenous DNA, a major problem in the identification of trophozoites in which a bona fide genomic integration event has occurred. We report the development of a negative selection system based upon transgenic expression of a yeast cytosine deaminase and uracil phosphoribosyl transferase chimera (FCU1) and selection with prodrug 5-fluorocytosine (5-FC). The FCU1 enzyme converts non-toxic 5-FC into toxic 5-fluorouracil and 5-fluorouridine-5'-monophosphate. E. histolytica lines expressing FCU1 were found to be 30 fold more sensitive to the prodrug compared to the control strain.

Development of a Negative Selectable Marker for Entamoeba histolytica

We report development of a negative selection system in E. histolytica based upon transgenic expression of a chimeric protein (FCU1) and selection with the prodrug 5-fluorocytosine. The FCU1 protein is a fusion of yeast cytosine deaminase and uracil phosphoribosyltransferase. Expression of FCU1 resulted in increased E. histolytica sensitivity towards 5-fluorocytosine.

Sviluppo di un marcatore negativo selezionabile per Entamoeba histolytica</em

Entamoeba histolytica is the causative agent of amebiasis and infects up to 10% of the world's population. The molecular techniques that have enabled the ...

Genotypic Inference of HIV-1 Tropism Using Population-based Sequencing of V3

Background: Prior to receiving a drug from CCR5-antagonist class in HIV therapy, a patient must undergo an HIV tropism test to confirm that his or her viral population uses the CCR5 coreceptor for cellular entry, and not an alternative coreceptor. One approach to tropism testing is to examine the sequence of the V3 region of the HIV envelope, which interacts with the coreceptor.
Methods: Viral RNA is extracted from blood plasma. The V3 region is amplified in triplicate with nested reverse transcriptase-PCR. The amplifications are then sequenced and analyzed using the software, RE_Call. Sequences are then submitted to a bioinformatic algorithm such as geno2pheno to infer viral tropism from the V3 region. Sequences are inferred to be non-R5 if their geno2pheno false positive rate falls below 5.75%. If any one of the three sequences from a sample is inferred to be non-R5, the patient is unlikely to respond to a CCR5-antagonist.

HIV tropism can be inferred from the V3 region of the viral envelope. V3 is PCR amplified in triplicate using nested RT-PCR, sequenced, and interpreted using bioinformatic software. Samples with with 1 or more sequence(s) with low g2P scores are classified as non-R5 virus.

Inferenza genotipica del virus HIV-1 Tropismo utilizzo basati sulla popolazione sequenziamento del V3

Background: Prior to receiving a drug from CCR5-antagonist class in HIV therapy, a patient must undergo an HIV tropism test to confirm that his or her ...

Using Luciferase to Image Bacterial Infections in Mice

Imaging is a valuable technique that can be used to monitor biological processes. In particular, the presence of cancer cells, stem cells, specific immune cell types, viral pathogens, parasites and bacteria can be followed in real-time within living animals 1-2. Application of bioluminescence imaging to the study of pathogens has advantages as compared to conventional strategies for analysis of infections in animal models3-4. Infections can be visualized within individual animals over time, without requiring euthanasia to determine the location and quantity of the pathogen. Optical imaging allows comprehensive examination of all tissues and organs, rather than sampling of sites previously known to be infected. In addition, the accuracy of inoculation into specific tissues can be directly determined prior to carrying forward animals that were unsuccessfully inoculated throughout the entire experiment. Variability between animals can be controlled for, since imaging allows each animal to be followed individually. Imaging has the potential to greatly reduce animal numbers needed because of the ability to obtain data from numerous time points without having to sample tissues to determine pathogen load3-4.
This protocol describes methods to visualize infections in live animals using bioluminescence imaging for recombinant strains of bacteria expressing luciferase. The click beetle (CBRLuc) and firefly luciferases (FFluc) utilize luciferin as a substrate5-6. The light produced by both CBRluc and FFluc has a broad wavelength from 500 nm to 700 nm, making these luciferases excellent reporters for the optical imaging in living animal models7-9. This is primarily because wavelengths of light greater than 600 nm are required to avoid absorption by hemoglobin and, thus, travel through mammalian tissue efficiently. Luciferase is genetically introduced into the bacteria to produce light signal10. Mice are pulmonary inoculated with bioluminescent bacteria intratracheally to allow monitoring of infections in real time. After luciferin injection, images are acquired using the IVIS Imaging System. During imaging, mice are anesthetized with isoflurane using an XGI-8 Gas Anethesia System. Images can be analyzed to localize and quantify the signal source, which represents the bacterial infection site(s) and number, respectively. After imaging, CFU determination is carried out on homogenized tissue to confirm the presence of bacteria. Several doses of bacteria are used to correlate bacterial numbers with luminescence. Imaging can be applied to study of pathogenesis and evaluation of the efficacy of antibacterial compounds and vaccines.

Methods for bioluminescence imaging of bacterial infections in living animals are decribed. Pathogens are modified to express luciferase allowing optical whole body imaging of infections in live animals. Animal models can be infected with luciferase expressing pathogens and the resulting course of disease visualized in real-time by bioluminescence imaging.

Utilizzando luciferasi di infezioni batteriche immagine in topi

Imaging is a valuable technique that can be used to monitor biological processes.  In particular, the presence of cancer cells, stem cells, specific ...

Culturing Microglia from the Neonatal and Adult Central Nervous System

Microglia are the resident macrophage-like cells of the central nervous system (CNS) and, as such, have critically important roles in physiological and pathological processes such as CNS maturation in development, multiple sclerosis, and spinal cord injury. Microglia can be activated and recruited to action by neuronal injury or stimulation, such as axonal damage seen in MS or ischemic brain trauma resulting from stroke. These immunocompetent members of the CNS are also thought to have roles in synaptic plasticity under non-pathological conditions. We employ protocols for culturing microglia from the neonatal and adult tissues that are aimed to maximize the viable cell numbers while minimizing confounding variables, such as the presence of other CNS cell types and cell culture debris. We utilize large and easily discernable CNS components (e.g. cortex, spinal cord segments), which makes the entire process feasible and reproducible. The use of adult cells is a suitable alternative to the use of neonatal brain microglia, as many pathologies studied mainly affect the postnatal spinal cord. These culture systems are also useful for directly testing the effect of compounds that may either inhibit or promote microglial activation. Since microglial activation can shape the outcomes of disease in the adult CNS, there is a need for in vitro systems in which neonatal and adult microglia can be cultured and studied.

We outline methods for the efficient and quick isolation/culture of viable microglia from the neonatal cerebral cortex and adult spinal cord. The dissection and plating of cortical microglia can be accomplished within 90 minutes, with the subsequent microglial harvest taking place ~ 10 days following the initial dissection.

Coltura Microglia dal Sistema Nervoso Centrale neonatale e adulti

Microglia are the resident macrophage-like cells of the central nervous system (CNS) and, as such, have critically important roles in physiological and ...

Visualization of IL-22-expressing Lymphocytes Using Reporter Mice

Reporter mice have been widely used to observe the localization of expression of targeted genes. This protocol focuses on a strategy to establish a new transgenic reporter mouse model. We chose to visualize interleukin (IL) 22 gene expression because this cytokine has important activities in the intestine, where it contributes to repair tissues damaged by inflammation. Reporter systems offer considerable advantages over other methods of identifying products in vivo. In the case of IL-22, other studies had first isolated cells from tissues and then re-stimulated the cells in vitro. IL-22, which is normally secreted, was trapped inside cells using a drug, and intracellular staining was used to visualize it. This method identifies cells capable of producing IL-22, but it does not determine whether they were doing so in vivo. The reporter design includes inserting a gene for a fluorescent protein (tdTomato) into the IL-22 gene in such a way that the fluorescent protein cannot be secreted and therefore remains trapped inside the producing cells in vivo. Fluorescent producers can then be visualized in tissue sections or by ex vivo analysis through flow cytometry. The actual construction process for the reporter included recombineering a bacterial artificial chromosome that contained the IL-22 gene. This engineered chromosome was then introduced into the mouse genome. Homeostatic IL-22 reporter expression was observed in different mouse tissues, including the spleen, thymus, lymph nodes, Peyer&#39;s patch, and intestine, by flow cytometry analysis. Colitis was induced by T-cell (CD4+CD45RBhigh) transfer, and reporter expression was visualized. Positive T cells were first present in the mesenteric lymph nodes, and then they accumulated inside the lamina propria of the distal small intestine and colon tissues. The strategy using BACs gave good-fidelity reporter expression compared to IL-22 expression, and it is simpler than knock-in procedures.

We describe here a transgenic reporter mouse model to visualize the IL-22-producing cells inside different mouse tissues. This method can be used to track the location of other cytokines or secretary proteins in the mouse.

Visualizzazione di IL-22 che esprimono Linfociti Utilizzando topi Reporter

Reporter mice have been widely used to observe the localization of expression of targeted genes. This protocol focuses on a strategy to establish a new ...

Induction of Paralysis and Visual System Injury in Mice by T Cells Specific for Neuromyelitis Optica Autoantigen Aquaporin-4

While it is recognized that aquaporin-4 (AQP4)-specific T cells and antibodies participate in the pathogenesis of neuromyelitis optica (NMO), a human central nervous system (CNS) autoimmune demyelinating disease, creation of an AQP4-targeted model with both clinical and histologic manifestations of CNS autoimmunity has proven challenging. Immunization of wild-type (WT) mice with AQP4 peptides elicited T cell proliferation, although those T cells could not transfer disease to na&#239;ve recipient mice. Recently, two novel AQP4 T cell epitopes, peptide (p) 135-153 and p201-220, were identified when studying immune responses to AQP4 in AQP4-deficient (AQP4-/-) mice, suggesting T cell reactivity to these epitopes is normally controlled by thymic negative selection. AQP4-/- Th17 polarized T cells primed to either p135-153 or p201-220 induced paralysis in recipient WT mice, that was associated with predominantly leptomeningeal inflammation of the spinal cord and optic nerves. Inflammation surrounding optic nerves and involvement of the inner retinal layers (IRL) were manifested by changes in serial optical coherence tomography (OCT). Here, we illustrate the approaches used to create this new in vivo model of AQP4-targeted CNS autoimmunity (ATCA), which can now be employed to study mechanisms that permit development of pathogenic AQP4-specific T cells and how they may cooperate with B cells in NMO pathogenesis.

Here, we present a protocol to induce paralysis and opticospinal inflammation by transfer of aquaporin-4 (AQP4)-specific T cells from AQP4-/- mice into WT mice. In addition, we demonstrate how to use serial optical coherence tomography to monitor visual system dysfunction.

Induzione di paralisi e di lesioni del sistema visivo in topi da specifiche cellule T per neuromielite ottica Autoantigen acquaporina-4

While it is recognized that aquaporin-4 (AQP4)-specific T cells and antibodies participate in the pathogenesis of neuromyelitis optica (NMO), a human ...

Humanized NOG Mice for Intravaginal HIV Exposure and Treatment of HIV Infection

Humanized mice provide a sophisticated platform to study human immunodeficiency virus (HIV) virology and to test antiviral drugs. This protocol describes the establishment of a human immune system in adult NOG mice. Here, we explain all the practical steps from isolation of umbilical cord blood derived human CD34+ cells and their subsequent intravenous transplantation into the mice, to the manipulation of the model through HIV infection, combination antiretroviral therapy (cART), and blood sampling. Approximately 75,000 hCD34+ cells are injected intravenously into the mice and the level of human chimerism, also known as humanization, in the peripheral blood is estimated longitudinally for months by flow cytometry. A total of 75,000 hCD34+ cells yields 20%&#8211;50% human CD45+ cells in the peripheral blood. The mice are susceptible to intravaginal infection with HIV and blood can be sampled once weekly for analysis, and twice monthly for extended periods. This protocol describes an assay for quantification of plasma viral load using droplet digital PCR (ddPCR). We show how the mice can be effectively treated with a standard-of-care cART regimen in the diet. The delivery of cART in the form of regular mouse chow is a significant refinement of the experimental model. This model can be used for preclinical analysis of both systemic and topical pre-exposure prophylaxis compounds as well as for testing of novel treatments and HIV cure strategies.

We have developed a protocol for the generation and evaluation of a humanized and human immunodeficiency virus-infected NOG mouse model based on stem cell transplant, intravaginal human immunodeficiency virus exposure, and droplet digital PCR RNA quantification.

Mitrai NOG umanizzati per l'esposizione all'HIV intravaginale e il trattamento dell'infezione da HIV

Humanized mice provide a sophisticated platform to study human immunodeficiency virus (HIV) virology and to test antiviral drugs. This protocol describes ...

Studying Effects of Cigarette Smoke on Pseudomonas Infection in Lung Epithelial Cells

Cigarette smoking is the major etiological cause for lung emphysema and chronic obstructive pulmonary disease (COPD). Cigarette smoking also promotes susceptibility to bacterial infections in the respiratory system. However, the effects of cigarette smoking on bacterial infections in human lung epithelial cells have yet to be thoroughly studied. Described here is a detailed protocol for the preparation of cigarette smoking extracts (CSE), treatment of human lung epithelial cells with CSE, and bacterial infection and infection determination. CSE was prepared with a conventional method. Lung epithelial cells were treated with 4% CSE for 3 h. CSE-treated cells were, then, infected with Pseudomonas at a multiplicity of infection (MOI) of 10. Bacterial loads of the cells were determined by three different methods. The results showed that CSE increased Pseudomonas load in lung epithelial cells. This protocol, therefore, provides a simple and reproducible approach to study the effect of cigarette smoke on bacterial infections in lung epithelial cells.

Studying Effects of Cigarette Smoke on Pseudomonas Infection in Lung Epithelial Cells

Described here is a protocol to study how cigarette smoke extract affects bacterial colonization in lung epithelial cells.

Studiare gli effetti del fumo di sigaretta sull'infezione da pseudomona nelle cellule epiteliali polmonari

Cigarette smoking is the major etiological cause for lung emphysema and chronic obstructive pulmonary disease (COPD). Cigarette smoking also promotes ...

Recurrent Escherichia coli Urinary Tract Infection Triggered by Gardnerella vaginalis Bladder Exposure in Mice

Recurrent urinary tract infections (rUTI) caused by uropathogenic Escherichia coli (UPEC) are common and costly. Previous articles describing models of UTI in male and female mice have illustrated the procedures for bacterial inoculation and enumeration in urine and tissues. During an initial bladder infection in C57BL/6 mice, UPEC establish latent reservoirs inside bladder epithelial cells that persist following clearance of UPEC bacteriuria. This model builds on these studies to examine rUTI caused by the emergence of UPEC from within latent bladder reservoirs. The urogenital bacterium Gardnerella vaginalis is used as the trigger of rUTI in this model because it is frequently present in the urogenital tracts of women, especially in the context of vaginal dysbiosis that has been associated with UTI. In addition, a method for in situ bladder fixation followed by scanning electron microscopy (SEM) analysis of bladder tissue is also described, with potential application to other studies involving the bladder.

Recurrent Escherichia coli Urinary Tract Infection Triggered by Gardnerella vaginalis Bladder Exposure in Mice

A mouse model of uropathogenic E. coli (UPEC) transurethral inoculation to establish latent intracellular bladder reservoirs and subsequent bladder exposure to G. vaginalis to induce recurrent UPEC UTI is demonstrated. Also demonstrated are the enumeration of bacteria, urine cytology, and in situ bladder fixation and processing for scanning electron microscopy.

Infezione ricorrente del tratto urinario da Escherichia coli innescata dall'esposizione alla vescica di Gardnerella vaginalis nei topi

Recurrent urinary tract infections (rUTI) caused by uropathogenic Escherichia coli (UPEC) are common and costly. Previous articles describing models of ...