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要約

重度の脊髄損傷の挫傷モデルが記載されている。詳細、術前手術と術後の手順は一貫したモデルを得るために説明されています。

要約

小説の治療の並進ポテンシャルは厳しい脊髄損傷(SCI)挫傷モデルで調査する必要があります。詳細な方法は重度のSCIの一貫したモデルを得ることが記載されている。定位フレームとコンピュータ制御のインパクタを使用することにより、再現性の傷害の作成が可能になります。低体温症と尿路感染症は、術後の期間に重要な課題を提起。毎日の体重記録と膀胱表情を持つ動物の注意深い監視が術後合併症の早期発見が可能になります。この挫傷モデルの機能的な結果は、離断モデルと同等です。挫傷モデルは、神経保護及び神経再生両方のアプローチの有効性を評価するために利用することができる。

概要

適切な損傷モデルの選択は、脊髄損傷のための新たな治療法(SCI)の前臨床評価のために重要です。医師や神経外傷挫傷モデルの分野における科学者の最近の調査では、1,2,13、片側切断または完全離断モデルとは対照的に、 、普遍的に臨床的に関連のあることが受け入れられた。8この意見は、ヒトの脊髄損傷の大部分が自然の中で打撲であるという観察に基づいている。10挫傷の生物学は、また片側切断または離断モデルとは異なるように見えます。11 Iseda らはらは片側切断及び挫傷モデルで別々に神経再生に脊髄コンドロイチナーゼABC注射の効果を比較した4軸索再生が片側切断におけるニューロンの橋ではなく、挫傷SCI群で観察された。片側切断または完全な横断モデルもCLのごく小さなサブセットに存在することが知られている条件を作成するinical状況。たとえば、複数の研究者が片側切断または再生を促進するための完全な離断後に病変空洞内に注入するための足場ベースの介入を採用しました。6負傷脊髄内の空洞の作成 ​​は非現実的で、おそらく非倫理的であるため、このアプローチは、臨床的には無関係になります。

機能回復にばらつきが挫傷モデルの主要な課題である。5,12このばらつきは、脊髄ボリューム全体で均一な力の配信のためのインパクトは特に腹側に位置する運動経路の前にコンピューター制御のインパクと背骨の安定化を使用することによって最小限に抑えることができます。それは生き残った軸索からの可塑性と担保貢献は脊髄損傷後の回復の主なメカニズムであることに注意しなければならない。挫傷技法で1したがって些細なバリエーションが大幅に異なる結果をもたらす可能性があります。この目的を達成するために、我々は開発してきた一貫挫傷量と離断モデルと同等の機能回復をもたらす深刻な脊髄損傷のモデル。このモデルは、治療効果の概念の証拠として、神経保護及び神経再生戦略の両方を調査するために利用され得る。

プロトコル

1。脊髄損傷前の準備

この手順に必要な手術器具は、歯とないメス、ピックアップ、止血、自己保持リトラクター、細かい先端骨鉗子、針ドライバ、吸収性縫合糸、皮膚クリップアプリケーターです。必要な他の手術用品外科用ドレープ、手術野のための無菌シーツ、ガーゼスポンジ、綿チップアプリケーター、及び金属箔である。手術の前に手術器具や消耗品をオートクレーブ。一匹のための機器および消耗品の個々のセットを使用します。アルコールワイプで手術領域および装置(インパク、光源、定位フレーム、ガラスビーズ滅菌、加熱パッド)を清掃してください。

外科用ドレープを開き、慎重に汚染を回避手術野をドレープに滅菌手袋を使用しています。無菌個々の楽器を開き、慎重に手術野のものを配置します。番目のノブやハンドルカバー電子装置は、おそらく無菌の金属箔との手順の実行中に必要としていました。スイッチオンガラスビーズ滅菌手順中に使用可能な状態になるように。

2。動物の作製

実際の手順の前に研究室エリア少ない時間にラットを持参。前もって予想手順(通常0.006 mg / mlの皮下のbuprinorphine 1.5ミリリットル)の少なくとも1時間鎮痛薬を管理します。術前の抗生物質(通常はバイトリル4 mg / kgを皮下)を管理。ケタミンの90 mg / kg体重を使ってラットを麻酔しないつま先ピンチ応答がなくなるまで待つ。胸椎で最も著名な棘突起を触診する。このレベルは、通常、T10棘突起に対応しています。 T10との関係で意図されたレベルの位置をマークします。私たちの研究室では、T10けがを実行します。次の物語は、T10 SCIの技術が記載されている。縦3センチメートル×6センチの長方形を剃るとT10のレベルを中心。清潔な肌三回のWi番目ベタジンソリューション。それぞれの目に眼科潤滑剤を適用します。慎重に汚染を回避手術野に楽な姿勢でラットを転送します。コア温度を監視し、正常に近い(〜37.5℃)できるだけのような動物の温度を保つためにそれに応じて加熱を調節するために直腸の温度プローブを挿入します。手術部位上記のウィンドウで外科用ドレープとラットをカバーしています。

3。外科手術

T10マークを中心に#10のブレードを使用して近似横4cm切開で始まる。辛抱強く離れT9-T11棘突起と薄層から筋膜と筋肉層を解剖に進みます。骨から筋肉や筋膜を離れて撤回​​するトラクターを配置します。 T9の棘突起を安定しながら鋭く細かいハサミを使用してT9とT10の間に棘靭帯を分ける。同様にT10棘突起を安定させ、T10-T11の間に棘靭帯を分ける。補完するために、ループ倍率を使用黄色靱帯( 図1)を介してTE靭帯の部門はすべての方法。黄色靱帯が切断された後莢膜嚢は容易に明らかである。慎重にT10で両側ピース食事椎弓切除を実行するために細い先端骨鉗子を使用してください。細心の注意は、骨鉗子先端から莢膜嚢と不注意傷害に下向きの圧力を避けるために取られる。ラミナとT10の棘突起が完全に削除されます。

安定化プラットフォーム上の位置に動物を移動します。 T9椎体の左右側面に続いT11椎体の横方向の側面をクランプして背骨を固定する安定クランプを使用してください。これは呼吸の動きのためのスペースを制限し、不必要なストレスを動物を追加しますと安定クランプでプラットフォームにラットを圧縮しないように注意してください。コンピュータ制御のインパクタで脊柱の設定を固定した後にチェックされます。我々は一般的に、SPで3.0ミリメートルのインパクチップを使用2mmの深さと0.3秒の滞留時間で4センチメートル/秒のEED。インパクチップを拡張し、それだけで脊髄表面に触れるまでそれを下げる。先端を撤回し、脊髄表面に向かってデバイス2ミリメートルを下げる。重度の挫傷、脊髄損傷を引き起こすために、4センチメートル/秒の速度でピストンを離します。コー​​ドの上に不要な圧力を作成しないように注意しながら、所定の位置に綿チップアプリケーターを維持するだけの十分な圧力を使って止血を達成。 8の字ステッチがきつすぎる使って吸収性縫合糸を引っ張らないように注意してとの縫合の筋肉と筋膜層。 2つの小さなステープルの最小値で皮膚を閉じ、切開部の一部が第2又は3のステープル後に開いたままにする場合、最大4または5のステープルを使用することができる。

3。術後ケア

24時間後の手術のため、約33-35°Cの暖かい環境で場所ラット。彼らが移動し始めたら、これがインキュベーター(彼らは無意識でありながら)、加熱されたケージのスペースを必要とする。かつてラットは完全にAWですAKEは、すべての皮下に生理食塩水5mlの、buprinorphine 1.5mlの(0.006 mg / ml)であり、バイトリルの0.1ミリリットルを投与。 1日1回7日間最初の24〜48時間とバイトリルため皮下一日二回buprinorphineに進みます。膀胱を手動膀胱機能のリターン(3日間連続早朝式で尿の<2ミリリットル)まで一日三回を表明すべきである。動物も感染症(尿中の血液、白っぽい色、または悪臭)、この時間中にチェックされるべきであり、創傷治癒と身体活動や問題を減少させた。感染症の存在は地元の獣医師と相談の上、抗生物質の投与量が増加(または再起動)で対抗すべきである。毎日彼らの回復を評価するために、手術の翌日から始まるラットの重量を量る。

結果

病変ボリューム

私たちは、技術は、上記に従うことによって大規模かつ一貫性のある病変のボリュームを取得しています。 2.04ミリメートル3(1.9から2.18 95%CI)(N = 5匹)の平均病変容積が得られたルクソールファストブルー染色を用いて、図2に示すと、病変震源を通してルクソールファストブルーを使用して代表的な染色で病変ボリュームを意味し?...

ディスカッション

いくつかの新規治療法が最近SCI研究の分野における初期の約束を示している。これらの治療法の3は十分な評価が最大の翻訳可能性のある戦略を選択するためにSCIの臨床的に関連するモデルでは必須である。グレーディングのスキームは、最近、前臨床試験の強度を評価するために開発されました。9このスキームは厳しいSCIの挫傷モデルを活用することの重要性を強調した。?...

開示事項

財務情報の開示なし
資金調達の開示なし。

謝辞

著者は、このモデルの開発における彼らの指導のために博士N. Banik博士とD.ミッチェルに感謝しています。

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
Computer controlled impactorLeica or the Infinite Horizons (formerly OSU) impactor
Surgical instruments
ScissorsFine Science Tools Inc14094-11 or 14060-09
ForcepsFine Science Tools Inc11006-12 and 11027-12 or 11506-12
HemostatsFine Science Tools Inc13009-12
RetractorsFine Science Tools Inc17011-10
RongeursFine Science Tools Inc16020-14
Needle driverFine Science Tools Inc12001-13
Stereotactic frameLeica or RWD Life Science Co. or TSE systems
Buprinorphine
BaytrilBayer
Ketamine

参考文献

  1. Blesch, A., Tuszynski, M. H. Spinal cord injury: plasticity, regeneration and the challenge of translational drug development. Trends Neurosci. 32, 41-47 (2009).
  2. Dobkin, B. H. Curiosity and cure: translational research strategies for neural repair-mediated rehabilitation. Dev. Neurobiol. 67, 1133-1147 (2007).
  3. Fehlings, M. G., Cadotte, D. W., Fehlings, L. N. A series of systematic reviews on the treatment of acute spinal cord injury: a foundation for best medical practice. J. Neurotrauma. 28, 1329-1333 (2011).
  4. Iseda, T., Okuda, T., Kane-Goldsmith, N., et al. Single, high-dose intraspinal injection of chondroitinase reduces glycosaminoglycans in injured spinal cord and promotes corticospinal axonal regrowth after hemisection but not contusion. J. Neurotrauma. 25, 334-349 (2008).
  5. Khan, T., Havey, R. M., Sayers, S. T., et al. Animal models of spinal cord contusion injuries. Laboratory Animal Science. 49, 161-172 (1999).
  6. Kim, B. G., Kang, Y. M., Phi, J. H., et al. Implantation of polymer scaffolds seeded with neural stem cells in a canine spinal cord injury model. Cytotherapy. 12, 841-845 (2010).
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  8. Kwon, B. K., Hillyer, J., Tetzlaff, W. Translational research in spinal cord injury: a survey of opinion from the SCI community. J. Neurotrauma. 27, 21-33 (2010).
  9. Kwon, B. K., Okon, E. B., Tsai, E., et al. A grading system to evaluate objectively the strength of pre-clinical data of acute neuroprotective therapies for clinical translation in spinal cord injury. J. Neurotrauma. 28, 1525-1543 (2011).
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