オートファジーの解析で<em&gt;ペニシリウム·クリソゲヌム</em&gt;蛍光顕微鏡と組み合わせて飢餓パッドを使用した

要約

A convenient and powerful method for studying autophagy in Penicillium chrysogenum by using starvation pads (mixtures of agarose and tap water in a microscope slide containing a central cavity) is presented here.

要約

The study of cellular quality control systems has emerged as a highly dynamic and relevant field of contemporary research. It has become clear that cells possess several lines of defense against damage to biologically relevant molecules like nucleic acids, lipids and proteins. In addition to organelle dynamics (fusion/fission/motility/inheritance) and tightly controlled protease activity, the degradation of surplus, damaged or compromised organelles by autophagy (cellular ‘self-eating’) has received much attention from the scientific community. The regulation of autophagy is quite complex and depends on genetic and environmental factors, many of which have so far not been elucidated. Here a novel method is presented that allows the convenient study of autophagy in the filamentous fungus Penicillium chrysogenum. It is based on growth of the fungus on so-called ‘starvation pads’ for stimulation of autophagy in a reproducible manner. Samples are directly assayed by microscopy and evaluated for autophagy induction / progress. The protocol presented here is not limited for use with P. chrysogenum and can be easily adapted for use in other filamentous fungi.

概要

糸状菌は、発達過程の研究のための優れたモデル系である。彼らは安い栽培、子孫と遺伝のアクセシビリティの高い番号のようないくつかの実験的な利点を提供します。最後の点は、様々な細胞メカニズムのそれまで未同定の遺伝子の重要性を調査できるように、形質転換体の構築のために特に重要である。糸状菌は、剰余金の除去および/または機能不全の細胞成分のための維持のためにミトコンドリアの完全性およびオートファジーを維持するため、異常なタンパク質の分解のためのプロテアーゼ活性のような細胞の品質管理経路のいくつかの要素とメカニズムの解明のためにミトコンドリアのダイナミクス尽力されてきた飢餓^1,2,3の時代に、細胞生存率。

糸状菌²におけるオートファジーの研究のために利用可能ないくつかの実験技術があります：液胞の（I）の調査私がプロテアーゼは、透過型電子顕微鏡⁴によって阻害されたときfはそれらが密なオートファジー体を含むこと、（ii）蛍光色素モノダンシルカダベリを使用して、蛍光顕微鏡^5,6酸性化オートファゴソーム構造の（iii）の検出によりGFP-Atg8病巣を監視することによりオートファゴソームの可視化^7。

ここで、オートファジー研究のために、ペニシリウム·クリソゲヌムを成長させる新規な方法が提示される。主な要素は、単にアガロース滅菌水道水に溶解した1％からなる「飢餓パッド」である。追加の化合物（ 例えば、ストレス因子、スカベンジャー、オートファジー変調器）は、それらが自己蛍光を表示しないように、パッドに追加することができます。パッドは浅い中央の空洞が含まれている顕微鏡スライドに位置しています。このパッドに胞子懸濁液または小さな菌糸断片のいずれかで接種した。興味のある歪がsporulatに失敗した場合、後者が推奨される効率的に電子（ 例えば、ΔのATG1株 ^8）。スライドは、試料の乾燥を防ぐために（これらは容易に空のピペットチップボックスを使用して構成することができる）湿潤チャンバー内に配置し、室温でインキュベートする。P.クリソゲヌムは、これらの条件下で、数日間成長させることができる。オートファジーは、真菌、オートファジーのための肯定的なマーカーである液胞の拡大によって顕微鏡的に観察することができる。この貢献、Pにクリソゲナム菌株 （ウィスコンシン州54から1255）は、そのC末端'SKL'配列⁹によってペルオキシソームに標的化された緑色蛍光タンパク質を形成するために使用される。従って、ペルオキシソームの劣化を監視することが可能である。適切な局在化シグナルを使用してそれらの分解を分析することにより、細胞（ 例えば、ミトコンドリア）の他の区画を標識することが可能である。 Pからデータもののクリソゲヌム Ws54-1255（GFP-SKLが）それは確かに可能であり、ここで提示されている他の糸状菌（ 例えば、アカパンカビ、Sordaria macrospora、アスペルギルス種、 など ）にも「飢餓パッド'メソッドを使用します。

プロトコル

P.の調製飢餓実験用クリソゲヌム

1. P.の場合関心のクリソゲヌム株は米（「緑米'）に保管され、1.5ミリリットルマイクロ遠心チューブに菌糸体を胞子形成に覆わ2-3米粒を配置。 500μlのYGG（10g / lのKClを、20g / lのグルコース、10g / lの酵母窒素塩基、5グラム/リットルのK ₂ HPO _4、20g / lの酵母エキス）で塗りつぶす。
   1. 胞子が効率的にお米から切り離すことができるように、30秒間チューブをボルテックス。
   2. 室温で1日（ 例えば 、20〜25℃）のためにチューブをインキュベートする。
   3. 無菌水道水におけるこの胞子懸濁液の1/50希釈液を調製、よく混ぜる。
2. P.の場合関心のクリソゲナム菌株は、400μlの滅菌水道水及び約100mgのglのを含む1.5 mlのマイクロ遠心チューブに菌糸体の小片を移送、寒天プレート（ 例えば 、YGG寒天プレート）上に保持されている無菌の歯のピックまたはピペットチップを使用して、お尻のビーズ。
   1. 2分間ボルテックスチューブを菌糸体が断片化になるように。すぐにチューブの内容を使用してください。

Pの栽培2.準備手順飢餓パッド上クリソゲヌム

1. 加熱プレートのスイッチを入れ、約60℃に設定します。
2. 電子レンジで調理することにより、溶液を100ミリリットルの水道水にアガロースを2gを溶解する。このソリューションは、加熱後には完全には明らかであることに注意してください。そうでない場合、アガロースが完全に溶解するまで、再びそれを調理。アガロース溶液は、使用前に、約60℃まで冷却してみましょう。
3. 各無菌水道水400μlの（サンプル数に応じて、2-4、）を1.5 mlマイクロチューブを埋める（追加の化合物を添加しない）、または400-XμL（ステップ2.5における化合物溶液のμLxの追加）、それを配置少なくとも1分間、加熱板上になるようワットER内部の暖かい取得します。
4. 少なくとも1分間加熱プレート上に中央の空洞が含まれている顕微鏡スライドを配置します。
5. 簡潔に1.5ミリリットルのマイクロチューブとボルテックスで溶液にアガロース400μlの2％を追加します。必要に応じて、このステップの後、追加の化合物（ すなわち、1μMのラパマイシン）を追加します。これが行われた場合、追加の各物質の後に簡単に渦がチューブにピペットで。時期尚早の凝固を防ぐために、加熱用テーブルの上に戻ってチューブを入れてください。
   注：マイクロ遠心チューブ内の総容積は800μLでなければなりません。

飢餓パッドを含む顕微鏡用スライドガラスの調製

1. （依然として加熱板上に配置されている）顕微鏡スライドのキャビティ内にアガロース溶液をピペットで140μlの。可能な場合は、気泡を避けるようにしてください。
2. すぐにアガロース溶液上にカバースリップを配置。
   注：これは平らな表面になります。
3. マイクロを入れてアガロースパッドが凝固することを可能にするために約4分間の実験台の上にスコープスライド。
4. 慎重に（汚染を避けるために手袋を着用！）親指または人差し指の助けを借りてそれをスライドさせて、アガロースパッドからカバースリップを削除します。
5. 乾燥を防ぐために、湿ったチャンバー内にパッドを備えた顕微鏡スライドを置きます。推奨：まだピペットチップを保持するためのインサートを持って空の先端ボックスを使用します。底部が覆われるようにボックスに滅菌水を追加します。インサート上に顕微鏡スライドを配置し、ボックスを閉じます。

4. Pと飢餓パッドに接種クリソゲヌムおよびインキュベーション

1. ピペット1/50胞子希釈液5μl（培養物は、ご飯の上に成長させた場合）、または菌糸断片を含む原液の5μL（培養物を寒天プレート上で成長させた場合）飢餓パッドの中心へ。
2. これは、お楽しみいただけます（湿ったチャンバーを閉じ、ビニール袋に包む飢餓パッドの乾燥に対する追加の保護）。あまりにも多くの他の方法で接種滴が乱されるためボックスを移動しないように注意してください。
3. サンプルを分析する前に、少なくとも20時間室温で包まれた箱に保管してください。

サンプルの5。顕微鏡分析

1. インキュベーションの20時間後、試料を顕微鏡分析のために準備ができている。乾燥したティッシュペーパー上で顕微鏡スライドを配置（下湿潤なる傾向がある）。
2. 飢餓パッド上に少量の水（約50μl）をピペット。パッド上にカバーガラスを入れ、余剰水を絞り出す。ティッシュペーパーで余剰水を除去。
3. 蛍光顕微鏡の観察台に顕微鏡スライドを置く。菌糸体の成長の概要を取得するには、20X目標を使用しています。菌糸にGFPの局在を研究するための63Xまたは100Xの目的を使用してください。のために試料を分析しないサンプルの段階的な乾燥を防ぐためにより長い15分のウェット室に戻って、それらを入れる前。
4. （40時間と成長の60時間後に、 例えば ）一定の間隔で5.3を繰り返します。
   注：サンプルは、湿ったチャンバー内に戻すことができます。それは、菌糸体の成長に影響を与えないようにカバースリップを除去する必要がない。

結果

Pにペルオキシソームの劣化の上に詳細なプロトコルの有用性を実証するために、 クリソゲナム菌株 Ws54-1255（GFP-SKL）を分析した。この株ではGFP-SKLは通常、ペルオキシソーム⁹にインポートされます。サンプルは、蛍光顕微鏡によって分析されている場合に、複数の球状の外観をもたらす。オートファジーが発生した場合は、空胞を拡大。 GFP-SKLは、オートファジー（pexop...

ディスカッション

ここで紹介する方法はPにオートファジーの便利で再現可能な研究を可能にするクリソゲヌム 。例えば、それらはこの菌かのオートファジー応答を調節することができるかどうかを、種々の化合物の有効性をスクリーニングするために使用することができる。ラパマイシンを用いた結果は、TORシグナル伝達の阻害は、Pにおけるオートファジーの顕著な誘導を導くことを証?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Microscope slides with central cavity	Carl Roth GmbH, Karlsruhe, Germany	H884.1	These can be used multiple times after cleaning.
Glass beads	Carl Roth GmbH, Karlsruhe, Germany	A553.1	Diameter: 0.25 - 0.50 mm