ヒト乳癌組織および細胞株からマンモスフェア形成アッセイ

要約

Floating mammosphere assays can investigate the subset of stem-like breast cancer cells that survive in suspension conditions and show enhanced tumorigenesis when implanted into mice. This protocol provides a convenient in vitro measure of sphere-forming ability, a proxy for in vivo tumorigenesis, while facilitating analysis of the stem-associated transcriptional landscape.

要約

より分化した子孫を生じることながら健康な組織に似ては、多くの血液および固形の悪性腫瘍は、現在、自己再生幹様癌細胞のサブセットで、階層的に組織化されると考えられている。非幹腫瘍の大きさと比較して強化された化学療法および放射線抵抗性を有することが、乳癌、これらの癌幹細胞を標的と理解とは、重要な研究分野となっている。マンモスフェアアッセイはまた、広く遡及sphere-を同定する能力について用いられるようになっている：CD44、CD24、およびALDH活性を含むマーカーは、将来に向かって、免疫不全マウスに移植したときに増強された腫瘍形成性を示す細胞を単離するために蛍光活性化細胞選別（FACS）を用いて評価することができる単一の幹細胞様のクローンから発生セルを形成する。ここでは、適切な細胞株または一次患者サンプルからマンモスフィアの培養、彼らの継代、及び球体Fを推定する計算のためのアプローチを概説orming効率（SFE）。まず、適切な計画とマンモスフェア実験の解釈の重要な考慮事項と落とし穴を議論する。

概要

幹様がん幹細胞が率いる腫瘍細胞系列の存在が大幅に腫瘍の不均一性の我々の理解に追加されました。腫瘍におけるいくつかの表現型の多様性は遺伝的に異なるクローンのクローンの成長から生じませんが、かなりのコンポーネントは、エピジェネティックな違いに起因すると表示されます。癌細胞は、特定の遺伝子の活性化または抑制を経由して幹、前駆、および分化した状態の間で（時には可逆的に）遷移することができる表現のプログラム^1から3。これは、現在調節因子を提供する隣接癌、間質、または免疫細胞の傍分泌シグナル伝達と関連して、その結果自己分泌シグナル伝達を細胞内で発現された遺伝子発現プログラムを反映して、細胞内因性または外因性の要因を反映して、そのようなの程度microenviromental条件よい低酸素症^2,4,5。

革新的な系統は、アプローチをトレースするが、それらのインビボニッチ⁶で推定される癌幹細胞を研究する当社の能力進めています^{- 8、}球形成アッセイは、少なくとも使用されるアッセイ条件下では、幹細胞のように振る舞うように乳癌細胞」の可能性を推定するための普及した、便利なアプローチのまま。これは、しばしば膜マーカーCD44およびCD24 ^9、及び酵素ALDH（アルデヒドデヒドロゲナーゼ^）10の活性レベルの発現によって精製癌幹細胞について遡及的な方法は、よりmesenchymal-上皮に対応するために提案されたマーカーと一緒に使用され様がん幹細胞をそれぞれ^11。球形成のアプローチは、最初の上皮成長因子^（EGF）12を添加して非接着、無血清条件下で単一クローン由来の推定幹細胞の増殖を可能にする、ニューロスフィアアッセイとして開発された、後で有用正常および癌に適用される乳房組織。

球体形成創始細胞の同一性、及び球塊を構成する混合細胞型は、mammo-、または他の球形成アッセイから作ることができる推論に関連している。 G0期で休むと考えられて長期静止骨善意幹細胞は、 生体内で活性化を有利に働く要因の正確な組み合わせは発生しません。マンモスフェアアッセイは、代わりに有糸分裂に構えたり、すでに^13を分割するいずれかの細胞の成長を可能にします。これらの前駆細胞ではなく、真に静止細胞が、アッセイにおいて使用されるEGFおよび塩基性線維芽細胞増殖因子（bFGF）マイトジェンで増殖する細胞段階であってもよい。それにもかかわらず、それらは活性化された幹細胞に関連するシグナル伝達経路¹⁴の範囲を含む。また、それらの形成の速度は、マウス異種移植片^2,15,16の中で限界希釈アッセイにおけるそれらの効力により測定し、それらから採取された組織の腫瘍形成に関連する^</ SUP>。

ここでは、単一細胞を単離し、ヒト乳癌細胞株および乳房腫瘍の臨床試料の両方からの一次マンモスフィアを生成するための詳細なプロトコルを提供する。我々はまた、自己再生を評価するために主要なマンモスフィアの連続継代を実行する方法を説明し、どのように異なる播種密度間での比較は（ 図1のスキームを参照）を可能にする効率を形成する球を計算する。

プロトコル

以下の手順では、倫理的にインペリアル·カレッジ、ロンドンによって承認されている。

ヒト乳癌細胞株からの一次マンモスフィアの1世代

注：無菌培養フードの下で、次の手順を実行します。

1. マンモスフェアメディア2mMのL-グルタミン、100 U / mlペニシリン、100 U / mlストレプトマイシンを補充したDMEM / F12を含む準備する。 、10ng / mlの組換えヒト塩基性線維芽細胞増殖因子（bFGF; R＆D Systems社）及び1×B27サプリメント、20ng / mlの組換えヒト上皮細胞増殖因子（シグマEGF）を添加することによって使用直前に完全培地を調製する。
2. 接着性のMCF-7またはMDA-MB-231細胞（または任意の乳癌細胞株; 70〜80％コンフルエンス）を含むフラスコから培地を吸引除去は、1×PBSで2回洗浄し、細胞をトリプシン処理。
3. 5分間室温で200×gで遠心分離細胞。マンモスフェアメディア1-5 mlの上清と再懸濁細胞をデカントします。ピペット40μmのセルストレーナーキャップフィルタ上下に、必要に使用した場合、単一細胞懸濁液を得た。単一細胞懸濁液が形成された（ない場合は、3回まで細胞懸濁液を注射器25 G針を使用）していることを確認するために血球計数器を使用してください。
4. FACS経由必要な分離株のCD44 + CD24-細胞のサブセットは、抗CD24-フィコエリトリン（PE）および抗CD44フルオレセインイソチオシアネート（FITC）モノクローナル抗体^9を使用している場合。また、磁気活性化細胞ソーティング抗CD44及び製造者の指示に従って、抗CD24ビオチン結合されたマイクロビーズとの（MACS）システムを使用してこのような集団を単離。 LDカラムを使用して、LSカラムを用いて正の選択、および負の選択を行い^、17フローサイトメトリーにより、すべての単離された細胞の表現型を確認する。
5. トリパンブルーを用いて1mlあたり生存細胞の数を計算します。
   注：細胞生存率はhemocy上のグリッド内のセルの総数で割った生存細胞の数として計算される光度計。パンブルーを取る細胞は非生存と考えられている。以下の手順を正確に生存細胞の割合を決定するために使用される。
   1. PBS中トリパンブルーの0.4％溶液を調製する。細胞の1ミリリットルのパンブルーストック溶液0.1ミリリットルを追加します。血球計数器をロードし、低倍率で顕微鏡下ですぐに調べる。総細胞数及び青色染色細胞の数を数える。
      生存細胞= [1.00 - （青色細胞の数÷全細胞の数）]×100。
   2. 培養物1mlあたりの生存細胞数を計算するには、以下の式を使用します。希釈係数を補正することを忘れないでください。
      10 ^4×1.1 =細胞/ mlの文化×生細胞の数
6. 6ウェルの超低付着性プレートの各ウェルに完全なマンモスフェア培地2ml中の細胞の予め決定された量を再懸濁する。播種密度は、通常、ウェル当たり500-4,000細胞/ cm ²の細胞である。必要に応じてLOを使うワットアタッチメント24ウェルプレートは、培地の0.5mlの同じ濃度で細胞を播種した。
   注：私たちは、対象となる各細胞株について播種密度と文化の時間の最適化をお勧めします。
7. 特に最初の5日間の増殖期の間に、プレートを乱すことなく（細胞株およびマンモスフィアのサイズに応じて）5~10日間、37℃、5％CO ₂での超低接着6穴プレートをインキュベート。

ヒト乳癌臨床サンプルからの一次マンモスフィアの2世代

注：ヒト乳癌組織は、乳房腫瘍を除去するための手術を受けた患者から得ることができる。 100 U / mlペニシリンおよび100 U / mlのストレプトマイシンを含む培地50mlの滅菌チューブ中で24時間まで氷上店組織。無菌培養フードの下に、次の手順を実行します。

1. メディアの少容量で100ミリメートル組織ペトリ皿にサンプルを転送します。 Remov無菌のはさみ、scapelとピンセットを使用して電子脂肪組織。
2. DMEM / F12 2-3 mlを加え大きな片がなくなるまで、無菌scapelやカミソリの刃で1ミリメートル³枚にサンプルをミンチ。
3. タンパク質分解酵素（3,000 U / mlコラゲナーゼ1,000 U / mlのヒアルロニダーゼ）を含む予め温めておいた10ミリリットルDMEM中で組織片を再懸濁し、すべての組織断片が消化されるまで、ロータリーシェーカーで37℃でインキュベートする。通常、完全な消化は1-3時間かかる。腫瘍の病理学的な文字によると消化時間を調整します。 （例えば、乳腺癌はより壊れやすく、短い消化時間を必要と粘液癌に比べて消化することが通常困難です）。血球計数器の下に20μlのサスペンションを観察することによって消化ごとに1/2時間の程度を評価。
4. 断片はその後、5分間沈降室TEMで10分間200×gで15ミリリットルコニカルポリプロピレンチューブと遠心分離機で上清を転送できるようにする温度。マンモスフェアメディア5mlの - 慎重に1上清および再懸濁細胞をオフにデカント。
5. 単一細胞懸濁液を得て、メッキする細胞株について上記のステップ1.1から1.4に従ってください。必要に応じて25〜Gの細胞が損傷した細胞を制限するために2回の最大シリンジ渡します。

3.マンモスフェア効率（％）計算の形成

1. 培養期間の後、40倍の倍率で顕微鏡下でマンモスフィア（より大きい40μm）の直径を数える。光学顕微鏡にデジタルカメラを使用してデジタル画像5ランダムフィールドおよび取得ソフトウェアを使用して、マンモスフィアのサイズを決定する。任意の画像解析ソフトウェアを使用してください。
2. マンモスフェアは、以下の式を使用して効率（MFE％）を形成する計算する：
   MFE（％）=（ウェル当たりマンモスフィアの＃）/（ウェル当たり播種した細胞の＃）×100

自己再生の評価のためのマンモスフィアの4連続継代

1. ピペット15ミリリットルチューブに各ウェルからマンモスフィアを含む培地。 PBSでウェルを洗浄し、収集したメディアに追加する。室温で10分間、115×gで遠心する。
2. 上清を捨て、予め温めておいた0.5％トリプシン/ 0.2％EDTAを500μlにペレットを再懸濁。 2-3分間インキュベートする。
3. トリプシンを中和するためにFCSの500を添加する。 5分間500×gで遠心分離する。 、マンモスフィアメディアの100μlの上清と再懸濁ペレットを廃棄ピペッティング球を脱凝集する。
4. 血球計で細胞をカウントし、細胞を単一細胞懸濁液にするかどうかを判断。 25 Gを通過しない場合は、単一細胞を得るために3回まで注射器。主要生成に使用したのと同じ密度で新しい超低接着6ウェルプレートに細胞を播種する。
5. 5-10日後、>40μmの球をカウントし、前に報告された式を使って球形成効率を計算。

結果

異なるサンプルまたは異なる処理を施したものは播種初期セルに対して正規化した後に形成マンモスフィア>40μmの数が変化してもよい。三重で成長し、各治療のためにマンモスフェア形成効率（MFE）を計算します。これは、異なる播種密度を用いた実験を比較することを可能にする。データは、最高の理想的な陽性および陰性対照を、棒グラフに表示し、三つ組のウェルで標準偏差を表示?...

ディスカッション

プライマリとセカンダリのマンモスフィアの成功評価は、マンモスフィアは、最小限の球凝集に、単一のクローンから形成する十分に低い密度でメッキされる細胞に依存しています。しかし低すぎる密度で、数が少なすぎるマンモスフィアは、統計学的治療の効果を区別するために形成することができる。播種密度は、彼らは彼らの球の形成効率が大幅に変化することができるので、使用さ?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Name of Material/ Equipment	Company	Catalog Number	Comments/Description
DMEM/F12	Lonza	CC-3151
2mM L-Glutamine	Sigma Aldrich	G8540
100U/ml Penicillin & Streptomycin	Sigma Aldrich	P4083
20ng/ml recombinant human epidermal growth factor (EGF)	Sigma Aldrich	E9644
20ng/ml recombinant human basic fibroblast growth factor (bFGF)	R&D systems	233-FB-025
1x B27 supplement	Invitrogen	17504-044
Phosphate buffered saline (PBS);	Thermo Scientific	12399902
0.5% trypsin-0.2%EDTA;	Sigma Aldrich	59418C
Fetal Calf Serum	First Link UK	02-00-850
Trypan Blue	Sigma Aldrich	93595
Low attachment 6 well plates	Corning	CLS3814
Collagenase type 1A	Sigma Aldrich	C9891
Hyaluronidase	Sigma Aldrich	H3506
Sterile razor blades	Fisher Scientific	12443170
Sterile scalpel	Fisher Scientific	11758353
Sterile micro-dissecting scissors	Sigma Aldrich	S3146