使用して小胞体カルシウムの恒常性の監視<em&gt;ガウ</em&gt;ルシフェラーゼSERCaMP

要約

Endoplasmic reticulum calcium homeostasis is disrupted in diverse pathologies. A secreted ER calcium monitoring protein (SERCaMP) reporter can be used to detect disruptions in the ER calcium store. This protocol describes the use of a Gaussia luciferase SERCaMP to examine ER calcium homeostasis in vitro and in vivo.

要約

小胞体（ER）は、細胞質のレベルよりも約5,000倍高い濃度で細胞内カルシウムの最高レベルを、含まれています。 ERカルシウムを厳格にコントロールは、タンパク質の折り畳み、修正や人身売買のために不可欠です。 ERカルシウムの摂動は、小胞体ストレス応答、三つ又のERストレス応答機構の活性化をもたらす、および種々の疾患で病因に寄与することができます。疾患の発症と進行の間に、ERカルシウムの変化を監視する能力は、実際にはまだ挑戦的、原理的には重要です。現在、このようなカルシウム依存性蛍光色素やタンパク質などERカルシウムを監視するための利用可能な方法は、細胞内の小胞体のカルシウム動態への洞察を提供してきたが、これらのツールは、in vivoでの研究のためにはあまり適していません。私たちの研究室では、 ガウシアルシフェラーゼのカルボキシ末端への変更は、に応じて、レポーターの分泌を与えることを実証しました小胞体カルシウム枯渇。 インビトロ及びインビボ用途においてルシフェラーゼベースの分泌ERカルシウム監視タンパク質（SERCaMP）を使用するための方法は、本明細書中に記載されています。このビデオでは、ERカルシウムの長手方向の監視のために肝臓の注射、GLUC-SERCaMP、血液収集および処理の薬理学的操作、およびアッセイパラメータを強調しています。

概要

タンパク質の折り畳み、タンパク質分泌、脂質ホメオスタシス、および^1の細胞内シグナル伝達を含む多くの細胞容量の小胞体（ER）機能。通常のER機能の中心は〜5000倍細胞質^2-4に見られるもので、管腔のカルシウム濃度を維持しています。このエネルギー集約的なプロセスはsarco /小胞体カルシウムATPアーゼ（SERCA）、ERへのカルシウムイオンを移動させるポンプによって調整されます。 ERからのカルシウムの流出は、主としてリアノジン（のRyR）およびイノシトール三リン酸（IP3R）受容体によって媒介されます。多くのERプロセスは、カルシウムに依存しているので、店を中断すると、小胞体ストレスと最終的に細胞死につながることができます。

ERのカルシウム調節不全は、心筋症、糖尿病、アルツハイマー病、およびパーキンソン病を含む⁵において観察されています。これらの疾患の進行性の性質のために、それは因果再描写するために挑戦されています小胞体カルシウムストアの病因および変更の間lationship。多くの技術は、染料および遺伝的にコードされたカルシウム指標（GECIs）を含む、ERカルシウム動態の理解における大きな進歩のために許可されています。 Ca 2+と結合すると蛍光の増加低親和性のカルシウム色素は、カルシウム⁶の高濃度の細胞内コンパートメントを調べるために、細胞内にロードすることができます。このようD1ERと捕手としてGECIs、細胞内局在^7-9のより正確な制御とカルシウムの変動の監視を可能にします。最近、GECIsの別のクラスは、カルシウム測定オルガネラ封入タンパク質指標（CEPIA）は^{10に記載されている}と呼ばれます。遺伝学とエステル系カルシウム色素^11（ERに標的化）遺伝的にコードされたカルボキシルエステラーゼを利用する小分子の化学的性質を標的エステラーゼされる色素充填（TED）を組み合わせた第三のアプローチ。

aforながらementionedアプローチは彼らが蛍光の急性測定によって、ERカルシウム動態に貴重な洞察を提供することができ、固有の長所と短所を持っています。これらは、しかしながら、多くの場合、疾患の進行を調査するために必要な縦断的研究のために最適ではありません。長時間にわたりカルシウム動態を監視するための方法を考案することを目的として、我々は、タンパク質^{（SERCaMPs）12を監視し} 、分泌小胞体カルシウムを作成するために、タンパク質修飾を特定し、開発しました。

SERCaMPを繰り返し、ERカルシウムストアを調べるために低侵襲的アプローチを提供することによって、他の方法に関連したいくつかの制限を回避します。我々は以前に、カルボキシ末端ペプチドASARTDL（アラニン、セリン、アラニン、アルギニン、トレオニン - アスパラギン酸 - ロイシン）がER保持を促進するのに十分であることを実証しました。しかしながら、ERカルシウムの減少を引き起こす条件下で、ペプチド配列は、もはやER localizatioを保持することができませんnと、タンパク質が¹³分泌されます。 SERCaMP技術の基礎は、分泌タンパク質のカルボキシ末端の分泌は、このように、ERのカルシウム調節不全¹²の強固なレポーターを作成し、小胞体カルシウム枯渇によってトリガーされるように（例えば、 ガウシアルシフェラーゼ 、またはGLUC）にASARTDLの付属物です。トランスジェニック方法によるGLUC-SERCaMPの発現は、ERカルシウム恒常性の指標としてGLUC活性の変化について分析される細胞培養培地および血漿などの生体液を可能にします。この方法は 、インビトロおよびインビボの両方のERカルシウムストアの進行変化の縦断的研究のための用途を有します。以下のプロトコルは、ERカルシウム恒常性を研究するためにGLUCベースSERCaMPを使用するための一般的なアウトラインとして書かれているが、このプロトコルは、代替レポーターSERCaMPsためのガイドとして機能することができます。

プロトコル

インビトロアッセイ 1：安定SH-SY5Y細胞株から検出SERCaMPリリース

1. 組織培養におけるプレートSH-SY5Y-Glucを-ASARTDL（SERCaMP）は、表面面積1cm ² 150,000個の細胞でプレートを処理しました。 96ウェルプレートについては、例えば、ウェルあたり50,000細胞（ 図1A）を播種。 DMEM（高グルコース、グルタ、ピルビン酸）+ 10％ウシ成長血清+ 1×ペニシリン/ストレプトマイシンで、SH-SY5Y細胞を成長させます。
   1. 15回（ 図1B）まで継代細胞。より高い継代数は、テストされていません。
   2. _5.5％CO 2で37℃の加湿インキュベーターに細胞を戻し、一晩インキュベートします。
2. 実験的治療（複数可）の前に、不透明に培養上清の5μLを転送することによって、各ウェルのベースラインサンプルを収集し、96ウェルプレートを壁。収集する前に、静かにすべての側面にプレートをタップして、グラデーション効果を回避するために、渦。接着剤Sとの不透明なプレートをシール酵素アッセイの時まで4℃でシートや店舗をイーリング。
   注：分泌GLUC-SERCaMPは、細胞培養培地中で非常に安定です。我々は以前GLUCの活性の約5〜10％が37°C（SH-SY5Y細胞上でインキュベート^）12で72時間のインキュベーション後に失われたと報告しました。
3. 小胞体カルシウム枯渇を調べるために、必要に応じて（例えば、環境、薬理学的、遺伝子操作）細胞を処理します。 pHの変化が急速に大気中のCO ₂で発生するように、周囲の環境（制御インキュベーターの外）への長い露出を避けてください。長期の操作が必要な場合、pHが^{14を安定させるために} 、20 mmに培地にHEPESを加えます。培地^15に HEPESを使用した場合、光への露出を避けてください。
   1. 陽性対照：SH-SY5Y細胞での実験のために4-6時間、100 nmのタプシガルジン（Tg）がまたは50μMのシクロピアゾン酸（CPA）で細胞を処理します。他の細胞株での最大応答は、長いインキュベーションまたは異なるconcenを必要とするかもしれません化合物のtrations。
   2. ネガティブコントロール：親のSH-SY5Y細胞から培地を収集します。我々の経験では、このアッセイのバックグラウンド発光は、安定したSH-SY5Y-Glucを-SERCaMP細胞からの基礎分泌の0.05％未満です。
4. ステップ1.2で説明したように、希望する時点で馴化培地の5μlのサンプルを収集し、保存します。
5. 第5章で説明したように培地中に酵素活性を評価します。
6. イムノブロットまたは発光アッセイによる細胞内GLUCを調べます。
   1. 50mMトリス（pH7.4）中、150mMのNaCl、0.25％デオキシコール酸ナトリウム、1mMのEDTA、1％NP40を含む改変RIPA緩衝液中の溶解細胞、およびプロテアーゼ阻害剤：イムノブロットしました。 SDSポリアクリルアミドゲルおよび0.20μmのPVDF膜への転写に分離します。 4℃で一晩：（2000希釈1）GLUC抗体で膜をインキュベートします。選択した検出試薬のためのユーザー定義のプロトコルに従って二次抗体インキュベーションおよび膜の洗浄を行います。
   2. ための発光アッセイ（ 図2）：氷の上で次の手順を実行します。
      1. 組織培養プレートのウェルからすべての培地を除去し、冷PBS200μlですすいでください。
      2. 各ウェルに、50mMのトリス（pH7.5）を、150mMのNaCl、1％NP40を含有する溶解緩衝液およびプロテアーゼ阻害剤の75μLを加えます。
      3. 4℃で20分間オ​​ービタルシェーカー（120 rpm）でのプレートを回転させます。
      4. 静かにまで及び、マルチチャンネルピペッターを用いて空気の泡を避けダウン溶解液をピペット。不透明なプレートに溶解物の5μLを移し、第5章で説明したように発光を評価します。

インビトロアッセイ 2：SERCaMPと不死化細胞の一過性トランスフェクション

注：私たちは、一過性トランスフェクション手順は、細胞ストレスを誘導し、その後のGLUC-SERCaMP応答を鈍らできることを観察しました。次の方法は、トランスフェクションのEFFを最小化するために開発されました SH-SY5Y細胞におけるクト。別の細胞株について（トランスフェクション試薬の選択を含む）は、この手順の最適化が必要とされ得ます。可能な場合には、それぞれセクション1と3で概説した安定な細胞株またはウイルス形質導入法を使用することをお勧めします。

1. 4×10 ^6細胞で100 mmディッシュでプレートSH-SY5Y細胞。この料理は、トランスフェクションの手順に従って再シード約300ウェル（96ウェルプレートフォーマット）するのに十分であろう。
2. （GLUC-SERCaMPをコードする）プラスミドDNAの20μgのを使用してXfect試薬で細胞をトランスフェクトし、Xfect試薬6μlの。大きいか小さい培養容器のためのそれに応じてスケールのDNAとXfect試薬。
3. 48時間インキュベーターにセルを返します。
4. 細胞をトリプシン処理し、ウェル当たり60,000個の細胞で96ウェルプレートに再シード。第1節で概説し、その後の手順に従ってください。

インビトロアッセイ 3：GLUC-SERCaMPのウイルスベクター媒介発現

10トン">注：アデノ随伴ウイルス（AAV）ベクターパッケージング¹⁶と精製¹²とレンチウイルス生産^{13は、以前に報告されて}います。

1. 以下のプライマーおよびプローブを使用して、力価GLUC-SERCaMP AAV：フォワードプライマー、5'-CACGCCCAAGATGAAGAAGT-3 ';リバースプライマー、5'-GAACCCAGGAATCTCAGGAATG-3 '。プローブ（5'-6-FAM / 3'-BHQ-1ラベル）定量的PCRのため、5'-TACGAAGGCGACAAAGAGTCCGC-3 '。
   1. GLUCを含むプラスミドを線形化し、スピンカラム（ 例えば Machery-ナーゲルNUCLEOSPINゲルおよびPCRクリーンアップ）を用いてDNAを精製することにより、標準曲線を準備します。質量ラダーと一緒にアガロースゲル上で分離してDNAを定量。 PBS中10 FG / mlのミリリットル100 PG /からのDNA 1:10希釈液を調製します。プラスミドの分子量に基づいて、濃度のそれぞれでGLUCプラスミドDNAのコピー/ mlを計算します。
   2. PBS中でのAAVストックを希釈する（適切な希釈は、に依存することになりますウイルス調製物と経験的に決定される）のパラメータを設定します。
   3. 以下の条件を用いてリアルタイムPCRシステムでPCR反応を実行する：95℃×5分間、94°Cで41サイクルの間、1分20秒×、および60℃×。標準曲線を用いてコピー/ mlを計算します。
2. P24レンチ-X急速力価キットでタイターレンチウイルス。氷の上にレンチウイルスのアリコートを解凍し、SH-SY5Y培地中のp24制御タンパク質を希釈します。
   1. それは標準曲線（20,000または1 10万例 1）に落ちるようにレンチウイルスを希釈します。必要な希釈率は、レンチウイルスの調製パラメータに基づいて変動するため、経験的に決定されなければなりません。後続のすべての手順については、製造元の指示に従ってください。
3. 96ウェルプレートにプレート細胞。 SH-SY5Y細胞は、第1節で概説メッキ手順に従うことができます。ラット一次皮質ニューロンのために、細胞を単離し、適切にコーティングされたプレート上に播種されるべきですSは、以前に^16を説明しました。 1X B27および500μMのL-グルタミンを補充したNeurobasal培地中でラット初代皮質ニューロンを維持します。一日おきに培地の半分交換を行います。
4. ウイルスを細胞に形質導入​​します。 ガウシアルシフェラーゼは、強いシグナルを提供するように、ウイルス形質導入の目的は、低レベルの発現を達成することです。
   1. AAV導入SH-SY5Y細胞：メッキ翌日伝達します。 AAV希釈バッファー（PBS + 0.5mMの_MgCl 2を）に6.0×10 ⁷ VG /μlにAAVを希釈します。 （;約6000のMOI 3.0×10 ⁸ VG）を96ウェルプレート（ 図3A）のウェルあたり希釈AAVの5μLを加えます。ウイルスベクターの廃棄物を不活性化するために、10％の漂白剤を使用してください。
   2. ラット一次皮質ニューロンのAAV導入：6-8日、めっき後に伝達します。 AAVの希釈緩衝液中4.0×10 ⁶ VG /μlにAAVを希釈します。ウェルあたり、希釈されたAAVの5μL（約350のMOI 2.0×10 ⁷ VG）を追加します96ウェルプレート（図3B）。最適なMOIは、他の細胞型のために経験的に決定されるべきです。ウイルスベクターの廃棄物を不活性化するために、10％の漂白剤を使用してください。
   3. SH-SY5Y細胞のレンチウイルス形質導入：メッキ翌日を伝達します。ハンクス平衡塩溶液（濃度は滴定キットを用いて測定）は20pg /μlのP24にレンチウイルスを希釈します。 100μlのボリュームを含む96ウェルプレートの希釈ウェルあたりウイルス（1,250,000レンチウイルス粒子に相当のp24の100頁、または〜1,250 IFUs）の5μLを追加します。大きなフォーマットのそれに応じてスケール。ウイルスの廃棄物を不活性化するために、10％の漂白剤を使用してください。
5. メディアの前処理サンプルを収集し、実験的治療を48時間（SH-SY5Y）または形質導入後5-7日（ラット一次皮質ニューロン）を開始します。

インビボアッセイSERCaMP 4.

注意：任意の動物手順は、あなたの機関を通じて、適切な承認を得るようにしてください実施する前に。オール生存手術は、十分な麻酔を用いて無菌条件下で行われるべきです。以下で説明するすべての手順は、承認され、NIH ACUCガイドラインに準拠しているされています。

1. オートクレーブ外科手術器具（121℃、30分間殺菌、20分の乾燥時間）の開始前。すぐにすべての手続きとオートクレーブの前に、次の超音波装置内のすべての機器を清掃してください。生存手術中に無菌状態を維持します。複数の動物を必要とする手術の場合、70％のアルコール、ultrasonicateとビードラットの間で殺菌と手術器具を拭きます。必要な機器のための材料リストを参照してください。
2. 手術のためにラットを準備します。ここでは、オスのスプラーグ - ドーリー（180〜200グラム）を使用します。
   1. キシラジン（8mg / kg）およびケタミン（/ kgを80 mg）を腹腔内注射に続いて3分（4〜5％がイソフルラン千CC /分で供給）するためのガスイソフルランを使用して、ラットを麻酔。乾燥から角膜を保護するための眼軟膏を適用します。 B尾や足のピンチ次引っ込め反射の欠如によって示されるように、ラット一度egin手術を深く麻酔しています。
   2. 少し半ば腹部にリブ（低胸部）の下に腹部領域を剃ります。 70％アルコールおよびベタジンスクラブを交互に、手術領域を3回スクラブ。滅菌外科用ドレープと滅菌手術領域に仰臥位にラットを置きます。
3. ⁹ VG / ml（最終濃度）7.6×10にAAV-Glucを-SERCaMPを希釈します。チューブを反転させてよく混ぜます。
   注意：ウイルス濃度の範囲は（ 図4）を変化させることができます。
   1. ピペット滅菌皿に希釈されたAAVの105μlの。シリンジにウイルスを収集するために30ゲージの針を使用してください。
4. 肝臓を露出させ、AAV-Glucを-SERCaMPを注入する手術を行います。
   1. 腹部切開を行う前に、切開領域に0.25％ブピバカインを適用します。メスを用いて、胸郭の下に水平切開（APを作ります近接2-3センチ）。ブラントは、皮下組織からの結合組織を分離するために解剖します。
   2. 肝臓の右中葉を露出させ、腹筋をカット。
      注意：追加のローブは、最終用途に基づいて注入することができます。
   3. 手術用顕微鏡下で動物を置き、視野内の肝臓の右中葉を取得するために調整します。内側ローブの実質にウイルスを注入。 3つの別々のサイト、サイトあたり約33μlの。
      注意：全体の注入量の配信を保証するために、注入後5〜10秒間、組織に針を残します。
   4. 別々に腹筋と皮膚を縫合糸と綿チップソーアプリケーターを用いてネオスポリンを追加します。意識を取り戻し、ラットが直立位置を維持することができるされるまで、回復室にラットを置きます。それは胸骨横臥位を維持するのに十分な意識を取り戻したまでラット（複数可）、無人のままにしないでください。ハウスは単独まで切開が治癒したと縫合糸は、（7-14日）削除されました。
      注：NIH手術後のガイドラインに従って、外科的な記録を維持します。手順、日付、実験識別子、体重、および手術の日にケージカードに注釈を付けます。痛み/苦痛、糞の生産、活動、食品や水の消費量を監視し、3日後に手術を記録します。術後鎮痛は、我々は通常、手術後の痛みや苦痛の徴候を観察していないが、飲料水（450ミリグラム/ 100 CC）にアセトアミノフェンを添加することにより提供されます。
5. 4-7日注射後の尾採血を開始します。標識し、事前に計量することによって採血管を準備します。各チューブに50μlのヘパリン（千U / ml）を追加します。
6. 3分間イソフルラン麻酔室に入れラット（4〜5％イソフルラン1,000 CC /分で供給）。 （500のcc /分で供給2〜3％イソフルラン）ノーズコーン内チャンバーと場所からラットを削除します。テールパイを次の引っ込め反射の欠如によって示されるように、採血はラットを深く麻酔されると開始することができますNCH​​。
   1. 滅菌はさみを使用すると、（1-2 mm）の尾の先端をカットし、予め充填されたヘパリンチューブに血液滴下を収集します。ヘパリン比（> 100μlの血液/ 50μlのヘパリン）に1血液：ボリュームが2より大きいに達するまで血液を採取します。採血ボリュームが実験計画に基づいて調整することができます。出血を止めるために末尾に止血粉を適用するために湿った綿棒を使用してください。
   2. 4℃で保存血管以降のサンプルを収集する場合。コレクション間で滅菌エタノールパッドとビーズとハサミを拭いてください。
   3. コレクションチューブを秤量し、2得るためにヘパリンを調整する：1の比率（血液：ヘパリン）。このステップは、各サンプル（ 表1）でのヘパリンの量を正規化します。
   4. 4℃で5分間、2,000×gで遠心分離管。ルシフェラーゼアッセイ（第5節）の時まで-80℃で新鮮なチューブやストアに上清（血漿）を転送します。
      注：前に酵素アッセイに72時間まで4℃でサンプルの保存はメートルを持っています発光（ 図5A）にinimal効果。血漿試料の3回の凍結融解サイクルまでの発光（ 図5B）に影響を及ぼさありません。
7. タプシガルジン管理（陽性コントロール）：
   1. 2.5 mg / mlの最終濃度までエタノール中に希釈することにより調製タプシガルギン。下腹部には1mg / kg、腹腔内でタプシガルギン注入します。
      注意：タプシガルギンは、トロンビン誘導血小板凝集^{17が増加し、}尾からの採血をより困難にすることができます。
8. ガウシアルシフェラーゼアッセイ：
   1. 氷上で血漿サンプルを解凍します。
      縦の研究のため、解凍し、同じ日にすべての時点のサンプルに対して発光アッセイを行う（基板の単一の製剤を使用して）：注意してください。
   2. 不透明な壁のプレートに移し、血漿を10μlと部5を実行し、各血漿サンプルの3-4技術的反復で説明したように、酵素活性を測定します。
9. EuthanasiA
   注意：SERCaMP技術の利点は、モニタ、ERカルシウムを縦にする機能です。実験パラメータおよびエンドポイント分析に応じて、動物は、エンドポイント分析のための適切かつ制度的ACUCのガイドラインに従った措置により安楽死させなければなりません。

5.発光アッセイ

1. 20 mMの（メタノール3mlに10 N HClを30μl）を酸性化メタノールに化合物を希釈することによりセレンテラジン（CTZ）のストック溶液を準備します。単回使用のアリコートを調製し、-80℃で保存します。
2. アッセイの日に作業基板を準備します。
   1. in vitroアッセイは、 例えば 、PBS中の8μmのセレンテラジンを希釈し、PBS 25 mlに20 mMのCTZの株式の10μlを添加する（ 図6A、B）。
   2. インビボのアッセイのために、PBS中の100μM、500 mMのアスコルビン酸、5 mMの塩化ナトリウムにセレンテラジンを希釈します。
3. 少なくとも30分間準備CTZをインキュベートアッセイを開始する前に、室温で。
   注：準備の後の最初の30分間の急速な基板崩壊の報告があるので、このステップは、多くの場合、ガウシアルシフェラーゼアッセイに含まれています。当社は、当社のシステム（ 図6C）で、この効果を確認されていません。私たちは、アッセイに負の影響を発見したとしてしかし、私たちはしばしば、インキュベーション工程が含まれます。
4. 生物発光を監視し、基板インジェクターを装備することが可能なプレートリーダーを使用してください。プライム基板とのライン。
   注：ラインを介して初期基板が劣化しやすくなります。初期のサンプルのための人為的な低読みを避けるために、実験試料を測定する前に20〜30空のウェル（リーダーで空のプレートをロードする）を注入します。
5. ウェルに100μlの基質を注入し、5秒間中速を振るし、発光を測定します。バイオテックシナジーIIプレートリーダーのために （0.5秒かけて（in vitroでのサンプル）と5秒の発光を統合読み取りステップのための生体サンプル）。理想的なアッセイ性能のためのプレートリーダーのパラメータを最適化します。
   注：（他のルシフェラーゼで観察動態をグローと比較して）急速な信号減衰とガウシアルシフェラーゼの展示フラッシュ動態。 GLUCのフラッシュ速度は、サンプルの両端の培地組成をコントロールすることの重要性を強調し、細胞培養培地（ 図7A）の血清によって影響されます。これにより、基板（フラッシュ動態）を追加した後の発光の急速な崩壊、注入およびすべてのサンプルについて均一でなければならない手順をお読みの間の時間に。プレートリーダーは、（我々は5秒シェイクステップを使用など ）、およびそのほかの読み取り一定時間を待って、ウェルに基質を注入するように設定する必要があります。基板は、同時に全てのウェルに添加することができない限り、読み取り前に、プレート全体に基板を追加すると、重要な課題を提起します。インジェクタが利用できない場合、問題は、部分的に基板のaddiの間で10分間、プレートをインキュベートすることによって回避することができますると測定（したがって、減衰曲線の急峻な部分を回避する）（ 図7B）。
6. 注射を繰り返し、時間を待って、プレート上の各ウェルのための手順をお読みください。

結果

GLUC-SERCaMP方法は、細胞外液をサンプリングすることにより、ERカルシウム恒常性の評価が可能になります。いくつかのコントロールは、結果の解釈を強化するために実験計画に含めることができます。まず、（C末端ASARTDLまたは「GLUC-タグはありません」なし例えば GLUC）構成的に分泌されたレポーターの使用は分泌経路（グローバル細胞分泌）および導入遺伝子発現に関する実験治療?...

ディスカッション

このプロトコルは 、インビトロを強調し、GLUC-SERCaMPの生体ユーティリティで、ERカルシウムの枯渇をモニターします。 SERCaMPを生成するタンパク質修飾は、他のレポータータンパク質¹²に一般に見えますが、我々は他のルシフェラーゼ¹⁸と比較して（200〜1,000倍以上）の強固な生物発光のためのガウシアルシフェラーゼを選択しました。私たちは、初?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
1.5 ml tubes	Fisher	02-682-550
10% NP-40 solution	Pierce	28324	for intracellular GLuc assays
1 ml luer-lok syringes	Fisher	14-823-30
200 microliter filter tips	Rainin	RT-L200F
3-0 surgical sutures	Fisher	NC9598192
30 G needles	Fisher Scientific	14-821-13A
Adhesive microplate sealing sheets	Thermo	AB-0558
Alcohol prep pads	Fisher	22-246-073
Anesthesia Auto Flow System	E-Z Anesthesia	EZ-AF9000
Animal recovery chamber	Lyon Vet	ICU-912-004
B27 supplement	Life Technologies	17504-044
Betadine solution	Fisher	NC9386574
Bleach	Clorox	n/a
Bovine growth serum	Thermo	SH30541.03
Coelenterazine, Native	Regis Technologies	1-361204-200
Cotton tipped applicators	Puritan	806-WC
Cutting needles 3/8 circle sutures	WPI	501803
Digital ultrasconic cleaner	Fisher Scientific	FS60D
DMEM high glucose, GlutaMAX, pyruvate	Life Technologies	10569-010
DNA mass ladder	Life Technologies	10496-016
Gaussia luciferase (recombinant protein)	Nanolight	321-100
Gaussia luciferase antibody (for WB, ICC, or IHC)	New England Biolabs	E8023S	1:2,000 (WB)
Germinator 500	CellPoint Scientific	DS-401
Gluc assay plates (96 well, opaque)	Fisher	07-200-589
Hank's balanced salt solution	Life Technologies	14175-095
Heparin	Allmedtech	63323-276-02
Isoflurane	Butler Schein	29404
Ketamine	Henry Schein	995-2949
Kwik Stop Styptic powder	Butler Schein	5867
L-glutamine	Sigma	G8540
Methanol	Fisher	a452-4
Microfuge 22R Centrifuge	Bekman Colter	368831
Neosporin	Fisher	19-898-143
Neurobasal medium	Life Technologies	21103049
Nikon Stereoscope	Nikon	SMZ745T
Nucleospin Gel and PCR Cleanup	Machery-Nagel	740609
P200 pipet	Rainin	L-200XLS+
p24 Lenti-X rapid titer kit	Clontech	632200
PCR film seal	Fisher	AB0558
Penicillin/streptomycin	Life Technologies	15140-122
Protease inhibitor cocktail	Sigma	P8340
ReFresh Charcoal Filter canister	E-Z Anesthesia	EZ-258
Scalpel blades, #10	Fine Science tools Inc	10010-00
SD rats 150-200 g	Charles River	Rats	rats ordered at 150-200 g.  Surgery 5 days after arrival
Small animal ear tags	National Band and Tag co	1005-1
Sterile surgical drapes	Braintree Scientific	SP-MPS
Synergy 2 plate reader	BioTek	n/a
TaqMan Universal PCR Master Mix	Applied Biosystems	4304437
Thapsigargin	Sigma	T9033	harmful to human health
Virapower lentiviral packaging mix	Life Technologies	K4975-00
Xfect Transfection reagent	Clontech	631318
Xylazine	Valley Vet	468RX