接種<em&gt;ハマダラカ</emメラニン免疫応答を誘導し、測定するためにビーズと&gt;蚊

要約

Through inoculation with beads, the described technique enables the stimulation of the mosquito melanization response in the hemolymph circulating system. The amount of melanin covering the beads can be measured after dissection as a measure of the immune response.

要約

免疫応答の刺激は、有効性と免疫のメカニズムを検討する無脊椎動物研究における一般的なツールです。粒子は免疫系によって検出され、免疫エフェクターの産生を誘導するように、この刺激は、昆虫への非病原性粒子の注射に基づいています。私たちは、蚊ハマダラカにおけるメラニンの応答の刺激にここに焦点を当てます。メラニンの応答は、メラニンの暗い層で異物や寄生虫のカプセル化につながります。この応答を刺激するために、蚊は、微小ガラス管を用いて胸腔内のビーズを用いて接種します。そして、24時間後に、蚊がビーズを取得するために解剖されています。ビーズのメラニンの程度は画像分析ソフトウエアを用いて測定されます。ビーズは、病原性寄生虫の効果、または免疫応答を回避または抑制するための能力を持っていません。これらの注射は、measuする方法です免疫有効性及びそのような繁殖力や長寿などの他の生活史形質、上の免疫刺激の影響再。これは、直接宿主 - 寄生虫相互作用を研究するとまったく同じではありませんが、免疫力とその進化生態学を研究するための興味深いツールです。

概要

そのキューティクルまたはそれらの中腸上皮⁴を通して破る^{3 -}昆虫は寄生虫や病原体¹から身を守るために免疫応答に依存しています。蚊では、これらの応答は、細菌^5、ウイルス^6、フィラリア線虫^7、およびマラリア原虫^1,8,9に対して効率的です。 ^{12 -}蚊では、キー免疫応答は、メラニン¹⁰で異物をカプセル化したものです。 ^{12 -}このカプセル化は、中腸内または血リンパ循環システム¹⁰に発生する可能性があります。このメラニン応答は、プロフェノールオキシダーゼカスケード¹⁰の結果である^{- 12、}そしてそれは寄生虫の死に、またはそれらの食作用につながることができます。血球細胞の数は限られている大人の蚊では、メラニンは、マラリア原虫の寄生虫やフィラリア線虫⁷に対してのように、体液性応答です。いくつかの他の昆虫では、それは直接⁷メラニン化するために寄生虫の周りに集まる血球細胞です。また、メラニンは^7治癒産卵とキューティクルの傷のようないくつかの他の生理学的プロセスのためにも不可欠です。

^{18 -}免疫応答の刺激は、いくつかの農業および公衆衛生モデル系¹³の昆虫耐性を研究するためのツールとして使用されます。 ^{16,19 -}宿主-寄生虫相互作用^14を研究するハマダラカ蚊、アフリカにおけるマラリアの主要なベクトルで使用されています。これらの技術は、それらのパターン認識受容体^（PRR）2で寄生虫を検出するために、昆虫の能力に基づいています。蚊はまた、病原体関連分子パターン（PAMP）のようなそれらの生物学的に干渉する他の分子を検出する、またはコラーゲンおよび核酸の放出に起因する独自の損傷した細胞を検出することができます。蚊免疫細胞^{23 -}このような血球などの検出²⁰のために使用されています。主な免疫シグナル伝達経路は、IMD、トール、JAK / STAT ^24、およびリボ核酸干渉^{（RNAi）25,26}です。トールおよびIMD経路の両方は、メラニンの応答に影響を及ぼし、プロフェノールオキシダーゼカスケード¹⁰との対話^{- 12。}

メラニンの応答を刺激するために使用される標準的なツールは、胸腔の血リンパ中に小さなビーズと蚊の接種です。メラニンのカプセル化の程度は、その後、蚊の切開を介してビーズを回収した後^、19を測定することができます。ほとんどの研究では、唯一のビーズは蚊^15,16,27毎に注入したが、より多くのビーズを注入すると、メラニン応答¹⁹の限界を研究するために可能です。これらのビーズは、蚊の生理機能の妨害を制限するために、注射液（生理血清）を使用して注入され、蚊^15,16,27の乾燥。色素は、ビーズの選択を容易にするためにこの溶液に添加します。これは、ビーズ^15,16,27を取得するために使用される解剖ソリューションについても同様です。

非病原性の刺激で虫を接種することの利点は、免疫応答に直接影響に焦点を当てることができることです。 ^31、または免疫回避^{31 - - 34}による寄生病原^28、免疫抑制²⁹への複雑な効果はありません。また、このような寿命や産卵数などの他の生活史形質、上の刺激の結果は、また、研究することができます。したがって、進化生態学を研究する研究者は、このようなツール^2,35,36が必要な場合があります。例えば、免疫挑戦マルハナバチは、飢餓の下に短縮寿命を持っています。免疫刺激と展開の同様の負の効果は、多くの場合、短いで、その結果、別の無脊椎動物のモデルで観察されていますえー寿命以下繁殖成功^13,27,37。このような研究は、環境に^2,4,38を変えて実施することができます。免疫力を刺激することも免疫病理^39,40に直接焦点を当てたものに興味があります。

このプロトコルは、メラニン応答を刺激し、直接メラニンの量を測定するために蚊を有するビーズの接種に基づいています。これは、異なる実験設定でメラニン応答の定量的および定性的な研究を可能にします。このようなツールは、加熱死菌⁴¹に抗菌性応答などの他の免疫応答の刺激に拡張することができます。また、多くの生態系の設定で行うことができます。

プロトコル

注射や解剖1.生理食塩水

1. pH値= 6.8で1.3のNaCl、0.5mMのKClと0.2 mMのCaCl ₂を_を得るために_、蒸留水に塩化ナトリウム、塩化カリウム、および_塩化カルシウム_を添加することにより、生理食塩水を準備します。
2. 透明ビーズを着色するために生理食塩水の99ミリリットルに0.1％メチルグリーン溶液1mlを追加します。これは、0.001％メチルグリーン」注射液」です。
3. その後、生理食塩水45mlの0.1％メチルグリーン溶液5mlを追加します。この0.01％メチルグリーン」解剖溶液」切開中のビーズの着色とその観察を容易にするために、メチルグリーンで10倍に濃縮します。
   注：必要に応じてバッファを殺菌フィルター。

2.キャピラリーの準備

1. 熱プルマイクロキャピラリーガラス管最小のビーズ（φ= 40μm）の⁴²よりもわずかに大きい非常に微細な先端を得ることができます。
2. オープンとAピンセットでチップを破壊したり、先端をオフにソーイングすることにより、各キャピラリをdjust。

3.蚊飼育

1. 26±1℃でリアのA.ハマダラカ 、70±5％の相対湿度、12：12時間の明：暗サイクル。成人女性を維持し、それらを10％糖液へのアクセスを与えます。

キャピラリー4.ビーズ選択

1. 5センチメートルペトリ皿に負に帯電したビーズ（直径40〜120ミクロン）の0.009グラムを注ぎ、事前に注射液の30分の5ミリリットルを追加します。
   注：目標は、注射のためのビーズ選択を容易にするために、染料の色にビーズをできるようにすることです。彼らは無菌ジャーに来ていない場合は、ビーズをオートクレーブ。
2. キャピラリーピペット電球に搭載されたキャピラリーを用いて、視覚的に双眼顕微鏡下での生理食塩水0.1μlの最小のビーズを選択します。
   注：同時に複数のビーズを接種すると、0.1マイクロリットルの総容積から3ビーズを選択します。

5.モスキート処理および接種

1. 昆虫吸引器を使用して、50ミリリットルチューブに各蚊を置きます。
2. 砕いた氷（2-5分）にチューブを配置することによって、簡単に各蚊を冷やします。
3. 双眼顕微鏡下でその右側に蚊を置きます。
4. 実体顕微鏡下で、しっかりと胸腔のキューティクルの左側を貫通した後、液体やビーズを注入することにより、キャピラリーで蚊を接種します。
   注：可能な限り蚊に同様に垂直にキャピラリーを保持することにより、飛翔筋を傷つけないように注意してください。
5. 毛細血管を削除します。
6. フェザー級昆虫学の鉗子を使用して、蚊帳で覆われた180ミリリットルのプラスチックカップに個別に女性を配置。彼らに10％の糖溶液へのアクセスを与えます。
   注：蚊は、糖液滴にはまり込むことができるように注意、糖液で必要とされます。

6.モスキート解剖とビーズの写真

1. 蚊が接種後24時間生きているかどうかを確認してください。もしそうであれば、その状態を確認し、飛ぶことができますだけで蚊を保ちます。
2. -20℃で、これらの蚊をフリーズします。
   注：必要に応じて彼らは、解剖の前に数ヶ月に数日間維持することができます。
3. 32Xの倍率で双眼顕微鏡下でピンセットを使って蚊羽を削除します。透明テープでスライドガラス上に翼を固定してください。各個々の蚊のために使用されるコードを書き留めます。
4. スキャナでガラススライドを入れて、1200 dpiでそれらをスキャンします。
   注：コードは、個々の蚊のために読み取り可能であることを確認してください。
5. ガラス顕微鏡スライド上にと解剖溶液中で、頭部と腹部から胸部を分離するために鉗子を使用しています。
6. ビーズを取得するために鉗子で胸部を開きます。
   注：腹部に移動しないビーズは、互いに接触しておらず、それらのほとんどがTで自由に浮きます彼は血リンパ。非メラニンビーズを見つけるのは厳しいものになる可能性があるため、ピンセットでビーズを壊さないように注意してください。色を得るためにビーズ1〜5分間待ってください。
7. 写真を撮る前に、ガラス顕微鏡スライド上の解剖液の液滴中にビーズを転送します。
   注：ビーズを洗浄する必要はありません。
8. カメラを備えた顕微鏡を使用して、標準の照明設定と400Xの倍率で各ビーズのデジタル画像を撮ります。
   注：彼らの比較を可能にするために、異なる画像間の照明を変更しないでください。

7.画像解析：ビーズメラニン

1. 画像解析ソフトウェアを開きます。 「ファイル」をクリックして、「開く」をビーズ画像を見つけること。
2. クリックして「分析」。クリックして「設定の測定値。 " 「セット測定」ウィンドウで「グレイ平均値」ボックスにチェックを入れ。
3. サークル選択ツールアイコンをクリックします。ビーズ周囲を選択します。に残りますビーズを左右し、その周りに明るいハローを避けます。
4. 「分析」メニューをクリックします。クリックして「尺度。」ビーズの断面積の平均グレー値とサイズを取得します。
   1. 「 - 灰色の平均値256。」：各ビーズのメラニン値を取得するには、電卓や計算機のソフトウェアを使用して、次の操作を行いますメラニンの尺度は0が完全に白画像を表すと、0と256の間の値です。

結果

いくつかのビーズが少ない他よりもメラニン（ 図1）で覆われていたとして蚊は、同じようにビーズをメラニン化するすべてではないでした。実際、いくつかのビーズが（ 図1）他の人が完全に暗くしたのに対し、理由メラニンの不足の青のままでした。メラニン値（青およびunmelanizedビーズに相当）が0と100（暗いと高メラニンビーズに?...

ディスカッション

この注入法は、蚊におけるメラニンの応答を刺激し、検討することが有用です。例えば、ここでは、免疫刺激負荷の影響を検討しました。

この手順の重要なステップは、適切に蚊に接種することです。飛翔筋または蚊自体への過度な損傷が給紙から蚊を防ぐことができるか、解剖の前にそれを殺すことができます。第二の重要なステップは、それらを殺すことなく、そ?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Microcapillary glass tubes GB120TF-10	science-products.com	GB120TF-10	http://www.science-products.com/Products/CatalogG/Glass/Glass.html
Microcaps Capillary pipette bulb	Drumond	1-000-9000
negatively charged Sephadex CM C-25 beads	Sigma-Aldrich, Steinheim, Germany	C25120 SIGMA	need few to start
Methyl green	Sigma-Aldrich	323829 ALDRICH	need few to start
Software ImageJ	opensource		Version 1.47f7 or later