マウス モデルにおける膵島の門脈内移植

要約

膵島移植で 1 型糖尿病な場合を達成するために道はあります。糖尿病マウスの通常のブドウ糖のレベルを維持するために門脈内のルートを通じて移植技術について説明します。

要約

高血糖を抑える膵島移植は化学的に誘発性糖尿病を持つ齧歯類で非常に成功しました。実験的膵島移植における最も一般的な移植サイトは腎被膜です。ただし、以下は膵島の血液成分との相互作用について知られている、また理にかなって実験的膵島移植における門脈アプローチを利用します。

このプロトコルは、当所ヌードマウスにおける門脈内の膵島移植技術を示しています。ストレプトゾトシン (180 mg/kg) を受信者のマウスにおける高血糖を誘発する腹腔内注入します。20 ミリ モル/l. より大きい非空腹時血糖で糖尿病と見なされます1 日、移植前にマウスの膵島がドナーの膵臓由来のコラゲナーゼの消化力; によって350 小島の最小値は、糖尿病の受信者ごと利用されています。膵島分離歩留まりによりますが、2 つ以上のドナー マウス受信者ごとに活用されます。37 ° C で一晩培養後の小島は門脈を介して受信者の肝臓に管理されています。マウスの赤い「マクロロン」家で保護されているとまで観察の手術後、目を覚ましています。このプロトコルは、同系マウスの 120 日間と同種のマウスで 15 日間の血糖コントロールを維持します。

概要

膵島移植は、タイプ 1 の糖尿病¹の治療に有望なアプローチです。糖尿病患者に羊膵フラグメントを転送する最初の試みは 1893 年にワトソン ウィリアムズが行った。臨床膵島移植で画期的だったエドモントンの議定書を達成し、その後、国家プログラムのシリーズが開発された²。過去には、前臨床モデルで骨髄、大網ポーチ、筋肉内地域、胃粘膜、脾臓、腎臓のカプセルなど、いくつかのサイトを検討したが、門脈系は適切かつ効果的なサイトの 1 つとして考慮されます。臨床プログラム^3,4,5,6。

インスリンの外因性投与は、アイレット門脈内注入によって置き換えることができます。これは酸素の供給がポータル動脈と静脈の合流点の下流の場所のためのネイティブの膵臓に匹敵するので最寄りのサイトと見なされます。また、小島の立体構造を保持することがありますので、大きい表面積があるし、血管新生促進⁵ができます。糖尿病マウスの受信者、2,000 の人間や豚の膵島同等または 350 マウス島高血糖状態^7、8を逆に適切です。外因のレベルは、同系マウスに移植に 120 日以上の異種膵島と同種のマウス-マウス モデルにおけるマウスの受信者モデルで 15 日間の報告されました。

門脈を介して膵島移植の有効性に関連する要因は、適切な麻酔穿刺・止血⁹法です。麻酔は、吸入 (5% イソフルラン) または (ケタミン、キシラジン、またはペントバルビ タール) の注入によって誘起することし、物質は頻繁に結合されます。深さの制御と麻酔の時間は、マウス、色の粘膜、目の蓋、角膜反射、呼吸数、体温などの状態に留意する必要があります。動物の苦労はないとそれが操作を存続を確保することが重要です。赤電球に、加熱パッドなどの異なる暖房機器で温度を維持できるなどの暖かいサーマル プレートはマウスとの発生を防止する操作テーブルの間 25-30 ° C の温度を維持するために使用されています低体温症。麻酔薬の投与量が重要で、それらのすべては、肝臓で代謝され、肝機能は一過性島ペンション.の注入によって乱れることがあります。門脈の理想的な穿刺のポイントは、最初と 2 番目の支流静脈間位置です。

小島と意図した注入量の数は、過剰なボリュームは、せん断応力を高める可能性がありますとも、移植の結果に影響を与えます。0.2 mL ボリュームは門脈に膵島移植に適したと見なされます。貫通傷 (26 g 針) は、タイムリーかつ効果的な方法で停止する必要がある門脈からの出血を誘発します。約 6 分、出血を止めるための穿刺のサイトで最低限の圧力で滅菌ガーゼまたは指を適用できます。撮影一緒に、ポータルの膵島の注入は効果的な化学物質誘発糖尿病マウスの血糖値を規制を提供しています。

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プロトコル

このプロトコルのすべてのプロシージャは、ドイツ動物福祉法及びガイドラインで承認されています。10-12 週齢当所ヌードマウスと c57bl/6 マウスの使用を検討 (ドナー: 古い女性; 受信者: 男性) 実験中。膵島分離に当所ヌードマウスを使用します。ローカル動物施設の規則に従って定義された条件の下でマウスを維持します。

1. 誘導によるストレプトゾトシン糖尿病の

1. -4 日 12 週齢当所ヌードマウスと c57bl/6 マウスの計量機を使用して 10 の体重を測定します。
2. 測定体重に従ってマウスあたり生理食塩水を 0.1 mL のストレプトゾトシンの 180 mg/kg の線量を準備します。
   注: ストレプトゾトシン新鮮な使用前に、の準備、それは光に敏感なアルミ箔で覆われています。
3. ストレプトゾトシン (180 mg/kg) を 0.1 mL の単回投与と腹腔内 26 G 針を使用してそれぞれの同系と同種のマウスを挿入します。
4. -3 日-2 と-1 は、非絶食マウスの尾静脈を穿刺によって 2-4 μ L の血液を収集します。
5. 当所ヌードマウスと c57bl/6 マウスの血糖値を測定するのに血液サンプル テスト ストリップあたりの 2-4 μ L を使用します。
   注: この時点で、マウスの 80% が糖尿病に (20 mmol/L)。
   1. 血糖値が 20 ミリ モル/l. に達したら、膵島移植のマウスを使用します。

2. マウスの膵島の分離

1. 26 G 針で腹腔内投与によるケタミン (100 mg/kg 体重) とキシラジン (20 mg/kg 体重) マウスを麻酔します。
   注: 動物 (0.10 mL/10 g) の体重によるとケタミン ・ キシラジンのボリュームを求めた。
2. 仰臥位でマウスを維持し、ポビドン ヨード液で消毒します。ペダルの反射をチェックして適切な安楽死を確認します。
   注: C57Bl/6 の場合、腹部領域を剃る。
3. 微細鉗子で肌を保持し、腹腔内を公開するハサミで正中切開。滅菌ガーゼ湿布に腹部キャビティの外側と左腸の内臓を配置します。
4. 膵臓および他の関連を検索する別の方向で胃を調整する組織。
5. 大動脈に到達し、血液を排出する小さなカットをします。血液吸収に滅菌ガーゼを使用します。
6. 腸を慎重に取り外します。胃と脾臓から膵臓を区切ります。
7. 膵臓を切除、新鮮なシャーレ内に置きます。鉗子を使用して脂肪など、すべての不要な物質を削除します。
8. コラゲナーゼの 4 mL と 5 mL シリンジを記入し、26 G 針と膵臓に挿入 (貯蔵液: ハンクの溶液 12 mL 中のコラゲナーゼの 30 mg)。
9. 消化力の改善と 12 mL 赤キャップ チューブへの転送のための表面積を高めるためハサミで膵臓をミンチします。
   注: ハンクの平衡塩溶液: HBSS 10 (100 mL)、x (10 mL) のペニシリン-ストレプトマイシン、ゲンタマイシン (1 mL)、シプロフロキサシン (10 mL)、HEPES (35 mL)、蒸留 H₂O (900 mL)
10. 振動水バースの 37 ° C で 10 分間の消化を実行します。渦 15 の定期的な間隔で三度サンプル s。
11. 3 分間の手によって積極的に消化膵臓をミックスし、10 の氷の上に置きます s。
12. 消化反応と 560 x g で室温で 3 分間遠心を停止する冷たいハンクの溶液 6 mL を追加します。
13. 上澄みを除去し、室温でパーカー/胎児の子牛血清 (P/FCS) 培地 10 mL にペレットを溶解します。
    注: P/FCS 中: TCM 199 10 (100 mL) x FCS (50 mL)、ペニシリン ・ ストレプトマイシン (10 mL)、HEPES (20 mL)、蒸留 H₂O (900 mL)
14. 光学顕微鏡下でその形態 (回転楕円体、金茶色色) に基づく小島を識別します。中心部が暗い島は避けてください。純度、光学顕微鏡による染色ジチゾンを実行することで生存率をチェックします。
    注: ジチゾン亜鉛イオンに結合し、小島に赤い染みを提供します。
15. 1 mL ピペットを使用して、カウントし光学顕微鏡の下で小島を手で摘むし、P/FCS 培地 4 mL を含んでいる新鮮なペトリ皿 (60 mm × 15 mm) にそれらを転送します。
    注: のボリュームP/FCS ペトリ皿中は酸素の可用性を確保するために 4 mL を超えない。
16. インキュベーターの 37 ° C で膵島の P/FCS 中一晩 4 mL を維持します。

3. 動物の膵島移植のための準備

1. 37 ° C の定温器から膵島を削除し、流れベンチ下に配置。ペトリ皿の揺れ円運動と小島を中心します。
2. P/FCS 中の 0.1 mL を 1 mL の注射器 (青 23 G 針) を入力します。その後、ハンクの溶液 0.3 mL で 350 島を追加します。解決する島を許可する垂直方向の位置に注射をしてください。
3. 0.05 mL に音量を下げるし、茶色の 26 G 針に青 23 G 針を置き換えます。同じ注射器に注射器で 0.2 mL の最終的なボリュームに到達する上に 0.15 mL Ficoll (密度勾配媒体) を追加します。空気の泡を避けるため。
4. 垂直位置に注射器を保つため、小島の凝集を避けるために少し回します。小島は 2-3 分以内で注射器のコーンで解決されます。
5. 受信者のネズミのボディ重量および血ブドウ糖のレベルを測定します。血糖値が約 20 ミリ モル/l. をする必要があります。
6. 26 G 針で腹腔内投与によるケタミン (100 mg/kg 体重) とキシラジン (20 mg/kg 体重) マウスを麻酔します。
7. 暖かいサーマル プレート (37 ° C) に仰臥位にマウスを配置します。つま先をつまんで麻酔の深さを確認します。
8. ポビドン ヨード液 (皮膚の消毒剤) と腹部をクリーンアップします。目の乾燥を防ぐためにそれらを保つ眼軟膏で湿潤。
   注: C57Bl/6 の場合、腹部領域を剃る。

4. 門脈経由膵島移植

1. 開腹した、0 日に始めるにはピンセットで皮膚を押しながら 2-3 cm を作る-ハサミで正中切開。場所滅菌濡れたガーゼを傷周囲にそれを湿った保つに圧縮します。
2. 滅菌ガーゼ湿布に腹部キャビティの外左に腸の内臓を配置します。
   注: は、腸に予め温めておいた 0.9 %nacl 水溶液や食塩に浸した滅菌ガーゼを使ってプロシージャ全体で潤いを保ちます。
3. 十二指腸に移動し、膵臓を探します。膵臓を上向きに押すことで腹側のサイトに位置して門脈を探します。指と親指を使用して門脈を公開して、公開、一度穴を肝臓の近くに。
4. 1 分以内ゆっくりと着実には、島の漏洩を避けるために拡大鏡の検査で門脈に小島 (3.4 の手順から 0.2 mL) を挿入します。
   メモ: 注入後常にシリンジの残りの島のために確認します。新鮮なペトリ皿と顕微鏡下でカウントにフラッシュの注射器 1 mL P/FCS メディアを取る。
5. 穿刺部位に滅菌ゲージを置き、人差し指で圧力を適用 (浸透深さ: 0.5-1 cm)、出血を止めるため 6 分間。
   注: 注入量は 0.2 mL を超えない。過度な量と圧力は、せん断応力による島に損傷を与えます。
6. 慎重に腸の内臓、腹膜、腹部筋層、筋膜を元の位置に配置します。
7. 鉗子を使用して、皮膚を持ち上げて、シルク縫合糸と筋切開と 2-3 クリップ上部の皮膚層を閉じます。
8. 皮膚の消毒剤で表面をきれいに傷の治療師を適用し、個々 のケージにマウスを置きます。傷の治療師は耐水性アクリル層を提供し、浸軟、二次感染を防ぐ。
   注: 十分な意識を取り戻しているまでマウスを観察、流体と共にトラマドール (マウスあたり 0.2 mg) を提供します。このプロトコルではすぐに麻酔から回復したマウスとトラマドール管理が苦痛を減少します。7 日後、傷を癒す必要があります。
9. 通常の餌と水でマウスを供給します。ストレプトゾトシン投与後食料と水の消費量と尿中排泄が増加します。
10. 最初の 1 週間と同系マウスの週後に毎日血糖値を測定します。同種のマウスで最大 15 日間の週 3 回血糖値を測定します。

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結果

化学物質誘発糖尿病マウスにおける移植膵島の能力を調べた。小島は糖尿病マウスにおける門脈経由で移植されました。ドナーと受信者の比 2:1 であった。同系マウス モデルにおける 2 つのドナー マウスが活かされて 350 島を取得します。小島それから糖尿病マウスに移植。血糖値を減らすことで膵ランゲルハンス島移植の役割を示唆して、移植後 1 日目に血糖値の?...

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ディスカッション

本研究では、膵島移植の門脈内のルートが検討されます。このプロトコルは糖尿病のストレスの緩和に非常に効率的な膵島移植の研究を探索する詳細な機会を提供しています。このプロトコルは、約 350 マウス島が高血糖状態を逆転させることができることを確認します。また、プロシージャの間に死んだマウスのどれも、血糖コントロールは、すべての受信者で達成されました。本体重量?...

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資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
C57Bl/6 mice	Charles River (Sulzfeld, Germany)		(10-12 weeks)
BALB/c mice	Charles River (Sulzfeld, Germany)		(10-12 weeks)
NMRI nude mice	Charles River (Sulzfeld, Germany)		(10-12 weeks)
Ketamine	Bela-pharm
Xylazine	CEVA TIERGESUNDHEIT GmbH
Syringe, 23G and 26G needle	BD
Petri Dish	Falcon	303800
NaCl	Carl Roth	351007
Sterile Gauze	Fuhrmann	7647-14-5
Shaking Water bath	Kotterman	1501
Scissors	Braun	1501
Glucose Meter	One Touch
Warm Thermal Plate	Thermo Fisher
Braunol (povidone-iodide solution)	B.Braun Melsungen AG	3864154
Liposic Edo - Sprinkled Ointment (eye ointment)	Dr. G Mann Chem.-Pharm.  GmbH
Incubator	Fa. Roth
Flow Bench	Herdus
Ficoll	Sigma-Aldrich	10771
5-0 Silk Suture Vicryl	Braun		(7.5 *1.75mm)
Michel Clamps (clips)	Aesculap	BN507R
P/FCS Solution	Gibco	21180-021
TCM-199 (10x)	Gibco	21180-021
FCS	Biowest	S1810-500
Penicillin-streptomycin	Gibco	15140-122
HEPES (1 M)	Biochrom	L 1613
Gentamycin	Ratiopharm
Ciprofloxacin	Fresenius Kabi
Hank's Solution	Gibco	14060-040
Collagenase	Roche	11213865001
Streptozotocin	Calbiochem	572204
OPSITE-spray (wound healer)	Smith and nephew	66004978
Reugular food	Altromin
Head light LED 16042 (magnifying glass)	Eschenbach	16042
Rat anti-mouse PECAM-1(CD31) monoclonal primary antibody	Millipore, Chemicon	CBL1337	Dilution (1:100)
Donkey anti-rat secondary antibody	Dianova	712095153	Dilution (1:400)
Polyclonal guinea pig anti-insulin primay antibody	Dako	A0564	Dilution (1:500)
Donkey anti-guinea pig secondary antibody	Dianova	706-259-148	Dilution (1:400)