KOは、米国心臓協会からの助成金によってサポートされています。

あなたが始める前に大人の心<ol><li>新鮮な108mMのNa +、5mMのK +、2mMのCa 2 +は 、8MMのMgCl 2、1mMののNaH 2 PO 4、4mmの飽和NaHCO 3、10mMのスクロース、5mMのトレハロース、5mMのHEPES（pHは7.1、すべての試薬 ​​からを含む人工体液（AH）溶液を調製シグマケミカル）。スクロースおよびトレハロースは、細菌汚染を防ぐために、使用直前に冷蔵保存溶液からAHに追加する必要があります。 </li><li>室温および少なくとも15分間空気バブリングによって酸素を解決するためにAH持参。 </li><li>脂肪の除去に必要ないくつかの細かい毛細血管（例えばガラス管、100ul、VWR）を引き出します。 </li></ol>幼虫の心<ol><li> Sylgardコーティングされたカバースリップ：22x22mmカバースリップの上に、Sylgard溶液を50 -70μl程度の転送を爪楊枝を使って。 ° C一晩65℃Sylgard硬化をしましょう​​。 </li><li> Broadieとベイトのバッファを準備します（135mm幅のNaCl、5mMのKClを、4mmののMgCl 2、2mMのCaCl 2で 、5mMのTES、36mmのショ糖、pHは7.15 Broadieとベイト、1993を参照してください。）。 </li><li> histoacryl接着剤を適用するために必要なツールを準備します。最初に、いくつかの細かい毛細血管（例えば、科学製品GB100T8P）引き出します。チューブに小さい方の端を挿入することにより、小さなプラスチック製のチューブ（タイゴン、1 / 32&quot;）を1.5ミリリットルのピペットチップを接続する。もう一方の端に広い開口部とキャピラリを挿入します。プラスチック製の先端に接着剤と穏やかな吸引のドロップに毛細管を浸漬することによりHistoacryl接着剤でキャピラリーをロードする。接着剤を扱うとき一キャピラリー接着剤の先端から、過剰な接着剤を除去するために手でキャピラリー番目のグラスを持っている必要があります。それは数秒内にそうなる硬化緩衝生理食塩水と接触するまで、接着剤は液体です。しかし、それは通常、試料に印加しながら接着剤キャピラリー先端からまたはに削除されるのに十分な長さのプラスチックのままです。 </li></ol>アダルトフライから半無傷ショウジョウバエのハート<ol><li>大人ショウジョウバエのハエは、2〜5分間フライナップ（キャロライナ生物サプライ株式会社）で麻酔する。ケアは、長い露光のためのフライナップでハエを状態にならないようにご注意ください。寒さへの短期暴露はまた、ハエを麻酔するために使用することができますが、それはもはや心拍数とリズムに永続的な効果を持っているとしてCO 2が推奨されていません。 </li><li>麻酔ハエは、ワセリンの薄層でコーティングされたシャーレに、背側を下に、配置されます。疎水性のゼリーの翼と体可逆的に&quot;スティック&quot;のクチクラが、必要に応じその場を再配置することができます。これは、後続の操作時に特に重要になります。 </li><li>最初のカットは、春のはさみ（Roboz＃5611）の湾曲したペアを使用して行われます。はさみブレードは、足の下に置き、首の近くに胸部の背面に向かって傾斜している。頭、腹側神経索、および脚はシングルカットで削除されます。準備をして酸素、人工血リンパ（AH）溶液中に浸漬される。 </li><li>春のはさみを使用して、腹部（腹部セグメント7と8で構成される）の後部先端は、シングルカットで削除されます。これは腹部の両エッジに沿って横方向のカットを行うためのアクセスを提供し、後腸、腹部キューティクルの間の接続を切断するのに役立つ。腹側腹部キューティクルの解放されたフラップはその後削除されます。 </li><li>腹部の臓器は今だけtracheolsによって所定の位置に保持されているように手順3と4で腸の前部と後部の接続が切断されています。腸や他の腹部臓器は通常、宝石商の鉗子（Roboz、＃55）と揺さぶる優しいを使用して単一の塊として除去することができます。内臓を削除しても、まだ脂肪体に囲まれて背側クチクラに接続されている心臓の鼓動のチューブを明らかにする。 </li><li>脂肪体は、結果としてそれは明らかに心臓のチューブを確認するために、この脂肪の一部を削除する必要がしばしばある光学顕微鏡では非常に不透明です。これは、細かく描かれたガラスキャピラリーを用いた脂肪吸引の技術によって実現されます。毛細血管は、標準的なピペットプラー（例：サッターP - 97ピペットプラー）を使用して作られていますし、真空源に接続されているプラ​​スチック製のチューブ（タイゴン、1 / 16&quot;）に挿入されます。このシステムは、心臓の管の周りから余分な脂肪から吸引するために使用されます。直径40ミクロ​​ンよりも大きなヒントとピペットを使用するべきではありませんので、吸引力は、先端の直径に比例する。心臓の後方部分はこの地域を完全に回避する必要があることを非常に壊れやすいので細心の注意は、心臓自体に触れないように注意しておく必要があります。 </li><li>成体ショウジョウバエの心臓の管が、現在公開され、暴行されるべきである。必要に応じて、キューティクルと接続された心を穏やかにワセリンからキューティクルを持ち上げ、慎重に背部の下のそれを突き、再び心臓組織との接触を避けることによって再配置することができます。 tにおける彼のポイントは、準備の入浴ソリューションは、新鮮なAHLに置き換える必要があります。この調製物は、前の任意の操作に酸素20〜30分間平衡を許可する必要があります。準備が60分以上維持する場合、それは新鮮なAHLで灌流してください。 </li></ol>光記録のための固定化ショウジョウバエの幼虫<ol><li> Sylgardのカバーガラスの各コーナーに近いHistoacryl接着剤の滴を配置。接着剤の滴にB＆Bバッファー50μlのを追加している硬化が即座になります。 B＆Bで接着されたスポットの間にスペースを埋める - 接着剤は、スライド上にバッファを保持します。 </li><li>放浪L3の幼虫を取り、2分間氷上でウェットティッシュの紙の上に置きます。これは、その動きが遅くなります。その後、バッファと東洋背側を上に（これは歯状突起のベルトを欠いている幼虫の側面である）とそれに幼虫を移す。すぐに頭部とSylgardの間にいくつかの接着剤を適用する。接着剤は硬化が非常に速くなりますし、移動から幼虫の頭部を防ぐ。 </li><li>鉗子を使用すると、慎重に後部気門によって動物をつかみ、ゆっくりとストレッチ。後半では幼虫の両側に沿って接着剤を適用することによって、この位置で幼虫を修正。体壁の筋肉がキューティクルのさらなる動きを減らすために、動物の脇腹に多くの接着剤を追加。幼虫は、今この位置に固定されています。カバースリップは、AHLまたはPBSで満たされた小さなペトリ皿に配置することができます。心臓の拍動は、現在、体壁の動きからの干渉なしに記録することができます。 </li></ol>代表的な結果： 新鮮な、酸素AHで維持するときに半無傷の成体ショウジョウバエの心臓は（補足データを参照して、Ocorr、ら、2007）解剖以下の時間のためにリズミカルに負かす事になります。代表的な例は、ムービー1に示します。第3齢幼虫と若ハエ（1 - 3週間後に羽化）からハーツ- 3 Hzの一般的に1の間のレートでの定期的なハートビートを示す。古いより3週間ハエは、一般的に不整脈であり、それにもかかわらず、これらの心はまだ酸素AHLで何時間も自然に打ち負かすことができます。解剖の手順の結果として損傷を受けている成人ハエの心は、一般的にリラックスすることができない極端な収縮の局所領域を示しています。 1Hzよりも遅いビートのレートはほとんど3週齢未満のハエでは観察されない。従ってそのような準備が破損すると破棄されると考えられている。 <a href="http://www.jove.com/files/ftp_upload/1425/MOVIE1.avi">ムービー1をダウンロードするには、ここをクリック。</a> -露出腹部心管を示す一週間古い大人の野生型のハエ（W 1118実験室株）（左前方）。定期的な、リズミカルな収縮を注意してください。右上隅の不透明な領域が残っている腹部の脂肪体であり、心臓の両側に丸い細胞が心膜細胞である。

<ol>
	<li>Ocorr, K., Reeves, N., Wessells, R. J., Fink, M., Chen, H. -. S. V., Akasaka, T., Yasuda, S., Metzger, J., Giles, W., Posakony, J. W., Bodmer, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=KCNQ+potassium+channel+mutations+cause+cardiac+arrhythmias+in+Drosophila+that+mimic+the+effects+of+aging.">KCNQ potassium channel mutations cause cardiac arrhythmias in Drosophila that mimic the effects of aging.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 104, 3943-3948 (2007).</li><li>Broadie, K. S., Bate, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+the+embryonic+neuromuscular+synapse+of+Drosophila+melanogaster.">Development of the embryonic neuromuscular synapse of Drosophila melanogaster.</a> J Neurosci. 13, 144-166 (1993).</li></ol>

ショウジョウバエモデルでは、胎生発育から学習や記憶に至るまで、科学的なさまざまな質問に対処するために使用されている強力な遺伝学的ツールであることが証明されている。最近この多目的なモデル生物はハエの心機能の遺伝学を調査するために使用されています。成体ショウジョウバエで心臓生理学を定量化するための試行回数は、腹部のクチクラを通してそのままハエで行った観?...

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		<div>
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		<thead>
		<tr>
		<th>Material Name</th>
		<th>Type</th>
		<th>Company</th>
		<th>Catalogue Number</th>
		<th>Comment</th>
		</tr>
		</thead>
		<tbody>
		
<tr>
<td>Micro Dissecting Spring Scissors (curved)</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Roboz</td>
<td>RS-5611</td>
<td>Good for gross cuts (Step 3)</td>
</tr>
<tr>
<td>Micro Dissecting Spring Scissors (straight)</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Roboz</td>
<td>RS-5620</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Dumont #55 forceps</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Fine Science Tools</td>
<td>11295-51</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Dumont #5 forceps</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Fine Science Tools</td>
<td>11295-10</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Glass Capillaries, 100ul</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>VWR</td>
<td>53432-921</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Glass Capillaries, fine</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Science Products</td>
<td>GB100T8P</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Pipette Puller</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Sutter Equipment</td>
<td>P-97</td>
<td>Both horizontal and vertical pipette pullers will work</td>
</tr>
<tr>
<td>Plastic tubing</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Tygon R-3603</td>
<td>1/16&#x201D; inner diameter</td>
<td>for 100&mu;l capillaries</td>
</tr>
<tr>
<td>Plastic tubing</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Tygon R-3603</td>
<td>1/32&#x201D; inner diameter</td>
<td>for small capillaries</td>
</tr>
<tr>
<td>Histoacryl&reg; tissue adhesive</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>B.Braun, Melsungen</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>		</tbody>
		</table>
		</div>

visualizing the beating heart in drosophila

市販<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;心臓は最近、遺伝子、細胞、および筋原性心内分子メカニズムの基礎となる機能を調べるための良いモデル系として注目されています。ハエで心機能を調べる上で重要なステップは、まだ心臓の鼓動の臓器を観察し、記録されることを可能にしながら、その筋の機能を維持する方法で、心臓にアクセスする方法を見つけることです。幼虫と成人の両方で心臓の鼓動を観察し、記録するための2つの異なった方法<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;ここで説明されています。大人のハエを使って私たちの半無傷の準備は、色素性クチクラからの干渉と脂肪体を覆うことなく、腹部、心臓の明確な可視化が可能になります。幼虫の心臓を記録するには、それにより心筋の収縮に関連付けられていない心の動きを減らし体壁の動きを最小化する幼虫を、固定化する必要が打つ。私たちの方法論は1-3 Hzのレートでの時間のために打つことができる安定した大人と幼虫の心の準備を生成する。

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Visualizing the Beating Heart in Drosophila

幼虫および成体での心臓の鼓動を可視化するために必要なテクニック<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;提示されます。各ライフステージでは、異なる方法論が必要になります。

の心臓の鼓動の可視化ショウジョウバエ</em

The Drosophila heart has recently emerged as a good model system for examining the genetic, cellular, and molecular mechanisms underlying function in ...

visualizing-the-beating-heart-in-drosophila

Research

JoVE Journal

Biology

Visualizing the Beating Heart in Drosophila

18.5K ビュー.  The Sanford Burnham Institute for Medical Research. 幼虫および成体での心臓の鼓動を可視化するために必要なテクニックショウジョウバエ提示されます。各ライフステージでは、異なる方法論が必要になります。